La patología de la enterobiosis depende principalmente de la migración, ya sea normal o errática, de los estadios adultos del entero-nematodo a las diversas regiones anatómicas, y de la oviposición en la región perineal/ perianal, teniendo las manifestaciones clínicas una relación directa con la carga parasitaria. Generalmente, esta entero-helmintiasis es asintomática, y en aquellos casos con manifestaciones clínicas el síntoma más frecuente es el prurito anal, con el subsecuente rascado que causa, especialmente en los niños, excoriaciones perianales y en los casos más graves, hemorragias, dermatitis y/o infecciones bacterianas secundarias (Pessoa y Vianna-Martins 1977, Hómez et al. 1990, Botero y Restrepo 2012). Aunque no se sabe con certeza, se cree que no solamente el prurito anal se produce por la acción mecánica del verme, sino que también por una reacción de hipersensibilidad local ocasionada por sus secreciones uterinas. En este mismo sentido, algunos autores piensan que el pruritus anis es más intenso en horas nocturnas, debido a que la hembra del oxiuro sale a oviponer estimulada por el calor; sin embargo, no existe hasta el presente una explicación certera al respecto (Symmers 1950, Mahomed et al. 2003, Botero y Restrepo 2012). Las infecciones por E. vermicularis también han sido asociadas con una frecuencia incrementada de infecciones bacterianas y fúngicas del tracto urinario y genital, especialmente en niñas. La causa de estas infecciones es la migración de las hembras grávidas del oxiuro hacia la vulva, vagina, uretra y vejiga, donde además del prurito vulvar, que puede conllevar a la inducción precoz de conductas onánicas, produce inflamación de la vagina con leucorrea (Gokalp et al. 1991, Ok et al. 1996, Al-Rufaie et al. 1998, Becerril y Romero 2004, Mohamed et al. 2008). Se han descrito complicaciones más serias, aunque poco frecuentes; en este sentido, cuando las hembras grávidas del entero-helminto migran erráticamente por la vulva, ascienden por la vagina, incluyendo las glándulas de Bartholin, el útero, trompas de Falopio y ovarios, pudiendo provocar abscesos, granulomas peritoneales con salpingitis hasta adherencias pélvicas, endometriosis e infertilidad, e inclusive invadir los embriones humanos y ocasionar peritonitis en las mujeres grávidas; y en los varones afectar la próstata y el epidídimo (Symmers 1950, Marsden 1960, Vural et al. 1966, Beckman y Holland 1981, Neri et al. 1986, Mendoza et al. 1987, Marteau et al. 1989, Sun et al. 1991, Erhan et al. 2000, Craggs et al. 2009, Young et al. 2010, Sinikumpu y Serlo 2011, Dönmez et al. 2014). Asimismo, raramente se han reportado la presencia de ejemplares adultos del helminto y/o granulomas/encapsulamientos o abscesos en el perineo, mucosa nasal, ojos, incluido el saco lacrimal, glándulas salivares, pulmones, hígado, epiplón, vejiga, bazo, gaglios linfáticos, glándulas mamarias, uréteres y riñón (Symmers 1950, De Ruiter et al. 1962, McDonald y Houriane 1972, Chandrasoma y Mendis 1977, Sinniah et al. 1991, Thornieport et al. 1992, Kim y Chi 2000, Macedo y MacCarty 2000, Gargano et al. 2003, Vasudevan et al. 2003, Vinod 2003, Babady et al. 2011, García et al. 2011, Serpytis y Seinin 2011, Arkoulis et al. 2012). Otros síntomas que se atribuyen a la presencia de E. vermicularis son molestias digestivas, dolores abdominales, cólicos, colitis eosinofìlica, vómitos, diarrea, y pérdida de peso; además, los que se pueden considerar de alteraciones del comportamiento, como bruxismo o chasquido de dientes, enuresis nocturna, insomnio, irritabilidad, hiporexia, sialorrea, náuseas; sin embargo, la demostración causa-efecto clínico de algunas de estas sintomatologías es aún incierta, necesitándose por lo tanto estudios más detallados y controlados (Gilman et al. 1991, Gokalp et al. 1991, Liu et al. 1995, Cacopardo et al. 1997, Devera 2001, De Jong et al. 2003, Gargano et al. 2003, Jardine et al. 2006, Botero y Restrepo 2012). La invasión del apéndice cecal merece especial interés, ya que existen contraversias acerca de si E. vermicularis puede ser causante o coadyuvante en casos de apendicitis, bien sea por acción mecánica o por transporte de bacterias y/o hongos entéricos, así como también de obstrucción intestinal, e inclusive perforación del intestino grueso con la subsecuente peritonitis bacteriana generalizada y posterior deceso por choque séptico; sin embargo, la presencia de E. vermicularis en casos de apendicitis es relativamente baja (Ajao et al. 1997, Makni et al. 1998, Debek et al. 2003, Arca et al. 2004, Isik et al. 2007, Serpytis y Seinin 2011, Martínez-Criado et al. 2012.

De acuerdo al estudio ISAAC, a nivel mundial se observa un inusitado incremento de la prevalencia de enfermedades alérgicas y de asma, especialmente en países industrializados cuando se le compara con aquellos de economía agrícola (Capriles et al. 2006, Pearce et al. 2007, Kolokotroni et al. 2011, Sánchez- Borges et al. 2011). En los países industrializados las enfermedades alérgicas y el asma constituyen la causa más común de enfermedades crónicas, siendo la exposición ambiental (e.g., mascotas, nivel socio-económico, dieta) uno de los factores más importantes para la sensibilización alérgica hacia los alergenos ambientales y la expansión de estas patologías (Capriles et al. 2006, Pearce et al. 2007, Kolokotroni et al. 2011, Sánchez-Borges et al. 2011). Venezuela no escapa a esta realidad. En efecto, desde 1989 se viene registrando un aumento significativo del número de consultas por asma, ocupando el segundo lugar entre las causas de consulta a nivel ambulatorio desde el año 1997, y estimándose que ocurren más de un millón de consultas anuales en los ambulatorios dependientes del Ministerio de Salud, los cuales atienden a 80% ó más de la población (Capriles et al. 2001, Aldrey et al. 2003, Capriles et al. 2006, Sánchez-Borges et al. 2011). Debido a que se ha observado que aquellos niños que viven en familias numerosas o que conviven en casas con hacinamiento poseen un menor riesgo de atopia, los investigadores del área han lanzado la denominada "Hipótesis de la Higiene", sugiriendo que existe un efecto protector o profiláctico de los microorganismos (virus, bacterias, hongos, parásitos) en la niñez para desarrollar enfermedades atópicas; y por el contrario, en los paises industrializados donde se han controlado las enfermedades infecciosas existe menos exposición a estos microorganismos, por lo que aumenta la susceptibilidad a las enfermedades alérgicas al suprimirse el sistema inmune: se produce un imbalance entre las respuestas TH1 y TH2 (Masters y Barret-Connor 1985, Romagnani 2004, Mingomataj et al. 2006).

Con relación a las geohelmintiasis intestinales, desde los años 70 del siglo pasado se ha venido demostrando la existencia de una relación inversa entre la infección por helmintos y las pruebas cutáneas para alergenos y otros desórdenes atópicos. Sin embargo, otros investigadores no han encontrado resultados convincentes, por lo que a mediados de los años 80, de ese mismo siglo, hubo refutaciones hacia esta Hipótesis. A pesar de esto, estudios más recientes aportan nuevas evidencias que dan sustento a la "Hipótesis de la Higiene", especialmente en las zonas rurales de los países en desarrollo (Lynch 1992, Capriles et al. 2001, Mingomataj et al. 2006, Cooper 2009).

Uno de los helmintos donde mayormente se han centrado los estudios es en E. vermicularis, existiendo igualmente resultados contrastantes. Así, Herrström et al. (2001) trabajando con niños suecos entre 4-10 años de edad, detectan una mayor prevalencia de oxiuriosis en el grupo de infantes con una historia de procesos alérgicos, en comparación con otro de no alérgicos. Por el contrario, Huang et al. (2002) encontraron en niños de Taiwán una asociación negativa entre la infección por oxiuros y el asma y la rinitis, lo que podría atribuirse al efecto protectivo de E. vermicularis sobre el desarrollo de síntomas alérgicos. Por su parte, Bahceciler et al. (2007) no detectaron en niños de Turquía diferencias estadísticamente significativas entre los grupos infectados actualmente por oxiuros y los no parasitados, en relación con las manifestaciones de alergias y las pruebas dérmicas con alergenos ("skin-prick test"), con excepción de las concentraciones séricas de IgE; sin embargo, estos investigadores detectaron que haber presentado una infección previa por E. vermicularis potencia los síntomas actuales de sibilancia. En este mismo orden de ideas, Delialioglu et al. (2005), similarmente en niños turcos, no observaron diferencias estadísticamente significativas en los niveles séricos de IgE, entre el grupo de niños infectados versus los no parasitados. Mientras que Wördemann et al. (2008), Rîpă et al. (2010) y Bager et al. (2012) en estudios poblacionales en Cuba, Rumania y Dinamarca, llegaron a la conclusión que la enterobiosis no redujo el riesgo de presentar asma, diabetes tipo 1, artritis, enfermedad de Crohn, dermatitis atópica o rinoconjuntivitis.

