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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de Trichoderma sobre el desarrollo de papa y el biocontrol de Rhizoctonia bajo tres tiempos de inicio de aplicación]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Rhizoctoniasis caused by the fungus Rhizoctonia solani Kühn, decreases potato yield. Seeking for environmentally and friendly alternative management of the disease, this study was conducted to evaluate the effect of Trichoderma on development of potato, Solanum tuberosum L. and biocontrol of R. solani in the seed production process. Two replicas of a test cultivation house at Campo Experimental Mucuchíes, INIA-Merida were performed, under completely randomized design, where the application of three strains of Trichoderma asperellum (M-4, M-11, M-18 and their mixture) on potato plants cv “Andinita” was evaluated initiating at three different times: seed, furrow at planting and emergence of plants. Trichoderma treated plants showed significant increases in physiological variables (growth, photosynthesis) and yield; with low incidence, severity of injury and rhizoctoniasis reduction in tubers, maintained at all stages of development. The best responses were obtained with M-11 and the mixture, when the application is started in the emergence of plants, low incidences that were reached at 2.23 and 3.9%, grade 1 severity of injury, disease reduction 83 and 80%, respectively, higher yields, ranging from 77.000 a 83.333 kg ha-1, compared with the control. The endophytic strain M-11 T. asperellum represents an alternative for the management of potato rhizoctoniasis crop for seed.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Efecto de Trichoderma sobre el  desarrollo de papa y el biocontrol  de Rhizoctonia bajo tres tiempos de inicio de aplicación</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><b>  Effect of Trichoderma on potato development and biocontrol  of Rhizoctonia at three times from applying</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Rosaima G. García Crespo<sup>1</sup>, Miguel A. Arcia Montesuma<sup>2</sup>,  Miguel R. Pérez Tortolero<sup>1</sup> y Ramón F. Riera Tona<sup>3</sup></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  <sup>1</sup> Investigadores. Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA-Mérida)&nbsp; <a href="mailto:rgcrespo@inia.gob.ve">rgcrespo@inia.gob.ve</a>. </font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><sup>2</sup> Profesores. Universidad  Central de Venezuela  (UCV). Maracay 2103. Estado Aragua. Venezuela. </font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><sup>3</sup> Profesores. Universidad  Politécnica Territorial de Mérida Kleber Ramírez.  Ejido 5011, estado Mérida. Venezuela. Correos electrónicos: <a href="mailto:ramonriera60@cantv.net">ramonriera60@cantv.net</a>. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La rhizoctoniasis ocasionada por el hongo Rhizoctonia  solani Kühn, limita la producción de papa. En las  búsqueda de alternativas de manejo de la enfermedad  amigable con el ambiente, se realizó este trabajo, con  el objetivo de evaluar el efecto de Trichoderma sobre el  desarrollo de plantas de papa, Solanum tuberosum L.  y el biocontrol a R. solani, en el proceso de producción  de semilla. Se efectuaron dos réplicas de un ensayo en  casas de cultivo en el Campo Experimental Mucuchíes  del INIA-Mérida, bajo diseño completamente  aleatorizado, donde se evaluó la aplicación de tres  cepas de Trichoderma asperellum (M-4, M-11, M-18  y su mezcla) sobre plantas de papa del cv “Andinita”  iniciando en tres tiempos distintos: semilla, surco en la  siembra y en la emergencia de las plantas. Las plantas  tratadas con Trichoderma mostraron incrementos  significativos en las variables fisiológicas (crecimiento,  fotosíntesis) y el rendimiento; con baja incidencia,  severidad de daño y reducción de rhizoctoniasis en  los tubérculos que se mantuvo en todas sus fases de  desarrollo. Las mejores respuestas fueron obtenidas  con M-11 y la mezcla cuando la aplicación se inició  en la emergencia de las plantas con baja incidencia  (2,23 y 3,9%), severidad de daño grado 1, reducción  de la enfermedad de 83 y 80%, respectivamente, y  mayores rendimientos que oscilaron entre 77.000  a 83.333 kg ha-1, en comparación con el testigo. La  cepa endofítica M-11 de T. asperellum representa una  alternativa para el manejo de la rhizoctoniasis en el  cultivo papa destinado a semilla.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Palabras clave:</b> Solanum tuberosum, manejo,  semilla, fisiología.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>ABSTRACT</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Rhizoctoniasis caused by the fungus Rhizoctonia  solani Kühn, decreases potato yield. Seeking for  environmentally and friendly alternative management  of the disease, this study was conducted to evaluate  the effect of Trichoderma on development of potato,  Solanum tuberosum L. and biocontrol of R. solani in  the seed production process. Two replicas of a test  cultivation house at Campo Experimental Mucuchíes,  INIA-Merida were performed, under completely  randomized design, where the application of three  strains of Trichoderma asperellum (M-4, M-11, M-18  and their mixture) on potato plants cv “Andinita” was  evaluated initiating at three different times: seed, furrow  at planting and emergence of plants. Trichoderma  treated plants showed significant increases in  physiological variables (growth, photosynthesis)  and yield; with low incidence, severity of injury  and rhizoctoniasis reduction in tubers, maintained  at all stages of development. The best responses  were obtained with M-11 and the mixture, when the  application is started in the emergence of plants,  low incidences that were reached at 2.23 and 3.9%,  grade 1 severity of injury, disease reduction 83 and  80%, respectively, higher yields, ranging from 77.000  a 83.333 kg ha-1, compared with the control. The  endophytic strain M-11 T. asperellum represents an  alternative for the management of potato rhizoctoniasis  crop for seed.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Key words: </b>Solanum tuberosum, management,  seed, physiology.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Por su valor alimenticio, la papa Solanum  tuberosum L., reviste de gran importancia  dentro de los sistemas agrícolas de Venezuela,  principalmente en los estados alto andinos  (Mérida, Táchira, Trujillo) y Lara, donde existen  condiciones agroecológicas propicias para su  desarrollo (Gutiérrez, 2006) y representa un  95,60% de la superficie de siembra nacional  de este cultivo. Para el año 2009, la producción  de papa en Venezuela fue de 420.000 t en una  superficie cosechada de 22.025 ha, con un  rendimiento promedio de 19.115,3 kg ha-1 y,  donde la producción de semilla fue de 29.700 t  (FAOSTAT, 2010).