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Bioagro

versión impresa ISSN 1316-3361

Bioagro v.24 n.1 Barquisimeto abr. 2012

 

La flora arvense en huertos de naranjo ‘valencia’  y su relación con las características del suelo en dos municipios del estado Yaracuy, Venezuela

Alvaro Anzalone1, Miguel Arizaleta1 y Mariela González1

1 Dpto. de Fitotecnia. Decanato de Agronomia. Universidad Centroccidental “Lisandro Alvarado”. Apdo. 400. Barquisimeto, Venezuela. e-mail: aanzalone@ucla.edu.ve; miguelarizaleta@ucla.edu.ve

RESUMEN

Se caracterizó la flora arvense en el cultivo del naranjo ‘Valencia’ en los municipios Bolívar y Manuel Monje del estado Yaracuy, mediante muestreos de malezas en 236 fincas donde se colectó un total de 506 muestras de 0,5 m2 cada una. Se determinaron los parámetros poblacionales de las malezas, la cobertura del suelo y el índice de valor de importancia (IVI) de cada especie. Se dispuso de la información referente a las características del suelo y contenido mineral foliar del cultivo y se realizó una regresión binaria entre la presencia o no de las especies y los parámetros de suelo, así como correlaciones entre la densidad y cobertura del suelo de las malezas más importantes con los parámetros del suelo y cultivo. Se reportaron 103 especies pertenecientes a 25 familias botánicas, con 23 especies representando el 80 % del IVI total. La densidad y cobertura del suelo por malezas fueron de 44,06 plantas·m-2 y 61,8 % respectivamente, y las cinco especies más importantes fueron Cyperus rotundus, Panicum maximun, Cynodon dactylon, Waltheria americana e Ipomoea tiliacea. Se detectó un número bajo de regresiones y correlaciones significativas lo que indica que los factores del suelo estudiados no serían los más determinantes para definir la tendencia de las variables poblacionales de las malezas, pero sugieren relaciones interesantes que pueden posteriormente ser estudiadas de forma más particular.

Palabras clave adicionales: Cítricas, cobertura del suelo, densidad, malezas

Weed populations in ‘Valencia’ orange groves and their relationship with soil characteristics in two municipalities of Yaracuy State, Venezuela

ABSTRACT

Weed flora in ‘Valencia’ orange groves in Bolivar and Manuel Monje municipalities of Yaracuy State, Venezuela, was characterized. A total of 506 weed samples (0.5 m2 each) coming from 236 citrus farms were evaluated. Weed population parameters, weed ground cover, and importance value index (IVI) of each species were determined. The soil and leaf mineral contents were available and a binary regression was performed between the presence or absence of weed species and soil parameters, as well as correlations between density and ground cover of most important weeds with parameters of soil and crop plants. It was found 103 species belonging to 25 botanical families, with 23 species representing 80% of the total IVI. The density and weed ground cover were 44.06 plants·m-2 and 61.8% respectively. The five most important species were Cyperus rotundus, Panicum maximum, Cynodon dactylon, Waltheria americana, and Ipomoea tiliacea. A low number of significant correlation and regressions were detected, indicating that the evaluated soil characteristics would not be the most important to define the trend of weed population variables, but suggest interesting relationships that can later be studied more particularly.

Additional key words: Citrus, ground cover, density, weeds

Recibido: Enero 20, 2011 Aceptado: Octubre 11, 2011

INTRODUCCIÓN

La naranja dulce (Citrus sinensis L. Osb.) constituye uno de los principales rubros de producción de la fruticultura venezolana, y es un componente importante en la dieta diaria de nuestra población (Quintero et al.,  2004). La producción de naranja en Venezuela para el año 2008 fue de 382561 TM, con un rendimiento promedio de 16500 kg·ha-1, y un área de producción de unas 23186 hectáreas (FAO, 2010). En Venezuela este rubro ocupa el segundo lugar en volumen de producción de frutales luego de las musáceas, y las principales áreas bajo cultivo se ubican en los estados Carabobo, Yaracuy y Monagas (Aular et al., 2009).

La interferencia de las malezas con este frutal es un aspecto muy importante de su producción, principalmente en el período de su establecimiento. Una vez desarrollada la planta es menos susceptible a la interferencia por malezas, ya que con la sombra inhibe en parte el crecimiento de éstas (Medrano et al., 1999). El daño que producen las malezas sobre el cultivo de naranja no sólo ocurre por la búsqueda de agua, luz, espacio y nutrimentos del suelo, afectando considerablemente los rendimientos y la calidad de los frutos, sino que además estas plantas sirven de hospederos de plagas y enfermedades que afectan al cultivo, entorpecen la realización de labores culturales y de cosecha (Avilán et al., 1992), a la vez que algunas pueden tener un marcado efecto alelopático.

El control eficiente de una especie de maleza depende del conocimiento de su biología, la cual incluye atributos de morfología, anatomía, latencia y germinación de semillas, así como también aspectos de fisiología, crecimiento y reproducción (Bhowmik, 1997). También es importante conocer en detalle las características de las poblaciones de malezas presentes en un área, ya que esta información es la base para el diseño de planes de manejo apropiados.

En Venezuela no son abundantes los estudios de flora arvense asociada a diferentes cultivos; sin embargo, es posible mencionar que Medrano et al. (1999) estudiaron las malezas asociadas a los huertos de frutales en la planicie de Maracaibo, determinando las malezas que son consideradas problemas comunes a través de los parámetros frecuencia y dominancia de cada especie. Valle et al. (2000) estudiaron las principales malezas asociadas en el cultivo de la caña de azúcar (Saccharum sp.) del estado Falcón, mientras Martínezy Alfonso (2003) en cultivos hortícolas en Quíbor (estado Lara, Venezuela), donde se determinaron las especies de malezas predominantes en los sistemas de cultivo de cebolla y tomate-pimentón. Anzalone y Casanova (2004) trabajaron con el cultivo de la vid (Vitis vinífera L.) en El Tocuyo (estado Lara, Venezuela) y reportan que existió relación entre la presencia de algunas especies y su densidad, y factores como tipo de suelo y sistemas de conducción utilizados.

