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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Micorrizas arbusculares y bacterias promotoras de crecimiento vegetal, biofertilizantes nativos de sistemas agrícolas bajo manejo conservacionista]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Savanna soils have natural low fertility, acid pH and low levels of N, P and organic matter content. Most of these soils are Oxisols or Ultisols and sustain agricultural systems that have been intensively fertilized affecting biological properties of soils. To improve this condition, conservation practices like green manures and addition of slow release phosphate fertilizers (rock phosphates) have been applied in an agroecosystem located in Espino, Guárico state. To observe the impact of this management practice on the soil we monitored Glomalean arbuscular mycorrhizal (AM) fungi and calcium phosphate solubilizing bacteria in Sorghum bicolor rhizosphere after three years of cultivation under these conditions. Most favorable management will increase phosphate solubilizing bacteria populations and intensity of Sorghum mycorrhizal colonization. Sorghum mycorrhizal colonization was low during the first year (2-8% Root Length Mycorrhization, RLM). Former fertilization and management could influence the low colonization capacity of soil natural inoculums. After three years, Sorghum mycorhizal colonization slightly increased (6-15% RLM) and number of spores decreased (169-315 spores/100 g soil). A slight increase of this parameter was only observed when green manure was absent (169-235 spores/100 g soil), meaning that natural vegetation positively affected AM fungal spores abundance. When legume manure was applied, phosphate solubilizing bacteria populations increased in Sorghum rhizosphere (1,8.105 cfu/g soil). Pseudomonas fluorescens, Bacillus circulans y Burkholderia cepacia were identified as acid soils autochthonous phosphate solubilizing bacteria.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Micorrizas arbusculares y bacterias  promotoras de crecimiento vegetal, biofertilizantes nativos de sistemas  agrícolas bajo manejo conservacionista<sup> 1</sup></font></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Marcia Toro*, Ignacio Bazó* y  Marisol López** </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><sup>1 </sup>Trabajo financiado  por FONACIT y del Proyecto de Manejo de Suelos Ácidos del INIA, financiado por  la Agencia Internacional de Energía Atómica (AIEA). Estos resultados forman  parte del proyecto S1-2000000649.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">* Profesores. UCV. Facultad de  Ciencias. Laboratorio de Estudios Ambientales. Instituto de Zoología Tropical,  Caracas 1041-A</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">** Investigadora. INIA-CENIAP).  Maracay-Venezuela. Email: <a href="mailto:mlopez@inia.gob.ve">mlopez@inia.gob.ve</a> </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESUMEN </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los suelos de sabanas poseen  baja fertilidad natural: pH ácido, bajos tenores de P, N y materia orgánica, son  Oxisol o Ultisol con sistemas agrícolas que han recibido fertilización química  para la productividad de los cultivos, agotando las propiedades biológicas de  los suelos. Para mejorar ésta condición se aplicaron prácticas  conservacionistas: siembra de abonos verdes y fertilización química con roca  fosfórica, de lenta solubilidad en un sistema agrícola de Espino, Guárico. El  impacto del manejo sobre la microbiota se uti­lizó como indicadores a  microorganismos tipo biofertilizante: hongos de micorriza arbuscular (Glomales)  y bacterias solubilizadoras de fosfato cálcico; se evaluó su presencia en la  rizósfera de Sorghum bicolor como cultivo tipo en 2 períodos separados por 3  años de manejo. El control más favorable a estos microorganismos propiciará su  presencia en la rizósfera y la colonización por micorrizas del sorgo (MS). La MS  mostró valores bajos (2-8% LRM) durante el 1er año de medición. Posiblemente el  impacto del manejo y la fertilización química disminuyó el potencial infectivo  de micorrizas en el suelo. Al cabo de 3 años la colonización por MS incrementó  levemente (6-15% LRM), y el número de esporas disminuyó (169-315 esporas/100 g  suelo). Un incremento, aunque leve, de este valor (169-235 esporas/ 100 g suelo)  se registró en ausencia de residuos, resaltando la importancia de la vegetación  natural como fuente de colonización por MS. A 3 años de manejo incrementó la  proporción de bacterias solubilizadoras de fosfato cálcico en la rizósfera del  sorgo en presencia de las leguminosas (1,8.105 ufc/g suelo). Se identificaron  las bacterias Pseudo­monas fluorescens, Bacillus circulans y Burkholderia  cepacia como solubilizadoras de fósforo autóctonas de estos suelos. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras Clave:</b>  Micorriza arbuscular; biofertilizantes; rhizobacterias; suelos ácidos; manejo  conservacionista; sorgo. </font></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2"><span lang="EN-US">Arbuscular  mycorrhizae and plant growth promoting rhizobacteria, biofertilizers from  sustainable agricultural systems <sup>1</sup></span></font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><span lang="EN-US"><b>SUMMARY</b> </span></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><span lang="EN-US">Savanna  soils have natural low fertility, acid pH and low levels of N, P and organic  matter content. Most of these soils are Oxisols or Ultisols and sustain  agricultural systems that have been intensively fertilized affecting biological  properties of soils. To improve this condition, conservation practices like  green manures and addition of slow release phosphate fertilizers (rock  phosphates) have been applied in an agroecosystem located in Espino, Guárico  state. To observe the impact of this management practice on the soil we  monitored Glomalean arbuscular mycorrhizal (AM) fungi and calcium phosphate  solubilizing bacteria in Sorghum bicolor rhizosphere after three years of  cultivation under these conditions. Most favorable management will increase  phosphate solubilizing bacteria populations and intensity of Sorghum mycorrhizal  colonization. Sorghum mycorrhizal colonization was low during the first year  (2-8% Root Length Mycorrhization, RLM). Former fertilization and management  could influence the low colonization capacity of soil natural inoculums. After  three years, Sorghum mycorhizal colonization slightly increased (6-15% RLM) and  number of spores decreased (169-315 spores/100 g soil). A slight increase of  this parameter was only observed when green manure was absent (169-235  spores/100 g soil), meaning that natural vegetation positively affected AM  fungal spores abundance. When legume manure was applied, phosphate solubilizing  bacteria populations increased in Sorghum rhizosphere (1,8.105 cfu/g soil).  Pseudomonas fluorescens, Bacillus circulans y Burkholderia cepacia were  identified as acid soils autochthonous phosphate solubilizing bacteria. </span> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><span lang="EN-US"><b>Key  Words: </b>Arbuscular mycorrhiza; biofertilizers; rhizobacterias; acid soils;  sustainable management. </span></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RECIBIDO: </b>agosto 16,  2006 <b>APROBADO: </b>enero 24, 2008 </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">INTRODUCCIÓN </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En Venezuela los ecosistemas de  sabana constituyen las zonas de uso potencial para la agricultura. Sus suelos se  caracterizan por tener baja fertilidad natural: pH ácido, bajos tenores de P y N  y poca materia orgánica. Son en mayoría del tipo Oxisol ó Ultisol  (López-Gutiérrez et al., 2001). El manejo tradicional de estos ecosistemas ha  involucrado la fertilización química con fuentes solubles, el uso de maquinaria  para acondicionamiento del suelo y el establecimiento de monocultivos, esto ha  llevado a un desgaste y erosión de los suelos de sabana. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Una alternativa de manejo para  mejorar el estado nutricional de los suelos es el uso de mecanismos bioló­gicos  que permitan restituir su fertilidad, sin perturbar y/o empeorar su condición (Dodd  et al., 1990). Entre estos mecanismos se podrían nombrar las asociaciones  simbióticas como las micorrizas arbusculares (MA) espe­cializadas en la  captación de fósforo de la solución del suelo; la asociación con Rhizobium,  bacterias gram negativas que se asocian a las leguminosas, especia­lizadas en la  captación del N2 y otros microorganismos habitantes de la rizósfera, con  capacidad de movilizar a través de la solubilización elementos poco abundantes,  como el fósforo (Barea y Azcón-Aguilar, 1983; Kucey et al., 1989). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Con la finalidad de estudiar la  presencia de estos microorganismos en sistemas agrícolas tropicales y determinar  el impacto que podría tener el tipo de manejo aplicado al sistema sobre las  poblaciones, se estudio la riqueza de simbiontes: MA y de bacterias  solubilizadoras de fosfato en una sabana natural ubicada en la localidad de  Espino, estado Guárico. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El manejo conservacionista  aplicado consistió en sembrar coberturas como abonos verdes: leguminosas,  gramíneas, vegetación natural y aplicar fertilización química: roca fosfórica,  fosfato diamónico y una mezcla de azufre con roca fosfórica, en combinaciones  dife­rentes. Una vez cortadas las coberturas sus residuos se incorporan al  suelo, y posteriormente se siembra el cultivo problema: Sorghum bicolor,  cultivar Chaguaramas VII. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Este manejo se aplicó durante  cuatro años, comparando este tiempo con el relacionado al primer año de manejo  la colonización por MA del cultivo, el número de esporas de hongos Glomales y  las poblaciones de bacterias con capacidad de solubilizar fosfatos. El manejo  más favorable a la biología del suelo favorecerá la reproducción de los  propágulos de la MA, la colonización por MA del sorgo y la abundancia de las  bacterias solubilizadoras de fosfato en la rizósfera del cultivo S. bicolor. </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">MATERIALES Y MÉTODOS </font> </b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Área de estudio:</b> una  altiplanicie de mesa en el municipio Espino, Finca &quot;El Silbón&quot;, estado Guárico  aproximadamente entre las coordenadas: 8°32&quot; N y 66°05&quot;. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Establecimiento de las  parcelas experimentales: </b>se sembraron los abonos verdes de la leguminosa  Crota­laria juncea y de la gramínea S. bicolor, cultivar Chaguaramas VII. Estos  abonos se dejaron sobre la superficie del suelo y se incorporan al mismo antes  de sembrar el cultivo indicador: S. bicolor, cultivar Chaguaramas VII. Dicha  incorporación se realizó mediante un pase de rotocultor calibrado a  aproxima­damente 10 cm de profundidad. Posteriormente se apli­caron los  tratamientos de fertilización: T1, T2, T3 y T4 los cuales se especificarán más  adelante. Se utilizó un diseño de bloques al azar y parcelas divididas, con 4  repeticiones para cada tratamiento. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los tratamientos orgánicos o de  abonos verdes fueron los siguientes: </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Sin Residuos (SR):</b> en  esta parcela no se incorporan coberturas utilizadas como abono orgánico. Después  de la cosecha, la biomasa aérea es extraída. El suelo queda descubierto al  inicio del período de lluvias, simulando el sobrepastoreo. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Residuos Gramínea (RG): </b> Consiste en sembrar el S. bicolor cultivar Chaguaramas VII y al llegar la  flora­ción, se corta la biomasa aérea y se deja sobre la super­ficie hasta ser  incorporada al suelo por el rotocultor antes de la siembra del cultivo indicador  para el próximo ciclo. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Residuos de Leguminosa (RL): </b>En ésta parcela la especie C. juncea fue la leguminosa introducida como  abono verde. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Residuos Naturales (RN):</b>  Consiste en cortar la parte aérea de la vegetación natural y dejarla en el suelo  para ser incorporados por el rotocultor. Este tratamiento sólo se aplicó a  partir del segundo año, por lo cual no mostramos sus resultados en el año 1 de  medición. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las parcelas de los  tratamientos SR, RG, RL y RN recibieron la siguiente fertilización inorgánica:  T1: N+K+0P; T2: N+K+P (Roca Fosfórica Riecito); T3: N+K+P (Roca Fosfórica  Acidulada) y T4: N+K+P (Fosfato Diamónico). Adicionalmente se aplicaron las  fuentes de nutrimentos siguientes: Nitrógeno: en forma de urea; Potasio: como  cloruro de potasio; Fósforo: en las formas siguientes, Roca Fosfórica de Riecito  (RFR baja solubilidad), Fosfopoder (RFA, mediana solu­bilidad) y Fosfato  diamónico (FDA, alta solubilidad). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Determinaciones sobre MA y  microbiológicas:</b> Para determinar el impacto de las prácticas agronómicas  apli­cadas durante los años 2001 y 2004 se estudiaron en la rizósfera del sorgo  sembrado en cada parcela: el % longitud de raíz micorrizada (%LRM) según la  tinción de raíces (Phillips y Hayman, 1970) y la cuantificación según Giovanetti  y Mosse (1980), número de esporas hongos glomales/100 g suelo (Sieverding,  1991). También las poblaciones de bacterias solubilizadoras de fosfato (Toro et  al., 2001). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Análisis estadístico:</b> Se  realizó la prueba de homoge­neidad de varianza para analizar las variables de  cuantificación de micorrizas y poblaciones microbianas, aplicando un ANOVA de  una vía. Las diferencias signifi­cativas se evidenciaron colocando un asterisco  al lado de cada resultado.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESULTADOS Y DISCUSIÓN </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La longitud de raíz micorrizada  en S. bicolor mostró valores muy bajos (2-8% LRM) durante el primer año de  medición (<a href="#cuad1">Cuadro 1</a>) e incrementó ligeramente luego de 3  años de aplicación de los tratamientos (<a href="#cuad2">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><b><a name="cuad1">CUADRO 1.</a></b>  Porcentaje de longitud de raíz mico­rrizada (%LRM) y número de esporas viables  en 100 g de suelo rizosférico de Sorghum bicolor para el año 2001.</font></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/at/v58n3/art02cuad1.gif" width="386" height="290" align="center"></p>     
<p align="center"><font face="Verdana" size="2">* Indica diferencias  significativas a través de la prueba de ANOVA por la desviación estándar  registrada. </font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><b><a name="cuad2">CUADRO 2.</a></b>  Porcentaje de longitud de raíz mico­rrizada (%LRM) de Sorghum bicolor y número  de esporas viables en 100 g de suelo para el año 2004, a tres años de  establecido el cultivo.</font></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/at/v58n3/art02cuad2.gif" width="383" height="286" align="center"></p>     
<p align="center"><font face="Verdana" size="2">* Indica diferencias  significativas a través de la prueba de ANOVA por la desviación estándar  registrada. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A pesar del leve incremento  (hasta 15% LRM) de algunos tratamientos después de 3 años de medición (todos los  sembrados en la condición SR), en ninguna de las mediciones se obtuvieron  valores que permitan considerar una colonización notable en las raíces del sorgo  (50% o mayor de LRM). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La colonización radical por MA  puede producirse a partir de los siguientes propágulos infectivos: esporas y  micelio de los hongos Glomales; raicillas de las plantas colonizadas por  micorrizas presentes en el suelo (Sieverding, 1991). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Considerando el bajo valor de %LRM  que alcanzó el sorgo en cada caso (2-8% LRM), se concluye que: 1) la densidad  natural de propágalos infectivos de la MA en la sabana eran originalmente bajos. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2) el manejo agronómico al que  estuvo sometido el agrosistema antes de la implantación del manejo susten­table  al que se somete ahora, habría sido perjudicial a dichos propágulos afectando su  cantidad inicial, no siendo evidente aún el efecto de la aplicación de los  abonos verdes. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La preparación del suelo para  el establecimiento de las parcelas con los tratamientos de abonos verdes y  fertili­zación requirió de un pre-tratamiento que incluyó defo­restación de la  vegetación y acondicionamiento del suelo, lo cual puede causar un impacto  negativo en la abundancia de los propágulos de MA (Toro y López-Hernández,  1998). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Todo lo expuesto anteriormente  junto con el efecto de fertilización química, puede haber disminuido el  poten­cial infectivo de MA en el suelo, incidiendo en el bajo %LRM registrado en  el sorgo en todos los tratamientos (<a href="#cuad1">Cuadro 1</a>). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En sus trabajos, Dodd et al.  (1990), Bethlenfalvay y Linderman (1992), Sieverding (1991) y Tarafdar y Rao  (2002) indicaron que el tipo de manejo agronómico que haya recibido el sistema  puede favorecer o no la abun­dancia de propágulos de la MA. El tenor de este  valor está directamente relacionado con el %LRM de las plantas. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El número de esporas de hongos  Glomales/100 g suelo disminuyó en todos los tratamientos para la medición a los  3 años de manejo, lo cual también indicaría la afec­tación de este propágulo por  el manejo aplicado. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">También es importante  considerar que la presencia de la MA está relacionada con el contenido de  fósforo en el suelo (Barea, 2001; López-Gutiérrez et al., 2001). Por lo general,  bajos contenidos de fósforo en el suelo favorecen el establecimiento de la  simbiosis micorrízica incrementando la colonización de las raíces de las plantas  y favoreciendo la reproducción de las esporas; por el contrario, un alto  contenido de fósforo en el suelo incide en la disminución de la simbiosis en las  raíces de las plantas (Bowen y Rovira, 1999; Barea, 2001). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En este caso, se considera que  los tratamientos de fertili­zación fosforada pudieron afectar el establecimiento  de la MA en el sorgo, lo cual en combinación con la inten­sidad de manejo  agronómico aplicado habría incidido en el bajo % de colonización por MA (2-8%  LRM durante el primer año de medición) y la disminución del número de esporas  (hasta 121 esporas/ g suelo, en el tratamiento T1 con residuo de gramíneas). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Un leve incremento del %LRM del  sorgo se registró en todos los tratamientos SR (<a href="#cuad2">Cuadro 2</a>)  en la segunda me­dición, indicando que aún en ausencia de siembra de abonos  verdes y aplicación de tratamientos de fertili­zación, la micotrofía de la  vegetación natural puede haber favorecido la colonización por MA del cultivo  problema. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El manejo conservacionista  tiene efectos importantes sobre la condición del suelo, que serían más evidentes  a medida que pase el tiempo de aplicación. Desde el punto de vista nutricional,  al incrementarse el contenido de elementos y materia orgánica del suelo. Desde  el punto de vista biológico afectando positivamente a las MA. La siembra de  coberturas, el corte de la parte aérea y su posterior incorporación al suelo  dejando in situ las raíces de las plantas, traerá como consecuencia inmediata el  enriquecimiento progresivo del banco de raicillas coloni­zadas por MA en la zona  de siembra del cultivo. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En la medida en que la planta  tenga una mayor micotrofía ó afinidad por la MA, la colonización por MA de las  raicillas será mayor; por lo tanto, una selección adecua­da de las especies  utilizadas como coberturas o abonos verdes permitirá incrementar el banco de  raicillas en el suelo y su poder de micorrización (Toro y López-Hernandez,  1998). Asimismo, ello permitiría producir un incremento del número de esporas de  los hongos Glomales y de su micelio en la rizósfera de las plantas. En  consecuencia se incrementó el potencial infectivo por MA del suelo, así al paso  del tiempo, en el suelo manejado de manera conservacionista habrá una condi­ción  cada vez más favorable a la colonización por MA de las raíces de las plantas que  vayan a sembrarse como cultivo problema (Sieverding, 1991). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En este caso, muy posiblemente  sea necesario un mayor tiempo de aplicación de las prácticas conservacionistas y  la disminución de las dosis de fósforo aplicadas como fertilizante para observar  un efecto positivo en los propágulos infectivos de la MA en las diferentes  parcelas, particularmente el %LRM y el número de esporas. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Es importante considerar que  aunque las prácticas conservacionistas aplicadas puedan favorecer la presencia  de las MA en los suelos, el conocido efecto positivo sobre los cultivos:  incremento de biomasa y producción de la planta, se lograría aplicando  micorrizas nativas como biofertilizantes (Dodd, 1999; Sylvia, 1999). Ello  permitiría que una mayor cantidad de propágulos infectivos de MA estén en  contacto con la raíz y el establecimiento exitoso de la simbiosis. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aunque el manejo  conservacionista aplicado favoreció algunos de los parámetros biológicos del  suelo consi­derados en este estudio, éste debe venir acompañado de la aplicación  de la MA como inoculante (Sylvia, 1999) y de la regulación de la cantidad de  fósforo en el suelo para facilitar que el cultivo establezca la simbiosis  micorrízica y tenga mayor productividad (Hamel, 1996; Sánchez y Salinas, 1983).  Este hecho comprende la apli­cación de nuevas tecnologías en la agricultura que  redun­darán en la obtención de agroecosistemas sustentables con suelos más sanos  y en beneficio económico para los productores. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A 3 años de manejo se determinó  un incremento en la proporción de bacterias solubilizadoras de fosfato cálcico  en la rizósfera del sorgo (<a href="#cuad3">Cuadro 3</a>). La presencia de este  tipo de bacterias resulta altamente favorecedora para el movimiento de elementos  en el suelo, pues gracias a su capacidad de solubilización de fosfatos  insolubles como el fosfato cálcico, aumenta el contenido de fósforo disponible  en la solución del suelo y mejora la condición nutricional de la planta (Bowen y  Rovira, 1999; Curl y Truelove, 1986; Casanova et al., 2002).</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><b><a name="cuad3">CUADRO 3.</a></b>  Abundancia de bacterias totales y solubilizadoras de fosfato cálcico (ufc/g  suelo) en la rizósfera del cultivo indicador: Sorghum bicolor, antes del corte  en los años 2001 y 2004 (a 1 y 3 años, respectiva­mente, de establecido el  cultivo).</font></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/at/v58n3/art02cuad3.gif" width="576" height="314" align="center"></p>     
<p align="center"><font face="Verdana" size="2">* Indica diferencias  significativas a través de la prueba de ANOVA por la desviación estándar  registrada.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La presencia de las leguminosas  como cobertura incidió en las poblaciones de éstas bacterias. Probablemente la  riqueza en exudados rizosféricos de las leguminosas y/ o en nutrimentos  minerales favoreció este aspecto (Andrade, 1999). Se identificaron las especies  Pseudo­monas fluorescens, Bacillus circulans y Burkholderia cepacia como  bacterias capaces de solubilizar fosfato cálcico. Estas bacterias han sido  descritas por varios autores con alta capacidad solubilizadora de fosfatos (Curl  y Truelove, 1986; Kucey et al., 1989; Kloepper y Beauchamp, 1992) y de eficiente  interacción con las MA (Andrade, 1999; Toro et al., 1997). Su presencia en los  suelos estudiados indicarían la idoneidad de su utili­zación como  biofertilizantes en los agroecosistemas tropicales de suelos ácidos.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">CONCLUSIONES </font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<blockquote> 	    <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">-A tres años de aplicación  	del manejo conserva­cionista, los parámetros %LRM y número de esporas de  	hongos Glomales no se favorecieron significati­vamente. Posiblemente se  	requiera un mayor lapso de tiempo de observación para que estos parámetros  	muestren un incremento. </font></p> 	    <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">-El manejo aplicado  	favoreció la presencia de bacterias solubilizadoras de fosfato en la  	rizósfera de S. bicolor, las cuales pudieron ser identificadas y ais­ladas  	para su futura utilización como biofertilizantes. </font></p> 	    <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">-La presencia de estas  	bacterias en la rizósfera de los cultivos es beneficiosa, pues favorecen la  	movi­lización de nutrimentos poco disponibles como el fósforo para el  	