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Investigación Clínica
versión impresa ISSN 0535-5133
Invest. clín vol.56 no.3 Maracaibo set. 2015
Sensibilidad in vitro de aislados del complejo Paracoccidioides spp a antifúngicos sistémicos utilizando
el método de microdilución
Julman R Cermeño1, Primavera Alvarado2, Mireya Mendoza2 e Isabel Hernández de Cuesta1
el método de microdilución
Julman R Cermeño1, Primavera Alvarado2, Mireya Mendoza2 e Isabel Hernández de Cuesta1
1 Departamento de Parasitología y Microbiología. Universidad de Oriente, Núcleo Bolívar, Ciudad Bolívar, Venezuela. 2Instituto de Biomedicina. Universidad Central de Venezuela, Caracas, Venezuela.
Resumen. El método de referencia, microdilución en caldo, recomendado por el Instituto de Estándares Clínicos y de Laboratorios (CLSI), no está disponible para hongos dimórficos, como los del género Paracoccidioides. En este trabajo se evaluó la sensibilidad in vitro del Complejo Paracoccidoides (n=19) frente a los antifúngicos sistémicos: anfotericina B, 5-fluorocitosina, ketoconazol, itraconazol, fluconazol, voriconazol y caspofungina empleando el método de microdilución (Documento M27-A3 y M27-S3), con algunas modificaciones: tiempo de cultivo en medio de Sabouraud dextrosa agar (7-10 días), medio RPMI 1640 suplementado con glucosa al 2%, tiempo de incubación (7, 8 y 18 días). La sensibilidad in vitro fue variable; la mayoría de los aislados de Paracoccidioides fueron sensibles a ketoconazol (73,7%), seguido de voriconazol (68,4%), itraconazol (63,1%), anfotericina B (52,6%), fluconazol (47,4%), 5-fluorocitosina (42,1%) y caspofungina (5%). La resistencia global fue mayor ante caspofungina (94,7%), seguido de 5-fluorocitocina (52,6%) and anfotericina B (47,4%). El 53% de los aislados fue sensible dosis dependiente a fluconazol, 15,7%, itraconazol y 5,3% a 5-fluorocitosina. Anfotericina B, itraconazol y voriconazol fueron los antifúngicos más potentes contra Paracoccidioides spp (CMI: 0,03-1µg/mL). Basándose en estos resultados, se propone tentativamente un protocolo de ensayo de microdilución para las pruebas de sensibilidad de Paracoccidioides spp frente a fármacos antimicóticos. Esta metodología podría ser clínicamente útil para predecir el desarrollo de resistencias, aunque son necesarios más estudios.
Palabras clave: Complejo Paracoccidioides spp; itraconazol; microdilución; sensibilidad antifúngica; voriconazol.
In vitro susceptibility of isolates of Paracoccidioides spp complex to systemic antifungals using the microdilution method.
Abstract. Broth microdilution, the reference method recommended by the Clinical Laboratory Standards Institute (CLSI), is not available for use with dimorphic fungi, such as those of the Paracoccidioides genus. In this work, in vitro susceptibility of the Paracoccidioides complex (n=19) to systemic antifungals: amphotericin B, 5-flucytosine, ketoconazole, itraconazole, fluconazole, voriconazole and caspofungin, was evaluated using the microdilution method (Document M27-A3, M27-S3), with some modifications such as: culture time in Sabouraud dextrose agar (7-10 days), RPMI 1640 medium supplemented with 2% glucose and the incubation time (7, 8 and 18 days). The sensitivity in vitro was variable; the majority of Paracoccidioides isolates was susceptible to ketoconazol (73.7%), followed by voriconazole (68.4%), itraconazole (63.1%), amphotericin B (52.6%), fluconazole (47.4%), 5-flucytosine (42.1%) and caspofungin (5%). The overall resistance was mainly to caspofungin (94.7%), followed by 5-flucytosine (52.6%) and amphotericin B (47.4%). Fifty-three percent of the isolates were susceptible-dose dependent to fluconazole followed by itraconazole (15.7%) and 5-fluorocytosine (5.3%). Amphotericin B, itraconazole and voriconazole were the most potent antifungal drugs against Paracoccidioides spp (CMI: 0.03-1µg/mL). Based on these results, we tentatively propose a microdilution assay protocol for susceptibility testing of Paracoccidioides spp to antifungal drugs. This method may be clinically useful to predict resistance, even though further studies are needed.