El uso continuo de métodos de control de malezas en ambientes más o menos estables como los frutales tiene un impacto en la flora arvense asociada a ellos, ya que se selecciona la flora arvense que se adapta de forma eficaz a dichos sistemas. Mas y Verdú (2005) hallaron que el número de especies en un huerto de cítricas fue mayor cuando el control de malezas se realizaba usando segadora que cuando se empleó herbicida, mientras que el número de especies no varió en función del marco de plantación, la edad de los árboles o la clase textural del suelo.

En este trabajo se determinaron los parámetros poblacionales de las especies malezas presentes en las fincas productoras de naranjo ‘Valencia’ de los municipios Bolívar y Manuel Monje del estado Yaracuy, Venezuela, y se realizaron análisis de correlación entre dichos parámetros y algunas características físico-químicas del suelo y del estado nutricional del cultivo.

MATERIALES Y MÉTODOS

La investigación se realizó en el marco del convenio UCLA-PDVSA Desarrollo Social El Palito para el diseño del “Plan de desarrollo agrícola para los productores de cítricas de los municipios Manuel Monjes y Bolívar del estado Yaracuy”.

El área experimental estuvo conformada por 236 fincas que abarcan una franja rectangular de unos 850 km2, con aproximadamente 5300 hectáreas del cultivo de naranjo. Las mismas se encuentran distribuidas en los valles bajos de Aroa del estado Yaracuy, en el municipio Bolívar (entre 10º 16’ y 10º 39’ N, y 68º 42’ y 69º 04’ W) y el municipio Manuel Monje (entre 10º 34’ y 10º 46’ N, y 68º 36’ y 68º 52’ W).

La precipitación anual varía de 1436,9 a 963,3 mm (INAMEH, 2009) y la temperatura promedio es de 26,3 ºC, que puede variar hacia la parte más baja del valle (Benacchio et  al., 1985).

Después de un recorrido general de la finca, se tomaron de dos a seis muestras por finca en zonas donde no era evidente un control de malezas reciente y procurando la mayor representatividad de la situación presente en el total de la unidad de producción. El criterio utilizado fue tomar un par de muestras cada 10 ha de cultivo utilizando un marco metálico de  0,5 m2 en la zona entre dos plantas de naranjo. Se tomó la precaución de sacar del marco todas aquellas plantas que no poseían su tallo principal dentro del mismo, y en el caso de las plantas enredaderas, se contabilizó cada individuo aunque sólo una parte del mismo se encontrara dentro del marco. El número de muestras totales fue de 506 y se georeferenció cada punto con el uso de un GPS.

Se estimó visualmente el porcentaje del suelo cubierto por las malezas en general, así como por gramíneas, hojas anchas y ciperáceas. Se contabilizaron los individuos de las especies presentes. Las especies que no pudieron ser identificadas en campo se trasladaron al Herbario “José Antonio Casadiego” (UCOB) del Decanato de Agronomía de la UCLA para ser identificadas.

Se dispuso de la información de un total de 506 muestras de suelo procedentes de los mismos sitios donde fueron tomadas las muestras de malezas, lo que permitió conocer en detalle las características físico-químicas del suelo. Los valores promedios fueron: arena 46,2 %; limo 31,87 %  y  arcilla  21,93 %;  pH  6,31;  CE 0,0197 dS·m-1; materia orgánica 2,0 %; fósforo 27,78 mg·kg-1; potasio 159,6 mg·kg-1; calcio 1177,5 mg·kg-1; magnesio 134,1 mg·kg-1; aluminio 0,100 cmol·kg-1; manganeso 17,1 mg·kg-1; cobre 4,5 mg·kg-1; hierro 49,1 mg·kg-1 y cinc 4,4 mg·kg-1.

Se determinó el contenido de N, P, K, Ca, Mg, Fe, Mn, Zn, Cu, B y Na en hojas de brotes vegetativos recientemente maduros ubicados en el plano ecuatorial de cada árbol, a partir de unas 20 hojas con pecíolo ubicadas basípetamente en la posición 2 ó 3, en cuatros plantas aledañas a los sitios de muestreo.

Se determinaron los parámetros poblacionales de densidad, frecuencia y dominancia para cada una de las especies malezas. Posteriormente se calculó el índice de valor de importancia (IVI), de acuerdo a las fórmulas señaladas por Anzalone y Silva (2010). Luego se estableció el orden de importancia de las especies y se consideraron como de mayor importancia aquellas que representaban el 80 % del IVI total. Este criterio ha sido utilizado con éxito en otros estudios de flora arvense (Anzalone y Casanova, 2004).

Se estudiaron las relaciones entre las características poblacionales de las cinco especies de malezas más importantes según el ordenamiento dado por el IVI, y algunas características de suelo y estado nutricional del cultivo. En un primer estudio se aplicaron regresiones binarias para tratar de describir la relación entre la presencia o no de una especie con las características físicas y químicas del suelo en los puntos donde la maleza estaba presente. La primera regresión se realizó incluyendo en el modelo todos los parámetros de suelo disponibles (pH, CE, M.O, P, K, Ca, Mg, Al, Mn, Cu, Fe, Zn, arena, limo y arcilla) y las cinco especies de malezas más importantes; luego se relacionó de forma individual a cada especie con cada parámetro de suelo. Posteriormente, se realizó un estudio de correlación donde participaron los valores de densidad poblacional y cobertura del suelo por malezas contra cada uno de los parámetros del suelo y del cultivo, considerando en el último caso los valores de N, P, K, Ca, Mg, Fe, Mn, Zn, Cu, B y Na. Por último, se realizaron análisis de correlación entre la densidad de las cinco especies de malezas más importantes (sólo para aquellas muestras donde la especie estaba presente) y los parámetros de suelo y del cultivo. Para todos los análisis se utilizó el paquete estadístico Minitab.

