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<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas INIA de Venezuela]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Propagación in vitro de hippeastrum sp]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Central de Venezuela Facultad de Ciencias Instituto de Biología Experimental]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0002-192X2006000400021&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0002-192X2006000400021&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0002-192X2006000400021&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Hippeastrum es un género de la familia Amaryllidaceae cuyas especies son muy apreciadas desde el punto de vista ornamental y medicinal, dada su belleza y producción de alcaloides de utilidad en la industria farmacéutica. Con la finalidad de lograr la propagación y multiplicación in vitro de Hippeastrun sp., los bulbos empleados como explantes se desinfectaron utilizando un protocolo minucioso debido a la presencia de mucílago y bacterias en el interior de los mismos. Bulbos intactos y secciones de bulbos, fueron cultivados en el medio con las sales MS (1962) suplementado con 0,4 mg l-1 tiamina, 100 mg l-1 de mio-inositol, 30 mg l-1 de sacarosa, solidificado con 8 g l-1 de agar e incubadas bajo condiciones de luz fluorescente continua (50 µmol m-2 s-1) a temperatura de 23±1 ºC. Se probaron los siguientes tratamientos: Bencilaminopurina (BA) sola a 0,5, 1, 2, 3 mg l-1 y combinada con Ácido Naftalenoacético (ANA) 0,1 mg l-1 y un medio sin sustancias de crecimiento. En el caso de secciones de bulbos, 0,5 y 1 mg l-1 de BA y el medio control resultaron ser los mejores tratamientos hacia la formación de brotes, mientras que para los bulbos intactos los tratamientos más adecuados fueron 2 y 3 mg l-1 de BA.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Hippeastrum is a genus of the Amaryllidaceae family, whose species are highly appreciated for their ornamental and medicinal value due to their beauty and production of alkaloids of utility in the pharmaceutical industry. The goal of this work was to propagate Hippeastrum plants in vitro and massively. For explant disinfection a meticulous protocol was used because of the presence of mucilage and bacteria. Intact and sectioned bulbs were incubated on MS (1962) salts supplemented with thiamine (0,4 mg l-1), sucrose (30 g l-1), solidified with agar (8 g l-1) and incubated under continuous fluorescent light conditions at a temperature of 23 ± 1 °C. Treatments assayed were Benzylaminopurine (BA, 0,5, 1, 2, 3 mg l-1) only, combined with Naphtalenacetic acid (ANA, 0,1 mg l-1) and a control medium without hormonal substances. For sectioned bulbs, BA (0,5, 1 mg l-1) and the control medium proved to be the best treatments that favored shoot formation, while for intact bulbs the best treatments were BA (2, 3 mg l-1).]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Micropropagación]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p style="text-align: center"><font face="Verdana"><b><span style="color: #211E1E">Propagación <i>in vitro </i>de <i>hippeastrum</i> sp.</span></b></font></p>     <p align="center" style="text-align: center"> <font face="Verdana" size="2"> <span style="color: #211E1E; font-weight:700">Teresa Edith Vargas C.*, Maira Oropeza C.* y Eva de  García*</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><span style="color: #211E1E">*  Profesores. Universidad Central de Venezuela. Facultad de Ciencias. Centro de  Botánica Tropical. Instituto de Biología Experimental. Laboratorio de  Biotecnología Vegetal. E-mail: teoriedu@cantv.net.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span style="color: #211E1E">RESUMEN</span></b></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><i> <span style="color: #211E1E">Hippeastrum</span></i><span style="color: #211E1E">  es un género de la familia Amaryllidaceae cuyas especies son muy apreciadas  desde el punto de vista ornamental y medicinal, dada su belleza y producción de  alcaloides de utilidad en la industria farmacéutica. Con la finalidad de lograr  la propagación y multiplicación <i>in vitro </i>de <i>Hippeastrun</i> sp., los  bulbos empleados como explantes se desinfectaron utilizando un protocolo  minucioso debido a la presencia de mucílago y bacterias en el interior de los  mismos. Bulbos intactos y secciones de bulbos, fueron cultivados en el medio con  las sales MS (1962) suplementado con 0,4 mg l<sup>-1 </sup>tiamina, 100 mg l<sup>-1 </sup>de mio-inositol, 30 mg l<sup>-1</sup> de sacarosa, solidificado con 8 g l<sup>-1</sup>  de agar e incubadas bajo condiciones de luz fluorescente continua (50 µmol m<sup>-2</sup>  s<sup>-1</sup>) a temperatura de 23±1 ºC. Se probaron los siguientes  tratamientos: Bencilaminopurina (BA) sola a 0,5, 1, 2, 3 mg l<sup>-1</sup> y  combinada con Ácido Naftalenoacético (ANA) 0,1 mg l<sup>-1</sup> y un medio sin  sustancias de crecimiento. En el caso de secciones de bulbos, 0,5 y 1 mg l<sup>-1</sup>  de BA y el medio control resultaron ser los mejores tratamientos hacia la  formación de brotes, mientras que para los bulbos intactos los tratamientos más  adecuados fueron 2 y 3 mg l<sup>-1 </sup>de BA.