<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0004-0622</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Archivos Latinoamericanos de Nutrición]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[ALAN]]></abbrev-journal-title>
<issn>0004-0622</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Sociedad Latinoamericana de Nutrición]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0004-06222000000100001</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Significado nutricional de los compuestos fenólicos de la dieta]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Martínez- Valverde]]></surname>
<given-names><![CDATA[Isabel]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Periago]]></surname>
<given-names><![CDATA[María Jesús]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ros]]></surname>
<given-names><![CDATA[Gaspar]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad de Murcia Facultad de Veterinaria Unidad Docente de Bromatología e Inspección de Alimentos]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Murcia ]]></addr-line>
<country>España</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>03</month>
<year>2000</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>03</month>
<year>2000</year>
</pub-date>
<volume>50</volume>
<numero>1</numero>
<fpage>5</fpage>
<lpage>18</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0004-06222000000100001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0004-06222000000100001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0004-06222000000100001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Los compuestos fenólicos constituyen uno de los grupos de micronutrientes presentes en el reino vegetal, siendo parte importante de la dieta tanto humana como animal. Constituyen un amplio grupo de sustancias químicas, considerados metabolitos secundarios de las plantas, con diferentes estructuras químicas y actividad, englobando más de 8.000 compuestos distintos. Estos compuestos tradicionalmente han sido considerados como antinutrientes, debido al efecto adverso de uno de sus componentes mayoritarios, los taninos, sobre la digestibilidad de la proteína. Sin embargo, actualmente se ha despertado un reciente interés por estos compuestos debido a sus propiedades antioxidantes y sus posibles implicaciones beneficiosas en la salud humana, tales como en el tratamiento y prevención del cáncer, enfermedad cardiovascular y otras patologías de carácter inflamatorio. Esta revisión ofrece una visión actual sobre los principales grupos de compuestos fenólicos existentes, sus efectos organolépticos en los alimentos vegetales, sus efectos fisiológicos en el cuerpo humano, su metabolismo y biodisponibilidad, así como su presencia en la dieta.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Nutritional meaning of the phenolic compounds from the diet. Phenols are one of the major groups of nonessential dietary components appearing in vegetable foods. They are a wide chemical compounds group that are considered as secondary plant metabolites, with different activity and chemical structure, including more than 8.000 difterent compounds. Phenols, has traditionally been considered as antinutritive compounds due to the adverse effect of one of their main components, tannins, on protein digestibility. However. actually there is an increased interest in these compounds because they have been associated with the inhibition of atherosclerosis and cancer. The bioactivity of phenolics may be related to their antioxidant behaviour, which is attributed to their ability to chelate metals, inhibit lipoxygenasa and scavenge free radicals. This review make a global view on the main phenolic compound groups, their organoleptic effects in vegetable foods, their physiological effects in humans, their metabolism bioavailability as well as their content in the diet.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Compuestos fenólicos]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[polifenoles]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[flavonoides]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[actividad antioxidante]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Phenolic compounds]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[flavonoids]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[antioxidant activity]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[   <B>     <P ALIGN="CENTER"><font size="4">Significado nutricional de los compuestos fen&oacute;licos de la dieta</font></P> </B><I>    <P ALIGN="CENTER">Isabel Mart&iacute;nez- Valverde. Mar&iacute;a Jes&uacute;s Periago. Gaspar Ros</P> </I>    <P ALIGN="CENTER">Unidad Docente de Bromatolog&iacute;a e Inspecci&oacute;n de Alimentos. Facultad de Veterinaria. Universidad de Murcia. Campus Universitario de Espinardo, Murcia, Espa&ntilde;a</P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">RESUMEN</B>. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los compuestos fen&oacute;licos constituyen uno de los grupos de micronutrientes presentes en el reino vegetal, siendo parte importante de la dieta tanto humana como animal. Constituyen un amplio grupo de sustancias qu&iacute;micas, considerados metabolitos secundarios de las plantas, con diferentes estructuras qu&iacute;micas y actividad, englobando m&aacute;s de 8.000 compuestos distintos. Estos compuestos tradicionalmente han sido considerados como antinutrientes, debido al efecto adverso de uno de sus componentes mayoritarios, los taninos, sobre la digestibilidad de la prote&iacute;na. Sin embargo, actualmente se ha despertado un reciente inter&eacute;s por estos compuestos debido a sus propiedades antioxidantes y sus posibles implicaciones beneficiosas en la salud humana, tales como en el tratamiento y prevenci&oacute;n del c&aacute;ncer, enfermedad cardiovascular y otras patolog&iacute;as de car&aacute;cter inflamatorio. Esta revisi&oacute;n ofrece una visi&oacute;n actual sobre los principales grupos de compuestos fen&oacute;licos existentes, sus efectos organol&eacute;pticos en los alimentos vegetales, sus efectos fisiol&oacute;gicos en el cuerpo humano, su metabolismo y biodisponibilidad, as&iacute; como su presencia en la dieta. </P> <B>     <P ALIGN="JUSTIFY">Palabras clave</B>: Compuestos fen&oacute;licos, polifenoles, flavonoides, actividad antioxidante. </P> <B>     <P ALIGN="JUSTIFY">SUMMARY</B>. </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp;</B> <B>Nutritional meaning of the phenolic compounds from the diet</B>. Phenols are one of the major groups of nonessential dietary components appearing in vegetable foods. They are a wide chemical compounds group that are considered as secondary plant metabolites, with different activity and chemical structure, including more than 8.000 difterent compounds. Phenols, has traditionally been considered as antinutritive compounds due to the adverse effect of one of their main components, tannins, on protein digestibility. However. actually there is an increased interest in these compounds because they have been associated with the inhibition of atherosclerosis and cancer. The bioactivity of phenolics may be related to their antioxidant behaviour, which is attributed to their ability to chelate metals, inhibit lipoxygenasa and scavenge free radicals. This review make a global view on the main phenolic compound groups, their organoleptic effects in vegetable foods, their physiological effects in humans, their metabolism bioavailability as well as their content in the diet. </P> <B>     <P ALIGN="JUSTIFY">Key words</B>: Phenolic compounds. flavonoids. antioxidant activity.</P> <B> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Recibido: 03-07-1999  Aceptado: 02-03-2000<FONT FACE="Arial" SIZE=2> </P>  </FONT>    <P><b>INTRODUCCION</b></P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los compuestos fen&oacute;licos o polifenoles constituyen un amplio grupo de sustancias qu&iacute;micas, considerados metabolitos secundarios de las plantas, con diferentes estructuras qu&iacute;micas y actividad. englobando m&aacute;s de 8.000 compuestos distintos. Su forma m&aacute;s frecuente es la de pol&iacute;meros o lignina insoluble, mientras que su presencia en los tejidos animales est&aacute; relacionada con el consumo e ingesti&oacute;n de alimentos vegetales. <B><SUP>(1)</B></SUP> La distribuci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos en los tejidos y c&eacute;lulas vegetales var&iacute;a considerablemente de acuerdo al tipo de compuesto qu&iacute;mico que se trate, situ&aacute;ndose en el interior de las c&eacute;lulas o en la pared celular. <B><SUP>(2)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Sus principales funciones en las c&eacute;lulas vegetales son las de actuar como metabolitos esenciales para el crecimiento y reproducci&oacute;n de las plantas, y como agentes protectores frente a la acci&oacute;n de pat&oacute;genos, siendo secretados como mecanismo de defensa. <B><SUP>(3)</P> </SUP> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los compuestos fen&oacute;licos est&aacute;n relacionados con la calidad sensorial de los alimentos de origen vegetal. tanto frescos como procesados. <B><SUP>(4)</B></SUP> Su contribuci&oacute;n ala pigmentaci&oacute;n de los  alimentos vegetales est&aacute; claramente reconocida, a trav&eacute;s de las antocianidinas, responsables de los colores rojo, azul. violeta, naranja y p&uacute;rpura de la mayor&iacute;a de las plantas y de sus productos. <B><SUP>(1,5)</B></SUP> Adem&aacute;s, la reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos hacia la formaci&oacute;n de quinonas, catalizada por las enzimas polifenol oxidasas, produce un pardeamiento enzim&aacute;tico en los alimentos,<SUP><B> (6)</B></SUP> fen&oacute;meno de vital importancia para asegurar la calidad de frutas y verduras durante el procesado. <B><SUP>(1)</B></SUP> Igualmente los compuestos fen&oacute;licos, y en concreto los taninos condensados o proantocianidinas se asocian con la astringencia que presentan muchas de las frutas comestibles antes de la maduraci&oacute;n. <B><SUP>(1)</P> </SUP> </B>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; En la actualidad este grupo de compuestos fitoqu&iacute;micos presenta un gran inter&eacute;s nutricional por su contribuci&oacute;n al mantenimiento de la salud humana. As&iacute;, muchas de las propiedades beneficiosas descritas en los alimentos de origen vegetal, asociadas principalmente a la actividad antioxidante y las propiedades antinutritivas de estos compuestos, est&aacute;n relacionadas con la presencia y con el contenido de compuestos fen&oacute;licos. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La actividad antioxidante de los compuestos fen&oacute;licos tiene inter&eacute;s desde un punto de vista tecnol&oacute;gico y nutricional. <B><SUP>(7)</B></SUP> As&iacute;, los compuestos fen&oacute;licos intervienen como antioxidantes naturales de los alimentos, por lo que la obtenci&oacute;n y preparaci&oacute;n de alimentos con un alto contenido en estos compuestos supone una reducci&oacute;n en la utilizaci&oacute;n de aditivos antioxidantes, a la vez que se obtienen alimentos m&aacute;s saludables, que incluso pueden llegar a englobarse dentro de los alimentos funcionales. Desde un punto de vista nutricional, esta actividad antioxidante se asocia con su papel protector en las enfermedades cardiovasculares y en el c&aacute;ncer as&iacute; como en procesos de envejecimiento por lo que est&aacute; siendo intensamente estudiado mediante ensayos "in vivo" e "in vitro". <B><SUP>(8)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El objetivo de esta revisi&oacute;n es proporcionar una visi&oacute;n general del aspecto nutricional los principales grupos de compuestos fen&oacute;licos presentes en la dieta. </P> <B>    <P>Estructura qu&iacute;mica y clasificaci&oacute;n</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Qu&iacute;micamente, los compuestos fen&oacute;licos son sustancias qu&iacute;micas que poseen un anillo arom&aacute;tico, un anillo benceno, con uno o m&aacute;s grupos hidr&oacute;xidos incluyendo derivados funcionales (&eacute;steres, metil &eacute;steres, glic&oacute;sidos, etc.). <B><SUP>(8)</B></SUP> La naturaleza de los polifenoles var&iacute;a desde mol&eacute;culas simples como los &aacute;cidos fen&oacute;licos hasta compuestos altamente polimerizados, como los taninos. Se presentan en las plantas en forma conjugada con uno o m&aacute;s residuos de az&uacute;car unidos a los grupos hidroxilos, aunque en algunos casos se pueden producir uniones directas entre una mol&eacute;cula de az&uacute;car y un carbono arom&aacute;tico. Por ello la forma m&aacute;s com&uacute;n de encontrarlos en la naturaleza es en forma de glic&oacute;sidos, siendo solubles en agua y solventes org&aacute;nicos. <B><SUP>(1)</B></SUP> Los az&uacute;cares asociados a los polifenoles pueden ser monosac&aacute;ridos, disac&aacute;ridos o incluso oligosac&aacute;ridos. Los compuestos a los que se encuentran unidos con m&aacute;s frecuencia son: glucosa, galactosa, arabinosa, ramnosa, xilosa, y &aacute;cidos glucur&oacute;nico y galactur&oacute;nico. Tambi&eacute;n pueden encontrarse unidos a &aacute;cidos carbox&iacute;licos, &aacute;cidos org&aacute;nicos, aminas, l&iacute;pidos y a otros compuestos fen&oacute;licos. <B><SUP>(9)</B></SUP> </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Seg&uacute;n Harbome <B><SUP>(10)</B></SUP> los compuestos fen&oacute;licos se puede agrupar en diferentes clases dependiendo de su estructura. qu&iacute;mica b&aacute;sica, describi&eacute;ndose a continuaci&oacute;n aquellas con un mayor inter&eacute;s nutricional: </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Fenoles, &aacute;cidos fen&oacute;licos y &aacute;cidos fenil ac&eacute;ticos</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Dentro de este grupo los fenoles simples como el fenol, cresol, timol y resorcinol est&aacute;n ampliamente distribuidos entre todas las especies vegetales. Igualmente, los &aacute;cidos fen&oacute;licos tales como el g&aacute;lico, vainill&iacute;nico, phidroxibenzo&iacute;co, y los aldeh&iacute;dos como la vainillina, tambi&eacute;n son abundantes en plantas superiores y helechos. Por el contrario existe poca informaci&oacute;n en la literatura cien- t&iacute;fica sobre los &aacute;cidos fenilac&eacute;ticos en los vegetales. <B><SUP>(5)</B></SUP> </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Acidos cin&aacute;micos, cumarinas, isocumarinas y cromonoles </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los &aacute;cidos cin&aacute;micos (cafe&iacute;co, fer&uacute;lico, p-cum&aacute;rico y sin&aacute;ptico) se encuentran raramente libres, ya que por regla general se hayan presentes en forma de              derivados. As&iacute; por ejemplo, el &aacute;cido cafe&iacute;co se encuentra esterificado con el &aacute;cido qu&iacute;nico como &aacute;cidos clorog&eacute;nico, isoclorog&eacute;nico, neoclorog&eacute;nico y criptoclorog&eacute;nico. <B><SUP>(5)</B></SUP> Las cumarinas e isocumarinas se encuentran generalmente en forma de glic&oacute;sido, <B><SUP>(9)</B></SUP> mientras que los cromonoles son menos conocidos, y se forman a partir de las antocianidinas ante incrementos del pH del medio. <B><SUP>(5)</B></SUP> </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Lignanos y neolignanos </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Son metabolitos de las plantas de bajo peso molecular formados por el acoplamiento oxidativo de unidades de phidroxi fenilpropano, las cuales se unen mediante puentes de hidr&oacute;geno. <B><SUP>(11)</B></SUP> Son mon&oacute;meros y d&iacute;meros del &aacute;cido hidroxicin&aacute;mico y tambi&eacute;n del alcohol cin&aacute;mico, propenilbenceno y alilbenceno. <B><SUP>(12)</B></SUP> El t&eacute;rmino lignano se aplica cuando el compuesto est&aacute; formado a partir de uniones entre el &aacute;cido y/o el alcohol, mientras que cuando se unen las mol&eacute;culas de propenilbenceno y/o alilbenceno la mol&eacute;cula resultante se denomina neolignano. <B><SUP>(11)</B></SUP> </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Flavonoides</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los flavonoides constituyen el grupo m&aacute;s importante dentro de esta clasificaci&oacute;n, dividi&eacute;ndose en varias subclases con m&aacute;s de 5000 compuestos, <B><SUP>(13)</B></SUP> siendo los polifenoles m&aacute;s distribuidos en las plantas. Son sustancias polifen&oacute;licas de bajo peso molecular que comparten el esqueleto com&uacute;n de difenilpiranos: dos anillos benceno unidos a trav&eacute;s de un anillo pirona o pir&aacute;n heteroc&iacute;clico (<a href="#fig1">Figura 1</a>). Esta estructura b&aacute;sica presenta o permite una multitud de sustituciones y variaciones en el anillo pirona dando lugar a flavonoles, flavonas, flavanonas, flavanololes, isoflavonoides, catequinas, calconas, dihidrocalconas, antocianidinas, leucoantocianidinas o flavandiol y proantocianidinas o taninos condensados (taninos no hidrolizables). Dentro de todos estos grupos las flavonas (p.e. apigenina, luteolina y diosmetina), los flavonoles (p.e. quercitina, mirecitina y kampferol) y sus glic&oacute;sidos son los compuestos m&aacute;s abundantes en vegetales. <B><SUP>(14)</B></SUP> </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Taninos</P> </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY"> &nbsp;&nbsp;&nbsp; Los taninos son compuestos fen&oacute;licos hidrosolubles con un peso molecular comprendido entre 500 Y 3000 D. Estos compuestos contienen un gran n&uacute;mero de grupos hidroxilo, entre otros grupos funcionales (1 a 2 por l00 D), siendo por tanto capaces de unirse a prote&iacute;nas y a otras macromol&eacute;culas. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los taninos pueden clasificarse en dos grupos: taninos hidrolizables y no hidrolizables o taninos condensados. Los taninos condensados tienen como n&uacute;cleo central un alcohol polih&iacute;drico como la glucosa, y grupos hidroxilo que se encuentran esterificados parcial o completamente bien con el &aacute;cido g&aacute;lico o bien con el &aacute;cido hexahidr&oacute;xidifenico, formando los galotaninos y elagitaninos, respectivamente. Tras la hidr&oacute;lisis con &aacute;cidos, bases o ciertas enzimas, los galotaninos dan glucosa y &aacute;cido g&aacute;lico.<B><SUP> (15)</B></SUP> </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Cuantificaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;liticos</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La cuantificaci&oacute;n e identificaci&oacute;n de los componentes difen&oacute;licos de la dieta ha despertado un gran inter&eacute;s por su importancia nutricional, lo que ha hecho que cada d&iacute;a sean m&aacute;s los datos que se pueden encontrar en la bibliograf&iacute;a cient&iacute;fica sobre el perfil fen&oacute;lico de los alimentos. Adem&aacute;s, la gran diversidad de compuestos fen&oacute;licos dispersos en los tejidos vegetales, as&iacute; como sus diferentes estructuras qu&iacute;micas, ha tra&iacute;do consigo la necesidad de desarrollar un gran n&uacute;mero de t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas para su identificaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n. Las primeras t&eacute;cnicas desarrolladas fueron t&eacute;cnicas espectrofotom&eacute;tricas, que si bien tienen inter&eacute;s desde el punto de vista del control de calidad, no aportan la suficiente informaci&oacute;n desde un punto de vista nutricional, por lo que ha sido necesario recurrir a t&eacute;cnicas m&aacute;s precisas, como las cromatogr&iacute;ficas, que permitan la identificaci&oacute;n individualizada de cada uno de los polifenoles de inter&eacute;s nutricional. </P> <B>     <P>T&eacute;cnicas espectrofotom&eacute;tricas</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Numerosos m&eacute;todos espectrofotom&eacute;tricos han sido desarrollados para la determinaci&oacute;n del contenido de compuestos fen&oacute;licos en materiales vegetales. Estos m&eacute;todos pueden cuantificar todos los compuestos fen&oacute;licos extra&iacute;bles como grupo 16-18 o pueden determinar una sustancia fen&oacute;lica espec&iacute;fica como la sinapina 19 o el &aacute;cido sin&aacute;pico, <B><SUP>(20)</B></SUP> o una clase determinada de compuestos fen&oacute;licos como los &aacute;cidos fen&oacute;licos. <B><SUP>(21-23)</B></SUP> Entre este tipo de t&eacute;cnicas, los m&eacute;todos usados com&uacute;nmente para determinar polifenoles en alimentos destacan el ensayo de la vainillina para la determinaci&oacute;n de compuestos flavan-3-ol, dihidrocalconas y proantocianidinas que tienen una uni&oacute;n simple en la posici&oacute;n 2,3 y poseen grupos metahidroxi libres en el anillo B <B><SUP>(16,21,24,25)</B></SUP> Y los ensayos de Folin-Denis <B><SUP>(16)</B></SUP> y Folin-Cicocalteu para la cuantificaci&oacute;n de polifenoles totales en alimentos vegetales y en bebidas. <B><SUP>(23,26,27)</B></SUP> </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Ensayos ultravioletas </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Numerosos estudios se han realizado para desarrollar t&eacute;cnicas r&aacute;pidas de cuantificaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos mediante ensayos ultravioletas. Cada grupo de compuestos fen&oacute;licos se caracteriza por tener una o varias absorbancias m&aacute;ximas a distintas longitudes de onda dentro del espectro ultravioleta. <B><SUP>(1)</B></SUP> As&iacute;, los fenoles simples tienen una absorbancia m&aacute;xima entre 220 y 280 nm, <B><SUP>(28)</B></SUP> mientras que los compuestos fen&oacute;licos relacionados presentan una amplia variaci&oacute;n en la longitud de onda a la cual presentan una absorbancia m&aacute;xima. Una de las t&eacute;cnicas m&aacute;s empleadas dentro de este grupo es la determinaci&oacute;n del &aacute;cido clorog&eacute;nico, el cual es cuantificado tras su extracci&oacute;n con alcohol et&iacute;lico y posterior lectura de la absorbancia m&aacute;xima a una longitud de onda de 325-328 nm. <B><SUP>(29)</B></SUP> </P> <B>    <P>T&eacute;cnicas cromatogr&aacute;ficas</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Las t&eacute;cnicas cromatogr&aacute;ficas han permitido la separaci&oacute;n, aislamiento, purificaci&oacute;n e identificaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos, <B><SUP>(30,31)</B></SUP> as&iacute; como el estudio de la interacci&oacute;n entre los polifenoles y otros componentes de los alimentos. <B><SUP>(32)</B></SUP> Las t&eacute;cnicas de cromatograf&iacute;a en papel y en capa fina, son empleadas para la purificaci&oacute;n y aislamiento de compuestos fen&oacute;licos en los alimentos, sobre todo para la determinaci&oacute;n de y la determinaci&oacute;n de &aacute;cidos fen&oacute;licos respectivamente. <B><SUP>(30)</B></SUP> </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Hoy en d&iacute;a, las t&eacute;cnicas de cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n (HPLC) son las m&aacute;s empleadas para la separaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos. Existe distintos soportes y fases m&oacute;viles que permiten el an&aacute;lisis de antocianinas, procianidinas, flavonas y &aacute;cidos fen&oacute;licos. La utilizaci&oacute;n del detector de photo-diodo array facilita la detecci&oacute;n de estos compuestos por HPLC, al utilizar de forma conjunta el tiempo de retenci&oacute;n y el espectro ultra violeta para la identificaci&oacute;n de los picos. <B><SUP>(33)</B></SUP> Mediante el empleo de HPLC, podemos determinar un gran n&uacute;mero de polifenoles de inter&eacute;s nutricional, como fenoles simples, &aacute;cidos fen&oacute;licos y sus derivados, y los distintos flavonoides, aunque esta t&eacute;cnica requiere la utilizaci&oacute;n de m&eacute;todos de extracci&oacute;n optimizados a cada uno de los compuestos que se vayan a analizar. <B><SUP>(1)</B></SUP> Las t&eacute;cnicas de HPLC han sido utilizadas para la caracterizaci&oacute;n de los polifenoles en una gran variedad de extractos vegetales, <B><SUP>(29,34-39)</B></SUP> frutas <B><SUP>(34,39-43)</B></SUP> zumos, <B><SUP>(14,39,44-46)</B></SUP> aceite de oliva, <B><SUP>(47)</B></SUP> vinos y otras bebidas. <B><SUP>(14,27,48-50)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Actualmente, la utilizaci&oacute;n de HPLC con detecci&oacute;n por photo diodo array y acoplado a un detector de masa se ha empleado para la cuantificaci&oacute;n de flavonoles, flavonas y flavononas en alimentos. En esta t&eacute;cnica, las &aacute;reas del pico de cada uno de los compuestos a investigar se emplean para la cuantificaci&oacute;n, mientras que el detector de masas se utiliza para incrementar la especificidad del m&eacute;todo. <B><SUP>(39)</P> </SUP>    <P ALIGN="left">Efecto de los compuestos fen&oacute;liticos en la calidad organol&eacute;ptica de los alimentos </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los compuestos fen&oacute;licos intervienen en las caracter&iacute;sticas organol&eacute;pticas de las frutas y verduras, al intervenir en gran medida en el color natural y en el sabor que estas poseen. <B><SUP>(5)</B></SUP> </P> <B>     <P ALIGN="JUSTIFY">Contribuci&oacute;n al color</B> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los flavonoides son los responsables del color natural de los alimentos. Entre ellos las antocianinas son los responsables de los colores rosa, escarlata, rojo, malva, azul y violeta de los vegetales, zumos de frutas y vinos, <B><SUP>(51)</B></SUP> y se presentan en forma de glic&oacute;sidos como antocianos. Las antocianinas son compuestos muy inestables, por lo que la p&eacute;rdida de su color se puede producir durante el procesado, almacenamiento y congelaci&oacute;n de las distintas frutas y vegetales. <B><SUP>(1)</P> </B></SUP>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Las coloraciones amarillas o marfiles pueden ser debidas a la presencia de flavonoles, flavonas, calconas, flavononas e isoflavononas. <B><SUP>(5)</B></SUP> Sin embargo, se ha observado que muchos de estos compuestos carecen de color en estado natural pero pueden convertirse en compuestos coloreados bajo determinadas condiciones en la manipulaci&oacute;n y procesado de los distintos vegetales. <B><SUP>(1,5)</B></SUP> Los flavonoles (kaempferol, quercitina y mirecitina) contribuyen al color del t&eacute; verde <B><SUP>(1)</B></SUP> mientras que las flavonas y los flavonoles no intervienen claramente en las coloraciones de las plantas al menos que est&eacute;n presentes en altas concentraciones como ocurre en la piel de la cebolla.<B><SUP>  (37,38)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Adem&aacute;s, de forma general, los polifenoles pueden quelar metales modificando la coloraci&oacute;n natural de los alimentos de manera que los quelatos de hierro son los responsables de coloraciones azules a negras, mientras que los quelatos de aluminio proporcionan coloraciones amarillo brillante o marrones. <B><SUP>(5,52)</P> </SUP>     <P ALIGN="JUSTIFY">Sabor amargo</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Las tlavononas son los compuestos responsables del sabor amargo en los c&iacute;tricos. As&iacute;, la naringina es el componente amargo mayoritario del pomelo, mientras que la neohesperidina lo es de la naranja amarga. Adem&aacute;s, ciertos glic&oacute;sidos flavan&oacute;nicos amargos o ins&iacute;pidos pueden transformarse por apertura del anillo en calconas (con sabor dulce ), las cuales por hidrogenaci&oacute;n posterior se transforman en dihidrocalconas, con poder edulcorante igualo superior al de la sacarina. <B><SUP>(5)</B></SUP> Otros compuestos fen&oacute;licos, entre los que destaca el &aacute;cido clor&oacute;genico, han sido asociados al sabor amargo de la cerveza, el vino y la sidra. <B><SUP>(1)</B></SUP> Mientras que los &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos y sus derivados son responsables del sabor amargo de los ar&aacute;ndanos. <B><SUP>(53)</B></SUP> </P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Sabor astringente </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Las proantocianidinas o taninos condensados constituyen la principal fracci&oacute;n fen&oacute;lica responsable de las caracter&iacute;sticas de astringencia de los alimentos vegetales, aunque la intensidad de estas sensaciones depende del peso molecular del compuesto presente en el alimento, observ&aacute;ndose que s&oacute;lo los taninos con un peso molecular entre 500 y 3000, pueden desarrollar una sensaci&oacute;n de astringencia. <B><SUP>(54)</B></SUP> Paneles de catadores han demostrado que las proantocianidinas tetram&eacute;ricas son m&aacute;s amargas, mientras que las m&aacute;s polim&eacute;ricas son m&aacute;s astringentes, cuando ambas son adicionadas en la misma cantidad. <B><SUP>(46) </P> </B></SUP>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Se ha observado que durante la maduraci&oacute;n se produce una p&eacute;rdida en la astrigencia de los frutos que est&aacute; asociada a una disminuci&oacute;n del contenido en taninos. <B><SUP>(24)</B></SUP> As&iacute;, el sabor astringente es t&iacute;pico de las manzanas inmaduras, mientras que las maduras, pobres en compuestos fen&oacute;licos, no presentan este sabor. <B><SUP>(5)</B></SUP> Distintos mecanismos han sido estudiados para explicar esta p&eacute;rdida de la astringencia. Seg&uacute;n Goldstein y Swain. <B><SUP>(24)</B></SUP> este fen&oacute;meno se debe a la polimerizaci&oacute;n de los taninos y su consecuente p&eacute;rdida de capacidad para precipitar prote&iacute;nas, mientras que otros autores lo han relacionado con la formaci&oacute;n de quelatos entre los taninos y distintas macromol&eacute;culas. <B><SUP>(55)</B></SUP> </P> <B>    <P>Pardeamiento </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El pardeamiento de las frutas y vegetales est&aacute; tambi&eacute;n relacionado con el contenido en compuestos fen&oacute;licos. As&iacute;, la formaci&oacute;n de pigmentos amarillos y marrones durante la manipulaci&oacute;n y procesado de los alimentos vegetales, est&aacute; controlada por los niveles de polifenoles, la presencia de ox&iacute;geno y la actividad de la polifenol oxidasa. <B><SUP>(6)</B></SUP> Esta enzima contiene cobre y cataliza la reacci&oacute;n entre un grupo fenol y el ox&iacute;geno para dar agua y quinona, compuesto responsable de los pigmentos amarillos y marrones. <B><SUP>( l,46)</P> </B></SUP>    <P><b>Efectos fisiol&oacute;gicos beneficiosos asociados a los compuestos fen&oacute;licos</b> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><b>Efecto sobre los macronutrientes</b> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Algunos polifenoles son considerados antinutrientes ya que pueden formar complejos con las prote&iacute;nas, almid&oacute;n y enzimas digestivas, causando una reducci&oacute;n en el valor nutritivo de los alimentos. <B><SUP>(5)</B></SUP> Este efecto se ha asociado generalmente a los taninos ya que los taninos hidrolizados se encuentran en cantidades trazas en los alimentos que se consumen habitualmente, se consideran a los taninos condensados o proantocianidinas como principal antinutrientc entre todos los polifenoles. <B><SUP>(15)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Numerosos estudios realizados en animales de granja y experimentaci&oacute;n para evaluar el efecto antinutritivo de los taninos debido a su actuaci&oacute;n sobre las prote&iacute;nas, han mostrado que estos compuestos intervienen negativamente sobre la ingesta de alimento, la tasa de crecimiento, la digestibilidad de la prote&iacute;na, la disponibilidad de los amino&aacute;cidos y sobre las distintas producciones de estos animales, pudiendo incluso llegar a ocasionar la