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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Importancia de las especies de Trichoderma para el control de Macrophomina phaseolina en las áreas agrícolas del estado Aragua, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Fungi of the genus Trichoderma deserve maximum attention as biocontrol agents because they demonstrated their high antagonistic power plant pathogens. The objective of this research was to identify Trichoderma species isolated from soil samples of bean growing areas, corn, tomato and sorghum in Aragua, Carabobo and Guarico and antagonistic value was found in the control of Macrophomina phaseolina. The samples were processed using the method of agar plate dilution, the isolates obtained were purifi ed on PDA, its determination was performed at the species level. To do this, the isolates were grown for 3-4 d and 6-8 d being examined macro and microscopically. Twelve isolates were obtained, nine were related to the species Trichoderma harzianum (06146, 06143, FTSC05, JCFA05 , 06153, I9, J10, and San Miguel 06151); and the remaining isolates belong to the species T. crassum (06141), T. koningiopsis (06152) and T. longibrachiatum (Samán Mocho) respectively. Variability in vitro was found in the control exercised by each isolated against M. phaseolina, depending on the percent inhibition of sporlation (PIE) and growth inhibition (PIC). The isolated belonging to T. crassum 06141 was the most effective in controlling M. phaseolina, and showed higher PIE of 91.02% and 91.50% of PIC compared to other isolates, which had an inhibitory effect with respect to the fungal pathogen in the range of 65.09 to 84.69% for the PIE and 67.33 to 77.48 for the PIC.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Importancia de las especies  de Trichoderma para el control de Macrophomina  phaseolina en las áreas agrícolas del estado Aragua, Venezuela</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><b>  Importance of Trichoderma species for control of Macrophomina phaseolina  in agricultural areas of Aragua state, Venezuela</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Luis A. Salazar<sup>1</sup>, Glenda Y. Aponte<sup>1</sup>, María de J. Alcano<sup>2</sup>,  Nelly H. Sanabria<sup>2</sup> y Jessica J. Guzmán<sup>2</sup></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  <sup>1</sup> Investigadores. Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA-CENIAP).  Maracay 2101. Estado Aragua. Venezuela.</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  <sup>2</sup> Profesores. Universidad Central de Venezuela (UCV). Facultad de Agronomía.  Maracay 2105. Estado Aragua. Venezuela.  Correos electrónicos: <a href="mailto:luisagronomia@gmail.com"> luisagronomia@gmail.com</a>, <a href="mailto:gaponteve@gmail.com"> gaponteve@gmail.com</a>, <a href="mailto:salabrian@cantv.net"> salabrian@cantv.net</a></font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los hongos del género  Trichoderma merecen máxima  atención como agentes biocontroladores debido a que  se demostró su alto poder antagónico en patógenos  vegetales. El objetivo de esta investigación fue identifi  car las especies de Trichoderma aisladas de suelos  en zonas productoras de caraota, maíz, tomate y  sorgo en los estados Aragua, Carabobo y Guárico,  para comprobar su valor antagónico en el control  de Macrophomina phaseolina. Las muestras fueron  procesadas utilizando el método de dilución en placa  de agar, los aislamientos obtenidos fueron purifi cados  sobre PDA, se realizó su determinación a nivel de  especie. Para ello, fueron crecidos los aislamientos por  3 a 4 días y 6 a 8 días, siendo examinados macro  y microscópicamente. Doce aislamientos fueron  obtenidos, nueve fueron referidos a la especie  Trichoderma harzianum (06146, 06143, FTSC05,  JCFA05, 06153, I9, J10, 06151 y San Miguel);  y los aislamientos restantes pertenecen a las  especies T. crassum (06141), T. koningiopsis (06152)  y T. longibrachiatum (Samán Mocho), respectivamente.  