RESULTADOS  Y DISCUSIÓN

El inventario general de malezas indicó la presencia de 103 especies en 506 muestras analizadas (Cuadro 1). Se reportaron 28 familias y la distribución de las especies dentro de éstas fue de  25,24 %   Poaceae;7,7 %  Euphorbiaceae;   3,88 % Amaranthaceae; 14,56 % Asteraceae;  5,83 % Rubiaceae; 2,91 % Lamiceae y Malvaceae;  9,71 % Fabaceae;  4,85 % Cyperaceae;  1,94 % Cucurbitaceae,  Loranthaceae y  Onagraceae; y 0,97 % para cada una de las siguientes: Acanthanceae, Aizoaceae, Araceaea, Commelinaceae, Convolvulaceae, Loganiaceae, Nictaginaceae, Piperaceae, Polygonaceae, Portulacaceae, Scrophylaniaceae, Solanaceae, Verbenaceae y Zygophyllaceae.

Cuadro 1. Especies de malezas encontradas en el cultivo de naranja ‘Valencia’ en los municipios Bolívar y Manuel Monje del estado Yaracuy (Venezuela)

Especie

Familia botánica

Ciclo de vida

Reproducción

Nombre común

Ruellia tuberosa L.

Acanthaceae

P

Sx y Ax

Yuquilla

Trianthema portulacastrum L.

Aizoaceae

A

Sx

Falsa verdolaga

Achyranthes indica (L.) P. Mill.

Amaranthaceae

A

Sx

Rabo de ratón

Alternanthera tenella Colla

Amaranthaceae

A

Ax

Alternaria

Amaranthus dubius Mart. ex Thellung

Amaranthaceae

A

Sx

Bledo

Amaranthus viridis L.

Amaranthaceae

A

Sx

Bledo blanco

Anthurium trinerve Miq.

Araceae

P

Sx y Ax

Anturio

Acanthospermum hispidum DC.

Asteraceae

A

Sx

Cachito

Ageratum conyzoides L.

Asteraceae

A

Sx

Conyza

Bidens pilosa L.

Asteraceae

A

Sx

Cadillo de perro

Eclipta alba (L.) Hassk.

Asteraceae

A

Sx

Clavel de pozo

Emilia sonchifolia (L.) DC.

Asteraceae

A

Sx

Pincelito

Galinsoga parviflora Cav.

Asteraceae

A

Sx

Estrellita

Lagascea mollis Cav.

Asteraceae

A

Sx

Suavecita

Melampodium divaricatum (L.C. Rich.) DC.

Asteraceae

A

Sx

Hierba de sapo

Parthenium hysterophorus L.

Asteraceae

A

Sx

Lluvia de plata

Sigesbeckia jorullensis Kunth

Asteraceae

A

Sx

Botón de oro

Sigesbeckia orientalis L.

Asteraceae

A

Sx

Chuzón

Spilanthes americana auct. non Hieron.

Asteraceae

P

Sx y Ax

Matagusano

Synedrella nodiflora (L.) Gaertn.

Asteraceae

A

Sx

Espinillo

Tridax procumbens L.

Asteraceae

A

Sx

Tridax

Vernonia cinerea (L.) Less.

Asteraceae

A

Sx

Hierba de chivo

Heliotropium indicum L.

Boraginaceae

A

Sx

Rabo de alacrán

Heliotropium ternatum Vahl

Boraginaceae

A

Sx

Rabo de alacrán

Commelina diffusa Bum. F.

Commelinaceae

A

Sx y Ax

Suelda-suelda

Ipomoea tiliacea (Willd) Choisy.

Convolvulaceae

A

Sx

Campanuela

Cucumis melo L.

Cucurbitaceae

A

Sx

Meloncillo

Momordica charantia L.

Cucurbitaceae

A

Sx

Cundeamor

Cyperus difformis L.

Cyperaceae

A

Sx

Juncia de agua

Cyperus esculentus L.

Cyperaceae

P

Sx y Ax

Chufa

Cyperus ferax L.C. Rich.

Cyperaceae

P

Sx

Chufa

Cyperus rotundus L.

Cyperaceae

P

Sx y Ax

Corocillo

Kyllinga brevifolia Rottb.

Cyperaceae

P

Sx y Ax

Fosforito

Acalypha alopecuroidea Jacq.

Euphorbiaceae

A

Sx

Rabo de gato

Croton lobatus L.

Euphorbiaceae

A

Sx

Croto

Euphorbia heterophylla L.

Euphorbiaceae

A

Sx

Bemba de negro

Euphorbia hirta L.

Euphorbiaceae

A

Sx

Lecherito

Euphorbia hypericifolia L.

Euphorbiaceae

A

Sx

Lecherito

Jatropha urens L.

Euphorbiaceae

P

Sx

Pringamosa

Phyllanthus corcovadensis Muell

Euphorbiaceae

A

Sx

Flor escondida

Phyllanthus niruri L.

Euphorbiaceae

A

Sx

Flor escondida

Aeschynomene americana L.

Fabaceae

A

Sx

Cujicillo

Cassia tora L.

Fabaceae

A

Sx

Caña fistula

... continuación del Cuadro 1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Chamaecrista aeschinomene (Coll.) Greene

Fabaceae

P

Sx

Tamarindillo

Crotalaria incana L.

Fabaceae

A

Sx

Maraquita

Desmanthus virgatus (L.) Willd.