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Mérida, principal productor de papa nacional  con 48% de la superficie, registra el mayor  rendimiento promedio con 23.412 kg ha-1  (Molina de Paredes y Contreras, 2009). En la  producción participan pequeños y medianos  agricultores, campesinos y campesinas con  siembras en pequeñas superficies, promedio  de 0,5 ha/agricultor, mano de obra de hombres,  jóvenes, niños, mujeres y ancianos que habitan  en la zonas rurales de los páramos de esta  región (García et al., 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La multiplicación en forma vegetativa de la  papa, mantiene las características varietales  por generaciones sucesivas, pero también  se convierte en un medio de transporte y  diseminación de enfermedades sistémicas y de  contacto, que ocasionan pérdidas en calidad  sanitaria y rendimiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Entre las enfermedades de mayor importancia  económica en los sistemas de producción  de la región andina venezolana están: la  candelilla tardía ocasionada por el pseudo  hongo Phytophthora infestans (Mont) de  Bary; marchitez bacteriana por Ralstonia  solanacearum; pudrición blanda causada  por Erwinia carotovora; diferentes virus y la  rhizoctoniasis por Rhizoctonia solani (Salazar,  1995; García et al., 2003; García et al., 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La rhizoctoniasis o costra negra de la papa  ocasionada por el hongo R. solani Kühn en  la fase asexual y Thanatephorus cucumeris  (Frank) Donk en la fase sexual, se incrementó  los últimos años en las zonas productoras del  estado Mérida, alcanzando incidencias desde  5 hasta 60%. Las plantaciones severamente  afectadas muestran pérdidas en los rendimientos  y en la calidad del tubérculo, debido al bajo  crecimiento o evidentes deformaciones en los  brotes, rajaduras y manchas causadas por la  presencia de esclerocios del hongo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Cuando los tubérculos infectados son usados  como semilla, diseminan la enfermedad y  reinfectan suelos por largos períodos de tiempo,  provocando además, pérdidas superiores en los  próximos ciclos de siembras, lo que disminuye  los rendimientos hasta en un 50% (Hooker,  1980, García et al., 1999; García et al., 2002,  García et al., 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el país, todos los cultivares comerciales de  papa están afectados por rhizoctoniasis, se  desconocen los germoplasmas resistentes y el  manejo es generalizado. Los agricultores usan  comúnmente fungicidas químicos en mayor  grado, sin la asesoría requerida y seguridad  de control, con énfasis en el ingrediente activo  Pencycuron, en altas dosis, que alcanzan hasta  8 k ha-1. Este excesivo e incontrolado uso pudiera  ocasionar un alto impacto ambiental negativo,  con desmejora en la salud de los campesinos.  Entre una de las medidas potenciales de manejo  técnico a R. solani, amigable con el ambiente,  está la utilización de cepas del hongo antagonista  Trichoderma sp. (García et al., 2002; García et  al., 2005).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El efecto antagónico de Trichoderma sobre el  hongo fitopatógeno R. solani fue descrito en  1932 (Weindling, 1932). Posteriormente, se  experimentó su uso con indiscutibles éxitos en  su control en diferentes cultivos bajo variadas  formas de aplicación (Howell et al., 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Durante mucho tiempo, la capacidad de distintas  cepas de Trichoderma para proteger a la planta  frente a patógenos de raíz se atribuyó a un  efecto directo contra los patógenos (Chet et al.,  1998), pero se demostró que también existe  una asociación directa de algunas cepas de  Trichoderma con las raíces, lo cual estimula sus  mecanismos de defensa (Yedidia et al., 1999;  Korolev et al., 2008) y conlleva a una resistencia  contra varios tipos de microorganismos fitopatógenos e incluso nematodos (Harman  et al.,  2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Son varios los mecanismos de acción de  Trichoderma spp. como agente de biocontrol y  en interacción con la planta, entre ellos: especial  habilidad para parasitar hongos fitopatógenos,  debido a la producción de enzimas hidrolíticas  de la pared celular, como: glucanasas, quitinasas  y proteasas; la competencia por espacio y  nutrientes, especialmente en la rizosfera;  capacidad de promover el desarrollo de plantas  (Yedidia et al., 2001) y raíces (Contreras-  Cornejo et al., 2009); aumento de la captación  de nutrientes y la eficacia como fertilizante en la  planta (Altomare et al., 1999); fortalecimiento de  la resistencia a estreses ambientales (Harman,  2004); estimulación de las defensas de la planta  frente a patógenos (Van Wees et al., 2008), y en  la producción de antibióticos (Reino et al., 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  A pesar de las potencialidades de Trichoderma  como biocontrolador, su adopción en el país  para el manejo de enfermedades en papa, ha  sido menor, ya que su efectividad es variable  en dependencia de la actuación de la cepa  y la calidad del producto aplicado. Así, la  rhizoctoniasis sigue representando un riesgo en  el proceso productivo de la papa para semilla y  para consumo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El objetivo del presente trabajo fue evaluar la  efectividad de tres cepas de T. asperellum y  sus mezclas sobre el desarrollo de plantas de  papa del cv “Andinita“ (S. tuberosum L. subsp.  andigenum) y el biocontrol a R. solani, bajo  tres distintos tiempos de inicio de aplicación  en el proceso de producción de semilla, en la  búsqueda de alternativas de manejo amigables  con el ambiente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  MATERIALES Y MÉTODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La investigación fue realizada en dos casas  de cultivos de la Unidad de Producción de  tubérculos-semilla pre-básica de papa (dos  réplicas), ubicadas en el Campo Experimental  Mucuchíes (CEM) del Instituto Nacional de  investigaciones Agrícolas (INIA), situado en el  sector La Toma a 3.100 m s. n. m., latitud 08° 44'  N, longitud 70° 54' W, municipio Rangel, estado  Mérida, Venezuela, bajo una temperatura media  diaria de 12,7 °C, máxima de 17,3 °C y mínima  de 7,9 °C. La precipitación media anual es de  1.684,5 mm, radiación de 420,4 cal cm-2 día-1,  humedad relativa de 66% (8:00 a.m.) y 64,4%  (2:00 p.m.), insolación: 131 h días-1 (INIA, 2011).  En ambas casas de cultivo, históricamente, se  presentan niveles altos de rhizoctoniasis en los  tubérculos-semilla de papa producidos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Como material experimental se utilizaron tres  cepas autóctonas de T. asperellum pertenecientes  al Laboratorio Referencial de Biocontrol  de Plagas del INIA-Mérida, siendo previamente  caracterizadas y seleccionadas por su capacidad  endofítica, biocontroladora e inductoras  de resistencia bajo condiciones in vitro. Los  conidios del hongo fueron extraídos haciendo  suspensiones con agua potable, biopreparados  de las tres cepas obtenidos por fermentación  sólida, usando arroz con 5% de granos partidos  (García et al., 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El material vegetal empleado fue microtubérculos  de papa cv.”Andinita” (S. tuberosum L. subsp.  