Keywords: Antifungal susceptibility; itraconazole; microdilution; Paracoccidioides spp complex; voriconazole.
Recibido: 23-06-2014 Aceptado: 26-03-2015
INTRODUCCIÓN
El Complejo Paracoccidioides brasiliensis (especies crípticas S1, PS2, PS3) y Paracoccidioides lutzii son hongos dimórficos y agentes etiológicos de la Paracoccidioidomicosis (PCM), enfermedad granulomatosa, sistémica, con múltiples formas de presentación clínica, de evolución crónica y con altas tasas de morbimortalidad; endémica en los países de América Latina, desde el sur de México hasta la Argentina (1-5). La PCM en América Latina, representa un problema importante de salud pública en Brasil, Colombia, Venezuela, Ecuador y Argentina. Se considera que en Brasil, Colombia y Venezuela el 10% de la población se ha infectado en algún momento de su vida (1, 5-7).
Actualmente, varias drogas están disponibles para el tratamiento de PCM, tales como los azoles, trimetoprim sulfametoxazol y anfotericina B, los cuales han presentado buena actividad y algunos efectos colaterales (6, 8-10). El análisis de sensibilidad in vitro del género Paracoccidioides a los diferentes antifúngicos sistémicos muestra discrepancias atribuidas a la diversidad de técnicas empleadas en los distintos estudios y a los diferentes puntos de interpretación de las Concentraciones Mínimas Inhibitorias (CMI) (11-23). La mayoría de los estudios publicados hasta ahora han empleado diversas metodologías de sensibilidad in vitro para este hongo, y pocos han empleado el método de microdilución (19, 23) recomendado por el Instituto de Estándares Clínicos y de Laboratorios (CLSI) o métodos alternativos (microplacas alamar Blue) (22). Hasta ahora, ningún Documento del CLSI incluye el estudio de susceptibilidad in vitro de hongos dimórficos como el género Paracoccidioides a diferentes fármacos, debido a la dificultad en el cultivo; sin embargo, es importante emplear el método recomendado por CLSI para pruebas in vitro para facilitar la definición de parámetros de control de calidad y la interpretación de los puntos de cortes. El objetivo del presente estudio fue evaluar la sensibilidad in vitro del género Paracoccidioides a los antifúngicos sistémicos: anfotericina B, 5-fluorocitosina, ketoconazol, itraconazol, fluconazol, voriconazol y caspofungina mediante el método de microdilución en medio líquido recomendado por el CLSI (Documento M27-A3 y M27-S3 con algunas modificaciones (24,25).
MATERIAL Y MÉTODOS
Aislados
Se emplearon 17 aislados clínicos: Pb305, Pb6182, Pb309, Pb307, Pb673, Pb9369, Pb9551, Pb207, Pb10556, Pb9103, Pb1237, Pb 10107, Pb 9299, Pb 106, Pb9570, Pb 9570, Pb7987 y 2 aislados ambientales de Paracoccidioides spp (Pb300, PbT2). Todos los aislados fueron obtenidos e identificados en el Laboratorio de Micología, Instituto de Biomedicina, mediante métodos convencionales de micromorfología, crecimiento a temperatura ambiente y 37ºC (dimorfismo), para comprobar su pureza y viabilidad. Sólo aislados Pb300, Pb305, Pb309 y Pb307 han sido identificados a nivel molecular (26,27) correspondiendo todos a la especie P. brasiliensis. Los aislados fueron cultivados en agar Sabouraud tiamina asparagina a 35ºC + 2°C y sub-cultivados en Sabouraud dextrosa agar (Difco, Detroit, Mich, USA) a 35ºC + 2°C, 7-10 días antes del estudio de sensibilidad in vitro.