Se encontró variabilidad in vitro en cuanto al control  ejercido por cada aislado contra M. phaseolina en  función del porcentaje de inhibición de esporulación  (PIE) y del porcentaje de inhibición de crecimiento  (PIC). El aislado 06141 perteneciente a T. crassum  fue el más efi ciente en el control de M. phaseolina, ya  que presentó mayor PIE de 91,02 y 91,50% del PIC en  comparación a los demás aislados, los cuales tuvieron  un efecto inhibitorio con respecto al hongo patógeno  en el rango de 65,09 a 84,69% para el PIE y de 67,33  a 77,48% para el PIC.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Palabras clave: </b>control biológico, in vitro, taxonomía  de hongos, patógeno, inhibición de esporulación,  inhibición de crecimiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Fungi of the genus Trichoderma deserve maximum  attention as biocontrol agents because they demonstrated  their high antagonistic power plant pathogens.  The objective of this research was to identify Trichoderma  species isolated from soil samples of bean growing  areas, corn, tomato and sorghum in Aragua, Carabobo  and Guarico and antagonistic value was found in the  control of Macrophomina phaseolina. The samples were  processed using the method of agar plate dilution, the  isolates obtained were purifi ed on PDA, its determination  was performed at the species level. To do this,  the isolates were grown for 3-4 d and 6-8 d being examined  macro and microscopically. Twelve isolates were  obtained, nine were related to the species Trichoderma  harzianum (06146, 06143, FTSC05, JCFA05 , 06153,  I9, J10, and San Miguel 06151); and the remaining  isolates belong to the species T. crassum (06141),  T. koningiopsis (06152) and T. longibrachiatum (Samán  Mocho) respectively. Variability in vitro was found  in the control exercised by each isolated against  M. phaseolina, depending on the percent inhibition of  sporlation (PIE) and growth inhibition (PIC). The isolated  belonging to T. crassum 06141 was the most effective  in controlling M. phaseolina, and showed higher PIE of  91.02% and 91.50% of PIC compared to other isolates,  which had an inhibitory effect with respect to the fungal  pathogen in the range of 65.09 to 84.69% for the PIE  and 67.33 to 77.48 for the PIC.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Key words:</b> biological control, fungus taxonomy,  in vitro, pathogens, inhibition of sporlation, growth  of inhibition.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Recibido:</b> 03/05/2011 <b>Aprobado:</b>  30/04/2013</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las especies del género Trichoderma se  encuentran ampliamente distribuidas en el  mundo y están presentes en diferentes zonas  y hábitats, especialmente en aquellos con altos  contenidos de materia orgánica o desechos  vegetales en descomposición, así mismo en  residuos de aquellos cultivos que son atacados  por otros hongos. Su desarrollo es favorecido  por la presencia de altas densidades de raíces,  las cuales son colonizadas rápidamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Esta capacidad de adaptación a diversas  condiciones ambientales y sustratos confiere  a Trichoderma la posibilidad de ser utilizado  como agente biocontrolador en diferentes suelos,  cultivos, climas y procesos tecnológicos. En  Venezuela, existen varios productos comerciales  con base en Trichoderma spp., utilizados  en el control de enfermedades en plantas  (Anzola, 2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En este sentido, las especies de hongos que  pertenecen a Trichoderma son plenamente  caracterizadas por tener aplicación en el ámbito  agrícola, fundamentalmente para el control  biológico de otros organismos patógenos que  atacan a los cultivos. Benhamou et al. (1993)  señalaron que las especies de Trichoderma  tienen la capacidad de afectar negativamente a  los hongos fitopatógenos en diferentes estados  de desarrollo, siendo capaces de reducir su  crecimiento y esporulación al actuar sobre sus  estructuras (hifas, conidios y esclerocios). Por  ello, se consideran prometedoras para el control  biológico de enfermedades en plantas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En esta investigación se planteó como objetivo,  determinar especies de Trichoderma aisladas  de muestras de suelo de zonas productoras de  caraota, maíz, tomate y sorgo, en los estados  Aragua, Carabobo y Guárico, con el fin de evaluar  su acción en el control del hongo Macrophomina  phaseolina (Tassi) Goid, que afecta al cultivo de  caraota.