Como bien lo señalan Capriles et al. (2001), los estudios hechos en los países industrializados deben observarse con reserva para no caer en errores y falsas expectativas o concepciones. En efecto, estos autores señalan por ejemplo el caso de los trabajos hechos por Jiménez de Landaeta (1999) en Venezuela, quien concluye que el asma es más prevalente en comunidades marginales urbanas de estratos IV y V de la escala Graffar, donde se supone que los niños han estado más en contacto con microorganismos, existiendo, por lo tanto, una contradicción con los estamentos de la "Hipótesis de la Higiene".

Una pregunta que surge con relación a la "Hipótesis de la Higiene": ¿se puede aplicar en el caso de Venezuela? En este sentido, en niños de bajo estrato socio-económico de un barrio de Caracas, Distrito Federal, Lynch et al. (1992) encontraron una relación directa entre las cargas geohelmínticas y el grado de bronconstricción, mientras que Lynch et al. (1993) detectaron una respuesta supresora de las enterohelmintiasis en la hipersensibilidad cutánea frente a aeroalergenos, en poblaciones venezolanas de bajos estratos socio-económico. Con relación a la infección por E. vermicularis, hasta donde se ha podido indagar el único estudio hasta ahora inédito, fue hecho en 2007 en niños escolarizados urbanos de la ciudad de Coro, estado Falcón en la región semiárida septentrional de Venezuela, por quien suscribe y el grupo de investigación del LEPAMET, Universidad Nacional Experimental "Francisco de Miranda" (UNEFM). En dicho trabajo, por vez primera en el país se hizo una investigaciòn acerca de la enterobiosis y las enfermedades atópicas, en un intento por demostrar la validez de la "Hipótesis de la Higiene" en la región falconiana. Los resultados revelaron que, en primer lugar, no existen diferencias estadísticamente significativas (p > 0,05) entre niños en edad preescolar y escolar infectados por E. vermicularis y otro grupo no parasitado, con respecto a niveles séricos de IgE, eosinofilia, así como tampoco se detectó relación entre la positividad a la cinta adhesiva de Graham y la prueba dérmica para alergenos, ni a la presencia de asma y sibilancia.

Para intentar acercarse a la realidad en este tópico y dar las respuestas adecuadas, deberían homogenizarse los diseños y la selección de los sujetos en los diferentes escenarios donde se realizan los muestreos; así como también tratar en lo posible de cuantificar las cargas geohelmínticas, mediante la recuperación de los vermes después del tratamiento antihelmíntico ad hoc.

Diversos estudios brindan evidencia sobre la asociación entre altas cargas de geohelmintos y el déficit de funciones cognitivas de los infantes, principalmente con infecciones debidas a T. trichiura, A. lumbricoides y las uncinarias (Robertson et al. 1992, Nokes y Bundy 1994). Las primeras evidencias en este sentido surgieron de los trabajos de Stiles (1915), en un área urbana de los Estados Unidos, con 2.116 niños, controlando variables de género, posesión de alcantarillado y letrina. El autor reportó que la infección por geohelmintos puede contribuir en pequeña proporción al deterioro de las funciones cognitivas en presencia de otras variables de tipo socioeconómico y ambiental. Otros investigadores contemporáneos, realizaron después estudios para relacionar la asociación geohelmintiasis-capacidad cognoscitiva de los niños. Así, Waite y Nelson (1919) en Queensland, Australia, examinaron la relación entre la intensidad de la infección y el coeficiente de inteligencia (IQ) en preescolares, encontrando que el grado de retardo mental incrementa con relación a la carga parasitaria, y sugieren que puede ser consecuencia de la prolongada anemia y toxemia. Sin embargo, variables tipo confusión como estado socio-económico y hábitos higiénicos no fueron tomados en consideración. En los años 60 del siglo pasado, De Carnieri et al. (1968) en el Norte de Italia, examinaron la relación entre intensidad de geohelmintiasis (T. trichiura), hábitos higiénicos, prácticas sociales y habilidades mentales en niños escolares. Los autores no encontraron relación entre intensidad de infección y déficit mental. Este resultado fue atribuido a la dominancia de los factores socio-económicos y medioambientales, en ausencia de individuos con cargas parasitarias muy altas. Desde comienzos de la década de los 90, existe un renovado interés sobre el tópico, en los cuales las investigaciones hacen mayor énfasis hacia la intervención con tratamiento antihelmíntico, un buen diseño grupo experimental y su correspondiente placebo, tomando en cuenta las variables de confusión, como las socio-económicas (Pollit et al. 1991, Simeon et al. 1994, 1995, Gadner et al. 1996, Watkins et al. 1996, Hutchinson et al. 1997). El mecanismo por cual se explica dicha asociación no está totalmente dilucidado, siendo señalados varios factores: el déficit de hierro con o sin anemia, el déficit de otros micronutrientes secundario a la malabsorción intestinal, la desnutrición y la morbilidad asociada a las helmintiasis que condiciona el ausentismo escolar (Stephenson et al. 2000). Parece interesante resaltar los trabajos de Simeon y Grantham-McGregor (1990), quienes proponen varios mecanismos mediante los cuales la desnutrición podría afectar el rendimiento escolar, incluyendo, i) cambios anatómicos o bioquímicos en el sistema nervioso central, en este sentido se ha postulado que la deficiencia de hierro altera la conducta debido al deteriorado catabolismo de las catecolaminas, transporte de electrones y síntesis de porfirinas; ii) se teoriza que la estimulación crónica del sistema inmune en las helmintiasis podría tener un efecto directo sobre el sistema nervioso central como ocurre con la influenza; iii) asimismo, las parasitosis geohelmínticas pueden reducir la actividad del niño y por lo tanto, reducir la exposición a estímulos y oportunidades de aprender; y, iv) la enfermedad puede alterar la conducta del niño de manera que condicione un rechazo, o abandono por parte de sus maestros (Simeon y Grantham-McGregor 1990).

Siendo E. vermicularis un helminto, se debería esperar similares resultados en la correlación negativa entre las cargas helmínticas y la capacidad intelectual de los niños. A pesar que en otros helmintos, como ya se ha reseñado arriba, se han hecho este tipo de estudios, es poco lo investigado sobre la enterobiosis. En este sentido, Bahader et al. (1995) encontraron en niños egipcios que el coeficiente intelectual de aquellos parasitados fue significativamente menor que los de sus pares no infectados. Contrastando con esto, Jiménez et al. (2011) no observaron una relación directa entre la presencia de parásitos intestinales incluyendo E. vermicularis, y la deficiencia en el aprendizaje en niños peruanos. Por otra parte, el prurito anal nocturno, el síntoma cardinal de la enterobiosis, altera el ritmo normal de sueño de los niños, lo que les ocasiona que estos se irriten, se pongan nerviosos y cansados y desatiendan las clases por la somnolencia producto del insomnio (Botero y Restrepo 2012).

A pesar que los elementos minerales constituyen una pequeña proporción de los tejidos corporales, no obstante, resultan esenciales tanto estructural como fisiológicamente en muchos fenómenos vitales, especialmente en los niños (Stephenson et al. 2000, Benítez y Amorós 2011). Algunos minerales, como el zinc (Zn), hierro (Fe), cobre (Cu) y magnesio (Mg), intervienen como catalizadores en sistemas enzimáticos o como parte de componentes orgánicos fundamentales, mientras que otros como el potasio (K) y el sodio (Na) son electrolitos de gran relevancia en el control osmótico del metabolismo hídrico; por lo tanto, las deficiencias de oligoelementos por lo común se encuentran asociadas estrechamente al deterioro del crecimiento y desarrollo pondoestatural, la respuesta inmune y de la capacidad intelectual (Bahader et al. 1995, Stephenson et al. 2000, Benítez y Amorós 2011). El proceso de absorción de estos minerales, así como de otros nutrientes, a nivel del intestino delgado puede verse alterada por diversos factores, entre los que se encuentran las parasitosis intestinales (Stephenson et al. 2000, Olivares et al. 2002, 2003, Cazorla et al. 2013). A pesar que usualmente no se le atribuia a E. vermicularis efectos deletéreos sobre el estado nutricional de los niños, no obstante, tal como indican Cazorla et al. (2013), Kourí et al. (1982) y sus colaboradores del Instituto de Medicina Tropical de la Universidad de la Habana, Cuba, referían textualmente: "la enfermedad no atendida, se hace cada vez más intensa, los trastornos digestivos se acentúan, los fenómenos nerviosos progresan, el estado general se afecta considerablemente y la desnutrición, adelgazamiento y anemia profundos, se apoderan del organismo del paciente".

Existen estudios refiriendo que niños del Viejo Mundo (España y Turquía) infectados con E. vermicularis exhiben en promedio concentraciones séricas de oligoelementos (Fe, Zn, Cu, Mg) significativamente menores cuando se comparan con un grupo control de niños no infectados (Koltas et al. 1997, Olivares et al. 2002, 2003). Por contraste, Sanabria (2001) en la ciudad de Cagua, estado Aragua, en la región nor-central de Venezuela, no obtuvo diferencias estadísticamente significativas entre las concentraciones serológicas de Zn, Cu y Mg, en 100 escolares con enterobiosis respecto a un grupo control no infectado; así como tampoco Çulha y Sangün (2007) en niños escolarizados de Antakya-Hatay, Turquía, en los niveles de cobalto (Co), selenio (Se), Zn y Cu, y Cazorla et al. (2013) en Taratara, estado Falcón, Venezuela, entre los valores promedio de las concentraciones en suero de Fe, Zn, Cu, Mg, K y Na en una muestra aleatoria de 27 niños con enterobiosis vs. 32 niños no parasitados. Como bien lo señalan Cazorla et al. (2013), no resulta fácil realizar una comparación entre los resultados dispares y dar una explicación aproximada y razonable, debido a que con la técnica oviscópica modificada de Graham no se pueden determinar las cargas parasitarias helmínticas con precisión; por lo que se sugiere que estas pudieran ser variaciones locales de la problemática de la enterobiosis, que muchas veces posee matices y componentes genéticos, culturales y conductuales muy particulares para cada región y cultura (Cazorla et al. 2013). E. vermicularis también ha sido señalado de estar involucrado en la disminución de niveles séricos de otros nutrientes en niños españoles, incluyendo ácido fólico y vitaminas del complejo B, tal como lo refieren Olivares et al. (2002), abarcando la posibilidad que la infección induzca a la carencia de ambos nutrientes, afectando la producción del moco intestinal (Becerril y Romero 2004).