Agentes antifúngicos
Se emplearon los siguientes antifúngicos: anfotericina B (Bristol-Myers Squibb), ketoconazol (Esteve Química, Barcelona, España), itraconazol (Janssen Research Foundation, Beerse, Belgium), fluconazol (Pfizer, España), 5-fluorocitosina (Sigma Chemical Company St. Louis, Mo USA), voriconazol (Pfizer) y caspofungina (Merck). Todos los antifúngicos fueron almacenados en oscuridad a 8ºC, hasta su empleo. Los antifúngicos se disolvieron siguiendo las recomendaciones del CLSI, Documento M27A3 y M27-S3, empleándose los siguientes rangos de concentraciones: anfotericina B: 0,031316 µg/mL, 5-fluorocitosina: 0,125-64 µg/mL, ketoconazol: 0,0313-16 µg/mL, fluconazol: 0,125-64 µg/mL, itraconazol: 0,0313-16 µg/mL, voriconazol: 0,0313 a 16 µg/mL y caspofungina de 0,015 a 8 µg/mL. Se dispensaron en placas las cuales posteriormente fueron envueltas con papel de aluminio y almacenadas a -20ºC hasta su utilización. Estos fueron probados en una misma unidad estándar de actividad.
Estudios de susceptibilidad a antifúngicos
Se utilizó la metodología de microdilución en caldo (según el CLSI Documento M27-A3 y M27-S3) (24,25) con algunas modificaciones, según se explica a continuación: se empleó RPMI 1640 L-glutamina sin bicarbonato sódico, tamponado a pH 7 con buffer MOPS (Sigma), suplementado con 2% de glucosa para las pruebas de microdilución en medio líquido. Para realizar las pruebas de sensibilidad las cepas de Paracoccidioides spp fueron cultivadas de 7-10 días en medio de Sabouraud dextrosa agar, incubadas a 35ºC. Luego se preparó una suspensión celular transfiriendo, con un asa bacteriológica estéril, 1-3 colonias de aproximadamente 1 mm de diámetro de cada cultivo de 7-10 días de los diferentes aislados de Paracoccidioides spp, a un tubo con 5 mL de solución fisiológica estéril. El contenido de esta suspensión se ajustó por turbidez al patrón 0,5 de McFarland y luego fue medida por espectrofotometría (75-77 % de transmitancia a 530 nm de longitud de onda), lo que se correspondió a una concentración de 1 x 106 a 5 x 106 células/ mL. Esta suspensión se mezcló en vórtex durante 15 segundos, se diluyó 1:000 en medio de RPMI suplementado con glucosa al 2%. Cada pocillo de la placa de microdilución se inoculó con 100 µL de la correspondiente suspensión del inoculo diluido, para obtener una concentración final del inoculo de 0,5x103 a 2,5x103 células/mL. Las placas de microdilución se incubaron a 35ºC, en cámara húmeda sin agitación, durante 18 días y fueron observadas diariamente. Todos los ensayos se llevaron a cabo por triplicado en placas estériles, con tapa de poliestireno, de 96 pocillos con fondo plano. Las lecturas se realizaron con ayuda de un espejo de lectura, y se le asignó a cada pocillo un valor de 0 a 4 usando como referencia el control de crecimiento. También se evaluaron las placas mediante un lector de ELISA (Anthos® 2010) a 405 nm para todos los antifúngicos excepto anfotericina B la cual se midió a 550 nm. El crecimiento de cada pocillo se comparó con el pocillo de control de crecimiento (libre de droga).
Control de calidad:
Se incluyeron las cepas Candida parapsilosis (ATCC 22019) y Candida krusei (ATCC 6258) como control (22-27). Las lecturas de las CMI de las cepas controles se realizaron a las 24 y 48 horas de incubación.