muerte. <B><SUP>(15)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Para que se produzca la uni&oacute;n entre los taninos y las prote&iacute;nas se requieren mol&eacute;culas con un peso superior a 350 D, por lo que un flavonoide dim&eacute;rico o una mol&eacute;cula de &aacute;cido el&aacute;gico ser&iacute;an suficientes para formar este complejo. <B><SUP>(56)</B></SUP> La uni&oacute;n se realiza mediante enlaces por puente de hidr&oacute;geno entre los grupos hidroxilos de los taninos y los grupos carboxilos de los enlaces pept&iacute;dicos de las prote&iacute;nas, presentando los taninos una alta afinidad por las prote&iacute;nas ricas en prolina. <B><SUP>(57)</P> </SUP> </B>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Adem&aacute;s del efecto antinutritivo, la formaci&oacute;n de complejos entre los taninos y las prote&iacute;nas supone un gran problema tecnol&oacute;gico, ya que estos complejos solubles pueden dar lugar a complejos coloidales, que pueden llegar a hacerse incluso m&aacute;s grandes con la subsiguiente sedimentaci&oacute;n. Este hecho se a ha observado en bebidas, dando lugar a un enturbamiento, y afectando por tanto a su vida comercial. Ha sido descrito en  cervezas, vinos, zumos de frutas, caf&eacute;s y t&eacute;s. <B><SUP>(58)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los taninos pueden unir prote&iacute;nas end&oacute;genas en el intestino, principalmente enzimas digestivas, por lo que tambi&eacute;n afectan a la absorci&oacute;n de otros macronutrientes, debido principalmente a la inhibici&oacute;n de las enzimas involucradas en el proceso digestivo <B><SUP>(59, </SUP><SUP>60)</SUP></B> y las enzimas microbianas que intervienen en la fermentaci&oacute;n. <B><SUP>(61)</B></SUP> <B> </P>     <P>Efectos sobre la biodisponibilidad mineral</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los polifenoles est&aacute;n reconocidos como antinutrientes de distintos minerales, ya que tienen la capacidad de quelar cationes divalentes, principalmente Fe y Zn, a trav&eacute;s de su uni&oacute;n a los grupos hidroxilos y carboxilos, reduciendo la biodisponibilidad de los mismos en el intestino. <B><SUP>(62,63)</B></SUP> Los compuestos fen&oacute;licos son liberados del alimento durante la digesti&oacute;n y puede unirse al hierro en el lumen intestinal haci&eacute;ndolo no biodisponible. <B><SUP>(64)</B></SUP> La capacidad de quelar este cati&oacute;n var&iacute;a de unos compuestos fen&oacute;licos a otros al estar directamente relacionada con la estructura qu&iacute;mica. As&iacute;, la reducci&oacute;n en la biodisponibilidad del Fe se encuentra relacionada con la presencia en la dieta de los flavonoides monom&eacute;ricos (catequinas) y &eacute;steres del &aacute;cido g&aacute;lico presentes en el t&eacute;, <B><SUP>(65,66)</B></SUP> de las catequinas del cacao, <B><SUP>(67)</B></SUP> del &aacute;cido clorog&eacute;nico del caf&eacute;, <B><SUP>(49,68)</B></SUP> de los &aacute;cidos fen&oacute;licos, flavonoides monom&eacute;ricos y polim&eacute;ricos de los <B><SUP>(69)</B></SUP> y de los taninos del sorgo y de la habas. <B><SUP>(15)</B></SUP> Estudios realizados por Hurrell y col. <B><SUP>(63)</B></SUP> han demostrado que la presencia de polifenoles en t&eacute; y en distintas infusiones de hierbas, causan una reducci&oacute;n en la biodisponibilidad del hierro del pan enriquecido con sulfato ferroso, cuando se administran de forma conjunta durante el desayuno, siendo est&aacute; reducci&oacute;n m&aacute;s acusada en el t&eacute; que en otras infusiones como consecuencia del mayor contenido en polifenoles. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El efecto de los polifenoles sobre la absorci&oacute;n de Zn y Cu ha recibido poca atenci&oacute;n, aunque la informaci&oacute;n disponible sugiere que tales compuestos pueden quelar dichos minerales, afectando por tanto a su biodiponibilidad. <B><SUP>(70)</B></SUP> Estudios realizados por Ganji and Kies, <B><SUP>(71)</B></SUP> mostraron que el consumo de t&eacute; provocaba un efecto peque&ntilde;o pero no significativo sobre el balance de Zn en humanos. Sin embargo, estudios posteriores realizados en ratas <B><SUP>(72)</B></SUP> no mostraron efecto alguno del t&eacute; sobre la absorci&oacute;n de Zn. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; De forma general, los polifenoles estudiados y recogidos en la bibliograf&iacute;a cient&iacute;fica <B><SUP>(62,63,73)</B></SUP> se pueden ordenar del siguiente modo, con relaci&oacute;n a su mayor o menor efecto sobre la biodisponibilidad mineral: &aacute;cido g&aacute;lico&gt; &aacute;cido clorog&eacute;nico = &aacute;cido cafe&iacute;co &gt; catequinas. <B><SUP>(73)</B></SUP> </P> <B>    <P>Compuestos fen&oacute;licos y actividad antioxidante</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La capacidad antioxidante descrita para distintos polifenoles se puede considerar como la actividad biol&oacute;gica responsable del efecto preventivo que se les atribuye sobre determinadas enfermedades frecuentes en los pa&iacute;ses desarrollados como son la enfermedad cardiovascular y el c&aacute;ncer epitelial. <B><SUP>(74,75)</P> </SUP> </B>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los antioxidantes son compuestos que inhiben o retrasan la oxidaci&oacute;n de otras mol&eacute;culas mediante la inhibici&oacute;n de la propagaci&oacute;n de la reacci&oacute;n de oxidaci&oacute;n. Los antioxidantes pueden clasificarse en naturales o sint&eacute;ticos, estando estos &uacute;ltimos en desuso debido a estudios que les atribuyen efectos carcin&oacute;genos. <B><SUP>(76,77)</B></SUP> Este hecho ha despertado un creciente inter&eacute;s en el estudio de los antioxidantes naturales entre los que se encuentran distintos compuestos fen&oacute;licos. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El comportamiento antioxidante de los compuestos fen&oacute;licos parece estar relacionado con su capacidad para quelar metales, inhibir la lipoxigenasa y captar radicales .libres, aunque en ocasiones tambi&eacute;n pueden promover reacciones de oxidaci&oacute;n "in vitro". Los compuestos fen&oacute;licos act&uacute;an como prooxidantes quelando metales, bien de manera que mantienen o incrementan su actividad catal&iacute;tica o bien reduciendo metales, incrementando as&iacute; su capacidad para formar radicales libres de los per&oacute;xidos. <B><SUP>(78)</B></SUP> </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Para que un compuesto fen&oacute;lico sea clasificado como antioxidante debe cumplir dos condiciones b&aacute;sicas. La primera es que cuando se encuentre en una concentraci&oacute;n baja con relaci&oacute;n al sustrato que va a ser oxidado pueda retrasar, enlentecer o prevenir la autooxidaci&oacute;n o la oxidaci&oacute;n mediada por un radical libre. La segunda es que el radical formado tras el secuestro sea estable y no pueda actuar en oxidaciones posteriores. Entre los compuestos fen&oacute;licos con una reconocida actividad antioxidante destacan los flavonoides, los &aacute;cidos fen&oacute;licos (principalmente hidroxicin&aacute;mico, hidroxibenz&oacute;ico, caf&eacute;ico, clorog&eacute;nico), taninos (elligataninos), calconas y cumarinas, <B><SUP>(79,80)</B></SUP> los cuales constituyen la fracci&oacute;n polifen&oacute;lica de una gran diversidad de alimentos (<a href="#tab1">Tabla 1</a>). </P> <B>     <P ALIGN="CENTER"><a name="tab1"></a>TABLA</B> <B>1</P> </B>    <P ALIGN="CENTER">Fuentes diet&eacute;ticas de flavonoides y otros compuestos fen&oacute;licos con actividad antioxidante</P> <FONT FACE="Arial" SIZE=2></FONT>     <div align="center">       <center> <TABLE BORDER="1" CELLSPACING=1> <TR><TD VALIGN="TOP"> <FONT FACE="Arial">    <P align="center">Compuesto</FONT></TD> <TD VALIGN="TOP"> <FONT FACE="Arial">    <P align="center">Alimentos</FONT></TD> </TR> <TR><TD VALIGN="TOP"> <FONT FACE="Arial">     <P>Flavonoides</P>     <P>Acidos cin&aacute;micos</P>     <P>y sus derivados</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Cumarinas</P>     <P>Calconas</P>      <P>Taninos hidrolizables</FONT></TD> <TD VALIGN="TOP"> <FONT FACE="Arial">     <P>Vegetales, vinos, frutas, t&eacute;</P>      <P>&nbsp;</P>      <P>Caf&eacute;, frutas, t&eacute;, sherry</P>     <P>Aceite de oliva, avena, especias, boniato</P>     <P>Frutas y vegetales coloreados, t&eacute;, aceite comestibles</P>     <P>T&eacute;, caf&eacute;, vino</P> </FONT></TD> </TR> </TABLE>  </center>   </div>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Para comprender mejor la actividad fisiol&oacute;gica de estos compuestos se debe tener en cuenta que la capacidad antioxidante var&iacute;a en funci&oacute;n del grupo de compuestos estudiados y de su solubilidad en fase acuosa o lip&iacute;dica. Asimismo, la gran diversidad de m&eacute;todos empleados proporcionan resultados num&eacute;ricos distintos dif&iacute;ciles de comparar. Para solventar este problema en la mayor&iacute;a de los estudios cient&iacute;ficos en los que se valora la actividad antioxidante bien de compuestos puros, bien de extractos vegetales, se utiliza el Trolox (&aacute;cido 6-hidroxi-2,5,7 ,S-tetrametilcroman-2-carboxilico) como patr&oacute;n, sustancia que se caracteriza por ser una an&aacute;logo hidrosoluble de la vitamina E. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El ensayo para medir la actividad antioxidante total o la actividad antioxidante expresada en equivalentes Trolox (TEAC) constituye uno de los m&eacute;todos que aparece referenciado con gran frecuencia en la bibliograf&iacute;a cient&iacute;fica para evaluar la actividad antioxidante de los compuestos fen&oacute;licos. <B><SUP>(81,82)</B></SUP> El TEAC se define como la concentraci&oacute;n de una soluci&oacute;n de Trolox con un potencial antioxidante  equivalente a una concentraci&oacute;n 1mM del compuesto fen&oacute;lico a estudiar. Este m&eacute;todo mide la concentraci&oacute;n de una soluci&oacute;n de Trolox con un potencial antioxidante equivalente a una concentraci&oacute;n est&aacute;ndar del compuesto estudiado. El TEAC refleja la habilidad de los compuestos antioxidantes, capaces de donar hidr&oacute;geno, para secuestrar el cati&oacute;n radical ABTS <SUP>•+</SUP>. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La actividad antioxidante de los compuestos fen&oacute;licos var&iacute;a en funci&oacute;n del grupo de compuestos estudiado y de su solubilidad tal y como se describe a continuaci&oacute;n: </P> <B>    <P>Actividad antioxidante de los flavonoides en fase acuosa </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los flavonoles poseen una gran capacidad antioxidante como resultado de su estructura qu&iacute;mica. As&iacute; el grupo <I>0- </I>difenol en el anillo B, el doble enlace en las posiciones 2 y 3 conjugados con la funci&oacute;n 4-oxo, y los grupos hidroxilos en las posiciones 3 y 5 (<a href="#fig1">Figura 1</a>), presentan capacidad para secuestrar radicales libres. <B><SUP>(9,83,84)</B></SUP> Por ello la quercitina, con todas estas caracter&iacute;sticas en su estructura qu&iacute;mica, constituye uno de los m&aacute;s potentes antioxidantes naturales. </P> <B> </B> <FONT FACE="Arial" SIZE=2><a name="fig1"></a>    <P ALIGN="center"><IMG SRC="/img/fbpe/alan/v50n1/art1img1.gif" WIDTH=469 HEIGHT=324 align="center"></P> </FONT>     
<P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La quercitina es un flavonoide con un n&uacute;mero id&eacute;ntico de grupos hidroxilo en la misma posici&oacute;n que la catequina, conteniendo tambi&eacute;n un 2,3 doble enlace en el anillo C y la funci&oacute;n 4-oxo. Esta ligera modificaci&oacute;n en la estructura ocasiona una considerable diferencia en sus valores de TEAC, al obtenerse valores de 4.7mM en el caso de la quercitina y de 2.4 mM para la catequina. Sin embargo, los glicosidos de los favonoles no son antioxidantes presentando &uacute;nicamente actividad antioxidante su correspondiente aglicona. <B><SUP>(83,84)</B></SUP> Este hecho se debe a que la mol&eacute;cula de az&uacute;car reduce la eficacia antioxidante de los grupos hidroxilos adyacentes debido a ser un obst&aacute;culo est&eacute;rico. <B><SUP>(79)</B></SUP> As&iacute; se ha visto que cuando se produce el bloqueo del grupo 3-hidroxil del anillo C por la uni&oacute;n de un az&uacute;car, como ocurre en la rutina (glic&oacute;sido de la quercititna) el valor de TEAC del glic&oacute;sido es mucho menor que el de su correspondiente aglicona (4. 7mM en quercitina frente a 2.4mM para la rutina). <B><SUP>(85)</P> </SUP>    <P ALIGN="JUSTIFY">Actividad antioxidante de los flavonoides frente a los radicales originados en una fase lipof&iacute;lica </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Numerosos estudios han sido llevados a cabo en sistemas lipof&iacute;licos para determinar los criterios estructurales de los flavonoides que determinan la estabilidad de las dispersiones de &aacute;cidos grasos, l&iacute;pidos, aceites, lipoprote&iacute;nas de baja densidad frente a la oxidaci&oacute;n. El modo espec&iacute;fico de inhibir la oxidaci&oacute;n de cada uno de los compuestos fen&oacute;licos no est&aacute; claro, pero pueden actuar de tres formas diferentes: quelando Cu a trav&eacute;s de la estructura orto-dihidroxy fen&iacute;lica, capturando radicales alcoxy y peroxi, al actuar como donantes de hidr&oacute;geno y regenerando el a-tocoferol mediante la reducci&oacute;n del radical <font FACE="Times New Roman">&#945;</font>-tocoferoxyl. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El radical fenoxyl formado mediante la reacci&oacute;n de un antioxidante fen&oacute;lico con un radicallip&iacute;dico es estabilizado mediante de localizaci&oacute;n de electrones desapareados alrededor del anillo arom&aacute;tico. La sustituci&oacute;n o-dihidroxy en el anillo B es importante para estabilizar los radicales libres formados. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La comparaci&oacute;n de un rango de flavononas y flavonas en su capacidad para incrementar el periodo de inducci&oacute;n de la autooxidaci&oacute;n de las grasas ha llevado a la conclusi&oacute;n de que la actividad antioxidante &oacute;ptima est&aacute; asociada con diferentes rangos estructurales entre los que destacan la presencia en la mol&eacute;cula de grupos fen&oacute;licos m&uacute;ltiples como la configuraci&oacute;n 3'-4'-ortodihidroxy en el anillo B o la presencia del grupo 4-carbonilo en el anillo C. Sin embargo, en contraste con las interacciones en la fase acuosa el doble enlace 2,3 es considerado menos importante. <B><SUP>(85)</P> </SUP>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Actividad antioxidante de los &aacute;cidos fen&oacute;licos </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los &aacute;cidos fen&oacute;licos (principalmente hidroxicin&aacute;mico, hidroxibenz&oacute;ico, caf&eacute;ico, clorog&eacute;nico) y sus &eacute;steres, tambi&eacute;n presentan actividad antioxidante, la cual va a depender del n&uacute;mero de grupos hidroxi presentes en la mol&eacute;cula. <B><SUP>(86)</B></SUP> </P> <I>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; </I> <I>Actividad antioxidante de los &aacute;cidos hidroxibenz&oacute;icos: </I>se ha observado que dentro de este grupo de compuestos los &aacute;cidos monohidroxibenzoicos orto y para no muestran actividad antioxidante como agentes donantes de hidrogeno frente a radicales originados en fases acuosas, mientras que los m-hidroxi benzoicos tienen una actividad antioxidante de 0.84 mM. Sin embargo, los monohidrixibenzoatos son efectivos secuestrando radicales hidroxilo, debido a su tendencia a la hidroxilaci&oacute;n y a la alta reactividad de este radical. <B><SUP>(87)</B></SUP> Por el contrario, los &aacute;cidos dihidroxibenzoicos muestran una respuesta antioxidante dependiente de las posiciones de los grupos hidroxilos en el anillo. As&iacute;, el &aacute;cido 2,3 dihidroxibenzoico, con grupos hidroxilo en las posiciones orto y meta, muestras valores de TEAC pr&oacute;ximos a 1.46 mM, los cuales son ligeramente superiores (1.2.mM) a los obtenidos para el &aacute;cido 3,4-dihidroxibenzoico, con sustituciones en las posiciones meta y para. <B><SUP>(86)</B></SUP> </P> <I>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; </I>  <I>Actividad antioxidante de los &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos: </I> Los &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos se encuentran ampliamente distribuidos en los tejidos vegetales, siendo los m&aacute;s importantes el &aacute;cido cum&aacute;rico, el cafe&iacute;coy el fer&uacute;lico. Se ha observado que la introducci&oacute;n de un grupo etil&eacute;nico entre el anillo fenol, portador de un grupo hidroxilo, y el grupo carboxilado, como ocurre en el &aacute;cido p-cum&aacute;rico tiene un efecto positivo sobre las propiedades reductoras del grupo OH, cuando se compara con el &aacute;cido cin&aacute;mico. La actividad antioxidante del &aacute;cido cafeico es de 1.26 mM, habi&eacute;ndose observado que la glicosilaci&oacute;n de su grupo carboxilato no influye en el valor de TEAC. <B><SUP>(1,24)</SUP></B> La investigaci&oacute;n del potencial antioxidante de los &aacute;cidos fen&oacute;licos en sistema 1ipof&iacute;licos ha mostrado que todos los monofenoles, excepto el BHA, son menos efectivos que los polifenoles. La introducci&oacute;n de un segundo grupo hidroxilo en la posici&oacute;n orto, como ocurre en el &aacute;cido cafe&iacute;co, o para, mejora la  actividad antioxidante en los sistemas lip&iacute;dicos, siendo por tanto estos compuestos fen&oacute;licos m&aacute;s eficientes que sus correspondientes monofeno1es (&aacute;cido p-hidroxibenzoico y p- cum&aacute;rico). Estudios en sistemas l&iacute;pidicos han mostrado que el &aacute;cido sin&aacute;pico tiene un mayor efecto protector que el &aacute;cido fer&uacute;lico, el cual a su vez es m&aacute;s activo que el p-cum&aacute;rico. Asimismo han observado que el &aacute;cido siringico tiene m&aacute;s capacidad antioxidante que los &aacute;cidos vainillinico y p- hidroxibenzoico. <B><SUP>(86)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Recientemente, tambi&eacute;n se ha descrito la capacidad antioxidante de las proantocianinas o taninos condensados y los taninos hidrolizab1es (elligataninos) de alto peso molecular, que llega a ser incluso 15 &oacute; 30 veces superior a la atribu&iacute;da a los fenoles simples. Como estos polifenoles no son absorbidos, pueden desarrollar su actividad antioxidante en el tracto gastrointestinal y proteger a las prote&iacute;nas, l&iacute;pidos e hidratos de carbono del da&ntilde;o oxidativo durante la digesti&oacute;n, actuando como antioxidantes solubles. <B><SUP>(88)</B></SUP> </P> <B>    <P>Compuestos fen&oacute;licos y su relaci&oacute;n con diversas patolog&iacute;as </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Adem&aacute;s de las propiedades biol&oacute;gicas de los compuestos fen&oacute;licos, se les han atribuido a los mismos actividades farmacol&oacute;gicas y m&eacute;dicas relacionadas con la prevenci&oacute;n y/o mejora del estado de salud. Entre &eacute;stas destacan sus efectos vasodilatadores, anticarcinog&eacute;nicos, antiinflamatorios, bactericidas, estimuladores de la respuesta inmune, antialergicos, antivirales, efectos estrog&eacute;nicos e inhibidores de la fosfolipasa A2, de la cicloxigenasa, 1ipooxigenasa, glutation reductasa y xantina oxidasa. <B><SUP>(86)</P> </B></SUP>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los polifenoles pueden interferir distintas etapas que conducen al desarrollo de tumores malignos al proteger al ADN del da&ntilde;o oxidativo, inactivando de este modo los carcin&oacute;genos, inhibiendo la expresi&oacute;n de los genes mut&aacute;genos y de la actividad de las enzimas encargadas de la activaci&oacute;n de procarcin&oacute;genos, y activando los sistemas enzim&aacute;ticos responsables de la detoxificaci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos. <B><SUP>(9)</B></SUP> Numerosos estudios in vivo con animales se han desarrollado para establecer los efectos anticarcinog&eacute;nicos de los po1ifenoles, mediante aplicaciones t&iacute;picas, o bien tras la administraci&oacute;n de dietas enriquecidas con polifenoles y/o con alto contenido en estos compuestos, siendo necesarias altas concentraciones para poder observar este tipo de respuesta. Diferentes estudios epidemiol&oacute;gicos han puesto en evidencia el efecto preventivo de los polifenoles frente al c&aacute;ncer de vejiga <B><SUP>(89)</B></SUP> as&iacute; como frente a otros tipos de c&aacute;nceres, como el de pulm&oacute;n, <B><SUP>(90)</B></SUP> aunque en algunos casos los resultados obtenidos pueden no ser concluyentes o ser por el contrario contradictorio. Por lo que este efecto de los polifenoles deben ser verificado y explorado con el fin de establecer una estrategia sobre la quimioprevenci&oacute;n. </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Fuentes de compuestos fen&oacute;liticos en la dieta </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La mayor&iacute;a de las plantas, sino todas ellas, contienen polifenoles los cuales est&aacute;n presentes en cantidades diferentes dependiendo de la planta y del grupo de compuesto fen&oacute;lico estudiado, diferenci&aacute;ndose estos contenidos de acuerdo a la parte del vegetal que se trate, bien sea fruto, hoja o parte le&ntilde;osa de la planta. En general, las hojas, flores, frutas y otros tejidos de las plantas contienen glic&oacute;sidos. <B><SUP>(1,91)</B></SUP> Los tejidos le&ntilde;osos contienen agliconas, las semillas pueden contener ambas formas 1, mientras que las ra&iacute;ces y tub&eacute;rculos contienen escasas concentraciones de flavonoides, a excepci&oacute;n de ciertas plantas como las cebollas. <B><SUP>(37-39,91)</B></SUP> En la <a href="#tab2">Tabla 2</a> se muestra la concentraci&oacute;n relativa de flavonoides y &aacute;cido cin&aacute;micos en distintos tejidos vegetales seg&uacute;n Pratt <B><SUP>(79)</B></SUP> De todos los grupos mencionados en el apartado de clasificaci&oacute;n, los principales polifenoles presentes en los alimentos vegetales son: &aacute;cidos fen&oacute;licos, flavonoides, lignanos, estilbenos, cumarinas y taninos. <B><SUP>(13)</P> </B></SUP>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; A continuaci&oacute;n se detallan los principales compuestos fen&oacute;licos presentes en los alimentos de origen vegetal que forman parte de la dieta. </P> <B><a name="tab2"></a>    <P ALIGN="CENTER">TABLA 2</P> </B>    <P ALIGN="CENTER">Concentraci&oacute;n relativa de flavonoides y &aacute;cidos cin&aacute;micos en distintos tejidos vegetales</P> <FONT FACE="Arial" SIZE=2></FONT>     <div align="center">       <center> <TABLE BORDER="1" CELLSPACING=1 WIDTH=542 height="225"> <TR><TD WIDTH="176" VALIGN="TOP" height="17"> <FONT FACE="Arial">    <P align="center">Tejido</FONT></TD> <TD WIDTH="350" VALIGN="TOP" height="17"> <FONT FACE="Arial">    <P align="center">Contenido relativo</FONT></TD> </TR> <TR><TD WIDTH="176" VALIGN="TOP" height="184"> <FONT FACE="Arial">     <P>Frutas</P>      <P>&nbsp;</P>      <P>Hojas</P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;      <P>Corteza y madera</FONT></TD> <TD WIDTH="350" VALIGN="TOP" height="184"> <FONT FACE="Arial">     <P>Acido cin&aacute;mico &gt; catequinas &gt;</P>     <P>leucoantocianidinas &gt; flavonoles</P>     <P>Flavonoles &#8776; &aacute;cido cin&aacute;mco &gt; catequinas &#8776;</P>     <P>leucoantocianidinas</P>     <P>Catequina &#8776; leucoantocianidinas &gt; flanonoles &gt; &aacute;cido cin&aacute;mico</FONT></TD> </TR> </TABLE>  </center>   </div> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Presencia de compuestos fen&oacute;licos en legumbres y cereales</B> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; En legumbres y cereales los principales compuestos fen&oacute;licos son los flavonoides, &aacute;cidos fen&oacute;licos y taninos. El contenido de polifenoles en cereales es &lt; 1 % de la materia seca, excepto para alguna variedad de sorgo <I>(Sorghum bicolor) </I>en los que alcanzan contenidos superiores al 10%. <B><SUP>(9,91)</B></SUP> La harina de arroz contiene 85.6 mg/100 g de &aacute;cidos fen&oacute;licos, siendo este contenido similar al que tienen las harinas de trigo y avena respectivamente. <B><SUP>(92)</B></SUP> Tanto en la harina de arroz como en la de trigo destaca el &aacute;cido fer&uacute;lico como el principal componente fen&oacute;lico, constituyendo en la &uacute;ltima el 89.1 % del total de los &aacute;cidos fen&oacute;1icos. <B><SUP>(92)</P> </B></SUP>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los taninos son considerados sustancias antinutritivas presentes en las jud&iacute;as y en los guisantes, encontr&aacute;ndose en concentraciones del 2% expresados como equivalentes de catequinas o de &aacute;cido t&aacute;nico. <B><SUP>(93)</B></SUP> Las legumbres con un mayor contenido en compuestos fen&oacute;licos son las de color oscuro entre las que destacan las jud&iacute;as rojas y las negras. Las isoflavonas son compuestos fen&oacute;licos tambi&eacute;n presentes en las legumbres. <B><SUP>(9)</B></SUP> </P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Compuestos fen&oacute;licos presentes en vegetales</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los vegetales poseen una amplia variedad de compuestos fen&oacute;licos dependiendo de la especie.<B><SUP> (9,91)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; De forma global, Hertog y col, <B><SUP>(34)</B></SUP> encontraron entre un total de 28 vegetales analizados, que los principales flavonoides presentes en ellos eran la quercitina seguida del kaempferol. El principal aporte de quercitina lo constituye la cebolla (347 mg/kg), la col rizada (110 mg/kg), lechuga (14 mg/kg), y el tomate (8 mg/kg) siendo las principales fuentes de kaempterol la col rizada fresca, el br&oacute;coli, las jud&iacute;as verdes francesas y las jud&iacute;as verdes troceadas. Estudios similares posteriores realizados por Crozier <B><SUP>(35)</B></SUP> en tomate mostraron una amplia variedad de resultados dependiendo de la variedad de tomate y de la &eacute;poca del a&ntilde;o, oscilando entre 2 u/g para una tomate espa&ntilde;ol variedad Daniella y 203 µ/g para la variedad Paloma enana de tomate espa&ntilde;ol. Otros flavonoides fueron detectados en alimentos vegetales aunque con un menor inter&eacute;s. As&iacute;, la mirecitina solo fue detectada en jud&iacute;as verdes frescas anchas (26mg/kg) mientras que la luteolina solo se encontr&oacute; en el pimiento rojo, presentando el apio contenidos de 108 mg de apigenina por 100 kg de muestra. <B><SUP>(34)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; En general, los vegetales de la familia Solanaceae aportan gran parte tanto del &aacute;cido clorog&eacute;nico de la dieta como de otros &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos. <B><SUP>(41)</B></SUP> As&iacute;, los tomates y los pimientos maduros son ricos en &aacute;cidos clorog&eacute;nico y fer&uacute;lico, siendo la patata es uno los vegetales con un mayor contenido en &aacute;cido clorog&eacute;nico (17.36 mg/l00g de peso fresco) el cual constituye el 88,9% del total de los polifenoles presentes en ella. El contenido en &aacute;cido clorog&eacute;nico se encuentra afectado por el tratamiento t&eacute;rmico, observ&aacute;ndose que las mayores concentraciones se presentan en la patata cruda (0,800 mg/l00g de peso seco), decreciendo en la cocinada en microondas (0,434mg /100 g de peso seco) y en la hervida (0,319 mg/l00g de peso seco). <B><SUP>(29)</P> </SUP>    <P ALIGN="JUSTIFY">Compuestos fen&oacute;licos presentes en frutas </B> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Las frutas destacan en la dieta por su alto contenido en flavonoles, conteniendo tambi&eacute;n cantidades considerables de otros compuestos fen&oacute;licos dependiendo del tipo de fruta analizada. El principal flavonoide presente en las frutas es la quercitina. encontr&aacute;ndose altos contenidos en manzanas (36 mg/kg). De los cuatro flavonoides determinados por Hertog y col. 34 s&oacute;lo las fresas presentaron kaempferol (12mg/kg) mostrando las uvas blancas y negras mostraron un bajo contenido en mirecitina (4.5 mg/kg). </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El contenido de &aacute;cidos hidroxibenzoicos es bajo en general, con la excepci&oacute;n de las moras, las frambuesas, <B><SUP>(95)</B></SUP> la grosella morada, y la grosella roja y, <B><SUP>(96)</B></SUP> siendo mayor en general el contenido en &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos. El &aacute;cido caf&eacute;ico es el &aacute;cido hidroxicin&aacute;mico predominante en muchas frutas, constituyendo el 75% del total de estos &aacute;cidos y encontr&aacute;ndose en ciruelas, manzanas, albaricoques y ar&aacute;ndanos. Sin embargo, el &aacute;cido p-cum&aacute;rico es el componente mayoritario, dentro del grupo de los &aacute;cidos hidrycin&aacute;micos. de los c&iacute;tricos y de la pi&ntilde;a. <B><SUP>(55)</B></SUP> La presencia de &aacute;cido clorog&eacute;nico en frutas tambi&eacute;n ha sido ampliamente estudiada. <B><SUP>(97-100)</B></SUP> Se han encontrado altas concentraciones de este compuesto en manzanas, y en los ar&aacute;ndanos. <B><SUP>(98)</B></SUP> Los contenidos de este &aacute;cido en manzanas oscilan entre 25,08-61,47 mg/ L en el pur&eacute;, y 38,85-81,28 mg/L en el concentrado. Estos contenidos fueron superiores en el pur&eacute; y en el concentrado de melocot&oacute;n con valores comprendidos entre 26,43-50,60 y 145,5-220,2 mg/L respectivamente. <B><SUP>(101)</B></SUP> </P> <B>    <P>Compuestos fen&oacute;licos presentes en zumos de frutas y bebidas </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El contenido de polifenoles en los zumos de frutas oscila generalmente entre 2 y 500 mg/L, dependiendo del tipo analizado, aunque zumos de ciertas variedades de naranja poseen concentraciones mucho mayores (hasta 700 mg/mL), debido a su alto contenido en hesperidina. <B><SUP>(9)</B></SUP> Las mayores concentraciones se han encontrado en la pulpa de la naranja donde se detectan valores del orden de 31 mg/ 100 g de peso fresco. <B><SUP>(39)</B></SUP> El contenido de hesperitina encontrado en la pulpa de pomelo es menor (1.5 mg/100g de peso fresco), encontr&aacute;ndose en ella tambi&eacute;n peque&ntilde;as concentraciones de quercetina y kaempferol (0,5 y 0,4 mg/l00 g de peso fresco respectivamente). <B><SUP>(39)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El vino es una fuente muy estudiada de compuestos fen&oacute;licos, sobre todo de &aacute;cidos ten&oacute;licos, antocianinas, taninos y flavonoides 9. Dentro de estos grupos, los compuestos fen&oacute;licos de m&aacute;s inter&eacute;s son los &aacute;cidos benz&oacute;icos e hidroxicin&aacute;micos, los grupos flavan-3-ols y flavan-3-diols, las antocianinas,las antocianidinas,los flavonoles,las flavonas y los taninos condensados. <B><SUP>(1)</B></SUP> As&iacute;, Hertog y col <B><SUP>(14)</B></SUP> mostraron que el contenido en quercitina en vino tinto oscil&oacute; entre 4 y 16 mg/L, mientras que el zumo de uva conten&iacute;a entre 7 y 9 mg/L. Existen diferencias entre el contenido de compuestos fen&oacute;licos en vino blanco y en vino tinto, siendo menor en el primer caso. As&iacute;, el contenido medio de compuestos ten&oacute;licos en un vino blanco t&iacute;pico es del orden de 250 mg/L, aunque se pueden encontrar algunos tipos con un contenido de 2000 mg/ L. Por el contrario, el contenido de compuestos fen&oacute;licos totales en un vino tinto t&iacute;pico oscila entre 1000 y 4000 mg/L 102.