Es significativo indicar, que además de la malabsorción gastrointestinal de nutrientes, los helmintos intestinales también pueden afectar el estatus nutricional de los infantes mediante la disminución del apetito mediada por citokinas y la respuesta inflamatoria inducida por los gusanos (Northrop-Clewes et al. 2001).

De la discusión de los eventos clínicos atribuibles a la infección oxiuriana, se puede acotar que para poder llegar a conclusiones o aproximaciones definitivas, los estudios con seres humanos se deben realizar bajo una perspectiva de la "Medicina basada en la evidencia", donde se realicen cohortes con estudios caso-control e intervenciones con esparasitación, y al menos con un año de duración.

Debido a que E. vermicularis es un helminto cosmopolita que se encuentra distribuido desde las zonas árticas hasta las regiones tropicales, con toda probabilidad la enterobiosis representa una de las helmintiasis humanas más comunes alrededor de todo el globo terráqueo, estimándose que 200 millones el número de personas infectadas; esto incluye a las naciones industrializadas, donde por ejemplo en algunas zonas de los Estados Unidos (EUA) y el Oeste de Europa se han registrado tasas de hasta 100% (20-40 millones en EUA) (Elston 2003, Liu 2012). Generalmente se ha aceptado que la enterobiosis es mayormente prevalente en los países con clima templado y frío, en las zonas urbanas, debido al uso constante y frecuente de ropas y a la menor frecuencia del baño (Pessoa y Vianna-Martins 1977, Requena-Certad et al. 2002, Botero y Restrepo 2012); no obstante, como bien lo indican Haswell- Helkins et al. (1987), E. vermicularis es un verme altamente prevalente en las zonas tropicales, siendo detectadas en los países de Latinoamérica tasas variables de infección, que dependen de las características locales de los grupos humanos estudiados y hasta del muestreo, pero que sin embargo, por lo general son elevadas (Cook 1994, Elston 2003, Botero y Restrepo 2012, Liu 2012).

La edad es un factor determinante en la transmisión, siendo los niños en edad preescolar y escolar (2-12 años) los más afectados, los cuales poseen hábitos, muchas veces antihigiénicos, propios de esta etapa de desarrollo: onicofagia, geofagia, chuparse el dedo u otros objetos, rascado de región perianal/perineal, y luego llevan la mano a la boca sin habérselas lavado adecuadamente, ya sea antes o después de comer; el jugar con mascotas, las cuales pueden transportan en sus pelos los huevos de E. vermicularis (Pessoa y Vianna-Martins 1977, Becerril y Romero 2004, Cazorla et al. 2006a,b, Botero y Restrepo 2012). Sin embargo, otros investigadores han encontrado que la enterobiosis es más común en niños en edad escolar que en los preescolares, y consideran que los primeros mencionados poseen mayor contacto con el sucio y el polvo, ya que sus contrapartes en edad preescolar reciben mayores cuidados y atenciones por sus maestros y cuidadores, y sus horas de recreo se limitan a una merienda dentro del salón de clases (Cook 1994, Norhayati et al. 1994, Song et al. 2003). A pesar de lo discutido, E. vermicularis también puede detectarse en los individuos adultos, por lo que no debe ignorarse ni subestimarse su presencia en esta etapa del desarrollo humano (Sato et al. 2008). Con relación al género de los individuos, existen resultados contrastantes. En este sentido, varios investigadores encuentran que los varones exhiben mayores tasas de infección que sus pares del género femenino, posiblemente debido a que éstas desarrollan más tempranamente hábitos higiénicos (Yoon et al. 2000, Kim et al. 2001). Contrariamente, otros estudios no revelan diferencias estadísticamente significativas de las prevalencias entre géneros, lo que pudiera ser debido a que todos los individuos se encuentran similarmente expuestos a los mismos factores de riesgo (Pezzani et al. 2004, Cazorla et al. 2006a,b).

Dentro de los factores que facilitan el mantenimiento y diseminación de la enterohelmintiasis, se tienen, así mismo, el hacinamiento familiar, escolar o de recintos como los asilos, lo que incrementa el contacto "persona-persona" (Becerril y Romero 2004, Botero y Restrepo 2012). Un factor resaltante, es que los huevos del helminto pululan fácilmente en todos los ambientes, exparcidos por el polvo donde pueden permanecer viables hasta por tres semanas, de allí que el aseo, tanto personal, familiar y hasta comunitario, es un factor relevante en el mantenimiento endémico de la oxiuriosis, incluyéndose la deficiencia con el lavado de lencería y ropa, así como compartirlas entre varios individuos. En este mismo sentido, se ha comprobado, de allí el término "gusano de los asientos" (threadworm), que a través de los inodoros ocurre la transmisión de los huevos de E. vermicularis, al posarse sobre los mismos un individuo infectado (Becerril y Romero, 2004, Botero y Restrepo 2012). Desconocer estas premisas condiciona su persistencia, principalmente en asentamientos humanos donde predominan las condiciones socio-económicas precarias, con hacinamiento y falta de educación en salud. Sin embargo, por su facilidad de transmisión al poseer hasta cuatro mecanismos de transmsión, E. vermicularis puede ser altamente prevalente, como ya se indicó, aun en los países desarrollados

A pesar que la enterobiosis fue descrita por primera vez en Venezuela por Enrnst en 1877 (Hómez et al. 1990), y que existen numerosos estudios sobre parasitosis intestinales, son comparativamente escasos los trabajos que han utilizado las técnicas oviscópicas, como la de la cinta adhesiva de Graham modificada, por lo que, como bien lo señalan Devera et al. (1998) y Requena-Certad et al. (2002), existe un virtual subregistro de casos, como en la mayoría de los países en Latinoamérica. Aunado a ésto, la entero-helmintiasis no es de denuncia obligatoria por las personas encargadas de administración de la salud (Devera et al. 1998). Esto sugiere que la enterobiosis en Venezuela se subestima como un problema de salud pública.

Teniendo en mente lo dicho anteriormente, los porcentajes de infección, incluyendo preescolares y escolares, reportados para nuestro país varían de acuerdo a las regiones. Así, en la región andina, específicamente en el estado Mérida, se han registrado prevalencias entre 4,8 y 24,7%, correspondiendo las cifras más bajas en la región de los páramos (Scorza et al. 1974); mientras que para el estado Zulia, las mismas se ubican entre 8,6 y 55% (Romero de Olaria 1979, Páez de Mourad y Calchi 1994, Simoes et al. 2000, Rivero et al. 2001). Para la región de la Guayana venezolana, se han detectado porcentajes de infección que van desde 8 hasta 45,8% (Devera et al. 1998, Requena-Certad et al. 2002, Requena et al. 2007). En el estado Anzoátegui, en la región oriental, se han referido tasas de oxiuriosis entre 19,4% (Maniscalchi et al. (2010) y hasta más del 49% (Greatty et al. 1994, González et al. 1995); y de 19,2% para el estado Miranda en la región central (Arencibia et al. 2013). Con relación a la región semiárida septentrional de Venezuela, se reportan porcentajes de infección para el estado Falcón de hasta casi el 60% (Acosta et al. 2002, Cazorla et al. 2006a,b, Humbría-Heyleger et al. 2012), y para el estado Lara entre 17,7-39,1% (Pérez et al. 2011, Cervantes et al. 2012).

Es resaltante el hecho que la enterobiosis se mantiene altamente prevalente en la población infantil de todo el globo terráqueo y particularmente en Venezuela, esto a pesar que constantemente se aplica de forma masiva terapia antihelmíntica a los escolares, tanto de parte de las autoridades sanitarias como de las educativas; sin embargo, es oportuno indicar que la farmacopea ad hoc existente no es amplia, especialmente en nuestro país. Como una posible explicación a este evento, además de las características biológicas propias del parásito y de las condiciones socio-económicas y culturales propias de los humanos, se debe tener presente en primer término, que los huevos de E. vermicularis tardan 14 días en alcanzar el estadio adulto, y que el parásito posee un periodo prepatente de alrededor de un mes (Becerril y Romero 2004, Botero y Restrepo 2012). Por otra parte, se debe tener presente que por ejemplo si se administra el Mebendazol, un fármaco imidazólico que únicamente actúa sobre los adultos del nematodo, siendo inefectivo contra huevos y larvas (Kastner et al. 1992, Cook 1994, Lohiya et al. 2000). Como resulta lógico pensar, los huevos y larvas sobrevivientes de la acción quimioterapéutica madurarán hasta adultos en 14 días, por lo que se necesita de una segunda dosis, 14 días después de instaurada la primera, para eliminar aquéllos. De lo explicado se deriva que una segunda dosis suministrada mucho antes de los 14 días podría dejar vivos los nuevos adultos recién mudados (Kastner et al. 1992, Cook, 1994, Lohiya et al. 2000, Velásquez 2008). Sino se tiene presente lo discutido, se podría caer en errores básicos, como la de olvidar la administración del antihelmíntico a las dos semanas después de la primera dosis. Por otra parte, debe tomarse en cuenta que el mejor antihelmíntico es aquel que sea altamente efectivo, que ocasione menores efectos secundarios y de baja toxicidad a las dosis usuales, sea de fácil administración, de sabor agradable, de bajos costos y de amplia disponibilidad para las poblaciones endémicamente expuestas. Asimismo, adicional al tratamiento farmacológico, en el caso particular de los niños, es recomendable que se investigue "el medio familiar, el centro escolar, el círculo infantil" y los otros lugares frecuentados; y que se trate a los familiares y convivientes y se realicen controles post-tratamiento, además que se eduque sobre medidas de higiene personal y familiar y mejoren las condiciones de vida, de manera tal de prevenir futuras infecciones (Kourí et al. 1982, Veláquez 2008, Botero y Restrepo 2012). En la Tabla 1 se muestra las drogas que se emplean actualmente para el tratamiento de la enterobiosis.