andigenum) libres de virus, regenerados  en cultivo in vitro mediante el Sistema de  Inmersión Temporal, colocados a brotar bajo  condiciones de almacenamiento en oscuridad,  siguiendo la metodología del sistema descrito  y establecido por Igarza (2011) y estandarizado  en el laboratorio de cultivo de tejido del Campo  Experimental Mucuchíes del INIA-Mérida.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Diseño del experimento y arreglo de los  tratamientos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El experimento fue realizado bajo un diseño  completamente aleatorizado, con tres repeticiones,  evaluando el efecto y la mezcla de  tres cepas de T. asperellum M-18, M-4, M-11,  bajo tres tiempos de inicio de aplicación: 1) los  microtubérculos-semilla antes de la siembra; 2)  surco al momento de la siembra; 3) surco en la  emergencia del 80% de las plantas. Además, se  utilizaron como testigos plantas provenientes de  microtubérculos-semilla y de surcos en siembra  tratadas solo con agua de riego. El arreglo de  los tratamientos se indica en el <a href="#c1">Cuadro 1</a>. Se  sembraron siete surcos de 10 microtubérculos  por tratamiento, con tres repeticiones, para  evaluar el hilo central, los demás sirvieron como  bordura.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cada tratamiento indicado en el <a href="#c1">Cuadro 1</a>, se  realizó una aplicación adicional de las cepas de  T. asperellum al momento del aporque y otra más  15 días después del aporque.  En los tratamientos T1, T2, T3 y T4 la  aplicación de T. asperellum se realizó sobre  los microtubérculos-semilla, sumergiéndolos  durante 2 h en una suspensión de conidios de  las cepas de 1,2 x 1009 ufc ml-1, mientras que  para los tratamientos realizados en el surco (T5,  T6, T7 y T8), tanto en el momento de la siembra  como en la emergencia de plantas (T9, T10, T11  y T12), se utilizaron suspensiones de esporas a  la concentración de 1,2x1008 ufc ml-1.  Labores culturales realizadas en las casas  de cultivos</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para las camas de cultivo se usó un sustrato  compuesto por suelo, arena y concha de arroz  (2:1:1); el cual se esterilizó mediante vapor  caliente a 95 °C, durante 1 h con 1 día de  descanso, repitiendo el proceso. El análisis del  sustrato se realizó en el Laboratorio de Servicio  de Suelos, INIA-Mérida, reportando pH 5,6;  fósforo 7 ppm; potasio 212 ppm; calcio 545 ppm;  magnesio 69 ppm; materia orgánica 6,9% y  conductividad eléctrica 0,09.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  De acuerdo a los resultados del análisis de  suelo, se aplicó NPK, fórmula 12:12:17, al  momento de la siembra usando 300 g/m lineal.  Además, en el primer mes durante el desarrollo  vegetativo del cultivo, se aplicaron fertilizantes  foliares Carbovit® y Biomex-20® en proporción  de 2 ml/l y el herbicida post-emergente selectivo y  sistemático [Butil 2 (3-5 trifl uorometil-2- piridiloxifexoxi)  propinato]. En el aporque, fue aplicado  un fertilizante rico en fósforo y potasio, para  engrosar el tubérculo, se aplicaron fertilizantes  foliares (Carbovit®, Hit de desarrollo).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El riego fue realizado diariamente en forma  manual por aspersión durante 20 min, con base  en los requerimientos hídricos de las plantas.  Antes de la fl oración se aplicó al foliar fungicida  por ingrediente activo en dosis de 1 k ha-1,  para prevenir el ataque de la candelilla tardía  (P. infestans); considerando que este fungicida  no controla R. solani y así evitar su interferencia  sobre el efecto de los tratamientos estudiados.</font></p>     <p align="justify"><a name="c1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.28.jpg" width="544" height="294"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las evaluaciones de las variables fueron  realizadas de acuerdo al desarrollo fenológico  del cultivo sobre 10 plantas/tratamiento:</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  1. Número de plantas emergidas y vivas a los  20 y 30 días de la emergencia (DDE) de más  del 80%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  2. A los 60 d de desarrollo del cultivo, pero antes de  los aporques, altura de la planta (cm), número  de tallos/planta, diámetro del tallo (cm), número  de hojas/planta, ancho y longitud del tercer  foliolo (cm), tomado del ápice hacia abajo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  3. Fotosíntesis a los 1,5 y 2,5 meses de desarrollo  del cultivo, al inicio de la fl oración, utilizando  un equipo Bioscientific Ltd, modelo L.MAN-LCI  año 2000 y tomando como estándar un área de  hoja de 6,25 cm2, bajo una radiación constante  de 200 cal cm-2.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  4. A los 120 d de desarrollo del cultivo previo a la  cosecha, altura de la planta (cm), longitud de  la hoja (cm), número de foliolos/hoja, ancho y  largo del tercer foliolo (cm) tomado del ápice  hacia abajo, diámetro del tallo (cm), peso  fresco y seco del follaje (g).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  5. Durante todo el desarrollo del cultivo, a los  30, 45, 60, 75, 90 y 120 DDE, previo al corte  de follaje, altura de la planta (cm). Al mismo  tiempo se hicieron observaciones visuales a  las plantas para constatar su sanidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  6. En la cosecha, longitud (cm), peso fresco y  seco de la raíz (g) y número de tubérculos/  planta; peso de los tubérculos (g/surco) con  lo que se calculó el rendimiento estimado en  kg ha-1. Asimismo, se evaluó la incidencia  y severidad de la enfermedad costra negra  en los minitubérculos, utilizando una escala  de infección de tubérculos de 0 a 3, donde 0  significa tubérculos sin esclerocios y 3 tubérculos  infectados con esclerocios que cubren más del  20% de la piel (García et al., 2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Con los datos de incidencia de la enfermedad,  se calculó el porcentaje de reducción de  la rhizoctoniasis (%RR) por efecto de los  tratamientos, empleando la fórmula de Aponte  (1986):</font></p>     <p align="justify"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.29.jpg" width="263" height="54"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los datos obtenidos de la aplicación de cada  uno de los 13 tratamientos por separado, se  promediaron para tres repeticiones, obteniendo  un total de 39 datos por variable, procesados a  través del programa INFOSTAST Professional,  versión 2.0. Cuando cumplieron con los  supuestos de normalidad y homogeneidad de  varianza se aplicaron los análisis de varianza  y las medias, entre los tratamientos se  compararon según la prueba de Tukey (P&lt;0,05);  los que no siguieron una distribución normal, se  analizaron estadísticamente mediante la prueba  de Kruskall Wallis, para datos no paramétricos  y a su vez sus medias se compararon mediante  la prueba de Mann Whitney (P&lt;0,05). Por su  parte, en los datos de rendimiento fue usado la  transformación de Log10, incidencia y reducción  de la enfermedad fueron transformados aplicándoles  la raíz cuadrada del porcentaje.