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; El t&eacute; es una de las bebidas con un mayor contenido en compuestos fen&oacute;licos de inter&eacute;s nutricional, destacando por su alta concentraci&oacute;n en catequinas, las cuales constituyen m&aacute;s del 30% del peso seco de la hoja, flavonoles (quercitina, kaempferol y sus glic&oacute;sidos), flavonas y &aacute;cidos fen&oacute;licos (&aacute;cido g&aacute;lico y &aacute;cido clorog&eacute;nico). <B><SUP>(1)</B></SUP> La fermentaci&oacute;n del t&eacute; conlleva importantes variaciones en su composici&oacute;n fen&oacute;lica: el t&eacute; verde es muy rico en flavanoles, mientras que el t&eacute; negro contiene elevadas concentraciones de polifenoles oxidados (teoflavinas y teorubigins). <B><SUP>(9)</B></SUP> Las infusiones de t&eacute; poseen concentraciones elevadas de quercitina oscilan entre l0 y 25 mg/L 14. </P> <B>    <P>Ingesta de compuestos fenoliticos</P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Actualmente, existe poca informaci&oacute;n disponible sobre el consumo de compuestos fen&oacute;licos procedentes de la dieta. Los principales estudios de este tipo se han realizado sobre la ingesta de flavonoides, aunque se est&aacute;n realizando estudios acerca de la ingesta de &aacute;cidos fen&oacute;licos, de inter&eacute;s nutricional, especialmente &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos la ingesta. La contribuci&oacute;n relativa de los diferentes alimentos vegetales a la ingesta total de estos compuestos depender&aacute; del grado de consumo de otros recursos diet&eacute;ticos ricos en dichos compuestos tales como el t&eacute;, el vino, <B><SUP>(35)</B></SUP> el caf&eacute; y los cereales. <B><SUP>(103)</P> </B></SUP>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La ingesta total de flavonoides en U.S.A. se estim&oacute; en 1 gramo aproximadamente, del cual alrededor de 100 mg (ex- presados como agliconas) eran flavonoles y flavonas. Sin embargo, estas estimaciones estaban basadas posiblemente en tablas de composici&oacute;n de alimentos incompletas e inadecuadas. El t&eacute; es considerado una de las principales fuentes de flavonoides en los adultos en el Reino Unido, pero su ingesta en gente joven est&aacute; siendo desplazada por las bebidas carbonatadas y el caf&eacute; las cuales son pobres en dichos. <B><SUP>(35)</B></SUP> Hertogycol <B><SUP>(104)</B></SUP> estimaron que laingestamediade flavonoles y flavonas combinada es aproximadamente 23 mg/d&iacute;a, usando los datos obtenidos por ellos mismos en combinaci&oacute;n con datos de consumo en Holanda proporcionados por el National Food Consumption Survey 1987-1988. As&iacute;, las principales fuentes de flavonoides y flavonas en Holanda fueron el t&eacute; negro (485 de la ingesta total), cebolla (29%) y manzanas (7%). Tambi&eacute;n se determinaron las ingestas de flavonoles y flavonas en otros siete pa&iacute;ses mediante an&aacute;lisis equivalentes de composici&oacute;n de alimentos representantes de su dieta media hacia 1960. <B><SUP>(105)</B></SUP> El consumo de flavonoides fue el m&aacute;s alto en Jap&oacute;n (64 mg/d&iacute;a) y el menor en Finlandia (6 mg/d&iacute;a). Los vinos tintos son la principal fuente de flavonoides en Italia y Francia, donde el consumo de t&eacute; es muy bajo. Las principales fuentes de quercitina fueron el t&eacute; en Jap&oacute;n, vino tinto en Italia y las cebollas en U.S.A., la antigua Yugoslavia y Grecia. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Respecto al consumo de &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos, se ha observado que la ingesta de &aacute;cido clorog&eacute;nico puede ser superior a 200 mg en los consumidores de cantidades elevadas de caf&eacute;. Adem&aacute;s, la ingesta de cantidades elevadas de cereales, proporciona un aporte considerable de &aacute;cido fer&uacute;lico (&gt; 1 00 mgtd&iacute;a). <B><SUP>(103)</B></SUP> Estos datos sugieren que la ingestadiaria de &aacute;cidos hidroxicin&aacute;micos puede superar sustancialmente la ingesta de flavonoides. Es por tanto necesario que las tablas de composici&oacute;n de los alimentos incluyan datos sobre el contenido en compuestos fen&oacute;licos de inter&eacute;s nutricional de los alimentos con el objetivo de poder cuantificar la in gesta real de los mismos. </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY">Absorci&oacute;n y metabolismo de los compuestos fenolicos </P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Poco se sabe sobre la biodisponibilidad, absorci&oacute;n y metabolismo de los compuestos fen&oacute;licos en los humanos, pero es sabido que los diferentes grupos de flavonoides poseen distintas propiedades farmacocin&eacute;ticas. Es evidente que algunos compuestos fen&oacute;licos, tanto los politeno les extraibles o los solubles son metabolizados en el tracto gastrointestinal. Las agliconas y los compuestos fen&oacute;licos simples libres, los flavonoides (quercitina y genisteina) y los &aacute;cidos fen&oacute;licos pueden ser directamente absorbidos a trav&eacute;s de la mucosa del intestino delgado. <B><SUP>(106,107)</B></SUP> Los compuestos ten&oacute;licos libres (&aacute;cidos cin&aacute;micos y sus derivados, &aacute;cido p-cum&aacute;rico, fer&uacute;lico, cafeico, etc.) han sido absorbidos en tracto intestinal tanto en ensayos in vivo con ratas como en experimentos in vitro realizados con jejuno aislado de. <B><SUP>(108)</B></SUP> La mediaci&oacute;n de los enzimas bacterianos en la biodisponibilidad de los glic&oacute;sidos fen&oacute;licos ha sido probada por Griffiths y Barrow, <B><SUP>(109)</B></SUP> quienes mostraron que los glic&oacute;sidos de los flavonoides fueron excretados en las heces de ratas libres de g&eacute;rmenes. La fermentaci&oacute;n bacteriana de carbohidratos tambi&eacute;n podr&iacute;a liberar compuestos fen&oacute;licos unidos a la fibra, los cuales podr&iacute;an ser metabolizados al igual que los polifenoles extraibles. En el colon, las agliconas son absorbidas a trav&eacute;s del epitelio intestinal y metiladas y/o conjugadas con &aacute;cido glucur&oacute;nico o sulfato en el h&iacute;gado. El principal &oacute;rgano involucrado en el metabolismo de los politenoles es el h&iacute;gado, aunque tambi&eacute;n se encuentran implicados los ri&ntilde;ones y la mucosa intestinal, ya que contienen enzimas que intervienen en el metabolismo de los polifenoles. <B><SUP>(109)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los derivados conjugados y los derivados 3'-Ometilados han sido detectados en el plasma de ratas a las que se les han administrado fIavonoles (catequinas), <B><SUP>(110)</B></SUP> flavonoles (quercetina, rutina e isorhamnitina) e isoflavonas (genistcina). <B><SUP>(111)</B></SUP> Estos metabolitos han sido detectados en la orina y en la bilis. En este &uacute;ltimo caso, pueden introducirse en el ciclo enterohep&aacute;tico, ser deconjugados por la acci&oacute;n de la flora del colon y ser reabsorbidos. </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Los compuestos fen&oacute;licos que han sido mas estudiados son los flavonoides. Sin embargo, el grado de absorci&oacute;n de los flavonoides presentes en la dieta es un problema importante y que est&aacute; sin resolver, a pesar de sus potenciales efectos beneficiosos para la salud. De hecho, se ha afirmado con frecuencia que los flavonoides presentes en los alimentos no pueden ser absorbidos en el intestino ya que se encuentran en forma de glic&oacute;sidos unidos a prote&iacute;nas. Solamente los flavonoides libres de az&uacute;car, es decir la aglicona, son capaces de atravesar la pared intestinal, pero no se sintetizan ni est&aacute;n presentes en el intestino enzimas que puedan hidrolizar o romper las uniones <font FACE="Times New Roman">&#946;</font>-glicos&iacute;dicas. <B><SUP>(105)</B></SUP> La naturaleza hidrof&iacute;licade los glic&oacute;sidos y su relativo elevado peso molecular excluye la absorci&oacute;n en el intestino delgado. Adem&aacute;s, los flavonoides <font FACE="Times New Roman">&#946;</font>-glic&iacute;sidos resisten la acci&oacute;n de las hidrolasas intestinales, por lo que los glic&oacute;sidos pueden pasar inalterados al intestino grueso. <B><SUP>(112)</B></SUP> La hidr&oacute;lisis ocurre en el colon por microorganismos, los cuales al mismo tiempo degradan los falvonoides. <B><SUP>(105)</B></SUP> La flora presente en el intestino produce glicosidasas capaces de liberar la aglicona de su az&uacute;car. Adem&aacute;s, dicha flora puede romper el anillo pirona (anillo C) originando &aacute;cido fenil ac&eacute;tico y fenil propi&oacute;nico y otros derivados. Existe por tanto una acumulaci&oacute;n de agliconas en el intestino las cuales podr&aacute;n ser potencialmente absorbidas por la pared intestinal. Sin embargo, estudios recientes sugieren que la absorci&oacute;n de los flavonoides no se produce v&iacute;a la aglicona. Hollman y col., <B><SUP>(84)</B></SUP> realizaron un estudio sobre la absorci&oacute;n de flavonoles en voluntarios sanos a los que se les hab&iacute;a realizado una ileostom&iacute;a. Fruto de esta investigaci&oacute;n se vio que los glic&oacute;sidos de la quercitina eran absorbidos directamente a trav&eacute;s de la pared del intestino delgado y a un ratio de absorci&oacute;n m&aacute;s r&aacute;pido que la correspondiente aglicona, y adem&aacute;s especularon sobre la posibilidad de que la absorci&oacute;n de los glic&oacute;sidos podr&iacute;a ocurrir a trav&eacute;s del transportador glucosa/Na+. Estudios anteriores realizados por Mizuma y col., <B><SUP>(114)</B></SUP> mostraronque la absorci&oacute;n de naphtol glic&oacute;sidosen el intestino delgado de ratas depend&iacute;a de la naturaleza del az&uacute;car conjugado y de la presencia de Na+ consecuente con su relaci&oacute;n con el sistema transportador glucosa/Na+. La absorci&oacute;n de estos glic&oacute;sidos es inhibida por el phloridzin, un inhibidor del transporte de la glucosa y por si mismo, un glic&oacute;sido estructuralmente relacionado con los flavonoles. Si de hecho se establece que la absorci&oacute;n de los glic&oacute;sidos de los flavonoles ocurre en el intestino delgado a trav&eacute;s de un mecanismo espec&iacute;fico de absorci&oacute;n, mostrando selectividad entre los diferentes glic&oacute;sidos de los flavonoles, ser&aacute;n necesarios estudios detallados de la naturaleza qu&iacute;mica de los gluc&oacute;sidos y de sus niveles en los alimentos vegetales en la forma qu&iacute;mica en la cual se ingieren normalmente dichos alimentos. <B><SUP>(37)</B></SUP> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Poco se conoce sobre el destino de la mayor&iacute;a de los compuestos fen&oacute;licos tras su ingesti&oacute;n. El metabolismo de los flavonoles y flavonas de la dieta permanece todav&iacute;a sin concretar y existen pocos datos sobre su farmacocin&eacute;tica, probablemente debido a la carencia de m&eacute;todos selectivos para la determinaci&oacute;n de estos compuestos en fluidos corporales. <B><SUP>(115)</B></SUP> Se ha demostrado que las catequinas son absorbidas en el intestino humano tras la administraci&oacute;n de <I>3-0- </I>metilcatequina marcada radiactivamente, encontr&aacute;ndose posteriormente sus metabolitos en orina (glucur&oacute;nidos de la 3-3-0-dimetilcatequina y un glucuronido y unsulfato de la 3-0- metilcatequina). <B><SUP>(87)</B></SUP> Rutina y quercitina son pobremente absorbidos mientras que el &aacute;cido caf&eacute;ico parece que se absorbe bien, aunque en estudios realizados en humanos solo se han identificado en la orina entre 1 y 5 metabolitos. Sin embargo, estos estudios fueron desarrollados con sustancias puras cristalinas, mientras que en los alimentos las sustancias se encuentran generalmente en forma de glic&oacute;sidos o de &eacute;steres, o en soluci&oacute;n en el componente lip&iacute;dico terpeno de los alimentos (121). Se han hecho algunos estudios sobre quercitina. As&iacute;, se sabe que la ingesti&oacute;n de una cantidad conocida de este compuesto revel&oacute; que menos de11 % es absorbido en el intestino. M&aacute;s de150% de la dosis dada fue degradada por los microbios en el colon, mientras que el resto se perdi&oacute; en las heces. Muestras de orina tomadas a las 24 horas de la ingesti&oacute;n en voluntarios a los que se les administr&oacute; 4 gramos de quercitina, no mostraron ni dicho compuesto ni ninguno de sus conjugados. La presencia de quercitina, procedente de la dieta, no absorbida en el colon o alternativamente, la liberaci&oacute;n. de quercitina de su glic&oacute;sido rutina cuando es atacada por la microflora del colon podr&iacute;a actuar como agente que podr&iacute;a proteger, prevenir o inhibir la carcinog&eacute;nesis en este lugar. Adem&aacute;s, estudios experimentales en los que se induce un c&aacute;ncermamario en ratas a las que se les alimenta con quercitin.a revelan una disminuci&oacute;n en la incidencia de los tumores, aunque la cantidad repartida a la gl&aacute;ndula mamaria por esta v&iacute;a todav&iacute;a es cuestionable. <B><SUP>(116)</B></SUP> Finalmente, se sabe que la quercitina de la dieta se absorbe en humanos y se elimina lentamente a lo largo del d&iacute;a, pudiendo de esta manera contribuir a las defensas antioxidantes presente en el plasma. <B><SUP>(114)</B></SUP> </P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>CONCLUSI&Oacute;N</P> </B><FONT SIZE=2> </FONT>    <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; La gran diversidad de compuestos fen&oacute;licos de origen vegetal hace muy complejo el estudio detallado de cada uno de ellos as&iacute; como el estudio de la relaci&oacute;n entre los polifenoles y los efectos fisiol&oacute;gicos beneficiosos de cada uno de ellos. Sin embargo, y a pesar de esta complejidad el inter&eacute;s por este grupo de compuestos es cada vez mayor, ya que pueden tener importantes aplicaciones en la prevenci&oacute;n y en el tratamiento de enfermedades tales como la enfermedad carciovascular, el c&aacute;ncer, la &uacute;lcera duodenal y g&aacute;strica, procesos patol&oacute;gicos de car&aacute;cter inflamatorio, fragilidad vascular, infecciones etc. Para valorar la importancia nutricional de este amplio grupo de compuestos es necesario conocer no solo la concentraci&oacute;n de ellos en los alimentos, sino tambi&eacute;n su biodisponibilidad y mecanismo de acci&oacute;n, as&iacute; como su posible sinergismo o antagonismo con otros componentes de la dieta o del organismo humano. El estudio de todos estos aspectos constituye actualmente un amplio campo de investigaci&oacute;n por desarrollar. </P> <B>     <P>AGRADECIMIENTO</P> </B>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;&nbsp;&nbsp; Al Ministerio de Educaci&oacute;n y Ciencia espa&ntilde;ol por proporcionarme la beca de la que disfruto y la cual me proporciona la financiaci&oacute;n necesaria para desarrollar mi trabajo de investigaci&oacute;n y a la empresa Alimentos del Valle S.A. por financiaci&oacute;n de dicho trabajo.</P> <B>    <!-- ref --><P>REFERENCIAS&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341658&pid=S0004-0622200000010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>2. Andary C y Mondolot-Cosson L. Histolocalization of plant polyphenols in tissues and cell walls. Some applications. En:Polyphenols in foods. Proceedings of a European COST concerted action scientific workshop, 1997 Aberdeen, Scotland. 1997;41-44.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341659&pid=S0004-0622200000010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>3. Butler LG. Protein polyphenol interactions: nutritional aspects. En: Proceedings of the 16th Intemational Conference of Grape Polyphenol, 1992; V olume 16, Part 11, pp.11-18.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341660&pid=S0004-0622200000010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>4. Clifford MN. Sensory and dietary properties of pheno1s. En: Proceedings of the 16th Intemational Conference of Grape Polypheno1, Volume 16, Part 11,1992:18-23.