Fabaceae

P

Sx

Platanillo

Desmodium canum (J.F. Gmel.)

Fabaceae

P

Sx

Pega-pega

Desmodium tortuosum (Sw.) DC.

Fabaceae

P

Sx

Pega-pega

Mimosa pudica L.

Fabaceae

P

Sx

Dormidera

Mucuna pruriens (L.) DC.

Fabaceae

A

Ax

Pica-pica

Senna obtusifolia (L.) Irwin & Barneby

Fabaceae

A

Sx

Brusca

Hyptis capitata Jacq.

Lamiaceae

A

Sx

Cabeza de pollo

Hyptis suaveolens (L.) Poit.

Lamiaceae

A

Sx

Mastranto

Leonotis nepetifolia (L.) Ait. f.

Lamiaceae

A

Sx

Cordón de fraile

Spigelia anthelmia L.

Loganiaceae

A

Sx

Lombricera

Phthirusa pyrifolia (H.B.K.) Eichl.

Loranthaceae

P

Sx

Mata palo

Struthanthus phillyraeoides (Kunth) Blume

Loranthaceae

 

SX

 

Pavonia fruticosa (P. Mill.) Fawcett&Rendle

Malvaceae

A

Sx

Cadillo de agua

Sida acuta Bum. f.

Malvaceae

A

Sx

Escoba

Sida rhombifolia L.

Malvaceae

P

Sx

Escoba

Boerhavia decumbens Valh.

Nictaginaceae

A

Sx

Rodilla de pollo

Jussiaea linifolia Vahl

Onagraceae

A

Sx

Palo de agua

Ludwigia leptocarpa (Nutt.) Hara

Onagraceae

A

Sx

Clavelillo

Peperomia pellucida (L.) Kunth

Piperaceae

A

Sx

Siempreviva

Brachiaria humidicola

Poaceae

P

Ax

Brachiaria

Brachiaria mutica (Forsk.) Stapf

Poaceae

P

Ax

Pasto  laguna

Cenchrus brownii Roemer & J.A. Schultes

Poaceae

A

Sx

Cadillo blanco

Cenchrus echinatus L.

Poaceae

A

Sx

Cadillo bravo

Cenchrus setigerus Vahl

Poaceae

A

Sx y Ax

Cadillo negro

Chloris virgata Sw.

Poaceae

A

Sx

Piragüita

Cynodon dactylon (L.) Pers.

Poaceae

P

Sx y Ax

Bermuda

Cynodon nlemfuensis Vanderyst

Poaceae

P

Sx y Ax

Pasto estrella

Dactyloctenium aegyptium (L.) Willd.

Poaceae

A

Sx

Pata de gallina

Digitaria horizontales Willd.

Poaceae

A

Sx y Ax

Pangolilla

Digitaria sanguinalis (L.) Scop.

Poaceae

P

Sx

Horquetilla

Echinochloa colona (L.) Link

Poaceae

A

Sx

Paja americana

Eleusine indica (L.) Gaertn.

Poaceae

A

Sx

Guarataro

Hyparrhenia rufa (Nees) Staff

Poaceae

A

Sx

Paja pará

Leptochloa filiformis (Lam.) Beauv.

Poaceae

A

Sx

Cola de zorro

Panicum maximum Jacq.

Poaceae

P

Sx y Ax

Guinea

Paspalum fasciculatum Willd. ex Flueggé

Poaceae

P

Sx y Ax

Chigüirera

Paspalum macrophyllum Kunth

Poaceae

P

Sx y Ax

Gramalote

Paspalum virgatum L.

Poaceae

P

Sx y Ax

Cabezona,

Rottboellia exaltata (L.) L. f.

Poaceae

A

Sx y Ax

Paja pelua

Setaria geniculata auct. non (Wild.) Beauv.

Poaceae

A

Sx

Limpia frasco

Setaria viridis (L.) Beauv.

Poaceae

A

Sx

Limpiabotellas

Sorghum arundinaceum (Desv.)  Stapf

Poaceae

A

Sx y Ax

Arrocillo

Sorghum halepense (L.) Pers.

Poaceae

P

Sx y Ax

Johnson

Sorghum verticilliflorum (Steud.) Stapf

Poaceae

A

Sx

Falso Johnson

Stenotaphrum secundatum (Walt.) Kuntze

Poaceae

P

Sx y Ax

San Agustín

Polygonum hydropiperoides Michx.

Polygonaceae

P

Sx

Barbasco

Portulaca oleracea L.

Portulacaceae

A

Sx y Ax

Verdolaga

Borreria alata (Aubl.) DC.

Rubiaceae

A

Sx

Botoncillo

Borreria laevis auct. non (Lam.) Griseb

Rubiaceae

A

Sx

Crucecita

Borreria suaveolens G.F.W. Meyer

Rubiaceae

P

Sx y Ax

Hierba de toro

Borreria verticillata (L.) G.F.W. Mey.

Rubiaceae

A

Sx

Botonera

Mitracarpus villosus (Sw.) Cham. & Schlecht

Rubiaceae

A

Sx

Hierba de toro

Richardia brasiliensis Gomes

Rubiaceae

A

Sx

Botoncillo

Scoparia dulcis L.

Scrophylariaceae

A

Sx

Escoba dulce

Physalis angulata L.

Solanaceae

A

Sx

Huevo de sapo

Waltheria americana L.

Sterculiaceae

P

Sx

Bretónica

Stachytarpheta cayennensis (Rich.) Vahl

Verbenaceae

A

Sx

Golondrina

Kallstroemia maxima (L.) Hook. & Arn.