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Pruebas para confirmar la asociación  Trichoderma-planta producto de la inoculación</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para confirmar la relación simbiótica de T.  asperellum con las raíces de las plantas de  papa del cv. “Andinita” y poder relacionar sus  efectos de acuerdo a esta interacción, se  realizaron estudios exploratorios cualitativos  sobre relaciones biológicas de asociación  endofítica, revisando la colonización y  penetración de T. asperellum en las raíces  de las plantas post-inoculación. Para ello,  se realizaron cortes histológicos tiñendo  las preparaciones con azul de lactofenol,  observando a 40X de aumento para corroborar  si las estructuras correspondían con las de  Trichoderma. Además, se midió el crecimiento  de colonias de Trichoderma desde las raíces  que fueron sembradas sobre el medio de  cultivo Agar-Papa-Dextrosa (PDA).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Por otro lado, en algunas raíces fue extraída  la capa externa y luego rigurosamente  desinfectada haciendo tres pases por alcohol  isopropílico al 95% durante 2 min, intercalando  con agua durante 1 min, posteriormente se  sometieron a cámara humedad durante 3 días,  la emergencia de micelio y conidiogénesis  general de Trichoderma se observó mediante el  uso de un microscopio-estereoscopio a 10X de  aumento.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  RESULTADOS Y DISCUSIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Efecto de Trichoderma asperellum sobre la  emergencia de plantas de papa a partir de  microtubérculos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la <a href="#f1">Figura 1</a> se presentan los resultados  de la emergencia de plantas a los 20 días  después de la siembra. Se observan diferencias  significativas entre los tratamientos, los  tratamientos T1, T4 y T9, conforman un mismo  grupo estadístico superior a todos los demás  que alcanzó 100% de emergencia; mientras que  los demás tratamientos estuvieron en un mismo  grupo inferior, conjuntamente con el testigo yalcanzaron 90% de emergencia. Sin embargo,  a los 30 días se pudo observar que el resto de  las plantas fueron emergiendo hasta completar  un 100% en todos los surcos sembrados.  En las casas de cultivo, las plantas mostraron  características morfológicas en cuanto a color,  forma y tamaño de las hojas y del tallo, típicas  del cv “Andinita” de acuerdo a los descriptores  reportados por García et al. (2005).  </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Efecto de Trichoderma asperellum sobre  variables de crecimiento de plantas de papa  a los 60 días de desarrollo del cultivo</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el <a href="#c2">Cuadro 2</a> se indican los resultados de la  interacción entre las plantas de papa y las tres  cepas endofíticas de T. asperellum, solas y su  mezcla.</font></p>     <p align="justify"><a name="f1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.30.jpg" width="496" height="353"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para la variable altura promedio, el mejor  tratamiento resultó ser T11, donde las plantas  alcanzaron el mayor promedio con 63 cm,  estadísticamente similar a los tratamientos  T6, T7, T9, T10 y T12, seguido de las plantas  tratadas con T5, que mostraron también un  buen comportamiento conformando un grupo  intermedio con 50 cm; mientras que los demás  tratamientos formaron grupos estadísticos  similar al testigo (T0).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En relación a la variable número de tallos/planta,  los mejores tratamientos resultaron T7 y T11,  donde las plantas alcanzaron un total de dos  tallos, formando el primer grupo superior  estadístico, seguido de los tratamientos T8,  T10 y T12, que conformaron un grupo estadísticamente  relacionado; mientras que las plantas  que interactuaron con los demás tratamientos  se ubicaron en el grupo aparte inferior,  conjuntamente con T0.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la variable diámetro del tallo, se encontró  que las plantas tratadas con T3 y T7, tuvieron  un mejor comportamiento conformando el  grupo superior estadístico; seguido de T1,  T4, T5, T8 y T12. Con los otros tratamientos,  las plantas tuvieron un comportamiento igual  o inmediatamente superior a los testigos y  ocuparon el grupo heterogéneo inferior.  Para la variable número de hojas/planta, se  observó que las plantas indistivamente del  tratamiento aplicado desarrollaron más hojas  que las testigos y conformaron los grupos  estadísticos superiores. En este caso los  mejores resultados fueron encontrados con los  tratamiento T11 y T12, alcanzando 10,00 y 10,17  hojas, respectivamente, formando un grupo  superior y estadísticamente relacionado con los  demás tratamientos; mientras que T0 se ubicó  en el grupo inferior; de acuerdo a la prueba de  Tukey &lt; 0,05.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.31.jpg"></p>     
<p align="center"><a name="c2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.32.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cuanto a la variable ancho del foliolo,  también se encontró que las plantas mostraron  un comportamiento estadísticamente superior  con todos los tratamientos, excepto con  T2, T5, T10 y T12 que conformaron un grupo  estadísticamente inferior conjuntamente con T0.  Para la variable longitud de foliolo, las plantas  del tratamiento T11, tuvieron el mejor comportamiento  estadístico, ubicándose en el primer  grupo superior alcanzando 10,35 cm; seguido  de T3, T4, T6, T7 y T9, que conformaron un  grupo estadístico relacionado donde la longitud  promedio de raíces estuvo entre 9,21 y 9,68 cm;  mientras que los demás tratamientos se ubicaron  en grupos estadísticos relacionados con  el testigo, este último ocupó el inferior, donde  las plantas alcanzaron 6,54 cm de longitud  promedio.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Efecto de la aplicación de Trichoderma  asperellum sobre la tasa fotosintética de  plantas de papa</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En las <a href="#f2">Figuras 2A y 2B</a> se muestra la tasa  fotosintética a 1,5 y 2,5 meses, respectivamente.  Asimismo, se observa que para la tasa  fotosintética no se encontraron diferencias  marcadas en las mismas, de acuerdo a la fecha  de evaluación 1,5 y 2,5 meses de desarrollo del  cultivo, pero sí de acuerdo a los tratamientos.  Los análisis estadísticos confirmaron que hubo  diferencias significativas en la tasa fotosintética  (Tukey P&lt;0,05), a los 1,5 y 2,5 meses de  desarrollo de las plantas, independientemente  de la cepa usada. Todas las plantas inoculadas  con cualquiera de las cepas de T. asperellum,  mostraron mayor tasa fotosintética respecto al  testigo.</font></p>     <p align="justify"><a name="f2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.33.jpg" width="469" height="399"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La mejor respuesta se observó con el  tratamiento T3, donde la tasa fotosintética  alcanzó a 4,00 &#956;mol CO2 m-2 s-1, a los 1,5 y  2,5 meses, respectivamente, que formaron un  grupo estadístico superior y aparte, seguido de  los demás tratamientos, que a su vez estuvieron  por encima del testigo, el cual se ubicó en el  grupo inferior con 2,1 y 2,4 &#956;mol CO2 m-2 s-1, a  los 1,5 y 2,5 meses, respectivamente.  