La primera elección son los benzimidazoles y el pirantel. Dentro de los derivados de los imidazoles, que poseen una alta eficacia y un amplio espectro de acción, lo que los hace elegibles especialmente para los casos de infecciones múltipes o mixtas y tratamientos masivos, son más recomendables el mebendazol y el albendazol, además que tienen menores efectos colaterales, aunque se pueden administrar en menores de 2 años y embarazadas, se recomienda precaución. Además, poseen la ventaja que se aplican a dosis única y los niños no necesitan ser pesados y se encuentran ampliamente disponibles en las farmacias locales. El pamoato de pirantel no se absorbe a nivel intestinal siendo por lo tanto menos tóxico (ocasionalmente mareos, náuseas, vómitos), y posee la ventaja que al inhibir la placa neuro-motora del verme no permite su potencial migración al producirles parálisis espástica, además de que se administra fácilmente (suspensión). De las drogas antihlemínticas alternativas señaladas, la piperazina que se presenta en forma de jarabe es la de más antiguo uso; es efectiva contra E. vermicularis en hasta 100%, así como contra A. lumbricoides. Su toxicidad es baja, aunque en individuos con insuficiencia renal se limita su administración (Hómez et al. 1990, Becerril y Romero 2004, Velázques

2008, Botero y Restrepo 2012).

Generalmente las presentaciones de estas drogas son en tabletas sólidas y/o en formulaciones líquidas o suspensiones; esta últimas poseen el inconveniente práctico que para programas de aplicación masiva son más costosas y con limitaciones para su almacenamiento. De allí que luce interesante el desarrollo de presentaciones de drogas antihlemínticas como tabletas masticables, especialmente para niños < 5 años que no pueden o se encuentran indispuestos para deglutir las presentaciones usuales en tabletas sólidas, tal como lo recomienda la WHO; además, de los problemas potenciales de asfixia o ahogamiento son bajos, y poseen una aceptable palatabilidad (Friedman et al. 2012).

Aparte de las drogas antihlemínticas señaladas anteriormente, también existieron o existen otras opciones quimioterapéuticas a nivel mundial, sólo que las mismas o ya se encuentran en desuso (e.g., violeta de genciana medicinal, terramicina, yoduro de diatiazanina, hexilresorcinol, ácido kaínico), y/o no están disponibles en la farmacopea venezolana (e.g., pamoato de pirvínio, levamisol, ivermectina) (Kourí et al. 1982, Botero y Restrepo 2012). Esto último mencionado es similarmente el caso de la Tribendimidina, la cual es una de las drogas antihelmínticas de desarrollo más reciente en China, en el Instituto Nacional de Enfermedades Parasitarias en Shanghai. El mismo es una diamidina simétrica derivado de amidantel, y posee un amplio espectro siendo segura y efectiva contra muchas especies de helmintos tanto de nematodos que incluyen a E. vermicularis, como platelmintos (trematodes y cestodes), lo que la hace muy promisoria (Xiao et al. 2005). El hecho que la Tribendimidina sea prácticamente la única droga en uso clínico desarrollada alrededor de los últimos 35 años, trae al tapete la urgente necesidad de desarrollar nuevos fármacos antihelmínticos. Aunado a esto, se debe considerar que existe una limitada cantidad de drogas disponibles, y que se aplican masivamente; además que se espera la aparición de resistencia, especialmente hacia los benzimidazoles, como ya ocurre a nivel de la medicina veterinaria; por lo que también se deben desarrollar pruebas que detecten en una etapa temprana el desarrollo de dicha resistencia, y ensayos farmacológicos que retarden su aparición mediante la combinación de los antihelmínticos con otros que posean un modo de acción diferente (efecto aditivo o sinergístico) (Albonico et al. 2003, Hu et al. 2009). En este mismo orden de ideas, existe el inconveniente de la poca rentabilidad y retorno de inversión de capital para las empresas farmacéuticas transnacionales en la investigación para el desarrollo de

drogas antiparasitarias para los países endémicos con condiciones socio-económicas deficitarias, destinando la mayor parte de sus recursos para solucionar problemas médicos y/o cosméticos que afectan a un porcentaje menor de la población mundial; asimismo, se tiene la negativa muchas veces por parte de estas farmacéuticas de permitir el uso de patentes de drogas que tienen almacenadas en desuso (Trouiller 2003, Cazorla 2014).

No obstante lo discutido, la implementación del esquema quimioterapéutico anti-oxiuro por parte del médico, especialmente de los pediatras, dependerá de la disponibilidad y accesibilidad de los medicamentos para los individuos afectados en su localidad particular, especialmente en los países subdesarrollados.

Finalmente, es aconsejable que las autoridades encargadas de administrar los programas de salud deben aplicar a los diseños de las campañas antihelmínticas los conocimientos básicos sobre la biología de los helmintos, las conductas propias de las regiones y las condiciones socio-económicas de las poblaciones humanas. En este sentido, se debe tener en cuenta que los helmintos humanos, incluyendo a E. vermicularis, se distribuyen en la población de hospedadores de forma agregada o contagiosa (distribución binomial negativa), donde unos pocos individuos albergan las mayores cargas parasitarias, mientras que la mayoría exhiben cargas ligeras (Haswell-Helkins et al. 1987). Este tipo de investigación permite identificar los individuos "blanco" (wormy people) que albergan las mayores cargas helmínticas, los cuales deberían ser el centro de atención desde un punto de vista quimioterapéutico y epidemiológico sin la aplicación irracional y "corto placista" de tratamientos masivos "a ciegas", lo que redundará en el ahorro de recursos y la disminución de las cargas helmínticas (Cazorla 2014). Por último, las intervenciones de los organismos oficiales para el control de las helmintiasis intestinales, deben incluir globalmente: programas de promoción de salud con adopción de prácticas y actitudes/aptitudes sanitarias, así como de mejoramiento del espacio físico del medio ambiente, tanto en las viviendas como en las escuelas, y facilitando las prácticas sanitarias y el suministro de agua potable.

De la revisión, análisis y estudio hechos en la presente investigación de los aspectos más relevantes de la enterobiosis como problema de salud pública, se pueden derivar las siguientes conclusiones. E. vermicularis es un verme altamente contagioso con unas propiedades biológicas muy particulares, que se transmite "persona-persona" al presentar hasta cuatro posibles mecanismos de transmisión. E. gregorii no es más que un estadio inmaduro de E. vermicularis, por lo tanto, esta última es la única especie de oxiuro que parasita el tracto gastro-intestinal del humano. Por su aceptable sensibilidad, su facilidad de implementación, su amplia disponibilidad de materiales a nivel comercial y sus bajos costos, la cinta adhesiva de Graham modificado, es el método oviscópico de preferencia para la detección de la infección por E. vermicularis, especialmente en los países del denominado Tercer Mundo. Es aconsejable que los médicos practicantes, especialmente los de la consulta pediátrica, realicen de rutina su implementación ante cualquier sospecha de la sintomatología por oxiuros. Esto último dicho es relevante, debido a que se necesita demostrar que además del prurito anal, a nivel clínico las infecciones por E. vermicularis pueden ocasionar otros síntomas que generalmente se le atribuyen (e.g., enuresis nocturna, sialorrea). Dependiendo de la población humana local, los oxiuros pueden potencialmente afectar: i) la respuesta inmune, previniendo la exacerbación de la respuesta inflamatoria (Hipótesis de la Higiene) en el caso de las enfermedades atópicas; ii) el desarrollo y formación intelectual de los niños, y iii) la absorción de micronutrientes. Se deben realizar más estudios de investigación controlados, para demostrar la influencia y la relación de las infecciones por E. vermicularis sobre las enfermedades atópicas, la capacidad cognoscitiva/ desarrollo intelectual y la desnutrición en los niños de Venezuela. La eficacia de los programas de aplicación masiva de las medidas quimioterapéuticas, dependen del suministro de una segunda dosis de la droga antioxiuro, 14 días después de la primera aplicación. A pesar que la enterobiosis se puede tratar con drogas efectivas y seguras, se debe tener presente en un programa de control además de las propiedades biológicas propias del parásito, las condiciones socio-económicas y las conductas de las poblaciones humanas también condicionan su transmisión y endemicidad. Las autoridades encargadas del Ministerio de Salud, así como también las educativas y el personal de salud, incluida la comunidad en general, deben sensibilizarse y comprender que la oxiuriosis es un problema de salud potencialmente severo, especialmente para la población infantil.