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  MATERIALES Y MÉTODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Muestreo de suelos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se tomaron muestras de suelo en ocho zonas  productoras de caraota, maíz, tomate y sorgo  en los estados Aragua, Carabobo y Guárico.  Se recolectó aproximadamente 1 kg de suelo  cercano a la rizósfera de las plantas, que estaba  en condiciones de capacidad de campo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Aislado de hongos a partir de muestras de  suelo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En solo 10 g de suelo de cada uno de los  sitios muestreados, se agregó 90 ml de agua  destilada estéril contenidos en una fiola. A partir  de esta solución madre, se realizaron diluciones  seriadas en tubos de ensayo que contenían  9 ml de agua destilada estéril, hasta llegar a  concentraciones de 10-2, 10-3 y 10-4 [UFC/ml].  De cada una de las diluciones obtenidas se  colocó 1 ml por placa de Petri de 100 x 15 mm,  luego se agregó 15 ml de medio de cultivo papa  dextrosa agar (PDA) derretido a temperatura  moderada, el cual se extendió en la placa. Se  realizaron cuatro réplicas por cada dilución. Las  cajas Petri así preparadas se incubaron a una  temperatura de 28 °C por un período de 24 a 48 h.  Seguidamente, se tomó parte del hongo en  crecimiento para hacer cultivos monospóricos y  obtener cultivos puros que fueron conservados  en tubos con PDA a 5 °C.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Determinación a nivel específico de los  aislados de Trichoderma obtenidos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para ello se utilizaron aislados sobre PDA de 3 a  4 días y de 6 a 8 días de crecimiento. Se realizaron  observaciones macroscópicas y microscópicas,  describiendo los siguientes aspectos de la  colonia: color del micelio, tinción de la placa  agarificada, producción de pústulas y masas de  conidios y formación de anillos concéntricos.  También, con la ayuda de un microscopio  compuesto Leica DM 1000 se registraron las  características de las estructuras fúngicas con  valor taxonómico incluyendo el tipo de conidióforo,  número de células conidiógenas (fiálides) por  verticilo, presencia de fiálides intercaladas,  forma, largo y ancho en micromilímetro (&#956;m) de  las fiálides; forma, largo y ancho en &#956;m, color  y ornamentación de los conidios; presencia  y forma de clamidosporas. Las muestras se  observaron con un aumento de 1000 X. Las  mediciones de longitud se efectuaron utilizando  un ocular con barra micrométrica, y una tabla de  conversión a micras.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para la determinación se realizó el estudio comparativo  de las descripciones de los hongos  investigados con las características de las  especies de Trichoderma presentadas por Rifai  (1969) y Bisett (1991 a, b, y c).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Evaluación in vitro de la capacidad antagónica  de los aislados de Trichoderma spp., con  respecto a Macrophomina phaseolina</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En los bordes de cada una las placas de Petri  con PDA y en sitios equidistantes se colocó  un disco de agar de 5 mm de diámetro con  micelio de M. phaseolina de 5 días de edad  (suministrada por la colección de hongos del  laboratorio de la Clínica de Enfermedades de  Plantas, Universidad Central de Venezuela,  previa comprobación de su patogenicidad)  y un disco de agar con micelio del aislado de  Trichoderma a investigar de 3 días de edad.  El testigo consistió solamente en un disco con  micelio de M. phaseolina.