Efecto de Trichoderma asperellum sobre  variables de crecimiento de plantas de papa  a los 120 días de desarrollo  En el <a href="#c3">Cuadro 3</a> se presentan los resultados  obtenidos de las variables de crecimiento  especificadas a los 120 d.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para la variable longitud promedio de la hoja;  las plantas tratadas desde la semilla previo a  la siembra, alcanzaron una mayor longitud que  estuvo entre 35,90 a 36,23 cm con T2 y T1,  seguido de las desarrolladas bajo el tratamiento  T6 que alcanzaron 34,93 cm y de las plantas  sometidas a los demás tratamientos, en relación  T0 que presentó una altura inferior de 26,50 cm  promedio ocupando el grupo estadístico inferior.  En cuanto a la variable número de folíolos/hoja, la  mejor respuesta fue alcanza con los tratamientos  T4 y T12, que presentaron 12,20 y 12,60  folíolos, respectivamente; ocupando un grupos  estadístico homogéneo superior, seguido de los  demás tratamientos y con relación a T0, que  ocupó el grupo inferior bajo un promedio de 6,53  folíolos/hoja.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En relación al ancho del foliolo, las mejores  respuestas fueron obtenidas con los tratamientos  T4, T5, T6, T7, T8, T9 y T11 para la variable ancho  del folíolo, que ocuparon grupos heterogéneos  superiores, seguido de los demás tratamientos;  con valores que estuvieron entre 7,77 a 9,30 cm;  siendo estadísticamente superiores a T0 cuyo  valor estuvo en 7,10 cm.</font></p>     <p align="justify"><a name="c3"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.34.jpg" width="550" height="366"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la variable longitud del foliolo, la respuesta de  la planta siguió la misma tendencia anterior con  valores entre 11,05 y 12,90 cm en las plantas  tratadas, superiores a T0, que presentó una  longitud de folíolos de 8,20 cm.  Respecto al diámetro de los tallos, se encontraron  diferencias significativas entre los tratamientos,  resultando T3, T4, T5, T7 y T8 superiores, con  valores de 4,23; 4,07; 4,0; 4,40; 4,18 cm, respectivamente;  seguido de los demás tratamientos;  que a su vez fueron estadísticamente superiores  a T0 (diámetro de 3,47 cm) ubicó en un  grupo inferior.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Efecto de Trichoderma asperellum sobre la  variable altura de las plantas y la sanidad  aérea, durante su desarrollo</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La <a href="#f3">Figura 3</a> demuestra el progreso en cuanto  a altura/planta durante el desarrollo, bajo los  diferentes tratamientos. Todas las curvas de  altura de las plantas tratadas con T. asperellum,  estuvieron por encima del testigo T0. Mientras  que la curva T11 estuvo por encima de todas  las demás, lo cual confirma los resultados  explicados previamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Durante todo el desarrollo del cultivo, las  plantas se mostraron vigorosas y verdes, sin  observar síntomas la enfermedad; debido a  que provenían de un material de alta calidad  de primera generación. Además, debido a  que el sustrato donde fueron sembradas fue  desinfectado previamente. Posiblemente, el  nivel de inóculo de R. solani no era suficiente  como para producir trastornos en las plantas.  En condiciones naturales, el inóculo proviene  normalmente de las aguas de riego, el viento y  de esclerocios que quedan en las paredes de  los canteros de la cosecha anterior.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el testigo y en las plantas tratadas con  M-18 se observó presencia de rhizoctoniasis y  de otras enfermedades como candelilla tardía  ocasionada por P. infestans (no sujeto a estudio  en este trabajo) en baja incidencia.</font></p>     <p align="justify"><a name="f3"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.35.jpg"></p>     
<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Efecto de Trichoderma asperellum sobre  variables de crecimiento de plantas de  papa a los 120 días de desarrollo evaluadas  previamente a la cosecha y en el momento  de la misma</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los resultados de variables de crecimiento se  presentan en el <a href="#c4">Cuadro 4</a>, obtenidos previamente  a la cosecha o en el momento de la misma.  En la variable altura hubo diferencias estadísticamente  significativas entre los tratamientos,  (Tukey &lt; 0,05); siendo superior T11 y T7, que  alcanzaron las mayores alturas con 95,50 y  93,97 cm, respectivamente; seguido de los  demás tratamientos y, en referencia a T0, en el  cual la altura promedio de las plantas fue inferior  a todas las demás (68,87 cm).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Asimismo, los tratamientos T3 y T2 presentaron  mayor peso fresco (199,34 y 196,73 g) y  seco (64,78 y 60,97 g) promedio del follaje,  conformando un grupo superior homogéneo;  seguido de los tratamientos T1, T4, T9, T10,  T11 y T12; que conformaron diferentes grupos  heterogéneos intermedios; mientras que T0 se  situó en el inferior con 116,73 y 32,9 g de peso  fresco y seco, respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Por su parte, los tratamientos T2, T3, T4, T6,  T7, T8, T10, T11 y T12 presentaron las mayores  longitudes de raíces, conformando un mismo  grupo homogéneo, estadísticamente superior  con valores que oscilaron entre 35,13 y 43,87 cm.  Sin embargo, los tratamientos T1, T5 y T9, donde  la longitud radical alcanzó entre 27,0 y 29,67, son  similares al T0, el cual alcanzó 14,33 cm.</font></p>     <p align="justify"><a name="c4"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.36.jpg" width="550" height="417"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cuanto al peso fresco y seco de estas raíces,  con la excepción de T1, T2, T5, T8, T9 y T12,  todos los tratamientos con base a Trichoderma,  fueron superiores al testigo en cualquier tiempo  de inicio de aplicación, siendo el mejor T3  seguido de T6 y los demás tratamientos, que  estuvieron por encima de T0, el cual resultó  en un grupo estadísticamente inferior según la  prueba de medias de Tukey &lt; 0,05.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Efecto de Trichoderma asperellum sobre  variables de rendimiento de plantas de papa:  En la <a href="#f4">Figura 4 A y B</a>, se presentan los resultados  de las variables de rendimiento en cuanto a  número de tubérculos/planta y el rendimiento  estimado en k ha-1. Todas las plantas tratadas  tuvieron un número de tubérculos superior a las  no tratadas, bajo un coeficiente de variación de  4,33%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los mejores resultados fueron obtenidos  con T11, T12 y T10, los cuales conformaron  un grupo superior, cuyos valores promedio  estuvieron en 7,12; 6,9 y 6,5 tubérculos/planta,  respectivamente; seguido de los demás  tratamientos y por encima de las testigos  donde se encontraron 4 tubérculos/planta. Los  tratamientos T3, T4, T10, T11 y T12 alcanzaron  los mayores rendimientos promedio, estimados  estadísticamente, entre 77.000 a 83.333 k ha-1;  y T0 estuvo muy por debajo, con 15.000 k ha-1.