Zygophyllaceae

A

Sx

Abrojo

A= anual; P = perenne; Sx= sexual; Ax= asexual

De acuerdo a su ciclo de vida, el 72,2 % de las especies son anuales y el 27,8 % son perennes. La densidad total promedio de malezas (de todas las especies) fue de 44,06 individuos por metro cuadrado, con una cobertura promedio total del suelo por malezas de 61,80%, lo que refleja una alta presencia de malezas para una zona bajo explotación agrícola. La cobertura del suelo está compuesta en un 40% por malezas de hoja ancha (dicotiledóneas), un 40 % de gramíneas (monocotiledóneas) y un 20 % de ciperáceas, grupo donde destaca el Cyperus rotundus.

Con relación a los parámetros poblacionales e índice de valor de importancia (Cuadro 2) se observa que las especies más importantes son malezas muy comunes en huertos frutales. Cyperus rotundus, al igual que en muchas zonas de producción agrícola, es la especie considerada como la más importante. También es interesante destacar la presencia de Anthurium trinerve, una especie que ha ganado espacio como maleza en esta zona de producción, así como la presencia de algunas especies gramíneas utilizadas como pastos y forraje.

Cuadro 2. Parámetros poblacionales e índice de valor de importancia (IVI) de especies de malezas en el cultivo de naranja ‘Valencia’ en los municipios Bolívar y Manuel Monje del estado Yaracuy, Venezuela (las primeras 23 especies representan las de mayor importancia de acuerdo con el criterio del 80 % del IVI)

 

Especie

Densidad

(plantas por m2)

Frec.

Dom.

IVI

 

 

Especie

Densidad

(plantas

por m2)

Frec.

Dom.

IVI

1

Cyperus rotundus

14,672

0,362

0,166

0,429

 

53

Peperomia pellucida

0,253

0,004

0,003

0,007

2

Panicum maximum

9,628

0,281

0,109

0,293

 

54

Acalypha alopecuroidea

0,182

0,010

0,002

0,007

3

Cynodon dactylon

8,312

0,113

0,094

0,219

 

55

Phthirusa pyrifolia

0,182

0,010

0,002

0,007

4

Waltheria americana

5,644

0,332

0,064

0,217

 

56

Sigesbeckia jorullensis

0,130

0,012

0,001

0,006

5

Ipomoea tiliacea

5,423

0,302

0,062

0,204

 

57

Borreria alata

0,166

0,008

0,002

0,006

6

Brachiaria mutica

3,640

0,083

0,041

0,105

 

58

Euphorbia heterophylla

0,119

0,012

0,001

0,006

7

Rottboellia exaltata

2,502

0,113

0,028

0,087

 

59

Acanthospermum hispidum

0,162

0,008

0,002

0,006

8

Commelina diffusa

2,024

0,152

0,023

0,087

 

60

Spilanthes americana

0,099

0,010

0,001

0,005

9

Sorghum halepense

2,640

0,099

0,030

0,086

 

61

Heliotropium indicum

0,087

0,010

0,001

0,005

10

Euphorbia hirta

1,755

0,166

0,020

0,084

 

62

Ludwigia leptocarpa

0,126

0,006

0,001

0,004

11

Cyperus ferax

2,213

0,095

0,025

0,076

 

63

Jussiaea linifolia

0,095

0,008

0,001

0,004

12

Echinochloa colona

1,917

0,085

0,022

0,066

 

64

Croton lobatus

0,071

0,010

0,001

0,004

13

Phyllanthus niruri

1,194

0,132

0,014

0,062

 

65

Digitaria sanguinalis

0,115

0,006

0,001

0,004

14

Paspalum virgatum

1,933

0,049

0,022

0,057

 

66

Eclipta alba

0,087

0,008

0,001

0,004

15

Stachytarpheta cayennensis

1,142

0,109

0,013

0,055

 

67

Scoparia dulcis

0,130

0,004

0,001

0,004

16

Ruellia tuberosa

1,217

0,097

0,014

0,053

 

68

Chloris virgata.

0,107

0,006

0,001

0,004

17

Eleusine indica

1,233

0,055

0,014

0,043

 

69

Cenchrus brownii

0,075

0,008

0,001

0,004

18

Paspalum fasciculatum

1,265

0,042

0,014

0,040

 

70

Physalis angulata

0,095

0,006

0,001

0,004

19

Anthurium trinerve

1,478

0,012

0,017

0,037

 

71

Setaria geniculata

0,115

0,004

0,001

0,004

20

Sorghum verticilliflorum

1,198

0,030

0,014

0,035

 

72

Crotalaria incana

0,067

0,008

0,001

0,004

21

Emilia sonchifolia

0,581

0,083

0,007

0,035

 

73

Phyllanthus corcovadensis

0,083

0,006

0,001

0,003

22

Sida rhombifolia

0,806

0,043

0,009

0,030

 

74

Alternanthera tenella

0,087

0,004

0,001

0,003

23

Euphorbia hypericifolia

0,636

0,051

0,007

0,028

 

75

Polygonum hydropiperoides

0,087

0,004

0,001

0,003

24

Tridax procumbens

0,775

0,040

0,009

0,028

 

76

Sorghum arundinaceum

0,047

0,006

0,001

0,003

25

Bidens pilosa

0,715

0,038

0,008

0,026

 

77

Hyptis capitata

0,043

0,006

0,000

0,003

26

Desmodium canum

0,538

0,051

0,006

0,026

 

78

Pavonia fruticosa

0,063

0,004

0,001

0,002

27

Amaranthus dubius

0,407

0,049

0,005

0,022

 

79

Jatropha urens

0,059

0,004

0,001

0,002

28

Mimosa pudica

0,415

0,040

0,005

0,020

 

80

Boerhavia decumbens

0,055

0,004

0,001

0,002

29

Leptochloa filiformis

0,502

0,030

0,006

0,019

 

81

Borreria laevis auct.