Determinación de la CMI
La CMI50 y CMI90 se definieron como la menor concentración del antifúngico que inhibieron el 50% y 90% respectivamente del crecimiento fúngico, comparado con el pocillo de control de crecimiento (sin agente antifúngico) y el control de esterilidad. Aunque los puntos de corte para Paracoccidioides spp no se han establecido, se consideraron los puntos de cortes señalados en el Documento CLSI para 5-fluorocitosina:< 4 µg/ mL sensible (S), entre 8 a 16 µg/mL susceptible dosis dependiente (SDD) y > 32 µg/mL resistente (R); ketoconazol: entre 0,03 µg/mL hasta < 16 µg/mL S y > 16 µg/mL R; fluconazol: < 8 µg/ mL S, entre 16 a 32 µg/mL SDD y > 64 µg/mL R; voriconazol: < 1 µg/mL S, 2 µg/mL SDD, y > 4 µg/mL R; caspofungina: < 2 µg/mL S y > 2 µg/ mL R (24,25,28,29). Como no se han establecido puntos de corte para la anfotericina B, se consideró resistente cuando el valor de la CMI fue >1µg/mL.
Análisis estadístico
La media geométrica (Media G) y rangos de las CMI de los diferentes antifúngicos fueron calculados para los aislados del Complejo Paracoccidioides spp, así como las CMI50 y la CMI90 para las especies combinadas con la droga. Se determinó la concordancia entre el método de lectura visual y espectrofotométrico. Para ello, se elaboraron tablas de contingencia, de las cuales se obtuvo el grado de concordancia entre dos pruebas diferentes para una misma población utilizando el índice kappa. El análisis de los datos fue realizado mediante el paquete estadístico SPSS versión 12.0.
RESULTADOS
Un total de 19 cepas fueron evaluadas con los diferentes antifúngicos. El crecimiento de Paracoccidioides spp se inició en algunas placas a las 120 horas de incubación. Sin embargo, fue a las 168 horas de incubación cuando, en los pocillos del control de crecimiento, se evidenció buen crecimiento fúngico, razón por la cual la primera lectura se efectuó a los 7 días de incubación y la segunda lectura a las 192 horas (8 días); no se observó variación en la CMI hasta por 18 días. Existió una buena concordancia de sensibilidad cuando las CMI fueron leídas en forma visual y espectro-fotométricamente a los 7 y 8 días de incubación (Kappa= 0,34 y 0,26). Además, la sensibilidad a los antifúngicos entre la lectura visual y espectrofotométrica durante los distintos tiempos de incubación fue casi perfecta (Kappa=0,95 y 0,94). Por otro lado, las CMI de los diferentes antifúngicos probados con las cepas de referencias estuvieron dentro de los valores esperados.
El promedio de las medias geométricas de la CMI50 y CMI90 para los diferentes aislados de Paracoccidioides spp a los antifúngicos anfotericina B, 5-fluorocitosina, ketoconazol, fluconazol, itraconazol, voriconazol y caspofungina obtenidas de los aislados estudiados, se muestran en la Tabla I.
Con relación a la sensibilidad in vitro frente a los antifúngicos sistémicos de las diferentes cepas de Paracoccidioides spp se encontró que la mayoría de los aislados fueron sensibles a ketoconazol (n=14; 73,7%), voriconazol (n=13; 68,4%), itraconazol (n=12; 63,1%) y anfotericina B (n=10; 52,6%), siendo el 94,7% resistentes a la caspofungina (n=18), seguido de la 5-flurocitocina (n=10; 52,6%). y anfoterina B (n=9; 47,4). El 52,6% resultó dosis dependiente al fluconazol (n=10) y al itraconazol (n=3; 15,7%) (Tabla I).
Al comparar las cepas de P. brasiliensis de origen clínico (Pb305, Pb307 y Pb309) con el aislado ambiental (Pb300), se demostró que todas fueron sensibles a anfotericina B (0,03 µg/mL), itraconazol (0,03 µg/mL), voriconazol (0,03 µg/ mL), ketoconazol (0,5 µg/mL) y fluconazol (2 µg/ mL), pero fueron resistentes a caspofungina (3 µg/ mL) y 5-flurocitosina (32 µg/mL).