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="f4"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.37.jpg" width="426" height="445"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la <a href="#f5">Figura 5</a>, se pueden observar los tubérculos  cosechados/surco/tratamiento de papa del cv.  “Andinita”, obtenidos en una de las réplicas del  ensayo cosechado.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Efecto de Trichoderma asperellum sobre las  variables incidencia, severidad de daño y  reducción de rhizoctoniasis del cultivo papa  </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la <a href="#f6">Figura 6 (A, B y C)</a> se presentan los resultados  en cuanto a incidencia de rhizoctoniasis, severidad  de daño y reducción de la enfermedad en los  tubérculos de papa cosechados. Se observó una  mayor incidencia significativa de costra negra  en los tubérculos provenientes de T0, en el cual  alcanzó 20% (<a href="#f6">Figura 6A</a>), seguido de T1 y T2,  que representaron 18 y 17%, mientras que las  menores incidencias 2,23 y 3,9% ocurrieron en  los tratamientos T11 y T12, respectivamente. En  los demás tratamientos la incidencia también  estuvo por debajo del testigo T0.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La severidad de la enfermedad (<a href="#f6">Figura 6B</a>),  en general estuvo entre muy baja a mediana,  con diferencias significativas entre las plantas  tratadas. La mayor severidad de daño ocurrió  en T0 alcanzando grado 2 que se correlaciona  con una mediana incidencia; seguido de T1 y T5  que llegaron hasta 1,5 grado que corresponde  con una baja a mediana severidad de daño. Los  demás tratamientos alcanzaron grado 1, muy  baja severidad de daño, que es despreciable a  los fines de certificación.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><a name="f5"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.38.jpg" width="387" height="422"></p>     
<p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  También se encontraron diferencias significativas en la reducción de la  enfermedad en  los tubérculos (<a href="#f6">Figura 6C</a>), que estuvo entre  7 a 83% para los tratamientos T1 y T11. Las  mayores reducciones fueron logradas con T11  y T12, mientras que las menores reducciones  se lograron en los tratamientos T1 y T2,  conjuntamente con T0 (indica 0 reducción).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Pruebas para confirmar la asociación  Trichoderma-planta producto de la inoculación  </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Entre los resultados de las pruebas realizadas  para confirmar la asociación endofítica de las  cepas del hongo y las raíces de las plantas,  se encontró alta colonización de T. asperellum  sobre la rizósfera de papa, además se observó la  presencia de Trichoderma dentro de las raíces,  donde se pudo visualizar el micelio y los cuerpos  de fructificación de Trichoderma saliendo de las  mismas. También se evidenció el desarrollo de  colonias características de este hongo desde los  trocitos de raíces sembrados bien desinfectadas  en placas de Petri con el medio de cultivo PDA.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Con respecto a los resultados mencionados  anteriormente, donde se encontraron diferencias  entre los tratamientos en cuanto a la  emergencia de las plantas a los 20 días de la  siembra, estos se pueden explicar debido a que  los tubérculos-semillas sembrados presentaban  algunas diferencias en cuanto a tamaño de los  grelos (tallitos) emitidos en la germinación, sin  embargo, a los 30 días se alcanzó el 100% de  emergencia en todos los tratamientos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Por su parte, las plantas tratadas con cualquiera  de las tres cepas de T. asperellum mostraron  un comportamiento superior, aunque no fue  significativa en todos los casos, a las no tratadas  en las diferentes fases de desarrollo fenológico  evaluadas, evidenciado por los incrementos</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  en las variables de crecimiento: altura de la  planta, número de tallos, diámetro del tallo,  número de hojas promedio/planta, longitud de  la hoja, número de folíolos, ancho y longitud  de los foliolos, tamaño de raíces, peso fresco  y seco del follaje y raíces; una mejor respuesta  fotosintética y rendimiento en cuanto al número  de tubérculo/planta y en kg ha-1; así como  menor incidencia de la enfermedad, menor  severidad de daño y una reducción significativa  de la misma en cualquiera de los tres tiempos  de aplicación.</font></p>     <p align="justify"><a name="f6"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art07.39.jpg" width="534" height="626"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La mayor tasa fotosintética en las plantas  tratadas, tanto a los 1,5 como a los 2,5 meses  de su desarrollo con relación a las testigos, se  relaciona con los incrementos del crecimiento y  desarrollo de estas plantas, fundamentalmente  con las variables ancho y longitud de los foliolos  y, longitud de las hojas; ya que hubo mayor  lamina foliar para la fotosíntesis, además de  la exigencia de las raíces y los rizomas en  trasladación de sustancias al tener mayor  desarrollo con los tratamientos; que se traduce  en una mayor producción de azúcares, traslado  y acumulación de estas en los tubérculos, con  incrementos significativos en los rendimientos.  Por otro lado, las mejores respuestas fueron  encontradas con M-11 y la mezclas de las tres  (M-18+4+11), que ocuparon los más altos grupos  estadísticos para todas estas variables de crecimiento,  que al mismo tiempo mostraron la mejor  capacidad de biocontrol, alcanzando bajas  incidencias de rhizoctoniasis que estuvieron  en 2,23 y 3,9% con baja severidad de daño  (grado 1) y una reducción de la enfermedad de 83 y  80%, respectivamente, con relación a las plantas  testigos que presentaron 20% de incidencia y  mayor severidad de daño (grado 2) cuando las  aplicaciones se hicieron en la emergencia. Estos  tratamientos también mostraron los mayores  rendimientos, conjuntamente con M-4 aplicados  en la emergencia y en la semilla cuyos valores  oscilaron entre 77 000 y 83 333 k ha-1.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Estos resultados coinciden con los reportados  en otros cultivos. Así Chet et al. (1997)  afirmaron que la producción en los cultivos  puede incrementarse hasta un 300% después  de la inoculación de T. hamatum o T. koningii.  Del mismo modo señalan un aumento  considerable en la producción con semillas  de plantas previamente tratadas con esporas  de Trichoderma en experimentos llevados a  cabo en un invernadero. Sin embargo, existen  muy pocos reportes de cepas que producen  factores de crecimiento (auxinas, citoquininas y  etileno) que son detectados e identificados en el  laboratorio.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Plantas in vitro de banano en etapa de  vivero inoculadas con cepas de T. atroviride,  obtuvieron un efecto positivo en la promoción  de crecimiento para altura de la planta, diámetro  del pseudotallo y emisión foliar (Menjívar, 2005).  