0,055

0,004

0,001

0,002

30

Synedrella nodiflora

0,621

0,018

0,007

0,019

 

82

Mucuna pruriens

0,055

0,004

0,001

0,002

31

Brachiaria humidicola

0,783

0,004

0,009

0,019

 

83

Kyllinga brevifolia

0,036

0,004

0,000

0,002

32

Desmodium tortuosum

0,423

0,034

0,005

0,019

 

84

Melampodium divaricatum

0,047

0,002

0,001

0,002

33

Senna obtusifolia

0,375

0,038

0,004

0,019

 

85

Desmanthus virgatus

0,020

0,002

0,000

0,001

34

Portulaca oleracea

0,419

0,028

0,005

0,017

 

86

Aeschynomene americana

0,040

0,002

0,000

0,001

35

Lagascea mollis

0,356

0,032

0,004

0,017

 

87

Kallstroemia máxima

0,016

0,004

0,000

0,001

36

Struthanthus phillyraeoides

0,565

0,012

0,006

0,016

 

88

Sigesbeckia orientalis

0,016

0,004

0,000

0,001

37

Cassia tora

0,415

0,024

0,005

0,016

 

89

Cenchrus setigerus

0,016

0,004

0,000

0,001

38

Borreria verticillata

0,585

0,006

0,007

0,015

 

90

Cyperus esculentus

0,012

0,004

0,000

0,001

39

Cenchrus echinatus

0,265

0,028

0,003

0,013

 

91

Hyparrhenia rufa

0,032

0,002

0,000

0,001

40

Sida acuta Burm.

0,289

0,018

0,003

0,011

 

92

Leonotis nepetifolia.

0,032

0,002

0,000

0,001

41

Galinsoga parviflora

0,324

0,012

0,004

0,011

 

93

Amaranthus viridis

0,032

0,002

0,000

0,001

42

Stenotaphrum secundatum

0,411

0,004

0,005

0,010

 

94

Achyranthes indica

0,008

0,004

0,000

0,001

43

Parthenium hysterophorus

0,304

0,018

0,003

0,012

 

95

Chamaecrista aeschinomene

0,020

0,002

0,000

0,001

44

Ageratum conyzoides

0,379

0,004

0,004

0,010

 

96

Digitaria horizontales

0,020

0,002

0,000

0,001

45

Richardia brasiliensis

0,190

0,020

0,002

0,010

 

97

Trianthema portulacastrum

0,016

0,002

0,000

0,001

46

Cynodon nlemfuensis

0,304

0,006

0,003

0,008

 

98

Vernonia cinerea

0,016

0,002

0,000

0,001

47

Heliotropium ternatum

0,154

0,018

0,002

0,008

 

99

Dactyloctenium aegyptium

0,016

0,002

0,000

0,001

48

Hyptis suaveolens

0,253

0,008

0,003

0,008

 

100

Spigelia anthelmia

0,012

0,002

0,000

0,001

49

Momordica charantia

0,119

0,018

0,001

0,007

 

101

Mitracarpus villosus

0,012

0,002

0,000

0,001

50

Borreria suaveolens

0,233

0,008

0,003

0,007

 

102

Cyperus difformis

0,008

0,002

0,000

0,001

51

Cucumis melo

0,229

0,008

0,003

0,007

 

103

Setaria viridis

0,004

0,002

0,000

0,001

52

Paspalum macrophyllum

0,194

0,010

0,002

0,007

 

 

 

 

 

 

 

Frec. = Frecuencia;  Dom. = Dominancia

El modelo de regresión binaria entre la presencia de las especies y los parámetros de suelo donde se incluyeron todos los parámetros resultó no significativo; no obstante, se detectaron individualmente  algunas relaciones significativas entre la presencia de algunas especies y algunos de los parámetros de suelo, con niveles medios de acierto (Cuadro 3). De forma general se observa que la presencia de Cyperus rotundus se favoreció en suelos con altos contenidos de cationes ácidos como aluminio, hierro y manganeso, mientras que Panicum maximum se favoreció en suelos con alta capacidad de intercambio catiónico (MO y arcilla) junto a cationes alcalino-térreos como calcio y magnesio (a excepción del Mn). Por su parte, la presencia de Ipomoea tiliacea se observa muy asociada a la textura del suelo, mientras la de Cynodon dactylon y Waltheria americana se asociaron a la presencia de fósforo y magnesio, respectivamente. Estas correlaciones significativas pueden ser la puerta de entrada a estudios más detallados sobre la asociación entre estas malezas y las características del suelo.

Cuadro 3. Valores de P y porcentaje de aciertos (en los paréntesis) para la regresión binaria entre las características del suelo y la presencia o no de las cinco especies de malezas más importantes en huertos de naranjo ‘Valencia’ en los municipios Bolívar y Manuel Monje del estado Yaracuy, Venezuela

Parámetro

Cyperus

rotundus

Panicum

maximum

Cynodon

dactylon

Waltheria

americana

Ipomoea

tiliacea

pH

0,585

0,142

0,655

0,469

0,077 (56,5)

CE

0,727

0,928

0,403

0,932

0,117

M.O

0,778

0,014 (59,9)

0,853

0,815

0,288

P

0,436

0,340

0,099 (49,4)

0,206

0,480

K

0,574

0,104

0,359

0,110

0,925

Ca

0,451

0,047 (62,9)

0,675

0,143

0,550

Mg

0,521

0,040 (60,6)

0,727

0,086 (55,8)

0,049 (57,5)

Al

0,063 (36,4)

0,616

0,881

0,111

0,469

Mn

0,077 (33,7)

0,007 (64,4)

0,788

0,689

0,241

Cu

0,109

0,466

0,166

0,979

0,024 (59,1)

Fe

0,058 (53,2)

0,107

0,598

0,883

0,747

Zn

0,329

0,242

0,589

0,804

0,934

Arena

0,248

0,188

0,796

0,846

0,040 (57,7)

Limo

0,262

0,843

0,800

0,541

0,055 (56,4)

Arcilla

0,431

0,012 (58,5)

0,823

0,662

0,091 (56,5)

Con relación a la densidad de malezas, sólo se detectaron correlaciones positivas para los niveles de Cu y Fe en el suelo (Cuadro 4), mientras que la cobertura no mostró correlación alguna con las características en el suelo (P>0,05); esto último puede ser atribuido al hecho de que hay muchos factores que influyen en la cobertura, como son las especies de malezas presentes, su hábito de crecimiento y forma de vida, así como factores de manejo del cultivo, lo que indica que los factores de suelo estudiados no serían los más determinantes para definir esta variable.