TABLA I
CONCENTRACIONES MÍNIMAS INHIBITORIAS Y SENSIBLIDAD IN VITRO DE 19 AISLADOS DE Paracoccidioides SPP FRENTE A LOS ANTIFÚNGICOS SISTÉMICOS
CONCENTRACIONES MÍNIMAS INHIBITORIAS Y SENSIBLIDAD IN VITRO DE 19 AISLADOS DE Paracoccidioides SPP FRENTE A LOS ANTIFÚNGICOS SISTÉMICOS
DISCUSIÓN
En este estudio se han seguido las recomendaciones del documento CLSI M27– A3 y M27-S3 de microdilución, con ciertas modificaciones (24,25). En primer lugar, se utilizó el medio líquido RPMI 1640 suplementado con 2% de glucosa; el tiempo de incubación fue de 7 y 8 días para la primera y segunda lectura de las pruebas respectivamente y, las lecturas se realizaron tanto en forma visual como por espectrofotometría. Se trabajó con la fase levaduriforme del hongo, debido a que esta es la fase parasitaria y por el menor riesgo que implica su manipulación en el laboratorio. En cuanto al medio de cultivo, el medio líquido RPMI 1640 suplementado con 2% de glucosa facilita la interpretación de la prueba. Rodríguez-Tudela y Martínez-Suárez (30), han señalado que la adición de 2% de glucosa al medio de cultivo ayuda a leer mejor la CMI de los azoles, por lo que se decidió su empleo. Es de resaltar que se realizaron ensayos preliminares (resultados no mostrados) donde se observó un mejor crecimiento con RPMI + suplementado con 2% de glucosa que RPMI solo.
Por otro lado, Espinel-Ingroff y col. (31,32) propusieron que la adición de glucosa al RPMI/1640 ayuda a examinar mejor los puntos de cortes a los diferentes antifúngicos. Esta modificación puede contribuir a la estandarización de una adecuada metodología para la determinación de las CMI en el estudio de hongos dimórficos, especialmente el Complejo Paracoccidioides spp empleando el método de microdilución. Sin embargo, en cuanto a los medios de cultivos, Cruz y col. (23) describieron que se obtienen mayores CMI al utilizar el medio RPMI que cuando se utiliza los medios de cultivos Mueller-Hilton y McVeigh y Morton. Además, sugieren que con el medio RPMI se puede observar una incompleta transición de levaduramicelio a 37ºC. Con relación al tiempo de incubación, el Complejo Paracoccidoides spp, son hongos de crecimiento lento; varios autores han propuesto diferentes tiempos de incubación para iniciar la lectura de CMI (16, 17, 21).
En este trabajo, la temperatura de incubación fue 35ºC y se realizó la primera lectura de crecimiento a los 7 días de incubación, tiempo en el cual se evidenció un buen crecimiento en el pozo control. Otros autores proponen que los mejores resultados se obtienen después de 15 días de incubación (21), sin embargo, en este estudio los valores de las CMI no variaron después del día 8 hasta el día 18. Uno de los primeros estudios de susceptibilidad de P. brasiliensis publicado en la literatura fue el realizado por Restrepo y Arango (11), quienes describen la susceptibilidad de P. brasiliensis a las sulfas demostrando CMI en sólo el 51,6% de los aislados probados. Por otro lado, San Blas y col. (14) evaluaron una cepa de P. brasiliensis en fase filamentosa y levaduriforme frente a itraconazol, ketoconazol y saperconazol, y demostraron que la fase levaduriforme es más sensible a los azoles que la fase de micelio, observando cambios en la morfología de las membranas, especialmente cuando se emplea saperconazol.