Para este cultivo, Meneses (2003) encontró  mayores valores en peso del sistema radical  (39%) y sistema foliar (19%), así como un  incremento en altura y diámetro del pseudotallo  comparados con los del testigo absoluto. Por su  parte, Pocasangre et al. (2004) determinaron  pesos superiores del sistema radical y foliar en  comparación con plantas no protegidas. A su vez,  Cañizares (2003) obtuvo resultados similares,  encontrando plantas in vitro inoculadas con  endofíticos, con un 38% más de peso radical  que el testigo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  También en Venezuela, Jiménez (2011) al  evaluar la efectividad de productos con base a  T. harzianum y una cepa nativa T. koningiopsis  de la zona bajo estudio y el inductor químico  Bion®, solos y combinados como inductores de  resistencia a la pudrición blanca en ajo (Allium  sativum L.) producida por Sclerotium cepivorum,  Berk bajo condiciones de campo, encontró un  efecto positivo en aquellos tratamientos donde  se combinaron ambos inductores con un  incremento del rendimiento, indicando que los  mayores fueron en aquellas plantas tratadas  con T. koningiopsis + Bion®, mostraron además  los mayores contenidos de clorofila, peso  fresco y seco aéreo e incrementos en altura de  las plantas; lo que indica el efecto aditivo y a  largo plazo de la resistencia inducida, bajo una  disminución de la incidencia de la enfermedad y  el área bajo la curva de progreso de la misma.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Este efecto de Trichoderma, en cuanto a  los incrementos en el crecimiento y desarrollo  de las raíces, se explica a través de varios  mecanismos de acción. El hongo Trichoderma  regula los niveles de auxinas en la rizósfera  (Contreras-Cornejo et al., 2009) estimulando el  crecimiento de las plantas (Chang et al., 1986;  Yedidia et al., 2001), además de proteger el  sistema radical con habilidad para modificar  su ambiente circundante, pudiendo acidificar  el suelo mediante la secreción de ácidos  orgánicos, lo que resulta en el metabolismo de  otras fuentes de carbono (glucosa), capaces  de solubilizar fosfatos e intervenir en el  equilibrio de micronutrientes y minerales. Por  consiguiente, la adición de Trichoderma al suelo,  resulta en la biofertilización por la solubilización  del metal, incrementando la riqueza del mismo,  en forma tal, que puedan ser asimiladas por las  plantas (Altomare et al., 1999), lo que se traduce  en un incremento de la productividad del cultivo  (Harman, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La efectividad de acción de Trichoderma sobre  Rhizoctonia spp. entre otros hongos, ha sido  estudiado por diferentes autores (Carsolio et al.,  1999; El-Katatny et al., 2001; Inbar et al., 1996)  quienes indican que la interacción inicial entre  antagonista y fitopatógeno obedece a la acción  de lectinas durante el proceso de reconocimiento  y posteriormente se inicia la liberación al medio  de diversas enzimas con actividad quitinolítica,  glucanolítica, celulolítica y proteolítica para  degradar las estructuras del hongo fitopatógeno  y después nutrirse de los productos resultantes  de la actividad enzimática (Goldman et al.,  1994).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Otros trabajos, demuestran la actividad  micoparasítica de Trichoderma contra  Rhizoctonia spp., observada con aislamientos  de T. hamatum, T. harzianum, T. longibrachiatum,  T. koningii, T. pseudokoningii, T. viride, T. virens  y Trichoderma sp. (Howell et al., 2000; Jakhar  et al., 1998; Jeffries y Young, 1994; Lewis  et al., 1991). Asimismo, existen resultados  similares en cuanto a la eficacia de aislados de  este antagonista para controlar enfermedades  causadas por R. solani en plantas de algodón,  lechuga, berenjena, girasol, maíz y papa;  logrando reducciones significativas del patógeno  en estos cultivos (Durman et al., 1999;  Mathivanan et al., 2000; García et al., 2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los resultados encontrados en el presente  trabajo permitieron determinar que las tres  cepas de T. asperellum evaluadas interactuaron  positivamente con las plantas de papa del cv.  “Andinita” en cualquiera de los tres tiempos de  inicio de aplicación, bajo las condiciones de las  casas de cultivos de Mucuchíes; debido a la  respuesta en cuanto a incrementos de todas las  variables fisiológicas de crecimiento, fotosíntesis,  rendimiento y resistencia frente al fitopatógeno  R. solani. Además, las cepas presentaron una  buena capacidad para biocontrol de R. solani.  Las mejores respuestas se obtuvieron en las  plantas tratadas con la cepa M-11 y la mezcla  de las tres (M-18, M4 y M11), aplicada en la  emergencia y en los microtubérculos-semilla  previo a la siembra; alcanzando bajas incidencias  y severidades de daños de rhizoctoniasis  traducido en reducciones significativa de la  enfermedad, igualmente mostraron los mayores  rendimientos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La cepa endofítica M-11 de T. asperellum, representa  una alternativa de control de R. solani  amigable con el ambiente; de tal manera que se  recomienda su incorporación dentro de los componentes  de manejo agroecológico del sistema de  producción de papa destinado a la obtención de  semilla de calidad genética y sanitaria; pudiendo  ser innovado hacia otras casas de cultivos donde  se esté produciendo este insumo, ello permitirá  reducir el uso agrotóxicos en el manejo de la  rhizoctoniasis.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se confirma que la selección y especificidad de  las cepas de Trichoderma es un elemento importante  a tener en cuenta para ser utili-zados como  agente de biocontrol en programas de manejo de  fitopatógeno.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Este es el primer reporte que evidencia la  interacción positiva entre “Papa-Trichoderma-  Rhizoctonia”, al aplicar T. asperellum sobre plantas  de este cultivo provenientes de microtubérculos  regenerados in vitro en presencia natural de R.  solani.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Altomarre, C., W. A. Norvell,  T. Björkman and G. E. Harman. 1999. Solubilization of phosphates and  micronutrients by the plant-growth promoting and Biocontrol fungus Trichoderma  harzianum Rifai 1295-22. Appl. Env. Microbiol. 65:2926-2933.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284677&pid=S0002-192X201200010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Aponte, O. 1986.  Cuantificación de la enfermedad. Curso Internacional sobre enfermedades de  cultivos y su control químico. Tomo I. Comisión de estudios de posgrado. Área  fitopatología. Universidad Centroccidental Lisandro Alvarado (UCLA). Lara.  Venezuela. 50 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284679&pid=S0002-192X201200010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Cañizares, C. A. 2003.  Estudio sobre poblaciones de hongos endofíticos provenientes de suelos  supresivos al nematodo barrenador Radopholus similis (Cobb) Thorne en  plantaciones de plátano en la zona de Talamanca, Costa Rica. Tesis M. Sc.  Turrialba, CR. CATIE. 75 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284681&pid=S0002-192X201200010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Carsolio, C., N. Benhamou,  S. Haran, C. Cortez, A. Gutierrez and A. Herrera-Estrella. 1999. Role of the  Trichoderma harzianum endochitinase gene, ech42, in mycoparasitism. Appl.  