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se hicieron cinco repeticiones por aislado, las  placas así preparadas se incubaron a 28 °C  durante 6 días. Se determinó el porcentaje  de inhibición de crecimiento (PIC), se midió  el largo y el ancho de cada tratamiento (hongo  patógeno) con una cinta métrica en centímetros  y el porcentaje de inhibición de esporulación  (PIE) en el patógeno. La estimación de PIC y  PIE se realizó según Vincent, como lo sugiere  Latiegue (1990), indicada en las ecuaciones 1 y  2, respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  PIC = 100 (C –T)/ C&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; (1)  </font></b></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  PIE = 100 (C –T)/ C&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; (2)</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  donde:  </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  C: crecimiento micelial del control.  </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  T: crecimiento o esporulación del tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se aplicó un diseño experimental completamente  aleatorizado con cinco repeticiones (un control de  cada tratamiento), donde la unidad experimental  fue cada placa de Petri del antagonista con el  respectivo hongo patógeno y el hongo patógeno  solo, los análisis se realizaron por la vía  paramétrica para analizar la varianza (ANAVAR),  previa comprobación de la distribución normal  de los datos, mediante la prueba W de Shapiro-  Wilks (1965), la homocedasticidad de las  varianzas mediante la prueba &#967;2 de Bartlett  (1937). Las comparaciones múltiples de medias  se realizaron mediante el uso de las pruebas  HSD de Tukey con un nivel de significancia  &#945;= 0,05; utilizando el programa STATISTICA  versiones 7 y 8 (2002-2007) para Windows.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  RESULTADOS Y DISCUSIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los resultados obtenidos para la identificación  de las especies de Trichoderma presentes en  las muestras de suelos analizados, se señalan  en el <a href="#c1">Cuadro 1</a>. Se obtuvieron doce aislados de Trichoderma spp., de los cuales nueve fueron  referidos a T. harzianum Rifai y el resto a las  especies T. longibrachiatum Rifai, T. koningiopsis  y T. crassum (Bissett, 1991a).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Es importante resaltar, haber encontrado  únicamente en el cultivo del maíz a la especie T.  longibrachiarum. Particularmente, esta especie  fue identificada en suelos del estado Carabobo,  razón por la cual debe tomarse en consideración  su asociación con un cultivo tan importante como  el maíz. Del mismo modo, es interesante señalar  que se encontró coexistencia de especies  solo entre T. harzianum y T. koningipsis en los  suelos de Tucutunemo. Se reporta la presencia  de T. harzianum en varios cultivos, mientras  que T. crassum y T. koningiopsis solamente  aparecieron asociados al cultivo de la caraota.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Pareciera existir una especificidad de especies  asociada a los cultivos de maíz, sorgo y tomate,  mientras que en el caso de la caraota, se  consigue la asociación con varias especies  de Trichoderma. Esto pudiera ser de relevancia  al momento de diseñar estrategias de  control biológico en estos cultivos utilizando  Trichoderma.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se logró identificar los aislamientos de  Trichoderma spp., utilizando los criterios  de identificación taxonómica y tomando en  consideración las características fundamentales  descritas por (Bissett, 1991 a,b,c; Rifai, 1969). En  el <a href="#c2">Cuadro 2</a>, se pueden observar las características  macroscópicas y microscópicas de los aislados de  las especies de Trichoderma spp.