1. Acosta M, Cazorla D, Garvett M. 2002. Enterobiasis en escolares de una población rural del estado Falcón, Venezuela y su relación con el nivel socio-económico. Invest. Clín. 43(3):173-181.         [ Links ]

2. Acuña A, Calegari L, Curto S, Lindner C, Rosa R, Savio M, Zanetta E. 2003. Helmintiasis intestinales. Manejo de las geohelmintiasis. Disponible en línea en: http://www.higiene.edu.uy/guihelmint.pdf. (Acceso 12.11.2010).

3. Ajao O, Jastaniah S, Malatani T, MoradN, El-Tayeb E, Saif S, Al-Ghamdi A. 1997. Enterobius vermicularis (pinworm) causing symptoms of appendicitis. Trop. Doct. 27(3):182-183.         [ Links ]

4. Albonico M, Bickle Q, Ramsan M, Montresor A, Savioli L, Taylor M. 2003. Efficacy of mebendazole and levamisole alone or in combination against intestinal nematode infections after repeated targeted mebendazole treatment in Zanzibar. Bull. World Health Organ. 81(5):343-352.         [ Links ]

5. Aldrey O, De Stefano M, Capriles-Hulett A. 2003. Prevalencia del asma infantil en Venezuela, ISAAC Venezuela 2003. Rev. Venez. Alergia Asma Inmunol. 5(2):33-42.         [ Links ]

6. Al-Rufaie H, Rix G, Pérez-Clemente M, Al-Shawaf T. 1998. Pinworms and postmenopausal bleeding. J. Clin. Pathol. 51(5):401-402.         [ Links ]

7. Arca M, Gates R, Groner J, Hammond S, Caniano D. 2004. Clinical manifestations of appendiceal pinworms in children: an institutional experience and a review of the literature. Pediatr. Surg. Int. 20(5):372-375.         [ Links ]

8. Arencibia H, Lobaina J, Terán C, Legrá R, Arencibia A. 2013. Parasitismo intestinal en una población infantil venezolana. Medisan. 17(5):742-748.         [ Links ]

9. Arkoulis N, Zerbinis H, Simatos G, Nisiotis A. 2012. Enterobius vermicularis (pinworm) infection of the liver mimicking malignancy: presentation of a new case and review of current literature. Int. J. Surg. Case Rep. 3(1):6-9.         [ Links ]

10. Babady N, Awender E, Geller R, Miller T, Scheetz G, Arguello H, Weisenberg S, Pritt B. 2011. Enterobius vermicularis in a 14-year-old girl’s eye. J. Clin. Microbiol. 49(12):4369-4370.         [ Links ]

11. Bager P, Vinkel-Hansen A, Wohlfahrt J, Melbye M. 2012. Helminth infection does not reduce risk for chronic inflammatory disease in a population-based cohort study. Gastroenterology. 142(1):55- 62.         [ Links ]

12. Bahader S, Ali G, Salan A, Khalil H, Kahlil N. 1995. Effects of Enterobius vermicularis infection on intelligence quotient (IQ) and anthropometric measurements of Egyptian rural children. J. Egypt. Soc. Parasitol. 25(1):183-194.         [ Links ]

13. Bahceciler N, Ozdemir C, Kucukosmanoglu E, Arikan C, Over U, Karavelioglu S, Akkoc T, Yazi D, Yesil O, Soysal A, Bakir M, Barlan I. 2007. Association between previous enterobiasis and current wheezing: evaluation of 1018 children. Allergy Asthma Proc. 28(2):174-182.         [ Links ]

14. Becerril M, Romero R. 2004. Enterobiosis. En: Parasitología Médica. 1ª ed. Editorial McGraw- Hill Interamericana, México, DF, pp. 185-191.

15. Beckman E, Holland J. 1981. Ovarian enterobiasis- a proposed pathogenesis. Am. J. Trop. Med. Hyg. 30(1):74-76.

16. Beltrán M, Hara T, Tello R. 2005. Evaluación de los métodos de Graham y pin tape en el diagnóstico de Enterobius vermicularis. Rev. Peru. Med. Exper. Salud Pública. 22(1):76-78.

17. Benítez M, Amorós C. 2011. Vitaminas y oligoelementos. Pediatr. Integral. 15(5):427-445.

18. Botero D, Restrepo M. 2012. Oxiuriasis. En: Parasitosis Humanas. 5a ed. Corporación para Investigaciones Biológicas, Medellín, Colombia, pp. 177-186.

19. Brooks D, MacLennan D. 2002. The Nature of Diversity: An Evolutionary Voyage of Discovery. The University of Chicago Press, Chicago, USA, pp. 465-524.

20. Cacopardo B, Onorante A, Nigro L, Patamia I, Tosto S, Romano F, Zappalá C, Bruno S, Nunnari A. 1997. Eosinophilic ileocolitis by Enterobius vermicularis: a description of two rare cases. Ital. J. Gastroenterol. Hepatol. 29(1):51-53.

21. Capriles A, Giannoni L, Capriles E. 2001. El por qué del incremento del asma y las alergias en Venezuela en los 25 años. Arch. Venez. Pediatr. Puer. 64(Suppl.1):S42-S46.

22. Capriles E, Do-Campo A, Verde O, Pluchino S, Capriles Hulett A. 2006. Children’s asthma and the third world: an approach. J. Invest. Allergol. Clin. Immunol. 16(1):11-18.

23. Cazorla D. 2014. Las enfermedades parasitarias intestinales como un problema de salud global. Invest. Clín. 51(1):93-94.

24. Cazorla D, Acosta M, García E, Garvett M, Ruiz A. 2006a. Enterobius vermicularis infection in preschool and schoolchildren of six rural communities from a semiarid region of Venezuela: A clinical and epidemiological study. Helminthologia. 43(2):81-85.

25. Cazorla D, Acosta M, Zárraga A, Morales P. 2006b. Estudio clínico-epidemiológico de enterobiasis en preescolares y escolares de Taratara, estado Falcón, Venezuela. Parasitol. Latinoam. 61(1/2):43-53.

26. Cazorla D, Granadilos I, Acosta M, Morales P. 2013. Ausencia de diferencia en niveles séricos de sodio, potasio, cobre, hierro y zinc en niños con enterobiasis del semiárido rural del estado Falcón, Venezuela. Bol. Mal. Salud Amb. 53(2):65-67.

27. Cervantes J, Otazo G, Rojas M, Vivas F, Yousseph Y, Zechini V, D’Apollo R, Cárdenas E, Traviezo L. 2012. Enteroparásitos, enterobiasis y factores de riesgo en niños preescolares. Salud, Arte y Cuidado. 5(1):47-54.

28. Chandrasoma P, Mendis K. 1977. Enterobius vermicularis in ectopic sites. Am. J. Trop. Med. Hyg. 26(4):644-649.

29. Cimerman S, Cimerman B. 2005. Enterobiase. Rev. Panam. Infectol. 7(3):27-30.

30. Cook G. 1994. Enterobius vermicularis. Gut. 35(9):1159- 1162.

31. Cooper P. 2009. Interactions between helminth parasites and allergy. Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 9(1):29-37.

32. Craggs B, de Waele E, de Vogelaere K, Wybo I, Laubach M, Hoorens A, de Waele B. 2009. Enterobius vermicularis infection with tubo ovarian abscess and peritonitis occurring during pregnancy. Surg. Infect. (Larchmt). 10(6):545- 547.

33. Cram E. 1943. Studies on oxyuriasis. XXVIII. Summaries and conclusions. Am. J. Dis. Child. 65(1): 46-59.

34. Çulha G, Sangün M. 2007. Serum levels of zinc, copper, iron, cobalt, magnesium, and selenium elements in children diagnosed with Giardia intestinalis and Enterobius vermicularis in Hatay, Turkey. Biol. Trace Elem. Res. 118(1):21-26.

35. De Carnieri I, Garofano M, Gras L. 1968. The role of trichuriasis in the physical and mental retardation of children based on a quantitative study in Basso Logidiano. Riv. Parassitol. 28:103-122.

36. De JongM, Baan J, Lommerse E, Van Gool T. 2003. Severe diarrhea and eosinophilic colitis attributed to pinworms (Enterobius vermicularis). Ned. Tijdschr. Geneeskund. 147(17): 813-815.

37. De Ley P, Blaxter M. 2002. Systematic position and phylogeny. In: Lee DL(ed). The Biology of Nematodes. CRC Press, Boca Raton, Florida, USA, pp. 1-58.

38. De Ruiter H, Rijpstra A, Swellengrebel N. 1962. Ectopic Enterobius vermicularis. Variations in its pattern. Trop. Geog. Med. 14:375-380.

39. Debek W, Dzienis E, Hermanowicz A, Nowowiejska B. 2003. Oxyuriasis-induced intestinal obstruction in a child -case report. Rocz. Akad. Med. Bialymst. 48(2):115-117.

40. Delialioglu N, Aslan G, Ozturk C, Camdeviren H, Emekdas G. 2005. Total serum IgE levels in children with enterobiasis. Türkiye Parazitol. Derg. 29(3):180-182.