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span style="color: #211E1E">Palabras Clave:</span></b><span style="color: #211E1E">  Micropropagación; cultivo <i>in vitro</i>; <i>Hippeastrum</i>.</span></font></p>     <p align="center" style="text-align: center"><font face="Verdana" size="2"><b> <span style="color: #211E1E">Micropropagation of <i> hippeastrum</i> sp.</span></b></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">SUMMARY</span></b></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><i> <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">Hippeastrum</span></i><span lang="EN-US" style="color: #211E1E">  is a genus of the Amaryllidaceae family, whose species are highly appreciated  for their ornamental and medicinal value due to their beauty and production of  alkaloids of utility in the pharmaceutical industry. The goal of this work was  to propagate <i>Hippeastrum</i> plants <i>in vitro</i> and massively. For  explant disinfection a meticulous protocol was used because of the presence of  mucilage and bacteria. Intact and sectioned bulbs were incubated on MS (1962)  salts supplemented with thiamine (0,4 mg l<sup>-1</sup>), sucrose (30 g l<sup>-1</sup>),  solidified with agar (8 g l<sup>-1</sup>) and incubated under continuous  fluorescent light conditions at a temperature of 23 ± 1 °C. Treatments assayed  were Benzylaminopurine (BA, 0,5, 1, 2, 3 mg l<sup>-1</sup>) only, combined with  Naphtalenacetic acid (ANA, 0,1 mg l-1) and a control medium without hormonal  substances. For sectioned bulbs, BA (0,5, 1 mg l<sup>-1</sup>) and the control  medium proved to be the best treatments that favored shoot formation, while for  intact bulbs the best treatments were BA (2, 3 mg l<sup>-1</sup>).</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">Key Words:</span></b><span lang="EN-US" style="color: #211E1E">  Micropropagation; <i>in vitro</i> culture; <i>Hippeastrum</i>.</span></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span style="color: #211E1E">RECIBIDO</span></b><span style="color: #211E1E">:  febrero 20, 2006.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span style="color: #211E1E">INTRODUCCIÓN</span></b></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><span style="color: #211E1E"> Las especies del género<i> Hippeastrum</i> perteneciente a la familia  Amaryllidaceae, son ornamentales muy apreciadas que se caracterizan por tener  flores grandes de llamativos colores, por lo que tienen un lugar muy importante  dentro de la floricultura comercial para la venta como flores de corte o flores  de maceta. Además, por el alto contenido de alcaloides algunas especies de este  género son usadas en la industria farmacéutica. La propagación convencional de  las especies bulbosas se realiza por semillas o por bulbos, sin embargo las  técnicas de cultivo de tejidos vegetales <i>in vitro</i> favorecen el  crecimiento de estas especies, debido a que disminuyen el tiempo requerido para  el ciclo vegetativo, ya que el bulbo alcanza en menor tiempo el tamaño mínimo  para iniciar el ciclo reproductivo (Murashige, 1974; Chen <i>et al</i>., 2005).  Este trabajo tiene como objetivo la propagación <i>in vitro</i> de plantas de <i> Hippeastrum</i> sp.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span style="color: #211E1E">MATERIALES Y MÉTODOS</span></b></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><span style="color: #211E1E">Se  emplearon como explantes bulbos provenientes de plantaciones cultivadas. Los  explantes se lavaron con agua y jabón comercial, se trataron por tres horas con  el fungicida VITAVAX (Carboxim 17% y Thiram17%) y se enjuagaron dos veces con  agua destilada. Se colocaron en cloro comercial al 50% + 2 gotas de Tween 20 (30  minutos), se enjuagaron 2 veces con agua destilada. Un grupo de bulbos se  seccionó en dos y otro grupo se mantuvo intacto, ambos grupos se colocaron en el  antibiótico Cefatoxima 0,1 mg ml<sup>-1</sup> (1hora), sin enjuagar. Los  explantes fueron cultivados en el medio con las sales MS (1962) suplementado con  0,4 mg l<sup>-1 </sup>tiamina, 100 mg l<sup>-1</sup> mio-inositol, 30 g l<sup>-1</sup>sacarosa  y solidificado con 8 g l<sup>-1 </sup>agar. Se probaron los siguientes  tratamientos: Benciladenina (BA) sola a 0,5, 1, 2, 3 mg l<sup>-1</sup> y  combinada con Ácido Naftalenoacético (ANA) 0,1 mg l<sup>-1</sup> y un medio sin  sustancias de crecimiento. Se emplearon 20 explantes por tratamiento. Las  condiciones de cultivo fueron: luz fluorescente (50 µmol m<sup>-2</sup> s<sup>-1</sup>)  y temperatura de 23± 1 ºC.