Cuadro 4. Coeficientes de correlación y significancia (en paréntesis) entre variables poblacionales de la maleza y las características del suelo en huertos de naranjo ‘Valencia’ en dos municipios del estado Yaracuy, Venezuela

Parámetro

Densidad total de malezas

Cobertura del suelo por malezas

pH

-0,059 (0,401)

-0,037 (0,597)

CE

0,045 (0,522)

0,014 (0,841)

M.O

-0,018 (0,796)

0,090 (0,194)

P

0,022 (0,764)

0,084 (0,238)

K

-0,005 (0,947)

0,037 (0,591)

Ca

-0,048 (0,612)

-0,009 (0,922)

Mg

0,078 (0,268)

0,088 (0,204)

Al

-0,042 (0,698)

0,003 (0,980)

Mn

0,105 (0,138)

0,028 (0,685)

Cu

0,338 (0,000)

0,004 (0,952)

Fe

0,139 (0,048)

0,106 (0,126)

Zn

-0,010 (0,890)

-0,018 (0,790)

Arena

0,042 (0,554)

-0,041 (0,557)

Limo

-0,051 (0,472)

0,006 (0,933)

Arcilla

-0,007 (0,926)

0,075 (0,276)

Se encontraron correlaciones entre la densidad total  de  malezas  y  los  nutrientes  Ca,  Na  Fe  y Mn  en  el  tejido  foliar  del  naranjo  (Cuadro  5); sólo en el caso del calcio la correlación fue negativa,  indicando  que  a  medida  que  aumenta la densidad de malezas disminuye este elemento en las plantas. Los suelos donde se realizó el estudio  se  caracterizan  por  poseer  altos  niveles de  calcio,  pero,  a  pesar  de  ello,  pareciera  que se puede estar expresando una competencia por este elemento. Para los demás elementos donde se consiguió una correlación significativa la misma fue positiva, es decir, que a medida que aumentaban los niveles de la densidad de maleza, estos elementos eran más abundantes en las plantas. Por otra parte, no se detectaron correlaciones significativas para la cobertura del suelo por malezas.

Cuadro 5. Coeficientes de correlación y significancia (en paréntesis) entre variables poblacionales de la maleza y los valores nutricionales del cultivo en huertos de naranjo ‘Valencia’ en dos municipios del estado Yaracuy, Venezuela

Parámetro

Densidad total de malezas

Cobertura del suelo por malezas

N

-0,045 (0,527)

-0,045 (0,525)

P

-0,062 (0,382)

-0,004 (0,952)

K

0,007 (0,924)

-0,075 (0,285)

Ca

-0,119 (0,091)

-0,093 (0,183)

Mg

0,041 (0,561)

0,043 (0,543)

Na

0,173 (0,014)

0,001 (0,991)

Cu

0,116 (0,101)

0,062 (0,378)

Zn

0,002 (0,979)

-0,029 (0,684)

Fe

0,203 (0,004)

0,054 (0,439)

Mn

0,192 (0,006)

0,094 (0,181)

B

0,100 (0,156)

0,076 (0,275)

La investigación reveló que existe una correlación entre la densidad de Panicum maximun y los niveles de Cu en el suelo, de Cynodon dactylon con el Mn, y de Ipomoea tiliacea  con  el Mg  y  el  Cu  (Cuadro  6).  Todas las correlaciones fueron positivas, es decir, mientras aumentan los niveles de estos elementos en el suelo, aumenta la densidad de estas especies.

Cuadro 6.  Coeficientes de correlación y significancia (en paréntesis) entre la densidad de las cinco especies de malezas más importantes y las características de los suelos en huertos de naranjo ‘Valencia’ en dos municipios del estado Yaracuy, Venezuela

Parámetro

Cyperus rotundus

Panicum maximun

Cynodon dactylon

Waltheria americana

Ipomoea tiliacea

pH

-0,063 (0,526)

0,165 (0,138)

-0,214 (0,248)

0,015 (0,885)

0,1152 (0,137)

CE

-0,086 (0,386)

0,073 (0,520)

-0,263 (0,154)

-0,073 (0,471)

0,105 (0,308)

M.O.

-0,013 (0,896)

-0,074 (0,510)

-0,221 (0,232)

-0,029 (0,778)

0,151 (0,104)

P

-0,018 (0,859)

-0,075 (0,510)

0,064 (0,742)

-0,123 (0,240)

-0,031 (0,766)

K

-0,081 (0,415)

0,038  (0,732)

-0,266 (0,148)

-0,075 (0,458)

0,023 (0,821)

Ca

-0,107 (0,412)

0,041 (0,770)

0,108 (0,680)

0,023 (0,864)

0,157 (0,285)

Mg

0,000 (0,998)

-0,088 (0,434)

0,145 (0,437)

-0,017 (0,866)

0,280 (0,005)

AL

0,116 (0,458)

0,041 (0,770)

-0,131 (0,629)

-0,096 (0,573)

-0,017 (0,914)

Mn

0,120 (0,227)

0,027 (0,808)

0,474 (0,007)

-0,008 (0,9379)

0,049 (0,634)

Cu

-0,046 (0,642)

0,508 (0,000)