41. Devera R. 2001. Enterobius vermicularis y enuresis. Enferm. Infecc. Microbiol. Clín. 19(8):411-412.

42. Devera R, Pérez C, Ramos Y. 1998. Enterobiasis en escolares de Ciudad Bolívar, estado Bolívar, Venezuela. Bol. Chil. Parasitol. 53(1-2):14-18.

43. Dönmez MT, Yılmaz F,Ayaz E. 2014. Enterobius vermicularis: can it be a possible pathogen in Bartholin gland abscess formation? J. Obstet. Gynaecol. Res. 40(1):268-270.

44. Elston M. 2003. What’s eating you? Enterobius vermicularis (pinworms, threadworms). Cutis. 71(4):268-270.

45. Erhan Y, Zekioglu O, Ozdemir N, Sen S. 2000. Unilateral salpingitis due to Enterobius vermicularis. Int. J. Gynecol. Path. 19(2):188-189.

46. Ferrero M, Röser D, Nielsen H, Olsen A, Nejsum P. 2013. Genetic variation in mitochondrial DNA among Enterobius vermicularis in Denmark. Parasitology. 140(1):109-114.

47. FLAP (Federación Latinoamericana de Parasitología). 2000. Comité de Expertos. Informe técnico de un comité de expertos. Normas para evaluar medicamentos en parasitosis del tubo digestivo y anexos del hombre. Parasitol. Día. 24(3-4):127- 133.

48. Friedman A, Ali S, Albonico M. 2012. Safety of a new chewable formulation of mebendazol for preventive chemotherapy interventions to treat young children in countries with moderate-to-high prevalence of soil transmitted helminth infections. J. Trop. Med. 2012:590463.

49. Fry G, Moore J. 1969. Enterobius vermicularis: 10,000-year-old human infection. Science. 166(913):1620.

50. García J, Moreno R, Risco R, Fernández M, Gamallo C. 2011. Enterobius vermicularis: manifestación pulmonar. Cir. Esp. 89(4):257-259.

51. Gardner J, Grantham-Mcgregor S, Baddeley A. 1996. Trichuris trichiura infection and cognitive function in Jamaican school children. Ann.Trop. Med. Parasitol. 90(1):55-63.

52. Gargano R, Di Legami R, Maresi E, Restivo S. 2003. Chronic sialoadenitis caused by Enterobius vermicularis: case report. Acta Otorhinolaryngol. Ital. 23(4):319-321.

53. Gilman R, Marquis G, Miranda E. 1991. Prevalence and symptoms of Enterobius vermicularis infections in a Peruvian shanty town. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 85(6):761-764.

54. Gokalp A, Gultekin E, Ozdamar S. 1991. Relation between Enterobius vermicularis infestation and dysuria, nocturia, enuresis nocturna and bacteriuria in primary school girls. Indian Pediat. 28(8):948-950.

55. González C, Greatty O, Sánchez J. 1995. Estudio comparativo del régimen de dosificación única entre albendazol y pamoato de pirantel para tratamiento de enterobiasis en población infantil del barrio "José A. Anzoátegui" de la ciudad de Puerto La Cruz. 1993. Actual. Infect. 11(1/3): 2-6.

56. Graham C. 1941. A device for the diagnosis of Enterobius infection. Am. J. Trop. Med. 21(2):159-161.

57. Greatty O, González C, Sánchez M, Morocoima A. 1994. Incidencia de enterobiasis de una población del estado Anzoátegui: obtenido a través del método de Graham. Acta Cient. Venez. 43(Suppl. 1):263.

58. Hall M. 1937. Studies on oxyuriasis, I. Types of anal swabs and scrapers, with description of an improved type of swab. Am. J. Trop. Med. 17(3):445-453.

59. Hasegawa H, Kinjo T. 1996. Human pinworms collected from a chimpancé, Pantroglodytes, in a zoo of Okinawa. J. Helminthol. Soc. Wash. 63(2):272- 275.

60. Hasegawa H, Takao Y, Nakao M, Fukuma T, Tsuruta O, Ide K. 1998. Is Enterobius gregorii Hugot, 1983 (Nematoda: Oxyuridae) a distinct species? J. Parasitol. 84(1):131-134.

61. Haswell-Helkins M, Elkins D, Manjula K, Michael E, Anderson R. 1987. The distribution and abundance of Enterobius vermicularis in a South Indian fishing community. Parasitology. 95(2):339-354.

62. Herrström H, RabergA, Karlsson A, Högstedt B. 2001. Allergic disease and the infestation of Enterobius vermicularis in swedish children 4-10 years of age. J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. 11(3):157-160.

63. Hómez J, Soto R, Tarazón de Soto S, Méndez H, Mármol P. 1990. Parasitología. Editorial LUZ, Maracaibo, estado Zulia, Venezuela, pp. 177- 186.

64. Hu Y, Xiao S, Aroian R. 2009. The new anthelmintic Tribendimidine is an L-type (Levamisole and Pyrantel) nicotinic acetylcholine receptor agonist. PLoS Negl. Trop. Dis. 3(8):e499.

65. HuangS, Tsai P, Yeh Y. 2002. Negative association of Enterobius infestation with asthma and rhinitis in primary school children in Taipei. Clin. Exper. Allergy. 32(7):1029-1032.

66. Hugot J. 1983. Enterobius gregorii (Oxyuridae: Nematoda), a new human parasite. Ann. Parasitol. Hum. Compar. 4(4):403-404.

67. Hugot J, Tourte-Schaffer C. 1985. Etude morphologique des oxyures parasites de l`homme: Enterobius vermicularis and E. gregorii. Ann. Parasitol. Hum. Compar. 60(1):57-64.

68. Hugot J, Gardner S, MorandS. 1996. The Enterobiinae fam. nov. (Nematoda, Oxyurida), parasites of primates and rodents. Inter. J. Parasitol. 26(2):147-159.

69. Hugot J, ReinhardK, Gardner S, MorandS. 1999. Human enterobiasis in evolution: origin, specificity and transmission. Parasite. 6(3):201- 208.

70. Humbría-Heyliger L, Toyo M, Cazorla D, Morales P. 2012. Estudio clínico-epidemiológico de enterobiasis en niños de una comunidad rural del estado Falcón-Venezuela. Bol. Mal. Salud Amb. 52(2):211-222.

71. Huthchinson S, Powell C, Walker S, ChangS, Grantham-McGregor S. 1997. Nutrition, anaemia, geohelminth infection and school achievement in rural Jamaican primary school children. Eur. J. Clin. Nutr. 51(11):729-735.

72. Iñiguez A, ReinhardK, Araújo A, Ferreira L, Vicente A. 2003. Enterobius vermicularis: ascient DNA from North and South American human coprolites. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 98(Suppl.1):67-69.

73. Ionescu H. 1976. Evolution of enterobiasis demonstrated by the action of active and passive detection with a (modified) NIH method in Oradea. Rev. Ig. Bacteriol. Virusol. Parasitol. Epidemiol. Pneumoftiziol. 21(3):159-162.

74. Isik B, Yilmaz M, KaradagN, Kahraman L, Sogutlu G, Yilmaz S, Kirimlioglu V. 2007. Appendiceal Enterobius vermicularis infestation in adults. Int. Surg. 92(4):221-225.

75. Jacobs A. 1942. Enterobiasis in children. Incidence, symptomatology and diagnosis, with a simplified scotch cellulose tape techinique. J. Pediatr. 21:497-503.

76. Jardine M, Kokai G, Dalzell A. 2006. Enterobius vermicularis and colitis in children. J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 43(5):610-612.

77. Jiménez de Landaeta M. 1999. Asma bronquial y situación socioeconómica en Venezuela. Rev. Soc. Venez. Alergia, Asma Inmunol. 1(1):5-10.

78. Jiménez J, Vergel K, Veláquez M, Vega F, Uscata R, Romero S, Florez A, Posadas L, Tovar A, Valdivia M, Ponce D, Anderson A, Umeres J, TangR, Tambini U, Galvez B, Vilcahauman P, Stuart A, Vasquez J, Huiman C, Poma H, Valles A, Velasquez V, Calderon M, Uyeman N, Naquira C. 2011. Parasitosis en niños en edad escolar: relación con el grado de nutrición y aprendizaje. Horiz. Méd. 11(2):65-69.

79. KangS, Sultana T, Eom K, Park Y, SoonthornpongN, Nadler S, Park J. 2009. The mitochondrial genome sequence of Enterobius vermicularis (Nematoda: Oxyurida)-an idiosyncratic gene order and phylogenetic information for chromadorean nematodes. Gene. 429(1-2):87-97.

80. KashyapB, Samantray J, Kumar S, Jhamb R, Singh A, Kaur I. 2013. Recurrent paediatric pinworm infection of the vagina as a potential reservoir for Enterobius vermicularis. J. Helminthol. 31:1-3.

81. Kastner T, Selvaggi K, Cowper R. 1992. Pinworm eradication in community residential settings for people with developmental disabilities. Ment. Retard. 30(4):237-240.

82. Kim S, Chi J. 2000. Perianal granuloma caused by a female pinworm (Enterobius vermicularis)-A case report. Korean J. Pathol. 34(8):605-607.

83. Kim B, Yeon J, Ock M. 2001. Infection rates of Enterobius vermicularis and Clonorchis sinensis of primary school children in Hamyang-gun, Gyeongsangnam-do (province), Korea. Korean J. Parasitol. 39(4):323-235.

84. Kolokotroni O, Middleton N, Nicolaou N, Pipis S, Priftis K, Milton D, Yiallouros P. 2011. Temporal changes in the prevalence of childhood, asthma and allergies in urban and rural areas of Cyprus: results from two cross sectional studies. BMC Public Health. 11:858.