Environ. Microbiol. 65:929-935.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284683&pid=S0002-192X201200010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Chang, Y. C., Y. Chang, R.  Baker, O. Kleifeld and I. Chet. 1986. Increased growth of plants in the presence  of the biological control agent Trichoderma harzianum. Plant Dis. 70:145-148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284685&pid=S0002-192X201200010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Chet, I., J. Ibar and I.  Hadar. 1997. Fungal antagonists and mycoparasites. In: The Mycota IV:  Environmental and Microbial Relationships (Wicklow DT and Soderstrom B, eds.).  New York: Springer Verlag. pp. 165-192.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284687&pid=S0002-192X201200010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Chet, I., N. Benhamou and S.  Haran. 1998. Mycoparasitism and lytic enzimes. In: Trichoderma and Gliocladium.  Kubicek, C. P. y Harman, G. E. (eds). Taylor and Francis, Londres, Reino Unido.  pp. 153-172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284689&pid=S0002-192X201200010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Contreras-Cornejo, H. A., L.  Macías-Rodríguez, C. Cortés-Penagos and J. López-Bucio. 2009. Trichoderma virens,  a plant beneficial fungus, enhances biomass production and promotes lateral root  growth through an auxin-dependent mechanism in Arabidopsis. Plant Physiol.  149(3):1.579-1.592.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284691&pid=S0002-192X201200010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Durman, S., A. Menéndez and  A. Godeas. 1999. Evaluation of Trichoderma spp. as antagonistic of Rhizoctonia  solani in vitro and as biocontrol in greenhouse tomato plants. Rev Argentina de  Microbiología. 31(1):13-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284693&pid=S0002-192X201200010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. EL-Katatny, M. H., M.  Gudelj, K. H. Robra, M. A. Elnaghy and G. M. Gübitz. 2001. Characterization of a  chitinase and an endobeta-1,3- glucanase from Trichoderma harzianum Rifai T24  involved in control of the phytopathogen Sclerotium rolfsii. Appl. Microbiol.  Biotechnol. 56(1-2):137-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284695&pid=S0002-192X201200010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. FAOSTAT. 2010. Venezuela  Producción de Papa. Disponible en línea:  <a href="http://FAOSTAT.FAO.org/site/567/">http://FAOSTAT.FAO.org/site/567/</a>&nbsp;  [Consultado 10 de diciembre de 2010].</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. García, R., A. García y C.  Garnica. 1999. ¡Cuidado con la rhizoctoniasis de la papa! Diario Frontera.  Página Agropecuaria 5-C. Mérida. 3 de enero.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284698&pid=S0002-192X201200010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. García, R., A. García y J.  Garnica. 2002. Distribución, Incidencia y Alternativas de Control de Rhizoctonia  solani en el cultivo de la papa en el estado Mérida, Venezuela. Revista  Latinoamericana de la papa. 13(1):24-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284700&pid=S0002-192X201200010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. García, R., R. Riera, C.  Zambrano, A. García y A. Maggiorani. 2003. Evaluación de Trichoderma harzianum  para el control de enfermedades fungosas desarrolladas en sistemas agrícolas  merideños. In: Memorias del XVIII Congreso Venezolano de Fitopatología, Maracay,  12-14 de noviembre de 2003.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. García, R. y J. Salas.  2005. Aspectos generales del cultivo de la papa. In: García R.; J. Salas y G.  Ramos. (Eds.). Producción de Semilla de Papa en Venezuela. Serie Manuales de  Cultivo INIA N° 5. Mérida, Venezuela. INIA. pp.18-29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284703&pid=S0002-192X201200010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. García, R., R. Riera, C.  Zambrano y L. Gutiérrez. 2006. Desarrollo de un fungicida biológico a base de  una cepa del hongo Trichoderma harzianum proveniente de la Región andina  venezolana. FITOSANIDAD10(2):115-121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284705&pid=S0002-192X201200010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Goldman, G. H., C. Hayes y  G. E. Harman. 1994. Molecular and cellular biology of biocontrol by Trichoderma  spp. Trends Biotechnol. 12(12):478-482.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284707&pid=S0002-192X201200010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Gutiérrez, A. 2006.  Estrategias para mejorar la comercialización de la papa en Venezuela ULA- FACES-  CIAAL. Mérida, Venezuela. Disponible en línea:  <a href="http://www.saber.ula.ve/db/ssaber/Edocs/centros_investigacion/ciaal/publicaciones/presentaciones/agutierrez_papa_1.pdf">http://www.saber.ula.ve/db/ssaber/Edocs/centros_investigacion/ciaal/publicaciones/presentaciones/agutierrez_papa_1.pdf</a> . [Consultado: 20 de mayo de  2011].</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Harman, G. E. 2004. Mythos  and dogmas of biocontrol. Changes in perceptions derive from research on  Trichoderma harzianum T22. Plant Dis. 84:377-393.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284710&pid=S0002-192X201200010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. HowelL, C. R., L. E. Hanson,  R. D. Stipanovic and L. S. Puckhaber. 2000. Induction of terpenoid synthesis in  cotton roots and control of Rhizoctonia solani by seed treatment with  Trichoderma virens. Phytopathol. 90(3):248-252.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284712&pid=S0002-192X201200010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Hooker, W. 1980. Compendio  de Enfermedades de la Papa. Centro Internacional de la Papa (CIP). Lima, Perú.  37-42 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284714&pid=S0002-192X201200010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">22. Igarza, Y. 2011. Obtención  de microtubérculos de papa (Solanum tuberosum L. subsp. andigenum) cv.  ‘Andinita’ en Sistemas de Inmersión Temporal. Tesis doctoral. Escuela Socialista  de Agricultura Tropical del Instituto Nacional de Investigaciones Agrícola.  Doctorado en Biotecnología Agrícola, Mención Vegetal. Maracay, Venezuela. 130 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284716&pid=S0002-192X201200010000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">23. Inbar, J., A. Menendez and  I. Chet. 1996. Hyphal interactions between Trichoderma harzianum and Sclerotinia  sclerotiorum and its role in biological control. Soil Biol. Biochem.  28(6):757-763.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284718&pid=S0002-192X201200010000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">24. Instituto Nacional de  Investigaciones Agrícolas (INIA). 2011. Manual de Agrometereología. Estadísticas  Climáticas de Mucuchíes (Mimeografiado).</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. Jakhar, S. S., M. S.  Chauhan and J. C. Duhan. 1998. Management of root rot of cotton (Gossypium  species) caused by Rhizoctonia species. Plant Dis. 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