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341661&pid=S0004-0622200000010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>5. Belitz y Grosch. Qu&iacute;mica de los alimentos. Ed. Acribia Espa&ntilde;a: Zaragoza., 1988.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341662&pid=S0004-0622200000010000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>6. McEvilyAJ,lyengerR y Gross AT. Inhibition of polyphenols oxidase by phenolics compounds. En: Phenolic Compounds in Food and Their Effects on Health I: Analysis, Occurrence and Chemistry, Ho, C.T., Lee, C.T. y Huang, M.T. Eds., ACS Symposium Series 506. American Chemical Society, Was- hington, DC, 1992: 318-321.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341663&pid=S0004-0622200000010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>7. Berra B, Caruso D, Cortesi N, Fedeli E, Rasetti MF, Galli G. Antioxidant properties of minor polar components of olive oil on the oxidative processes of cholesterol in human LDL. Riv. It. Sost. Grasse 1995;72: 285- 291.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341664&pid=S0004-0622200000010000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>8. Tsimidou, M.. Polyphenols and quality of virgin olive oil in retrospect. Ital J Food Sci 1998;2,(10): 99-116.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341665&pid=S0004-0622200000010000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>9. Bravo L. Poliphenol: chemistry, dietary sources, metabolism and nutritional significance. Nutr Rev, 1998; 56 (11): 317-333.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341666&pid=S0004-0622200000010000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>10. Harborne JB. General procedures and measurements of total phenolics. In: Harborne J .B. Ed. Plant Phenolics, vol 1, from &quot;Methods in Plant Biochemistry Series": Academic Press, London. 1989:1-28.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341667&pid=S0004-0622200000010000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>11. The Merck Index. An encyclopedia of chemicals, drugs, and biologicals. Windholz, M. Ed . U.S.A:&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341668&pid=S0004-0622200000010000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>12. Chesson A, Russell WR y Provan GJ. Metabolites of the phenylpropanoid pathway - common origin, common properties? In: Polyphenols in foods. Proceedingsof a European COST concerted action scientific workshop 1997, Aberdeen, Scotland 1997: 17-23.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341669&pid=S0004-0622200000010000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>13. Harborne JB. The flavonoids: Advances in Research Since 1986. Chapman y Hall Ed., London, 1993.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341670&pid=S0004-0622200000010000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>14. Hertog MGL, Hollman PCH, Van de Putte B. Content of potencially anticarcinogenic flavonoids of tea infusions, wines, and fruit juices. J Agric Food Chem. 1993;41:1242-1246.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341671&pid=S0004-0622200000010000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>15. Chung K-T, Wong T-Y, Wei C-I, Huang Y-W y Lin Y. Tannins and Human Health: A review. Crit. Rev. Food Sci. : 1998; 38 (6): 421-464.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341672&pid=S0004-0622200000010000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>16. Swain T y Hills WE. The phenolic constituents of <I>Prunus domestica </I>I. The quantitative analysis of Phenolics Constituents. J Sci Food Agric. 1959;10: 63-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341673&pid=S0004-0622200000010000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>17. Price ML y Buttler LG. Rapid visual estimation and spectrophotometric determination of tannin content of shorgum grain. J Agric Food Chem. 1977;26:1214-1219.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341674&pid=S0004-0622200000010000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>18. Earp CF, Akingbala JO, Ring SH y Rooney LW. Evaluation of several of methods to determine tannins in shorgum with varying kernel characteristics. Cereal Chem. 1981;58: 234-239.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341675&pid=S0004-0622200000010000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>19. Tzagoloff A. . Metabolism of sinapine in mustard plants I. Degradation of sinapine into sinapic acid and choline. Plant physiol. 1963; 38: 202-210.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341676&pid=S0004-0622200000010000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>20. Naczk M, Wanasundara PKJ P.D. and Shahidi F. A facil espectrophotometric quantification method of sinapic acid in hexae-extracted and methanol ammonia watertreated mustard and rapeseed meals. J Agric Food Chem. 1992;44: 444-452.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341677&pid=S0004-0622200000010000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>21. Price ML, Van Scoyoc S y Buttler LG. A critical evaluation of the vainillin reaction as an assay for tannin in shorgum. J Agric Food Chem 1978;26:1214-1220.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341678&pid=S0004-0622200000010000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>22. Naczk M y Shahidi F. Critical evaluation of quantification methods of rapeseed tannins. In: Rapeseed in a Changing world. Proceedings of the 8th International Rapeseed Congress. Volume 5, Mc Gregor, D.I., De., Saskatoon, Canada 1991;135-138.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341679&pid=S0004-0622200000010000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>23. Brune M, Hallberg L, and Skanberg AB. Determination of iron binding phenolics groups in foods. J Food Sci 1991 ;56: 128.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341680&pid=S0004-0622200000010000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>24. Goldstein JL y Swain T. Changes in tanin in ripening fruits. Phytochem. 1963; 2: 371.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341681&pid=S0004-0622200000010000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>25. Gupta RK y Haslam E. Vegetable tannins: Structure and Byosinthesis. In: Hulse, J.H. ed. Polyphenols in Cereals and legumes. International development research center Otawa, Canada, 1980: pp 15-31.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341682&pid=S0004-0622200000010000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>26. Hoff JF y Singleton KI. A method for determination of tannin in foods by means of immobilized enzymes. J Food Sci. 1977;42: 1566.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341683&pid=S0004-0622200000010000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>27. Singlenton VL, Salgues M, Zaya J y Trousdale E. Caftaric acid disapearance and conversion to product on enzymic oxidation in grape mass and wine. American J. Enol. Viti. 1985; 36: 50-57.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341684&pid=S0004-0622200000010000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>28. Owades JL, Rubin G y Brenner MW. Determination of foods tanins by ultraviolet spectrophotometry. J Agric Food Chem. 1958; 6: 44-48.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341685&pid=S0004-0622200000010000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>29. Dao L y Friedman M. Chlorogenic acid contents of fresh and processed potatoes determined by ultraviolet spectrophotometry. J Agric Food Chem 1992;40; 2152-2156.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341686&pid=S0004-0622200000010000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>30. Jackman LR, Yada RY y Tung MA. Areview: Separation and chemical properties of antocyaninns using for their qualitati ve and quantitative analysis. Food Biochem 1987; 11: 279-.292.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341687&pid=S0004-0622200000010000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>31. Karchesy JJ, Bae y, Chalker-Scott L, Helm RF' y Foo LY. Chromatography of proantocyanidins. In: Hemingay, R. W. y Karchsy, J.J. Eds. Chemistry and significance of condensed tanins. Plenum Press New, York, 1989: 139161.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341688&pid=S0004-0622200000010000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>32. Oh HI, Hoff JE y Haff LA. Immobilized condensed tannins and their interactions with proteins. J Food Sci 1985; 50: 1652.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341689&pid=S0004-0622200000010000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>33. Bartolom&eacute; B, Bengoechea ML, G&aacute;lvez MC, P&eacute;rez-IIzarbe FJ, Hern&aacute;ndez T, Estrella I y G&oacute;mez-Cordov&eacute;s C. Photo-diode array detection for elucidation of the structure of phenolic compounds. J Chromatogr. A 1993;655: 119-125.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341690&pid=S0004-0622200000010000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>34. Hertog MGL, Hollman PCH y Katan MB. Content of potentially anticarcinogenic flavonols of 28 vegetables and 9 fruits commonly consumed in the Netherlands. J Agric Food Chem 1992; 40: 2379-2383.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341691&pid=S0004-0622200000010000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>35. Crozier A. Lean MEJ. Morag SM. and Black C. Quantitative analysis of the flavonoid content of Commercial Tomatoes Onions. Lettice and Celery. J Agric Food Chem 1997; 47: 5 590-595.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341692&pid=S0004-0622200000010000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>36. Ferreres F, Gil MI, Casta&ntilde;er M y Tom&aacute;s-Barber&aacute;n FA. Phcnolic metabolites in red pigmented lettuce <I>(Lacluca saliva). </I>Changes with minimal processing and cold storage. J Agric Food Chem. 1997; 45: 4249-4254.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341693&pid=S0004-0622200000010000100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>37. Price KR and Rhodes MJC. Analysis of the Major Flavonol Glycosides Present in Four Varieties of Onion <I>(Allium cepa) </I>and Changes in Composition resulting from Autolysis. J Sci Food Agric. 1997; 74: 331-339.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341694&pid=S0004-0622200000010000100037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>38. Price AR, Bacon JR y Rhodes MJC. Effect of storage and domestic processing on the content and composition of flavonols glucosydes in onions <I>(Allium cepa). </I>J Agric Food Chem. 1997; 45: 938-942.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341695&pid=S0004-0622200000010000100038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>39. Justesen U. Knuthsen P, and Leth T. Quantilative analysis of flavonols, flavones and flavonones in fruits, vegetables and beverages by high-performance liquid chromatography with photo-diode array and mass spectrometric detection. J Chromatogr A. 1998; 799: 10 1-110 .&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341696&pid=S0004-0622200000010000100039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>40. Bengoechea ML. Hem&aacute;ndez T, Quesada C. Bartolom&eacute; B. Estrella I, y G&oacute;mez-Cordov&eacute;s. C. Structureofhydroxycinnamic acid derivates, established by high performed liquidchromatography awith photo diode array detection. Chromatographia 1995; 41 (1-2): 94-98. I 41.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341697&pid=S0004-0622200000010000100040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>41. Bartolom&eacute; B, Hem&aacute;ndez T. Bengocchea ML. Qucsada C. G&oacute;mez-Cordov&eacute;s C y Estrella C. Determination of some structure feautures of procyanidins and related compounds by photo diode array detection. J Chromatogr A 1996; 723: 19- 26.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341698&pid=S0004-0622200000010000100041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>42. Yinrong L y Foo L Y. Identification and cuantification of major polyphenols in apple pomace. Food Chem. 1997; 59 (2): 187-194.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341699&pid=S0004-0622200000010000100042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>43. Hakkinen SH. Karenlampy SO<I>. </I>Heinonen IM. Mykkanen HM y Torronen AR. HPLC method for screening of flavonoids and phenolic acids y berries. J Sci Food Agric. 1998; 77: 543- 541.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341700&pid=S0004-0622200000010000100043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>44. Spanos GA. Wrolstad RE y Heatherbell D.A. lntluence of processing and storage on the phenolic composition of apple juices. J Agric Food Chem. 1990; 38: 1572-1579.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341701&pid=S0004-0622200000010000100044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>45. Lee HS. Carter RD, Barros SM. Dezman DJ y Castle WS. Chemical characterization by liquid chromatography of Moro blood orange juices. J Food Compos Ana1ysis 1990; 3: 9-14.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341702&pid=S0004-0622200000010000100045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>46. Spanos GA y Wrolstad RE. Phenolics of apple. pear, and white grape juices and their changes with processing and storage-A review. J Agric Food Chem 1992; 40: 1478-1487.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341703&pid=S0004-0622200000010000100046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>47. Litridou M. Linssay J. Schols H. Bergmans M. Posthumus M, Tsimidou M y Boskou D. Phenolic compounds in virgen olive oils: fractionation by solid phase extraction and antioxidant activity assessment. J Sci Food Agric. 1997;74: 169-174.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341704&pid=S0004-0622200000010000100047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>48. Haslam E. Plant polyphenols. Cambridge University Press. Cambridge.1989.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341705&pid=S0004-0622200000010000100048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>49. Clifford MN y R&aacute;mirez-Mart&iacute;nez JL. Phenols and caffeine in wet-processing coffc beans and coffe pulp. Food Chem. 1991; 40: 35.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341706&pid=S0004-0622200000010000100049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>50. Singleton VL. Tannins and the qualities of wines. In: Hemingway. R.W. and Laks, P.E. eds. Plant Polyphenols: Synthesis, Properties, Significance. Plenum Press, New York. 1992:859880.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341707&pid=S0004-0622200000010000100050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>51. Mazza O y Miniati C. Anthocyanins in fruits, vegetables and grains. CRC Press, Boca Rat&oacute;n. FL. 1994.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341708&pid=S0004-0622200000010000100051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>52. Swain T. Economic importance of flavonoid compounds: Foodstuffs. In Geissman, T.A. Ed., Tl1eChemistry of Flavonoid Compounds. Pergamon Press, Oxford, 1962: 513-535.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341709&pid=S0004-0622200000010000100052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>53. Marwan AJ Y Nagel CW. Separation and purification of hydroxycinnamic acid derivates in cranberries. J Food Sci 1982; 47: 585.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341710&pid=S0004-0622200000010000100053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>54. Haslam E y Lilley TH. Natural astringency in foodstuffs. Molecualr Interpretation CRC Crit Rev Food Sci Nutr. 1988; 27: 1-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341711&pid=S0004-0622200000010000100054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>55. Macheix JJ, Fleuriet A y Billot J. Fruit phenolics. CRC Press, Boca Raton FL, USA. 1990.