</font></p>     <p align="justify"><a name="c1"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art01.1.jpg" width="590" height="395"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En las <a href="#f1">Figuras 1</a>, <a href="#f2">2</a>, <a href="#f3">3</a> y  <a href="#f4">4</a> se muestran algunas  características de crecimiento de T. harzianum,  T. crassum, T. koningiopsis, T. longibrachiatum,  respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Evaluación in vitro de la capacidad antagónica  de los aislados de Trichoderma spp., con  respecto a Macrophomina phaseolina</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Al realizar el análisis de los datos mediante la  prueba Shapiro-Wilk (1965), se obtuvo un valor  w=0,93, indicando la distribución normal de los  datos. La homocedasticidad de las varianzas se  estimó mediante el parámetro &#967;2 de Bartlett, dando  un valor de 3,97, señalando que las varianzas  son homogéneas y que las fuentes de variación  son las mismas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Una vez establecida la normalidad de la  distribución de los datos, se realizó el ANAVAR  para los datos de PIC y PIE. En ambos casos  se obtuvieron diferencias significativas entre  los tratamientos, indicando que los aislados  estudiados presentaron un poder antagónico  diferente en el control de M. phaseolina. En virtud  de las diferencias observadas, se procedió  a clasificar los aislados para establecer los  diferentes niveles de antagonismos o poder de  control que exhibieron.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para ello se realizó la prueba DSH de Tukey,  que permitió evidenciar la existencia de cuatro  grupos (<a href="#f5">Figura 5</a>). Como se observa, el aislado  06141 perteneciente a la especie T. crassum,  presentó el mayor PIC (91,50%), conformando  el primero de los grupos en cuanto a efectividad  de control.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Un segundo grupo se ubicó el aislado 06152  identificado como T. koningiopsis con un PIC de  77,48%; seguido de un tercer grupo conformado  por los aislados I9, 06151, J10, 06153, 06143  y 06146, todos agrupándose en la especie de  T. harzianum y un PIC de 74,31 hasta 69,86,  notándose una pequeña diferencia en el control  de esta especie.</font></p>     <p align="justify"><a name="c2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art01.2.jpg" width="544" height="677"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Nombre del  aislamiento  Características  macroscópicas Características microscópicas Especies de  Trichoderma  06143  06146  FTSC05  JCFA05  06513  I9  J10  06151  San Miguel  Crecimiento moderado a  rápido, micelio algodonoso,  anillos concéntricos,  no tiñó el medio,  no presentó pústulas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Hifas hialinas, conidióforo con ramificación  intricada, de una longitud de 123,5 x 3,8 &#956;m y una  base de 3.8 &#956;m, fiálides de forma ampuliforme a  fl ageliforme (4,75 x 3,8 &#956;m), con una base de  2,85 &#956;m, conidios globosos a subglobosos, de  pared lisa, color verde oliva, longitud de 3,8 a  4,75 x 2,85 a 3,8 &#956;m, abundantes clamidosporas  terminales e intercalares, de forma globosa a  subglobosa con pared hialina, sus dimensiones  fueron 9,5 a 11,4 x 8,55-9,5 &#956;m.  T. harzianum  06141  Crecimiento rápido, micelio  algodonoso, formación  de exudado color verde  claro, presentó pústulas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Hifas con septos, hialinas, conidióforo con  ramificación cerrada, y una longitud de 323 x  3,8 &#956;m de 2 a 5 fialides por verticilo, de forma  ampuliforme a fl ageliforme (8,55 x 2,85 &#956;m) con  base de 1,9 &#956;m, presentó extensiones fértiles  y estériles, conidios elipsoidales, de pared  lisa, color verde pálido, de longitud 4,75 a 5,7  x 3,8 a 4,75 &#956;m, demostró poca producción de  clamidosporas terminales e intercalares, de forma  subglobosa, con pared lisa, sus dimensiones  fueron de 14,25 x 4,75 &#956;m.  T. crassum  06152 Crecimiento rápido, micelio  algodonoso.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Hifas hialinas, conidióforos con ramificación  abierta, fiálides fl ageliformes (9,5 a 11,4 x 0,95  a 1,9 &#956;m), conidios subglobosos, color verde  oliva, 2,85 x 1,9 &#956;m. Clamidosporas terminales  globosas a subglobosas, lisas, hialinas, 6,65 x  6,65 &#956;m.  T. koningiopsis  Samán  Mocho  Tiñó el medio de color  amarillo, formando agregados  de conidios.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Hifas hialinas, conidióforo con ramificación  cerrada, de longitud 4,95 x 2,85 &#956;m y una base de  2,85 &#956;m, de 3 a 5 fialides por verticilos de forma  ampuliforme a fl ageliforme 5,7 x 1,9 &#956;m y una base  de 1,9 &#956;m, presentó fialides intercalares de forma  ampuliforme, de longitud 2,85 x 1,9 &#956;m y una  base 0,95 &#956;m, conidios de forma subglobosos a  elipsoidales de pared lisa, color verde oliva, de  longitud 2,85 x 1,9 &#956;m.  T. longibrachiatum</font></p>     <p align="justify"><a name="f1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art01.3.jpg" width="532" height="175"></p>     
