Eficacia del Griselesf® (Bacillus sphaericus 2362) como controlador biológico de larvas de Anopheles aquasalis Curry

Frances Osborn¹, Melfran Herrera² & Armando Salazar2

¹ Instituto de Investigaciones en Biomedicina y Ciencias Aplicadas, Cerro del Medio, Universidad de Oriente, Cumaná, Edo. Sucre. Venezuela

² Laboratorio de Entomología “Dr. José V. Scorza”, Gerencia de Saneamiento Ambiental, FUNDASALUD. Carúpano, Edo. Sucre. Venezuela.

*Autor de correspondencia: fosborn2001@yahoo.com

Actualmente existen diferentes productos a base de Bacillus spp. que tienen un efecto larvicida sobre Anopheles spp., vectores de la malaria. Sin embargo, su eficacia es variable dependiendo de la especie blanco y las condiciones ambientales. Se evaluó la efectividad del producto Griselesf® (Bacillus sphaericus 2362) como controlador biológico de Anopheles aquasalis, principal vector de malaria en el estado Sucre, en dos ocasiones bajo las mismas condiciones de laboratorio, en el año 2002 y luego en el 2006. Se prepararon soluciones del producto a concentraciones de 1, 5, 10, 50 y 100 ppm (año 2002) y 5, 25, 50, 75 y 100 ppm (año 2006), en 600 mL de agua potable. Luego se trasvasaron 100 mL de cada una de las soluciones en envases plásticos de 250 mL y se colocaron 10 larvas de los estadíos tercero tardío o cuarto temprano en cada uno de los recipientes. En el 2002, a los 48 horas en 100 ppm el Griselesf® había matado solamente 0,84% de la población aumentando a 25% a las 72 horas. En el 2006, en 100 ppm, hubo mortalidades de 6,67 y 11,67% de las poblaciones de las larvas a las 48 y 72 horas respectivamente. Los resultados sugieren que Griselesf® no es efectivo contra las larvas de An. aquasalis del estado Sucre.

Palabras claves: Anopheles, biolarvicida Bacillus sphaericus (2362).

The effectiveness of Griselesf® (Bacillus sphaericus 2362) as a biological control of larvae of Anopheles aquasalis Curry

SUMMARY

There are many different formulations of Bacillus spp. used as larvicides against the malaria vectors, Anopheles spp. Nevertheless, their effectiveness is variable depending on the target species and environmental conditions. The effectiveness of Griselesf® (Bacillus sphaericus 2362) as a biological control agent for the principal malaria vector in Sucre state, Anopheles aquasalis, was evaluated under similar laboratory conditions on two occasions, in 2002 and later in 2006. Solutions of the product were prepared at concentrations of 1, 5, 10, 50 and 100 ppm (2002) and 5, 25, 50, 75 and 100 ppm (2006), in 600 mL of potable water and for each concentration 100 mL was poured into each of six 250 mL plastic recipients. Ten late third or early fourth instar larvae were then placed into each recipient. In 2002, after 48 hours in 100 ppm Griselesf® had only killed 0,84% of the population, rising to 25% after 72 hours. In 2006, in 100 ppm, the mortality rates were 6,67 and 11,67% after 48 and 72 hours respectively. The results suggest that Griselesf® is not effective against An. aquasalis from Sucre state.

Key words: Anopheles, biolarvicide, Bacillus sphaericus (2362).

Recibido el 29/05/2006 Aceptado el 11/03/2007

INTRODUCCIÓN

Actualmente existen diferentes productos comerciales a base de bacterias del género Bacillus spp. que tienen un efecto larvicida sobre Anopheles spp., vectores de la malaria. Sin embargo, la eficacia de las diferentes formulaciones puede variar dependiendo de la especie blanco y las condiciones ambientales, entre otras (Becker et al., 1989). Por lo tanto, es importante seleccionar la formulación más efectiva para asegurar su eficiencia para controlar las poblaciones de las diferentes plagas de salud pública en las regiones donde se encuentran.