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341712&pid=S0004-0622200000010000100055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>56. White T. Tannins, their occurrence and significance. <I>J </I>Sci Food Agric. 1987; 8: 377- 392.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341713&pid=S0004-0622200000010000100056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>57. Hagerman AE, Y Butler LO. Determination of protein in tanin-protein precipitates. J Agric Food Chem. 1980: 28: 944- 959.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341714&pid=S0004-0622200000010000100057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>58. Siebert KJ, Troukhanova NV y Lynn PY.Nature of polyphenol. Protein interactions. J Agric Food Chem. 1996; 44: 80-85.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341715&pid=S0004-0622200000010000100058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>59. Yaper Z Y Clandinin DR. Effect of tanins in rape seed meal on its nutritional value for chicks. Poult Sci. 1972; 52. 222-228.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341716&pid=S0004-0622200000010000100059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>60. Davis AB y Hoseney RC. Grain sorghum condensed tannins. I. Isolation, estimation, and selective adsorption by starch. Cereal Chem. 1979; 56: 310-317.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341717&pid=S0004-0622200000010000100060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>61. Watson TG. Inhibition of microbial fermentation by sorghum grain and malt. J Applied Bacteriology 1975.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341718&pid=S0004-0622200000010000100061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>62. Coudray C, Bousset C, P&eacute;pin D, Tressol JC, Belanger J y Rayssiguier Y. Effect of acute ingestion of polyphenol compounds on zinc and copper absorption in thr rat Utilisation of stable isotopes and ICP/MS technique. In: Polyphenols in foods. Proceedings of a European COST concerted action scientific workshop 1997, Aberdeen, Scotland. 1997: 173-178.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341719&pid=S0004-0622200000010000100062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>63. Hurrell RF, Reddy M y Cook JD. Intluence of polyphenol- containing beverage on iron absorption. En: Polyphenols in foods. Proceedings of a European COST concerted action scientific workshop, 1997. Aberdeen, Scotland. 1997: 169- 172.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341720&pid=S0004-0622200000010000100063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>64. Hurrell RF, Reddy M y Cook JD. Inhibition of non-haem iron absorption in man by polyphenolic-containing beverage. Blitish J Nutrition 1999; 81, 289-295.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341721&pid=S0004-0622200000010000100064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>65. Disler PB, Lynch SR, Charlton RW, Torrance JD, Bothwell TH, Walker Rby Mayet F. The effect of tea on iron absorption. Out 1975; 16: 193-200.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341722&pid=S0004-0622200000010000100065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>66. Hallberg L y Rossander L. Effect of different drinks on the absorption of non-heme iron from composite meals. Human Nutrition and Applied Nutrition 1982; 36: 116-123.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341723&pid=S0004-0622200000010000100066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>67. Shahidi F y Wanasundara PKJPD. Phenolic antio.xidants. Crit Rev Food Sci Nutr 1992: 32: 67-103.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341724&pid=S0004-0622200000010000100067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>68. Morck TA, Lynch SR y Cook JD. lnhibition of food iron absorption by coffee. Am <I>J </I>Clin Nutr 1983; 37: 416-420.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341725&pid=S0004-0622200000010000100068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>69. Lunte JM<I>, </I>Blankenship KD y Scott AR. Detection and identification of procyanindins and flavonoids in wine by dual-electrode liquid chromatography. Analyst. 1988; 113: 99-103.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341726&pid=S0004-0622200000010000100069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>70. Coudray C, Bousset C, Tressol JC<I>, </I>P&eacute;pin D, y Rayssiguier Y. Short-term ingestion of chlorogenic or caffeic acids decreases zinc but not copper absorption in rats, utilization of stable isotopes and inductively-coupled plasma mass specttrometttry technique. British J<I> </I>Nutrition, 1998;80: 574-584.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341727&pid=S0004-0622200000010000100070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>71. Ganjii V y Kies CV. Zinc bioavailability and tea consumption: study in healthy humans consuming self-selected and laboratory controlled diets. P1ant foods for human Nutrition, 1994; 46:267-276.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341728&pid=S0004-0622200000010000100071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>72. Record IR, Mclnerney JK y Dreosti IE. Black tea, green tea, and tea polyphenols: effects on trace elements status in weaning rats. Biological trace elements research, 1996; 5: 27-43.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341729&pid=S0004-0622200000010000100072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>73. Brune M, Rossander L y hallberg L. Iron absorption and phenolic compounds: Importance of different phenolic structures. Europ J Clin Nutr 1989; 43: 547-558.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341730&pid=S0004-0622200000010000100073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>74. Wang H, Cao G y Prior RL. Total antioxidant capacity of fruits. J Agric Food Chem 1996; 44: 701-705.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341731&pid=S0004-0622200000010000100074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>75. Hertog MGL, Kromhout D, Aravanis C, B1ackburn H, Buzina R, Fidanza F y col. Flavonoid intake and long term risk of coronary heart disease and cancer in the Seven Countries. Study Arch Intern Med. 1995; 155: 381-386.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341732&pid=S0004-0622200000010000100075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>76. Ito N, Fukushima S, Hasegawa A y Ogiso T. Carcinogenety of butylated hydroxy anisole in F344 rats. J Natl Cancer Inst. 1983; 70: 343-347.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341733&pid=S0004-0622200000010000100076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>77. Velioglu YS, Mazza G, Gao L y Oomah BD. Antioxidant activity and total phenolics in selected fruits, vegetables and grain products. J Agric Food Chem. 1998; 46 (10): 4113-4117.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341734&pid=S0004-0622200000010000100077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>78. Decker EA. Phenolics: Prooxidants or antioxidants? Nutritional Reviews, 1997;55(1),396-398.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341735&pid=S0004-0622200000010000100078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>79. Pratt DE. Natural antioxidant from plantmaterial. In:. Huang, M.T., Ho, C.T. and Li, C.Y. Eds., ACS Symposium Series 507. Phenolic compounds in food and their effects on health II. Antioxidants and cancer prevention. American Chemical Society, Washington, DC. 1992,54-68.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341736&pid=S0004-0622200000010000100079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>80. Pratt DE y Hudson BJF. Natural antioxidant no exploited commercially. In: Hudson, B.J.F. de. Elsevier Appliede Sciences. Food Antioxidants. London, 1990; 171-180.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341737&pid=S0004-0622200000010000100080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>81. Miller NJ y Rice-Evans CA. Factors influencing the antioxidant activity determined by the ABTS+ radical cation assay. Free Radical Research, 1997; 26: 195-199.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341738&pid=S0004-0622200000010000100081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>82. Wang H, Cao Gy Prior R. Total antioxidantcapacity of fruits. J Agric Food Chem, 1996; 44: 701-705. 83.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341739&pid=S0004-0622200000010000100082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>83. Vinson JA, Dabbagh YA, Serry MM and Jang J. Plant flavonoids, especially tea flavonols, are powerful antioxidants using an in vitro model for heart disease. J Agric Food Chem 1995; 43: 2800-2802.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341740&pid=S0004-0622200000010000100083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>84. Hollman PCH y Katan MB. Absorption, metabolism and health effects of dietary flavonoids in man. Biomed and Pharmacother 1997; 51: 305-310.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341741&pid=S0004-0622200000010000100084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>85. Rice-Evans CA. Miller J, y Paganga G. Structure-Antioxidant : activity relationships of flavonoids and phenolic acids. Free Radical Biology and Medicine, 1996; 20 (7): 933-956.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341742&pid=S0004-0622200000010000100085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>86. Guohua C, Sofic E y Ronald LP. Antioxidant and prooxidant behaviourofflavonoids. Structure activity relationships. Free I Radical Biology and Medicine, 1997; 22 (5): 749-760. ;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341743&pid=S0004-0622200000010000100086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>87. Grootveld M, y Halliwell B. Aromatic hydroxylation as a potencial measure of hydroxyl radical formation in vivo. Biochem Joumal, 1986; 238: 499-504.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341744&pid=S0004-0622200000010000100087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>88. Satu&eacute;-Gracia MT, Heinonen M y Frankel EN. Anthocyanins as antioxidants on human low-densidity lipoprotein and lecitin-liposome systems. J Agric Food Chcm, 1997;45: 3362-3367.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341745&pid=S0004-0622200000010000100088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>89. Stavric B. Mulagenic food flavonoids. Federation Proceedings 1984; 43: 2454-2458.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341746&pid=S0004-0622200000010000100089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>90. Malaveille C, Hautefeuille A, Pignatelli B, Talaska G, Vineis P y Bartsch H. Dietary phenolics as anti-mutagens and inhibitors of tobacco-related DNA adduction in the urothelium ofsmokers. Carcinogenesis 1996;17(10): 2193-2200.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341747&pid=S0004-0622200000010000100090&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>91. Knekt P, Jarvinen R, Seppanen R. Heliovaara M. Teppo L. Pukkala E y Aromaa A. Dietary flavonoids and the risk of lung cancer and other malignant neoplasms. Am J Epidemiol. 1997;146(3): 223-230.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341748&pid=S0004-0622200000010000100091&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>92. Hermann H. On the occurrence of f1avonols and flavone glycoside in vegetables. Z. Lebensm. Unters Forsch 1988; 186: 1-5.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341749&pid=S0004-0622200000010000100092&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>93. Nelson IR y Cummings DG. Effect of tannin content and temperature on storage of propionic acid treated grain sorghum. Agron J. 1975; 67:71-76.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341750&pid=S0004-0622200000010000100093&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>94. Cliftord MN. Review: Clhorogenic acids and other cinnamates-nature, occurrence, and dietary hurden. J Sci Food Agric. 1999; 79: 362-372.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341751&pid=S0004-0622200000010000100094&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>95. Bressani R, Elias LO. The nutritional role of plyphenols in beans.ln: Hulse, J .H. Ed Polyphenols in cereal s and legumes.. The Intern Develop Res. Centre, Ottawa, 1980: 43-59&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341752&pid=S0004-0622200000010000100095&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>96. Mosel HD y Herrman K. The phenolics of fruits. III. The contents of catechins and hydroxicinnamic acids in pome and stone fruits. Z. Lebensm. Unters Forsch. 1974; 154: 6-12.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341753&pid=S0004-0622200000010000100096&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>97. Stohr A y Herrmann K. The phenolics of<I> </I>fruits V. The phenols of strawberries and their changes during development and ripeness of fruits. Z. Lebensm. Unters. Forsch. 1975; 158: 341-348.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341754&pid=S0004-0622200000010000100097&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>98. Hermann K. The phenolics of fruits. I. Our Knowledge of<I> </I>occurrence and concentrations of fruit phenolics and of their variations in the growing fruit. Z. Lebensm. Unters. Forsch. 1973; 151: 41-50.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341755&pid=S0004-0622200000010000100098&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>99. Hermann K. Flavonols and flavones in food plants: A review. J Food Technol. 1976; 11: 433-449.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341756&pid=S0004-0622200000010000100099&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>100. Schuster. B. y Herrmann, K.. Hydroxibenzoic and hydroxycinnamic acid derivates in soft fruits. Phytochem. 1985,24: 2761.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341757&pid=S0004-0622200000010000100100&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>101. Moller B. y Hermann K. Quinic acid esters of hidroxicinnamic acids in stone and pome fruit Phytochem. 1983; 22: 477.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341758&pid=S0004-0622200000010000100101&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>102. Bengoechca ML, Sancho Al, Bartolom&eacute; B. Estrella I. G&oacute;mez- Cordov&eacute;s. Hem&aacute;ndez, T. Phenolic composition of industrially manufactured pur&eacute;es and concentrates from peach and Apple fruits. J Agric Food Chem. 1997; 45: 4071-4075.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341759&pid=S0004-0622200000010000100102&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>103. Kroom PA y Williamson G. Hydroxicinnamates in plants and food: current and future perspectives. J Sci Food Agric, 1999; 79: 355-361.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341760&pid=S0004-0622200000010000100103&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>104. Salunke DK, Chaven JK y Kadam SS. Dietary tannins: Consequences and remedies. CRC Press. Boca Raton. FL. 1990.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341761&pid=S0004-0622200000010000100104&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>105. Hertog MGL, Kromhout D. Aravanis C. Blackburn MD, Buzina R, FidanzaF. Oiampaoli S y col.. Flavonoid intake and long-term risk of Coronary Heart Disease and Cancer in the Seven countries Study. Arch Intem Med. 1996;155: 381-386.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341762&pid=S0004-0622200000010000100105&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>106. Hertog MGL y Hollman PCH. Potential health effects of the dietary flavonol quercetin. Europ. J Clin Nutr. 1996;50:63-71.