<p align="justify"><a name="f2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art01.4.jpg" width="537" height="162"></p>     
<p align="justify"><a name="f3"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art01.5.jpg" width="538" height="152"></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="f4"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art01.6.jpg" width="547" height="159"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el cuarto grupo se encuentran los aislados  San Miguel, FTSC05, JCFA05 y Samán Mocho  con valores comprendidos entre 67,33 y 68,41%,  respectivamente; los tres primeros perteneciente  a la especie T. harzianum y el último a  T. longibrachiatum.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Con relación al PIE, las pruebas de medias de  Tukey demostraron la existencia de cinco grupos  (<a href="#f6">Figura 6</a>) donde el primer grupo estuvo conformado  por los aislados 06141 (T. crassum) y  06143 (T. harzianum), los cuales presentaron  un PIE de 91,02 y 84,69, respectivamente. Un  segundo grupo conformado únicamente por  el 06146 (T. harzianum) mostrando un PIE de  83%; el tercer grupo que incluye a J10, JCFA05,  06153, San Miguel, I9, FTSC05 (todos identifi  cados como T. harzianum) y Samán Mocho  (T. longibrachiatum) con valores del PIE entre  75,18 y 79,44%, el cuarto grupo al aislado  06152 (T. koningiopsis); un quinto grupo al  06151 (T. harzianum) con un PIE de 65,09%.  El aislado 06141 perteneciente a la especie  T. crassum, fue el hongo más eficiente en el control  de M. phaseolina, quien fue el que presentó mayor  PIC y PIE, 91,50 y 91,02%, respectivamente.  Otros aislados de Trichoderma spp., promisorios  en el control de M. phaseolina fueron los 0641,  06146 y J10, que mostraron menores valores  del PIC y mayores valores del PIE.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Estos resultados coinciden con los señalados por  Pineda y Gonnella (1988), quienes encontraron  dos aislados de Trichoderma capaces de inhibir  el desarrollo y producción de esclerocios de  M. phaseolina obtenidos de plantas de ajonjolí.  Sobre la base, los aislados más eficientes en el  control de M. phaseolina fueron 06141, 06143,  06146 y J10 (<a href="#f6">Figura 6</a>), presentando menores  valores del PIC y mayores valores del PIE; esto  es lo más importante en un antagonista eficiente  ya que los esclerocios representan la principal  forma de propagación en el campo del patógeno.  Por su parte, Watanabe et al. (1967) demostraron  la existencia de una relación directamente  proporcional entre la incidencia de la enfermedad  y la cantidad de esclerocios en el  campo (densidad de inóculo). En cuanto a los  principales mecanismos de acción observados  en esta investigación se encuentra la antibiosis  (Grondona et al., 1995), quienes señalaron a  Trichoderma capaz de inhibir el crecimiento  y esporulación de diversos patógenos sin  necesidad de que exista contacto entre las hifas  de Sclerotium sp. y Sclerotinia sp.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Igualmente, se demostró que T. koningiopsis  produce metabolitos volátiles que inhibieron el crecimiento  de Fusarium oxysporum f sp. lycopersici, y  en segundo lugar se pudo observar el crecimiento  del aislado de Trichoderma sobre el patógeno.</font></p>     <p align="justify"><a name="f5"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art01.7.jpg" width="562" height="295"></p>     
<p align="justify"><a name="f6"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art01.8.jpg" width="571" height="316"></p>     