Otros estudios previos (14,33) compararon la susceptibilidad de la fase levaduriforme y la forma micelial en P. brasiliensis y encontraron solo pequeñas diferencias, las cuales fueron atribuidas a la variación en la composición de lípidos en las dos fases morfológicas del hongo. Se ha demostrado que la pared de las células levaduriformes en hongos dimórficos como Blastomyces dermatitidis, Histoplasma capsulatum y P. brasiliensis contienen predominantemente α-glucano y solamente pequeñas cantidades de β-glucano, mientras que el β-glucano es abundante en la fase micelial (19).
En este estudio se demuestra la existencia de cepas de Paracoccidoides spp resistentes a anfotericina B (n=9; 47,4%), lo que explicaría posiblemente lo señalado en algunas publicaciones donde han descrito fallas terapéuticas con el empleo de la anfotericina B, especialmente con anfotericina liposomal (34).
Con la 5-fluorocitosina se encontró que el 52, 6% fue resistente y el 42,1% fue sensible al antifúngico. Posiblemente, emplear la 5-fluorocitosina combinada con otras drogas podría ser de utilidad en el tratamiento de la PCM. Sin embargo, sería interesante realizar estudios de sinergismo y antagonismo a drogas para conocer el valor de su asociación con polienos o azoles. El ketoconazol fue utilizado en el tratamiento de la PCM a partir de 1978 con eficacia. Se producen más del 90% de remisiones clínicas completas al cabo de un año de administración continua.
Los fracasos terapéuticos se han observado en pacientes gastrectomizados o con hipoclorhidria gástrica, en individuos con la forma sub-aguda juvenil con bloqueo de los ganglios mesentéricos y en aquellos que recibían simultáneamente rifampicina por tuberculosis coexistente (35). No obstante, existen escasos estudios que evalúan la sensibilidad de este hongo frente a ketoconazol. En este estudio la mayoría de los aislados fueron sensibles (73,7%) a ketoconazol a diferencia del trabajo de San Blas y col. (14); cabe destacar que el punto de corte empleado en el presente estudio para categorizar un aislado sensible fue < 16 µg/ mL. No se observaron cepas de Complejo Paracoccidioides spp resistentes a fluconazol; sin embargo, el 52,6% fueron SDD y el 47,4% sensible.
Aun cuando el fluconazol ha sido utilizado en un reducido número de pacientes con PCM, su eficacia, tanto en modelos experimentales animales y en ensayos clínicos, ha sido inferior que el itraconazol (36); quizás sea necesario un incremento de la dosis en aquellos casos donde los aislados del Complejo Paracoccidoides spp muestren una sensibilidad dosis dependiente. Los resultados de las CMI para el itraconazol son similares a los logrados en la mayoría de aislados de P. brasiliensis obtenidos por San Blas y col., (14), Heins-Vaccari y col., (33) y Cruz y col., (23), por lo que podría inferirse que el hongo es sensible a esa droga, hecho que respalda el criterio de considerar al itraconazol la droga de elección en el tratamiento de la PCM (6,8,3537), y que varios estudios han demostrado su eficacia clínica aun cuando no ha sido posible correlacionar, en términos absolutos, la actividad de la droga con la actividad in vivo (16). En este estudio se ha demostrado que voriconazol in vitro es un potente antifúngico contra Paracoccidioides spp.
Recientemente, se han publicado varios estudios en pacientes tratados con voriconazol con excelente respuesta (38-40) y también en estudios experimentales (41,42). Por otro lado, Espinel-Ingroff, (43), empleando el método de microdilución en medio líquido, señaló una buena sensibilidad in vitro al voriconazol para hongos dimórficos como H. capsulatum y B. dermatitidis. Estos hallazgos podrían sugerir que voriconazol podría ser la droga de elección de primera línea junto con itraconazol en el tratamiento de la PCM o una alternativa terapéutica en el caso de resistencia a los azoles.