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span style="color: #211E1E">RESULTADOS Y DISCUSIÓN</span></b></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><span style="color: #211E1E">El  método empleado para la desinfección de los explantes fue adecuado, observándose  20% de explantes contaminados por bacterias. Muchas especies bulbosas presentan  en el interior de sus bulbos, mucílago y bacterias que dificultan el  establecimiento de un cultivo <i>in vitro</i> en condiciones asépticas (Hol y  Linde, 1992; Chang <i>et al</i>., 2003; Sochacki y Orlikowska, 2004).</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><span style="color: #211E1E">A  los 45 días de cultivo se observó que el 95% de los bulbos intactos habían  desarrollado un promedio de 2 brotes en los medios con 2 y 3 mg l<sup>-1</sup>  de BA, ver <a href="#CUADRO">Cuadro</a> (<a href="#fig">Figura A</a> y <a href="#fig">B</a>). En el caso de los bulbos seccionados, se aprecio 87% de  explantes desarrollando un promedio de 4 brotes, en el medio sin sustancias de  crecimiento y en los tratamientos con las concentraciones más bajas de  citocinina (0,5 y 1 mg l<sup>-1 </sup>BA) como se muestra en las<a href="#fig">  Figuras C</a> y <a href="#fig">D</a> y <a href="#CUADRO">Cuadro</a>.</span></font></p> <FONT size="+1" color="#211E1E"><FONT size="2" face="Verdana"> <B>     <P   align="center" ><a name="CUADRO">CUADRO</a>. 	</B>Efecto de la Benciladenina (BA) en la formaci&oacute;n de brotes en bulbos intactos y seccionados de <I>Hippeastrum </I>sp. a los 45 d&iacute;as de cultivo.</font></font></P ><FONT size="+1" color="#211E1E"><B><FONT size="+1">      <div align="center"> 	<TABLE border=1 cellspacing=1 id="table1" width="533" ><TR    ><TH   align="left" width="222"  valign="top" height="44" rowspan="2"  ><FONT size="2" face="Verdana"><B>Tipo de explante </TH ><TH   align="center" width="289"  valign="top" height="19" colspan="5"  ><FONT size="+1" color="#211E1E"><B><FONT size="+1"> <font face="Verdana"> 			<font size="2">BA(mg l-1)</font></font></B></TH></TR ><TR    ><TD    align="center" width="83"  valign="middle" height="25"  > <font face="Verdana" size="2">0 </font> </TD ><TD    align="center" width="58"  valign="middle" height="25"  ><font face="Verdana" size="2">0,5</font></TD ><TD    align="center" width="51"  valign="middle" height="25"  > <font face="Verdana" size="2">1</font></TD ><TD    align="center" width="50"  valign="middle" height="25"  > <font face="Verdana" size="2">2</font></TD ><TD    align="center" width="29"  valign="middle" height="25"  > <font face="Verdana" size="2">3 </font> </TD ></TR ><TR    ><TH   align="left" width="222"  valign="bottom" height="36"  ><span style="font-weight: 400"><font face="Verdana" size="2">% de explantes intactos con brotes 			</font></span> </TH ><TD    align="center" width="83"  valign="bottom" height="36"  ><font face="Verdana" size="2">10 </font> </TD ><TD    align="center" width="58"  valign="bottom" height="36"  ><font face="Verdana" size="2">20 </font> </TD ><TD    align="center" width="51"  valign="bottom" height="36"  ><font face="Verdana" size="2">50 </font> </TD ><TD    align="center" width="50"  valign="bottom" height="36"  ><font face="Verdana" size="2">95 </font> </TD ><TD    align="center" width="29"  valign="bottom" height="36"  ><font face="Verdana" size="2">95 </font> </TD ></TR ><TR    ><TH   align="left" width="222"  valign="middle" height="23"  ><span style="font-weight: 400"><font face="Verdana" size="2">% de explantes seccionados con brotes 			</font></span> </TH ><TD    align="center" width="83"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">80 </font> </TD ><TD    align="center" width="58"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">85 </font> </TD ><TD    align="center" width="51"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">70 </font> </TD ><TD    align="center" width="50"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">30 </font> </TD ><TD    align="center" width="29"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">10 </font> </TD ></TR ><TR    ><TH   align="left" width="222"  valign="middle" height="23"  ><span style="font-weight: 400"><font face="Verdana" size="2">Promedio de brotes por explante intactos 			</font></span> </TH ><TD    align="center" width="83"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">0,1 </font> </TD ><TD    align="center" width="58"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">0,2 </font> </TD ><TD    align="center" width="51"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">0,7 </font> </TD ><TD    align="center" width="50"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">1,9 </font> </TD ><TD    align="center" width="29"  