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<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  De las zonas productoras de caraota, maíz, tomate  y sorgo en los estados Aragua, Carabobo y Guárico  se identificaron a nivel de especie, si va de doce  aislados de Trichoderma, nueve fueron referidos a  T. harzianum y tres aislados; referidos a T. crassum,  T. longibrachiarum y T. koningiopsis. En el caso de  sorgo y tomate, se encontró una especie asociada  a cada cultivo que fue T. harzianum; dos especies  se encontraron asociadas a caraota y solo hubo  coexistencia entre T. harzianum y T. koningiopsis y  para el cultivo de maíz solo se encontró la especie  de T. longibrachiatum.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el PIE en el patógeno se demostró la existencia  de cinco grupos; el primero conformado por los  aislados 06141 y 06143, los cuales presentaron  un valor de 91,02 y 84,69, respectivamente; un  segundo por el 06146 con un 83%; el tercero que  incluye a J10, JCFA05, 06153, San Miguel, I9,  FTSC05 y Samán Mocho con valores del PIE  entre 75,18 y 79,44%, respectivamente; el cuarto  al 06152 (T. koningiopsis); un quinto al 06151  (T. harzianum) con un PIE de 65,09%. El aislado  06141, perteneciente a la especie T. crassum,  fue el hongo con mayor eficiencia en el control  de M. phaseolina.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los aislados de Trichoderma inhibieron el  desarrollo y producción de esclerocios de  M. phaseolina donde el 06141 presentó el mayor  PIC (91,50%), un segundo grupo se encontró  el 06152 con 77,48%, seguido de un tercer  grupo conformado por los aislados San Miguel,  FTSC05, JCFA05 y Samán Mocho, con valores  comprendidos entre 67,33 y 68,41%.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>LITERATURA CITADA</b></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=283747&pid=S0002-192X201200010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> M. S. 1937. Properties of sufficiency and statistical tests.  Proceedings of the Royal Statistical Society .160(901):268-282.</font>    <p> <font size="2" face="Verdana">2. Benhamou, N. and I. Chet. 1993. Hyphal  interactions between Trichoderma harzianum and Rhizoctonia solani:  Ultrastructure and gold Cytochemistry of the mycoparasitic process.  Phytopathology. 83(10):1.062-1.071.</font></p> <font size="2" face="Verdana">3. Bissett, J. 1991a. A revision of the genus  Trichoderma II. Infrageneric classification. Canadian Journal of Botany.  69(11):2.357-2.372.</font>    <p><font size="2" face="Verdana">4. Bissett, J. 1991b.  A revision of the genus Trichoderma III. Section Pachybasium. Canadian Journal  of Botany. 69(11):2.373-2.414.</font></p> <font size="2" face="Verdana">5. Bissett, J. 1991c. A revision of the genus  Trichoderma IV. Aditional notes on section Longibrachiatum. Canadian Journal of  Botany. 69(11):2.418-2.420.</font>    <p><font size="2" face="Verdana">6. Grondona,  I., M. Hermosa, M. Gomis, P. García, I. García y E. Monte. 1995. Control  Biológico de hongos del suelo que afectan semillas y plántulas como alternativas  al Bromuro de metilo en la agricultura. Seminario Internacional Almería España.  Junta Andalucía. Conserjería de Agricultura y Pesca. Colección de Congresos y  Jornadas. Nº 44-97. pp. 13-52.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">7. Latiegui, A. 1990. Trichoderma harzianum  Rifai. como antagonista de Slerotium rolfsii Sacc., agente causal de pudrición  basal de la caraota (Phaseolus vulgaris L.). Universidad Centro Occidental  Lisandro Alvarado. Barquisimeto, estado Lara. Venezuela. 61 p.</font></p> <font size="2" face="Verdana">8. Pineda, J. y E. Gonnella. 1988. Evaluación del  control biológico de Macrophomina phaseolina en ajonjolí (Sesamum indicum L.).  Agronomía Trop. 38(4-6):43-48.</font>    <p><font size="2" face="Verdana">9. Rifai,  M. A. 1969. A revision of the genus Trichoderma. Mycological Papers 116. pp.  1-56. Shapiro, S. S. y M. B. Wilk. 1965. An analysis of variance test for  normality (complete samples). Biometrika. 52(3-4):591-611.</font></p> <font size="2" face="Verdana">10. Watanabe, T., S. Smith Jr. and W. Snyder.  1967. Populations of microesclerotia of soil orne pathogen, Macrophomina  phaseolina in relation to stem blight of bean. Phytopathology. 57:1.010 (Abstract).  &nbsp;</font>       ]]></body>
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