La formulación comercial Griselesf®, a base de Bacillus sphaericus 2362, ha sido empleada en varios países de Centro y Suramérica desde el año 1991, con un alto grado de éxito. Montero et al., (1991), aplicaron este producto en 160 criaderos de Culex quinquefasciatus, Aedes taeniorhynchus y Anopheles albimanus en el municipio Santa Cruz, La Habana, Cuba, donde causó un 100% de reducción larvaria hasta por 5 meses. Estos estudios fueron replicados en el municipio Buenaventura (Colombia) (Villarreal, 1995), Managua (Nicaragua) (Rivera, 1997), Guatemala (Blanco et al., 2000) y Honduras (Blanco et al., 2002). En todos estos reportes se empleó una dosis de 10 mL/m2 del producto, obteniéndose reducciones larvarias entre 78,12 (Blanco et al., 2002) y 100% durante períodos de tres a cinco meses (Villarreal, 1995; Rivera, 1997; Blanco et al., 2000, 2002). Todas las pruebas se hicieron contra An. albimanus, excepto la realizada en Colombia, donde se aplicó el producto en criaderos de An. albimanus y An. nuneztovari.

Sin embargo, Delgado et al. (2001) compararon Vectolex WDG® (al 51,2%) y Griselesf®, ambos a 0,25 g de ingrediente activo por m2 (equivalente a 51 mL/m2), contra larvas de Anopheles sp. en Boca de Nigua, República Dominicana. El Vectolex WDG® tuvo un mejor desempeño hasta el cuarto día con un 100% de reducción comparado con un 58,2% producido por el Griselesf®. No obstante, ambos productos presentaron 0% de reducción para el día once.

Además, Berti et al. (2006), realizaron ensayos de efectividad y persistencia de Griselesf®, aplicando 0,25 g/m2 contra poblaciones larvales de An. aquasalis en un pantano arbóreo en el municipio Mariño, estado Sucre, Venezuela, obteniendo como máximo de mortalidad alrededor del 62,8% en los primeros dos días de iniciado el ensayo para luego caer a partir del octavo día, hasta llegar a 48,6% a los 16 días.

En el año 2002, el Ministerio de Salud de Venezuela importó el Griselesf® para el control de las poblaciones de Anopheles spp., vectores de la malaria en este país. En el estado Sucre, como parte del programa de control vectorial de anofelinos se realizaron aplicaciones aéreas durante los meses de marzo y abril de 2002 en criaderos inabordables por vía terrestre debido a su gran extensión o dificultad de acceso. Dichos criaderos se encontraban localizados en los municipios Mariño, Cajigal, Libertador y Benítez (Informes Internos de la Gerencia de Saneamiento Ambiental (GSA) de FUNDASALUD, estado Sucre, 2002). Sin embargo, en esta oportunidad no se realizaron evaluaciones previas de laboratorio o de campo sobre la eficacia y persistencia de la formulación contra larvas del vector local, An. aquasalis.

Debido a lo anterior, y a que el Griselesf® ha mostrado una eficiencia variable contra diferentes especies de Anopheles, se consideró necesario realizar estudios de laboratorio para evaluar el efecto larvicida del Griselesf® sobre An. aquasalis, principal vector de la malaria en el estado Sucre.

MATERIALES Y MÉTODOS

La formulación de Griselesf® (0.6% IA, 600 ITU/mg) empleada fue importada a Venezuela por el Ministerio de Salud de la empresa Labiofam, Cuba, y fue enviada a la Gerencia de Saneamiento Ambiental (GSA). Se realizaron dos ensayos, el primero en septiembre de 2002 y el segundo en mayo de 2006. El producto empleado en ambas experiencias provenía de lotes diferentes, recién importados a Venezuela y viables según la etiqueta.

Las larvas fueron obtenidas a partir de hembras adultas de An. aquasalis capturadas de un potrero de vacas en el pueblo de Río de Agua, municipio Libertador, Estado Sucre (10º 35´ 11,7´´ N; 62º 58´ 09,8´´ O), según la metodología de Delgado (1998) y Gómez & Osborn (2002) e identificadas utilizando las claves de Cova-García & Sutil (1977).

Los experimentos se realizaron en el Laboratorio de Entomología Dr. J. V. Scorza (LEJVS) de la GSA, en Carúpano, estado Sucre. En ambos casos, las larvas de An. aquasalis se criaron hasta los estadíos tercero tardío o cuarto temprano en bandejas plásticas de 24 x 16 x 6 cm con 200 mL de agua potable a una temperatura de 27 ± 0.5oC, % humedad 80 ± 5, y fotoperiodo 12:12, utilizando la metodologías de Delgado (1998) y Gómez & Osborn (2002).