85. Koltas I, Ozcan K, Tamer L, Aksungur P. 1997. Serum cooper, zinc and magnesium levels in children with enterobiasis. J. Trace Elements Med. Biol. 11(1):49-52.

86. Kourí P, Basnuevo J, Sotolongo F. 1982. Suborden Oxyuroidea Railliet 1916. En: Manual de Parasitología. Tomo I. Helmintología Humana. 3a edición. Editorial Pueblo y Educación, La Habana, Cuba, pp. 106-132.

87. Lee D. 2002. The Biology of Nematodes. CRC Press, Boca Raton, Florida, USA, pp. 635.

88. Liu D. 2012. Enterobius. In: Liu D (Ed). Molecular detection of human parasitic pathogens. 1th ed. CRC Press, Boca Raton, Florida, pp. 555-562.

89. Liu L, Chi J, Upton M, Ash L. 1995. Eosinophilic colitis associated with larvae of the pinworm Enterobius vermicularis. Lancet. 346(8972):410-412.

90. Lohiya G, Tan-Figueroa L, Crinella F, Lohiya S. 2000. Epidemiology and control of enterobiasis in a developmental center. West J. Med. 172(5):305- 308.

91. Lotfy W. 2004. On the reality of Enterobius gregorii. Exp. Pathol. Parasitol. 7(2):45-49.

92. Lynch N. 1992. Influence of socio-economic level on helminthic infection and allergic reactivity in tropical countries. In: Moqbel R(Ed). Allergy and immunity to helminths: common mechanisms or divergent pathways? 1th ed. Taylor & Francis, London, Inglaterra, pp. 51-62.

93. Lynch N, Hagel I, Pérez M, Di Prisco M, Alvarez N, Rojas E. 1992. Bronchoconstriction in helminthic infection. Int. Arch. Allergy Immunol. 98(1):77- 79.

94. Lynch N, Hagel I, Pérez M, Di Prisco M, López R, Alvarez N. 1993. Effect of anthelminthic treatment on the allergic reactivity of children in a tropical slum. J. Allergy Clin. Immunol. 92(3):404-411.

95. Macedo T, MacCarty R. 2000. Eosinophilic ileocolitis secondary to Enterobius vermicularis: case report. Abd. Imag. 25(5):530-532.

96. MahomedA, Mackenzie R, Carson L, Jibril J. 2003. Enterobius vermicularis and perianal sepsis in children. Pediatr. Surg. Inter. 19(11):740-741.

97. Makni S, Makni F, Ayadi A, Jlidi R. 1998. Appendicular enterobiasis. Apropos of 205 cases. Ann. Chir. 52(7):668.

98. Maniscalchi MT, Lemus-Espinoza D, Kiriakos D, Pacheco F, Aponte C, Villarroel O, Harb P. 2010. Enterobius vermicularis en niños del área rural del estado Anzoátegui, Venezuela. Rev. Soc. Venez. Microbiol. 30(2):128-133.

99. Marsden A. 1960. Report of a nematode worm, probably Enterobius vermicularis, in the prostate. Med. J. Malaysia. 14:187-190.

100. Marteau P, Flourie B, Lavergne A, Garin F, Bertin P, Rambaud J. 1989. Granulome à oxyures du mésentère. Gastroenterol. Clin. Biol. 13(8- 9):738-740.

101. Martínez-Criado Y, Millan A, Galán N, De-Agustín J. 2012. Apendicitis aguda por Enterobius vermicularis, una etiología inusual en niños. Rev. Esp. Enferm. Dig. 104(7):393-394.

102. Masters S, Barrett-Connor E. 1985. Parasites and asthma-predictive or protective? Epidemiol. Rev. 7:49-58.

103. McDonald G, Houriane O. 1972. Ectopic Enterobius vermicularis. Gut. 13 (8):621-626.

104. Mendoza E, Jorda M, Rafael E, Simon A, Andrada E. 1987. Invasion of human embryo by Enterobius vermicularis. Arch. Path. Lab. Med. 111(8):761- 762.

105. Mingomataj E, Xhixha F, Gjata E. 2006. Helminths can protect themselves against rejection inhibiting hostile respiratory allergy symptoms. Allergy. 61(4):400-406.

106. Mohamed Z, Mendes C, Farinhas A, Bruschini H, Srougi M. 2008. Prolonged irritative voiding symptoms due to Enterobius vermicularis bladder infestation in an adult patient. Braz J. Infect. Dis. 12(4):352.

107. Nakano T, Fukui D, Ikeda Y, Hasegawa H. 2005. Effects of repeated anthelmintic treatment on Enterobius vermicularis infection in chimpanzees. J. Parasitol. 91(3):679-682.

108. Nakano T, Okamoto M, Ikeda Y, Hasegawa H. 2006. Mitochondrial cytochrome c oxidase subunit 1 gene and nuclear rDNA regions of Enterobius vermicularis parasitic in captive chimpanzees with special reference to its relationship with pinworms in humans. Parasitol. Res. 100(1):51-57.

109. Neri A, Tadir Y, GrausbardG, Pardo J, Ovadia J, Braslavsky D. 1986. Enterobius (Oxyuris) vermicularis of the pelvis perotoneum-infertility. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 23(3- 4):239-241.

110. Nokes C, Bundy D. 1994. Does helminth infection affect mental processing and educational achievement? Parasitol. Today. 10(1):14-18.

111. Nokes C, Grantham-McGregor S, Sawyer A, Cooper E, Robinson B, Bundy D. 1992. Moderate to heavy infections of Trichuris trichiura affect cognitive function in Jamaican school children. Parasitology. 104(3):539-547.

112. Norhayati M, Hayascti M, Oothuman P, Azizi O, Fatmah M, Ismail, Minudin Y. 1994. Enterobius vermicularis infection among children aged 1-8 years in a rural area of Malaysia. Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health. 25(3):494-497.

113. Northrop-Clewes C, Rousham E, Mascie-Taylor C, Lunn P. 2001. Anthelmintic treatment of rural Bangladeshi children: effect on host physiology, growth, and biochemical status. Am. J. Clin. Nutrit. 73(1):53-60.

114. Ok U, Ertan P, Limoncu E, Ece A, Ozbakkaloglu B. 1996. Relationship between pinworm and urinary tract infections in young girls. APMIS. 107(5):474- 476.

115. Olivares J, Fernández R, Fleta J, Ruiz M, Clavel A. 2002. Vitamin B12 and folic acid in children with intestinal parasitic infection. J. Amer. Coll. Nut. 21(2):109-113.

116. Olivares J, Fernández R, Fleta J, Rodríguez G, Clavel A. 2003. Serum levels in children with intestinal parasitic infection. Dig. Dis. 21(3):257-260.

117. Oothuman P, Noor Ayati M, Mastura M, Rampal L, Jeffery J, Rubiah M, Ismail G, Fatmah M. 1992. Prevalence of Enterobius vermicularis amongst adults living in hostels by six successive day examination. Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health. 23(1):82-86.

118. Páez de MouradB, Calchi M. 1994. Prevalencia de parasitosis intestinales en alumnos del pre-escolar INSP Jose Celestino Azuaje, El Policita, municipio Maracaibo, estado Zulia. Kasmera. 22(1 /4):51-69.

119. Parija S, Sheeladevi C, Shivaprakash M, Biswal N. 2001. Evaluation of lactophenol cotton blue stain for detection of eggs of Enterobius vermicularis in perianal surface samples. Trop. Doct. 31(4):214- 215.

120. Pearce N, Ait-KhaledN, Beasley R, Mallol J, Keil U, Mitchell E, Robertson C. 2007. The ISAAC Phase Three Study Group. Worldwide trends in the prevalence of asthma symptoms: Phase III of the International Study of Asthma and Allergies in Childhood (ISAAC). Thorax. 62:758-766.

121. Pérez J, Suarez M, Torres C, Vasquez M, Vielma Y, Vogel M, Cardenas E, Herrera E, Sanchez J. 2011. Parasitosis intestinales y características epidemiológicas en niños de 1 a 12 años de edad: ambulatorio urbano II Laura Labellarte, Barquisimeto, Venezuela. Arch. Venez. Pueric. Pediatr. 74(1):16-22.

122. Pessoa S, Vianna-Martins A. 1977. Superfamilia Oxyuroidea- Enterobius vermicularis e enterobiose. En: Parasitología Médica. 10a edición. Guanabara Koogan, Río Janeiro, Brasil, pp. 595-602.

123. Pezzani B, Minvielle M, De Luca M, Cordoba M, Apezteguia M, Basualdo J. 2004. Enterobius vermicularis infection among population of General Mansilla, Argentina. World J. Gastroenterol. 10(17):2535-2539.

124. Piperaki E, Spanakos G, Patsantara G, Vassalou E, Vakalis N, Tsakris A. 2011. Characterization of Enteriobius vermicularis in a human population, employing a molecular-based method from adhesive tape samples. Mol. Cell. Probes. 25(2- 3):121-125.

125. Pollitt E, Pérez E, Wayne W, Latham M, Stephenson L. 1991. Effects of infection with Trichuris trichiura, Ascaris lumbricoides and hookworm on information processing among Kenyan school children. FASEB J. 5:A1081.

126. Rabinovich B, Romanenko N, Melnikova A, Mikhaĭlova L.1996. The information value of a method of examining for helminthiasis using an ocular spatula with an adhesive layer. Med Parazitol (Mosk). 1:55-57.