valign="middle" height="23"  ><font face="Verdana" size="2">1,75 </font> </TD ></TR ><TR    ><TH   align="left" width="222"  valign="bottom" height="17"  ><span style="font-weight: 400"><font face="Verdana" size="2">Promedio de brotes por explante seccionado 			</font></span> </TH ><TD    align="center" width="83"  valign="bottom" height="17"  ><font face="Verdana" size="2">3,5 </font> </TD ><TD    align="center" width="58"  valign="bottom" height="17"  ><font face="Verdana" size="2">3,75 </font> </TD ><TD    align="center" width="51"  valign="bottom" height="17"  ><font face="Verdana" size="2">3,65 </font> </TD ><TD    align="center" width="50"  valign="bottom" height="17"  ><font face="Verdana" size="2">0,65 </font> </TD ><TD    align="center" width="29"  valign="bottom" height="17"  ><font face="Verdana" size="2">0,1</font></TD ></TR ></TABLE ></div> </font> 	</B></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-align: center"> <a name="fig"> <img border="0" src="/img/fbpe/at/v56n4/art21fig1.gif" width="504" height="747"></a></p>     
<p style="text-align: justify"> <font face="Verdana" size="2"><span lang="EN-US" style="color: #211E1E">Seabrook y Cumming (1977), Slabbert <i> et al</i>. </span><span style="color: #211E1E">(1993), trabajando con  micropropagación de las Amarillidáceas <i>Hippeastrum</i> spp. <i>Hybrids </i>y <i>Crinum macowani </i>encontraron la mayor producción de brotes en bulbos  seccionados cultivados en medios sin citocininas. Cuando se utilizó 0,1 mg l<sup>-1 </sup>de ANA sólo y combinado con 0,5 mg l<sup>-1</sup> de BA se apreció la  formación de raíces y no hubo aumento en la formación de brotes en ninguno de  los casos.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><span style="color: #211E1E">En  esta investigación se observaron diferencias en las respuestas de ambos  explantes con los tratamientos empleados. Los bulbos intactos requirieron de  concentraciones más altas de Benciladenina para que se desarrollaran los brotes,  mientras que los bulbos seccionados formaron brotes en medios con bajas  concentraciones o en ausencia de está hormona vegetal, así mismo se observó que  el promedio de brotes por explante fue mayor en el caso de los bulbos  seccionados.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">BIBLIOGRAFÍA </span></b></font></p>     <!-- ref --><p style="text-align: justify"> <font face="Verdana" size="2"> <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">1. CHANG, H.S., D. CHAKRABARTY, E.J.  HAHN and K.Y. PAEK. 2003. Micropropagation of Calla Lily (<i>Zantedeschia  albomaculata</i>) vía <i>in vitro</i> Shoot Tip Proliferation<i>. In vitro</i>.  39(2):129-135. </span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=249035&pid=S0002-192X200600040002100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2">2. <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">CHEN, J., D. HALL and V. De LUCA.  2005. Effects of the Growth Retardant Paclobutanol on Large-scale  Micropropagation of Daylily (<i>Hemerocallis</i> spp.). <i>In vitro</i>.  41(1):58-63. </span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=249036&pid=S0002-192X200600040002100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2">3. <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">HOL, G.M. and P.C. VAN DER LINDE.  1992. Reduction of parent bilbs. </span><span style="color: #211E1E">Plant Cell,  Tissue and Organ Culture. 31:75-79. </span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=249037&pid=S0002-192X200600040002100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2">4. <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">MURASHIGE, T. and F. SKOOG. 1962. A  revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures.  Physiol. Plant. 15:473-497. </span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=249038&pid=S0002-192X200600040002100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2">5. <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">MURASHIGE, T. 1974. Plant propagation  through tissue cultures. Ann. Rev. Plant Physiol. 25:135-166. </span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=249039&pid=S0002-192X200600040002100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2">6. <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">SEABROOK, J. and B. CUMMING. 1977. The <i>in vitro </i>propagation of Amaryllis <i>(Hippeastrum </i>spp. <i>hybrid</i>s). <i>In vitro</i> 13(12):831-836. </span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=249040&pid=S0002-192X200600040002100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2">7. <span lang="EN-US" style="color: #211E1E">SLABBERT, M., M. De BRUYN, D. FERREIRA  and J. PRETORIUS. 1993. Regeneration of bulblets from twin scales of <i>Crinum  macowanii in vitr</i>o. Plant Cell. 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