-0,285 (0,121)

0,033 (0,744)

0,690 (0,000)

Fe

0,158 (0,109)

-0,056 (0,615)

0,232 (0,210)

-0,095 (0,345)

-0,054 (0,602)

Zn

0,036 (0,716)

-0,052 (0,641)

0,123 (0,509)

-0,049 (0,631)

-0,058 (0,575)

Arena

0,007 (0,943)

-0,009 (0,936)

0,319 (0,80)

0,135 (0,180)

-0,143 (0,164)

Limo

-0,040 (0,686)

0,061 (0,586)

-0,267 (0,146)

-0,122 (0,228)

0,141 (0,169)

Arcilla

0,045 (0,652)

-0,040 (0,723)

-0,268 (0,144)

-0,108 (0,285)

0,110 (0,284)

Por su parte, el estudio determinó que existen correlaciones significativas entre la densidad  de  Panicum maxinum  y  los  niveles  de Na y Cu, Cynodon dactylon con los niveles de los elementos P, Mn y B, e Ipomoea tiliacea con Na y Zn (Cuadro 7). Todos los índices de correlación fueron positivos con excepción de la correlación entre la densidad de Cynodon dactylon y el fósforo.

Cuadro 7. Coeficientes de correlación y significancia (en paréntesis) entre la presencia o no de las cinco especies de malezas más importantes y los valores nutricionales del cultivo en huertos de naranjo ‘Valencia’ en dos municipios del estado Yaracuy, Venezuela

Parámetro

Cyperus rotundus

Panicum maximun

Cynodon dactylon

Waltheria americana

Ipomoea tiliacea

N

-0,051 (0,612)

-0,163 (0,150)

0,223 (0,236)

0,111 (0,276)

-0,131 (0,206)

P

-0,004 (0,966)

-0,011 (0,925)

-0,308 (0,098)

-0,148 (0,146)

-0,111 (0,284)

K

0,078 (0,434)

-0,003 (0,980)

0,124 (0,514)

0,044 (0,669)

0,134 (0,196)

Ca

-0,025 (0,802)

-0,012 (0,919)

-0,140 (0,461)

-0,042 (0,684)

0,015 (0,882)

Mg

0,061 (0,542)

-0,018 (0,872)

-0,028 (0,884)

0,068 (0,506)

-0,024 (0,816)

Na

0,030 (0,764)

0,206 (0,067)

0,266 (0,155)

-0,001 (0,990)

0,256 (0,012)

Cu

-0,094 (0,343)

0,277 (0,013)

-0,026 (0,890)

0,175 (0,085)

0,062 (0,553)

Zn

-0,054 (0,585)

0,004 (0,968)

0,117 (0,539)

-0,004 (0,970)

0,257 (0,012)

Fe

0,027 (0,785)

0,013 (0,911)

0,247 (0,188)

-0,011 (0,911)

0,158 (0,125)

Mn

-0,045 (0,655)

-0,002 (0,989)

0,529 (0,003)

-0,006 (0,953)

-0,054 (0,600)

B

0,049 (0,621)

-0,082 (0,470)

0,352 (0,056)

-0,151 (0,137)

0,096 (0,354)

DISCUSIÓN

Al analizar los resultados se puede señalar que existe una alta diversidad de malezas en el área bajo estudio, ya que se reporta un total de 103 especies; estas poblaciones presentan valores elevados para la densidad total promedio y cobertura promedio total del suelo, con 44,03 plantas·m-2  y  61,80 %,  respectivamente.  Esta alta variabilidad y densidad poblacional puede deberse  a  las  condiciones  climáticas  de  la  zona y la calidad de los suelos presentes, que propician la coexistencia de muchas especies; a su vez,  la  relativa  poca  disturbación  del  suelo  que  se  produce  en  los  cultivos  frutales favorece el aumento en la variabilidad de las especies de malezas. Asimismo, la alta diversidad de especies se favorece por las marcadas diferencias en los métodos de control aplicados por los productores, ya que cada finca posee planes de manejo de malezas distintos. Sin embargo, la alta densidad y cobertura de malezas supone que los métodos de control de malezas aplicados no son eficientes.

Apoyando la idea anterior, los resultados indican que, según el criterio aplicado, existen 23 especies de malezas consideradas como las más importantes, un número que puede considerarse alto para una zona de explotación agrícola cuando es comparado con las especies de importancia descritas por Medrano et al. (1999) en plantaciones de frutales, Martínez y Alfonso. (2003) en siembras hortícolas, y Anzalone y Casanova (2004) en el cultivo de la vid.

Destaca el dominio de las especies gramíneas, que  representan  el  25 % de  las  especies presentes; esta situación puede estar indicando que los planes de manejo de malezas no están considerando soluciones efectivas y probadas para el control de estas plantas, como es la utilización de herbicidas graminicidas post-emergentes del grupo de los ariloxifenoxipropianatos o de las ciclohexanodionas, que son altamente selectivos a plantas de hojas anchas. Es probable que el excesivo uso del control mecánico, que es el método más común en la zona estudiada, esté promocionando la expansión de las malezas gramíneas (y otras malezas de diversas familias) con reproducción asexual.

En general, el número total de correlaciones significativas entre las variables poblacionales de malezas y los parámetros del suelo y el cultivo, resultó bajo. Esto puede deberse a muchos factores, pero entre ellos resalta la alta variabilidad de las condiciones de manejo del cultivo en las zonas de estudios. A pesar de esto, los resultados obtenidos son de interés porque sugieren relaciones que pueden ser estudiadas de forma más particular, destacándose el papel que elementos  como  el  sodio,  el  hierro  y  el  calcio, o el cobre y el magnesio ejercen sobre la frecuencia y densidad poblacional de algunas especies  malezas  consideradas  importantes  en este  estudio.

LITERATURA CITADA

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