127. ReinhardK, Gardner S, Hugot J. 2004. The pathoecology of Enterobiasis in the prehistoric Southwest USA. Disponible en línea en: http://www.unl.edu/Reinhard/pinworm.html. (Acceso 11.09.2010).

128. Requena I, Jiménez Y, Rodríguez N, Sandoval M, Alcala F, Blanco Y, Devera R. 2007. Enterobius vermicularis en preescolares de un área suburbana en San Félix, estado Bolívar, Venezuela. Invest. Clin. 48(3):277-286.

129. Requena-Certad I, Lizardi V, Mejía LM, Castillo H, Devera R. 2002. Infección por Enterobius vermicularis en niños pre escolares de Ciudad Bolívar, Venezuela. Rev. Biomed. 13(4):231-240.

130. Rîpă C, Bahnea R, Cojocaru I, Luca M, Ivan A, Luca M. 2010. Atopic diseases and intestinal helminth infections. Rev. Med. Chir. Soc. Med. Nat. Iasi. 114(4):1017-1021.

131. Rivero Z, Díaz I, Acurero E, Camacho M, Medina M, Ríos L. 2001. Prevalencia de parásitos intestinales en escolares de 5 a 10 años de un instituto del municipio Maracaibo, Edo. Zulia-Venezuela. Kasmera. 29 (2):153-170.

132. Robertson L, Crompton D, Sanjur D, Sesheim M. 1992. Haemoglobin concentrations and concomitant infections of hookworm and Trichuris trichiura in Panamanian primary school children. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 86 (6):654-656.

133. Romagnani S. 2004. The increased prevalence of allergy and the hygiene hypothesis: missing immune deviation, reduced immune suppression, or both? Immunology. 112(3):352-363.

134. Romero de Olaria T. 1979. Estudios sobre la incidencia de enterobiasis en niños del Hospital Universitario de Maracaibo, utilizando el método de Graham modificado por Jacobs. Kasmera. 7(1/4):95-115.

135. Sanabria W. 2001. Relación entre enterobiasis y niveles de zinc, cobre y magnesio en escolares del colegio Aragua Estudiantil de Cagua, estado Aragua. Maracay: Universidad de Carabobo, Núcleo Aragua, Facultad Ciencias de la Salud [Disertación Grado Licenciatura en Bioanálisis], pp. 39.

136. Sánchez-Borges M, Capriles-Hulett A, Caballero- Fonseca F. 2011. Asthma care in resource-poor settings.World Allergy Organ. J. 4(4):68-72.

137. Sato M, Sanguankiat S, Pubampen S, Kusolsuk T. 2008. Enterobiasis: a neglected infection in adults. Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health. 39(2):213-216.

138. Scorza J, Añez N, López N, Pérez M, Rossell O, Rodríguez A, Aragort R, Gottberg C. 1974. Postgrado de Parasitología. Helmintiasis. Talleres Gráficos de la Universidad de Los Andes, Mérida, Venezuela, pp. 137.

139. Serpytis M, Seinin D. 2012. Fatal case of ectopic enterobiasis: Enterobius vermicularis in the kidneys. Scand. J. Urol. Nephrol. 46(1):70-72.

140. Simeon D, Grantham-McGregor S. 1990. Nutritional deficiencies and children’s behavior and mental development. Nut. Res. Rev. 3(1):1-24.

141. Simeon D, Callender J, Wong M, Grantham-McGregor S, Ramdath D. 1994. School performance, nutritional status and trichuriasis in Jamaican schoolchildren. Acta Paediatr. 83(11):1188-1993.

142. Simeon D, Grantham-McGregor S, Callender J, Wong M. 1995. Treatment of Trichuris trichiura infections improves growth, spelling scores and school attendance in some children. J. Nut. 125(7):1875-1883.

143. Simoes M, Rivero Z, Carreño G, Lugo M, Maldonado A, Chacín I, Parra M, Méndez Y, Marquina M. 2000. Prevalencia de enteroparasitosis en una escuela urbana en el municipio San Francisco, estado Zulia, Venezuela. Kasmera. 28(1):27-43.

144. Sinikumpu J, Serlo W. 2011. Persistent scrotal pain and suspected orchido-epididymitis of a young boy during pinworm (Enterobius vermicularis) infection in the bowel. Acta Paediatr. 100(8):e89- 90.

145. Sinniah B, Leopairut J, Neafie R, Connor D, Voge M. 1991. Enterobiasis: a histopathological study of 259 patients. Ann. Trop. Med. Parasitol. 85(6):625-635.

146. Song H, Cho C, Kim J, Choi M, Hong S. 2003. Prevalence and risk factors for enterobiasis among school children in a metropolitan city in Korea. Parasitol. Res. 91(1):46-50.

147. Souza M, Sianto L, Chame M, Ferreira L, Araújo A. 2012. Syphacia sp. (Nematoda: Oxyuridae) in coprolites of Kerodon rupestris Wied, 1820 (Rodentia: Caviidae) from 5,300 years BP in northeastern Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 107(4):539-542.

148. Stephenson I, Lathan M, Ottesen E. 2000. Malnutrition and parasitic helminth infections. Parasitology. 12(Suppl):23-38.

149. Stiles C. 1915. The school grades attained by 2166 white school children (1062 boys, 1104 girls) in the city of x, classified by age, sanitation, and intestinal parasites. US Public Health Reports 30. Government printing Office, Washington DC., EUA, pp. 2060-2067.

150. Sun T, Schwartz N, Sewell C, Lieberman P, Gross S. 1991. Enterobius egg granuloma of the vulva and peritoneum: review of the literature. Am. J. Trop. Med. Hyg. 45(2):249-253.

151. Symmers W. 1950. Pathology of oxyuriasis. With special reference to granulomas due to the presence of Oxyuris vermicularis (Enterobius vermicularis) and its ova in the tissues. Arch. Path. 50(3):475- 516.

152. Teixeira E, Kovaliczn R, Salles de Brito P. 2012. Análise de método alternativo para pesquisa de enterobiose. Publ. UEPG Ci. Biol. Saúde. 18(2):109-114.

153. Tornieporth N, Disko R, Brandis A, Barutzki D. 1992. Ectopic enterobiasis: a case report and review. J. Infec. 24(1):87-90.

154. Totkova A, Klobusicky M, Holkova R, Valent M. 2003. Enterobius gregorii-reality or fiction? Bratisl. Lek. listy. 104(3):130-133.

155. Trouiller P. 2003. Drug development and registration for parasitic diseases: what are the barriers? In: Fairlamb A, Ridley R, vial H(Eds). Drugs against parasitic diseases: R&D methodologies and issues. UNDP/World Bank/WHO, Ginebra, Suiza, pp. 23-30.

156. Vasudevan B, Rao B, Das K, Anitha M. 2003. Infestation of Enterobius vermicularis in the nasal mucosa of a 12 yr old boy-a case report. J. Comm. Dis. 35(2):138-139.

157. Velásquez O. 2008. Parasitosis intestinales. En: Gómez J, Gómez L, Quevedo A(Eds). Pautas de tratamiento en pediatría. 4a ed. Editorial Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia, pp. 35-45.

158. Vinod K. 2003. Parasitic invasion of the lacrimal sac. Vestn. Oftalmol. 119(3):45-46.

159. Von Hofe F. 1944. An improved method of demonstrating ova of Enterobius vermicularis. JAMA. 125:27.

160. Vural S, Tahsinoglu M, Girisken G, Kalaçlar F, Üstündag N. 1966. Granuloma in the pouch of Douglas caused by Enterobius vermicularis. Ann. Trop. Medi. Parasitol. 60(1):125-128.

161. Waite J, Nelson I. 1919. Study of the effects of hookworm infection upon the mental development of North Queesland schoolchildren. Med. J. Australia. 1(1):1-8.

162. Watkins W, Cruz J, Pollitt E. 1996. The effects of deworming on indicators in school performance in Guatemala. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 90(2):156-161.

163. WHO (WorldHealth Organization). 2012. Research priorities for helminth infections: technical report of the TDR disease reference group on helminth infections. Technical Report Series 972, Ginebra, Suiza, pp. 1-46.

164. Wördemann M, Diaz R, Heredia L, Collado A, Ruiz A, Prado R, Millan I, Escobedo A, Rojas L, Gryseels B, Gorbea M, Polman K. 2008. Association of atopy, asthma, allergic rhinoconjunctivitis, atopic dermatitis and intestinal helminth infections in Cuban children. Trop. Med. Int. Health. 13(2):180-186.

165. Xiao S, Wu H, Tanner M, Utzinger J, Wang C. 2005. Tribendimidine: a promisdiing, safe and broad-spectrum anthelminthic agent from China. Acta Trop. 94(1):1-14.

170. Yoon H, Choi Y, Lee S, Park H, Huh S, Yang Y. 2000. Enterobius vermicularis egg positive rate of pre-school children in Chunchon, Korea (1999). Korean J. Parasitol. 38(4):279-281.

171. Young C, Tataryn I, Kowalewska-Grochowska K, Balachandra B. 2010. Enterobius vermicularis infection of the fallopian tube in an infertile female. Pathol. Res. Pract. 206(6):405-407.

172. Zelck U, Bialek R, Weiss M. 2011. Molecular phylogenetic analysis of Enterobius vermicularis and development of an 18S ribosomal DNA-targeted diagnostic PCR. J. Clin. Microbiol. 49(4):1602-1604.