Se prepararon soluciones del producto a concentraciones de 1, 5, 10, 50 y 100 ppm (año 2002) y 5, 25, 50, 75 y 100 ppm (año 2006), en 600 mL de agua potable. Luego se trasvasaron las larvas a envases plásticos con una superficie de 83 cm2 y profundidad 5 cm, con 100 mL de cada una de las concentraciones a probar y se colocaron 10 larvas en cada uno de los recipientes. En cada ensayo se utilizaron 6 réplicas por concentración de producto más sus respectivos controles, todos montados durante un lapso de no más de dos horas. Se anotó la mortalidad de las larvas 48 y 72 horas después del inicio del experimento y se corrigió utilizando la fórmula de Abbott (Abbott, 1925), en el caso que la mortalidad de los controles excediera el 5%:

% mortalidad corregida = (X-Y/X) x 100

donde:

X = % de larvas vivas en el control

Y = % de larvas vivas en el tratamiento.

RESULTADOS

En el ensayo del año 2002, se observó que a las 48 horas luego de la exposición de las larvas Vol. XLVII, N° 1, Enero-Julio, 2007 121 Osborn F. et al. al Griselesf®, hubo mortalidades de 2,5, 1,02 y 0,84% en las concentraciones de 10, 50 y 100 ppm, respectivamente. Las mortalidades aumentaron luego de las 72 horas en todas las concentraciones, alcanzando un 25% de la población a 100 ppm. No se produjo ninguna mortalidad en los controles (Fig. 1).

Fig. 1. Porcentaje de mortalidad de larvas de 3er-4to instar de Anopheles aquasalis producido por el producto comercial Griselesf® 2362, a las 48 y 72 horas luego de la exposición, año 2002.

En cuanto al bioensayo realizado en el año 2006, a las 48 horas hubo mortalidades de 6,67; 1,67; 0, 3,33 y 6,67% en las concentraciones de 5, 25, 50, 75 y 100 ppm, respectivamente. A las 72 horas, luego de la exposición, la única concentración donde hubo un aumento significativo fue en 100 ppm donde siete larvas murieron, representando solamente 11,67% de la población. No se produjo ninguna mortalidad en los controles (Fig. 2).

Fig. 2. Porcentaje de mortalidad de larvas de 3er-4to instar de Anopheles aquasalis producido por el producto comercial Griselesf® 2362, a las 48 y 72 horas luego de la exposición, año 2006.

DISCUSIÓN

En ambos ensayos, el Griselesf® produjo mortalidades muy bajas en todas las concentraciones probadas, por lo cual no fue posible el cálculo de las concentraciones letales CL50 y CL95. Es también necesario resaltar que algunas de las concentraciones menores produjeron mayores mortalidades en las larvas que las concentraciones superiores, destacando especialmente la de 5 ppm en el año 2006, que mató más larvas que las concentraciones de 25, 50 y 75 ppm, tanto a las 48 como a las 72 horas. No sabemos que podría haber causado este hecho, sin embargo, es posible que se deba a las diferentes tasas de alimentación de los individuos. En todo caso, es obvio el bajo efecto del Griselesf® en todas las concentraciones probadas.

Ensayos realizados por otros autores, con el mismo producto, han producido mortalidades de 50% y 95% a 2,27 y 152,9 ppm, respectivamente, y 67,36 de eficiencia, para larvas de An. aquasalis provenientes de mosquitos hembras colectados en la ribera del Lago de Valencia, estado Aragua (Delgado, 2001).

Delgado et al. (2001), también realizaron estudios de laboratorio con este producto sobre larvas de An. albimanus en Santo Domingo, República Dominicana, donde obtuvieron 73% de mortalidad en 10 ppm (48 horas), lo cual fue comparable con la mortalidad producida por Vectolex WDG® (al 51,2%) para el mismo periodo: 82%.

Esas mortalidades son mucho mayores que las obtenidas en este trabajo, lo cual pudiera deberse a que los individuos de la población de An. aquasalis aquí estudiada presenten mayor resistencia al producto que los que se emplearon en los estudios arriba mencionados.