Con relación a la caspofungina, antifúngico que inhibe la actividad de b- 1,3- D- glucano sintetasa, se ha mostrado una excelente actividad in vitro contra Candida spp a excepción de Candida parapsilosis y Candida guillermondii, en los cuales se han presentado altas CMI > 2 µg/ml, asociadas a las fallas terapéuticas. En este ensayo se describen en general altas CMI y bajos porcentajes de inhibición, a excepción del aislado Pb207 que fue sensible para voriconazol y caspofungina. La baja efectividad de este antifúngico demostrada en este estudio, puede ser consecuencia de los diferentes porcentajes de b- 1,3- glucano que contiene la pared celular de la fase de levadura de los aislados P. brasiliensis, como lo describieron San Blas y San Blas (44). Asimismo, se ha demostrado que la caspofungina induce cambios físicos y deterioro en el citoplasma de la fase levaduriforme y micelial del hongo (45). Por otro lado, Rodero y col. (18), evaluaron 9 aislados de P. brasiliensis mediante el método de macrodilución en medio líquido, basándose en el documento del CLSI (1992).
Los autores obtuvieron lecturas de CMI similares a los obtenidos en el presente estudio para los aislados estudiados frente a anfotericina B (<0,02-0,16 µg/ mL), ketoconazol (0,03-0,31 µg/mL), fluconazol (1,6-6,2 µg/mL) e itraconazol (0,31-1,3 µg/ mL). Sólo difiere de este estudio, un solo aislado con CMI elevadas de ketoconazol, fluconazol e itraconazol (1,3 mg/L, 100 mg/L y 5 mg/L), posiblemente debido a que en el presente trabajo se evaluó un número mayor de aislados del hongo.
En un estudio realizado por Nakai y col., (19), los autores describieron un rango de CMI para 7 aislados de P. brasiliensis para los antifúngicos probados (micafungina, anfotericina B, fluconazol e itraconazol), mediante el método de microdilución en medio líquido. Los rangos para la anfotericina B fueron de 0,01-0,25 µg/mL; para el fluconazol entre 0,125-1,0 µg/mL y para el itraconazol < 0,01 µg/mL, y encontraron que todas las cepas eran sensibles a los antifúngicos probados, excepto para la micafungina en la cual el hongo mostró resistencia (CMI entre 4 y > 64 µg/mL). En la actualidad se conocen pocos casos de PCM con resistencia in vivo a azoles (17, 37, 46, 47). El primer caso señalado en la literatura que correlaciona la sensibilidad in vivo / in vitro lo describe Hahn y col., (17) en un paciente con PCM multifocal sub-aguda, quien mostró resistencia a ketoconazol y a las sulfas (trimetoprimsulfametoxazol). La correlación in vitro/in vivo debería ayudar a la interpretación de estos resultados, pero son necesarias condiciones estándares en el ensayo de sensibilidad in vitro especialmente para el complejo Paracoccidoides spp, y es posible que esta metodología pueda ayudar.
Se desconoce si las diferentes especies del complejo Paracoccidoides originan perfiles clínicos distintos con respecto a la severidad de la enfermedad, tropismo a órganos específicos y la susceptibilidad a los diferentes fármacos, tópicos de interés que deben ser investigados. Existen muy pocos estudios que hayan señalado la susceptibilidad de Paracoccidioides brasiliensis y P. lutzii a diferentes antifúngicos (22). Finalmente, se necesitan más estudios para comprender la fisiología del hongo y estandarizar las pruebas de sensibilidad in vitro especialmente para el Complejo Paracoccidiodes, ya que está demostrado que los ensayos de microdilución podría estar influenciado por diferentes factores (21, 23,46, 48). Por otro lado, este estudio de susceptibilidad in vitro a los antifúngicos sistémicos demuestra que el voriconazol tiene una buena actividad contra P. brasiliensis, seguido del itraconazol, incluso mejor que con la anfotericina tradicional, mientras que la caspofungina mostró una baja efectividad. La anfotericina B, itraconazol y voriconazol fueron los antifúngicos más potentes contra Paracoccidioides spp. Aunque son necesarios más estudios para evaluar la utilidad de esta metodología frente a especies de Paracoccidioides, este método puede ser clínicamente útil para predecir el desarrollo de resistencias.
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