consumo de la planta. Estos resultados permiten sugerir la aplicación de un  	manejo conservacionista integrado que involucre el mejora­miento de las  	condiciones biológicas del suelo, la aplicación de MA como inoculante en  	combinación con la disminución de los tenores de fósforo en el suelo a  	través de la fertilización química. </font></p> 	    <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">-Una combinación de la  	fertilización química y bioló­gica que permita evidenciar el efecto de los  	microor­ganismos y una racional aplicación de las enmiendas químicas  	conducirán hacia el verdadero manejo sustentable de los agroecosistemas. 	</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">BIBLIOGRAFÍA </font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Andrade, G. 1999.  Interacciones microbianas en la rizósfera. In: Soil fertility, soil biology and  plant nutrition interrelationships. Siqueira, J.; Moreira, F.; Lopes, A.;  Guilherme, L.; Faquin, V.; Furtini Neto, A. and Carvalho, J. Editors. Sociedade  Brasileira de Ciência do solo, Lavras, Brasil. 551-576 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263080&pid=S0002-192X200800030000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Barea, J. M. 2001.  Interacciones ecológicas de los microorganismos en el suelo y sus implicaciones  en agricultura. In: Labrador Moreno, J. y Altieri, M.A. Agroecologìa y  desarrollo. Aproximación a los funda­mentos agroecològicos para la gestión  sustentable de agroecosistemas mediterráneos. Ediciones Mundi­prensa, Cáceres,  165-184 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263081&pid=S0002-192X200800030000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Barea, J. M and C. Azcón-Aguilar.  1983. Mycorrhizas and their significance in nodulating nitrogen-fixing plants.  Advances in Agronomy 36:1-54 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263082&pid=S0002-192X200800030000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Bethlenfalvay, G. J. and R.  G. Linderman. 1992. Mycorrhizae in sustainable agriculture. ASA. Spec. Publ,  Madison, Wisconsin. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263083&pid=S0002-192X200800030000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Bowen, G. D. and A. D.  Rovira. 1999. The rhizosphere and its management to improve plant growth.  Advances in Agronomy 66:1-102 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263084&pid=S0002-192X200800030000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Casanova, E., A. M. Salas  and M. Toro. 2002. The use of nuclear and related techniques for evaluating the  agronomic effectiveness of phosphate fertilizers, in particular rock phosphate,  in Venezuela: initial available P and its changes in soils amended with rock  phosphate. Nutrient Cycling in Agroecosystems. 63:13-20. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263085&pid=S0002-192X200800030000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Curl, E.A. and B. Truelove.  1986. The rhizosphere. Springer-Verlag (Eds). Berlín. 323 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263086&pid=S0002-192X200800030000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Dodd, J. C. 1999. Recent  advances in understanding the role of arbuscular micorrizas in plant production.  In: Soil fertility, soil biology and plant nutrition interrelationships.  Siqueira, J.; Moreira, F.; Lopes, A.; Guilherme, L.; Faquin, V.; Furtini Neto,  A. and Carvalho, J. Editors. Sociedade Brasileira de Ciência do solo, Lavras,  Brasil. 687-704 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263087&pid=S0002-192X200800030000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Dodd. J.C., I. Arias, I.  Koomen, D.S. Hayman. 1990. The management of populations of vesicular  arbus­cular mycorrhizal fungi in acid-infertile soils of a savanna ecosystem.  Plant and Soil. 122:229-240. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263088&pid=S0002-192X200800030000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Giovanetti. M., B. Mosse.  1980. An evaluation of techniques for measuring vesicular-arbuscular infection  in roots. New Phytologist. 84:489-500. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263089&pid=S0002-192X200800030000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Hamel, C. 1996. Prospects  and problems pertaining to the management of arbuscular mycorrhizae in  agri­cultura. Agric. Ecosyst. Environm. 60:197-210. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263090&pid=S0002-192X200800030000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Kloepper, J.W., C.  Beauchamp. 1992. A review of issues related to measuring colonization of plants  roots by bacteria. Canadian Journal of Microbiology 38:1 219-1 232. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263091&pid=S0002-192X200800030000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Kucey R. M.N., H.H.  Janzen, Leggett, M.E. 1989. Microbially mediated increases in plant-available  phosphorus. Advances in Agronomy. 42:199-228. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263092&pid=S0002-192X200800030000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. López-Gutiérrez. J.C., M.  Toro, D. López-Hernández. 2001. Micorrizas arbusculares y actividades  enzi­máticas en la rizósfera de Trachypogon plumosus Ness en tres sabanas de  suelos ácidos. Acta Biológica Venezuelica. 21:49-57. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263093&pid=S0002-192X200800030000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Phillips. J.M., D.S.  Hayman. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and  vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection.  Transactions of the British Mycological Society. 55:158-161. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263094&pid=S0002-192X200800030000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Sánchez. P., G. Salinas.  1983. Suelos ácidos y estra­tegias para su manejo con bajos insumos en América  Tropical. SCCS. Bogota, Colombia. 93 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263095&pid=S0002-192X200800030000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Sieverding, E. 1991.  Vesicular-Arbuscular mycorrhiza management in tropical agrosystems. GTZ, Germany,  371 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263096&pid=S0002-192X200800030000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Sylvia, D. 1999.  Fundamentals and applications of arbuscular mycorrhizae: a biofertilizer  perspective. In: Soil fertility, soil biology and plant nutrition  interrelationships. Siqueira, J.; Moreira, F.; Lopes, A.; Guilherme, L.; Faquin,  V.; Furtini Neto, A. and Carvalho, J. Editors. Sociedade Brasileira de Ciência  do solo, Lavras, Brasil. 705-724 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263097&pid=S0002-192X200800030000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Tarafdar, J. C. and A. Rao.  V. 2002. Possible Role of Arbuscular Mycorrhizal Fungi in Development of Soil  Structure. In: Arbuscular Mycorrhizae. Interac­tions in Plants, Rhizosphere and  Soils. Sharma, A.K. and Johri, B.N. Editores. Science Publishers, Inc. Enfield,  USA. 186-206 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263098&pid=S0002-192X200800030000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. Toro. M., Azcón, R., J.M. Barea. 1997. Improvement of Arbusular Mycorrhizal development by inocu­lation  with Phosphate Solubilizing Rhizobacteria to benefit rock phosphate  bioavailability (32P) and nutrient cycling. Applied and Environmental  Micro­biology. 63(11):4 408-4 412. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263099&pid=S0002-192X200800030000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Toro. M., Blones, J., I.  Hernández-Valencia. 2001. Di­námica del fósforo y actividad biológica en las  micorrizósferas de dos ecosistemas adyacentes con vegetación y suelos  contrastantes. Acta Biol. Venez. 21(2):21-28. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=263100&pid=S0002-192X200800030000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span style="font-family: Verdana"><font size="2">22. Toro,  M. y D. López-Hernández. 1998. Potencialidades del manejo de las Micorrizas  Arbusculares para el desarrollo sostenido de los sistemas agrícolas de ba­jos  insumos del ecotono sabana-bosque amazónico. In: Carrillo, R J. (Compilador).  Memorias del IV Congreso Interamericano sobre el medio ambiente realizado en  Caracas, Venezuela, entre el 8 y 11 de diciembre de 1997. 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