Las larvas de An. aquasalis colectadas del estado Sucre han mostrado una mayor resistencia a otros productos bacterianos, específicamente Vectobac®-12AS y Bactivec®, comparadas con larvas de esta misma especie colectadas de otra localidad en Venezuela. Delgado (1996) y Moreno et al. (2003), probaron Vectobac®-12AS y Bactivec®, respectivamente, en agua dulce contra las larvas de An. aquasalis criadas de adultas colectadas del mismo sitio en el Lago de Valencia, estado Aragua, encontrándose valores de las CL50 y CL95 de 0,013 y 0,10 ppm para Vectobac®-AS12 (Delgado, 1996) y 0,111 y 0,263 ppm para Bactivec® (Moreno et al., 2003), mientras que en un estudio realizado por Osborn et al. (2007) con los mismos productos contra An. aquasalis del estado Sucre, los valores de las CL50 y CL95 fueron 0,2 y 0,67 ppm respectivamente para Vectobac®- 12AS, y 0,89 y 5,05 ppm, respectivamente, para Bactivec®.

Estos resultados sugieren que An. aquasalis aparentemente tiene una mayor resistencia natural que An. albimanus y que las poblaciones de An. aquasalis del estado Sucre son más resistentes que las del Lago de Valencia, al menos a los productos a base de Bacillus thuringiensis probados. Sin embargo, es también aparente que An. aquasalis es más susceptible a las formulaciones de Bacillus thuringiensis Vectobac®-AS12 y Bactivec® que al Griselesf®. Otras formulaciones de B. thuringiensis también han dado buenos resultados contra esta especie, por ejemplo Vectobac®-G (0,2 %), Vectobac®-AS (0,6%), Teknar® (1,6 %) y una formulación experimental microencapsulada M-Bti® (0,1 %), que dieron CL50 y CL95 de entre 0.006 y 0.05 ppm, respectivamente (M-Bti®) y 0,48 y4,8 ppm (Vectobac®-G) (Delgado, 2004).

Esto pudiera implicar que An. aquasalis es más susceptible a B. thuringiensis que a B. sphaericus. No obstante, trabajos de laboratorio realizados con otra formulación de B. sphaericus han arrojado buenos resultados, como por ejemplo Narváez (2003), quién obtuvo mortalidades de 99% cuando enfrentó larvas de An. aquasalis también colectados del estado Sucre, con Vectolex® CG 7,5% a una concentración de 0,75 ppm.

Estudios de campo realizados por Berti et al. (2002, 2006) también sugieren la susceptibilidad de An. aquasalis a formulaciones de B. sphaericus. La aplicación de Vectolex® CG 7,5% a una concentración de 0,2 g/m2 produjo porcentajes de reducción de 100% hasta los cuatro días, bajando a un 67,5% a los 21 días en una sabana inundada en el municipio Cajigal, estado Sucre (Berti et al., 2002). Vectolex® WDG-51,2%, en un manglar en el municipio Mariño, estado Sucre, produjo porcentajes de reducción de 100% hasta los ocho días y 90,2% hasta los 16 días (Berti et al., 2006).

Lo expuesto anteriormente nos demuestra que existe una variabilidad en la respuesta dosismortalidad entre especies, e incluso entre diferentes poblaciones de la misma especie, a un mismo producto, y diferencias de la susceptibilidad de la misma especie o población frente diferentes formulaciones, lo que implica la necesidad de un monitoreo constante en las regiones donde se utilizan. En este caso, los resultados resaltan que An. aquasalis del estado Sucre tiende a tener una mayor resistencia natural a los larvicidas biológicos que otros anofelinos y que es más resistente al Griselesf® que otras formulaciones tanto de B. thuringiensis como a B. sphaericus.

En conclusión, los resultados producidos por esta formulación de B. sphaericus 2362 (Griselesf®) demuestran un bajo desempeño contra larvas de An. aquasalis del estado Sucre, comparados con los presentados contra larvas de la misma especie de otras localidades de Venezuela y contra larvas de otras especies de anofelinos.

En base a lo anterior, no recomendamos su uso como controlador biológico de las larvas de esta plaga, al menos en dicho Estado. Además, recomendamos realizar ensayos de este tipo con las otras principales especies vectoras de malaria de nuestro país (An. darlingi, An. nuneztovari y An. albimanus).

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecemos al personal de la Gerencia de Saneamiento Ambiental, Región XI por su ayuda en la colecta de los adultos de An. aquasalis. También quisiéremos agradecer las sugerencias de un árbitro anónimo, las cuales mejoraron sustancialmente el manuscrito. Este trabajo fue financiado en parte por el Consejo de Investigación de la Universidad de Oriente, Proyecto No. CI-5-1901-0957/00 y el FONACIT Proyecto No. GI-200000-1541

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