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341763&pid=S0004-0622200000010000100106&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>107. Jim&eacute;nez-Ramsey LM. Rogler JC, Housley TL y col. Absorption and distribution of 14C-labelled condensed tannins and related sorghum phenolics in chickens. J Agric Foou Chem. 1994; 42: 963-967.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341764&pid=S0004-0622200000010000100107&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>108. Buchanan CJ, Wallace G. Fry SC. Eastwood MA. In vivo release of 14C labelled phenolics groups from intact dietary spinach cell walls during passage through the rat intestine. J Sci Food Agric. 1996; 71; 459-469.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341765&pid=S0004-0622200000010000100108&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>109. Griffiths LA y Barrow A. Metaholism of flavonoid compounds in gerrn-free rats. Bichem J.1972; 130: 1161-1162.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341766&pid=S0004-0622200000010000100109&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>110. Hackett AM. The metabolism of flavonoid compunds in mammals. In: Cody. V. Middleton. E. and Harbome, J.B. eds. Plant flavonoids in biology and Medicine: biochemical, pharrnacological. structure-activity relationships. New YorK. 1986.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341767&pid=S0004-0622200000010000100110&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>111. Manach C. Morand C. Demigne C y col. Bioavalability of rutin and quercetin in rats. FEBS Lett 1997.409: 12-16.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341768&pid=S0004-0622200000010000100111&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>112. Sfakianos J, Coward L. Kirk M. Barnes S. Intestinal uptake and biliary excretion of the isoflavone genistein in rats. J Nutr. 1997; 127: 1260-1268.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341769&pid=S0004-0622200000010000100112&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>113. Formica JV y Regelson W. Reviewof the biology of quercet and related bioflavonoids. Fd Chem Toxic. 1995; 33 (12 1061-1080.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341770&pid=S0004-0622200000010000100113&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p>114. Mizuma T, Ohta K, Awazu S. The B-anomeric and glucose preterences f glucose transport carrier for intestinal active absorption of monosaccharide conjugates. Biochem Biophy Acta 1994; 1200: 117-122.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=341771&pid=S0004-0622200000010000100114&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
<back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Shahidi]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Naczk]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Foods phenolics: Sources, Chemistry, Effects, Application]]></source>
<year>1995</year>
<publisher-loc><![CDATA[Lancaster^ePennsylvania Pennsylvania]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Tecnnomic, Publishing CO., INC]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<nlm-citation citation-type="">
<source><![CDATA[Polyphenols in foods: Proceedings of a European COST concerted action scientific workshop, 1997]]></source>
<year>1997</year>
<page-range>41-44</page-range><publisher-loc><![CDATA[Aberdeen ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Butler]]></surname>
<given-names><![CDATA[LG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Protein polyphenol interactions: nutritional aspects]]></source>
<year>1992</year>
<volume>16</volume>
<conf-name><![CDATA[16 Intemational Conference of Grape Polyphenol]]></conf-name>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>11-18</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Clifford]]></surname>
<given-names><![CDATA[MN]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Sensory and dietary properties of pheno1s]]></source>
<year>1992</year>
<volume>16</volume>
<conf-name><![CDATA[16 Intemational Conference of Grape Polypheno1]]></conf-name>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>18-23</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Belitz]]></surname>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grosch]]></surname>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Química de los alimentos]]></source>
<year>1988</year>
<publisher-loc><![CDATA[^eZaragoza Zaragoza]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Acribia]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ho]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lee]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Huang]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.T]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Phenolic Compounds in Food and Their Effects on Health I: Analysis, Occurrence and Chemistry]]></source>
<year>1992</year>
<page-range>318-321</page-range><publisher-loc><![CDATA[Washington, DC ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[American Chemical Society]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Berra]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Caruso]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cortesi]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fedeli]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rasetti]]></surname>
<given-names><![CDATA[MF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Galli]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant properties of minor polar components of olive oil on the oxidative processes of cholesterol in human LDL]]></article-title>
<source><![CDATA[Riv. It. Sost. Grasse]]></source>
<year>1995</year>
<volume>72</volume>
<page-range>285- 291</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tsimidou]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Polyphenols and quality of virgin olive oil in retrospect]]></article-title>
<source><![CDATA[Ital J Food Sci]]></source>
<year>1998</year>
<volume>2</volume>
<numero>10</numero>
<issue>10</issue>
<page-range>99-116</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bravo]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Poliphenol: chemistry, dietary sources, metabolism and nutritional significance]]></article-title>
<source><![CDATA[Nutr Rev]]></source>
<year>1998</year>
<volume>56</volume>
<numero>11</numero>
<issue>11</issue>
<page-range>317-333</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Harborne]]></surname>
<given-names><![CDATA[J .B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Plant Phenolics]]></source>
<year>1989</year>
<volume>1</volume>
<page-range>1-28</page-range><publisher-loc><![CDATA[London ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Academic Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Windholz]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[The Merck Index: An encyclopedia of chemicals, drugs, and biologicals]]></source>
<year></year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<nlm-citation citation-type="confpro">
<source><![CDATA[Polyphenols in foods]]></source>
<year>1997</year>
<conf-name><![CDATA[ Proceedingsof a European COST concerted action scientific workshop 1997]]></conf-name>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>17-23</page-range><publisher-loc><![CDATA[Aberdeen ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Harborne]]></surname>
<given-names><![CDATA[JB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chapman]]></surname>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hall]]></surname>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[The flavonoids: Advances in Research Since 1986]]></source>
<year>1993</year>
<publisher-loc><![CDATA[London ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hertog]]></surname>
<given-names><![CDATA[MGL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hollman]]></surname>
<given-names><![CDATA[PCH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Van de Putte]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Content of potencially anticarcinogenic flavonoids of tea infusions, wines, and fruit juices]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1993</year>
<volume>41</volume>
<page-range>1242-1246</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chung]]></surname>
<given-names><![CDATA[K-T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wong]]></surname>
<given-names><![CDATA[T-Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wei]]></surname>
<given-names><![CDATA[C-I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Huang]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y-W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lin]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Tannins and Human Health: A review]]></article-title>
<source><![CDATA[Crit. Rev. Food Sci]]></source>
<year>1998</year>
<volume>38</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>421-464</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Swain]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hills]]></surname>
<given-names><![CDATA[WE]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The phenolic constituents of Prunus domestica I: The quantitative analysis of Phenolics Constituents]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>1959</year>
<volume>10</volume>
<page-range>63-68</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Price]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Buttler]]></surname>
<given-names><![CDATA[LG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Rapid visual estimation and spectrophotometric determination of tannin content of shorgum grain]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1977</year>
<volume>26</volume>
<page-range>1214-1219</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Earp]]></surname>
<given-names><![CDATA[CF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Akingbala]]></surname>
<given-names><![CDATA[JO]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ring]]></surname>
<given-names><![CDATA[SH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rooney]]></surname>
<given-names><![CDATA[LW]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of several of methods to determine tannins in shorgum with varying kernel characteristics]]></article-title>
<source><![CDATA[Cereal Chem]]></source>
<year>1981</year>
<volume>58</volume>
<page-range>234-239</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tzagoloff]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Metabolism of sinapine in mustard plants I: Degradation of sinapine into sinapic acid and choline]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant physiol]]></source>
<year>1963</year>
<volume>38</volume>
<page-range>202-210</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Naczk]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wanasundara]]></surname>
<given-names><![CDATA[PKJ P.D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Shahidi]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A facil espectrophotometric quantification method of sinapic acid in hexae-extracted and methanol ammonia watertreated mustard and rapeseed meals]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1992</year>
<volume>44</volume>
<page-range>444-452</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Price]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Van Scoyoc]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Buttler]]></surname>
<given-names><![CDATA[LG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A critical evaluation of the vainillin reaction as an assay for tannin in shorgum]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1978</year>
<volume>26</volume>
<page-range>1214-1220</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mc Gregor]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Saskatoon]]></surname>
<given-names><![CDATA[De]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Rapeseed in a Changing world]]></source>
<year>1991</year>
<volume>5</volume>
<conf-name><![CDATA[8 International Rapeseed Congress]]></conf-name>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>135-138</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Brune]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hallberg]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Skanberg]]></surname>
<given-names><![CDATA[AB]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determination of iron binding phenolics groups in foods]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Sci]]></source>
<year>1991</year>
<volume>56</volume>
<page-range>128</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Goldstein]]></surname>
<given-names><![CDATA[JL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Swain]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Changes in tanin in ripening fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytochem]]></source>
<year>1963</year>
<volume>2</volume>
<page-range>371</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hulse]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Polyphenols in Cereals and legumes: International development research center]]></source>
<year>1980</year>
<page-range>15-31</page-range><publisher-loc><![CDATA[Otawa ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<label>26</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hoff]]></surname>
<given-names><![CDATA[JF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Singleton]]></surname>
<given-names><![CDATA[KI]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A method for determination of tannin in foods by means of immobilized enzymes]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Sci]]></source>
<year>1977</year>
<volume>42</volume>
<page-range>1566</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<label>27</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Singlenton]]></surname>
<given-names><![CDATA[VL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Salgues]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zaya]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Trousdale]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Caftaric acid disapearance and conversion to product on enzymic oxidation in grape mass and wine]]></article-title>
<source><![CDATA[American J. Enol. Viti]]></source>
<year>1985</year>
<volume>36</volume>
<page-range>50-57</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<label>28</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Owades]]></surname>
<given-names><![CDATA[JL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rubin]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Brenner]]></surname>
<given-names><![CDATA[MW]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determination of foods tanins by ultraviolet spectrophotometry]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1958</year>
<volume>6</volume>
<page-range>44-48</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<label>29</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Dao]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Friedman]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Chlorogenic acid contents of fresh and processed potatoes determined by ultraviolet spectrophotometry]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1992</year>
<volume>40</volume>
<page-range>2152-2156</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B30">
<label>30</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jackman]]></surname>
<given-names><![CDATA[LR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Yada]]></surname>
<given-names><![CDATA[RY]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tung]]></surname>
<given-names><![CDATA[MA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A review: Separation and chemical properties of antocyaninns using for their qualitati ve and quantitative analysis]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Biochem]]></source>
<year>1987</year>
<volume>11</volume>
<page-range>279-.292</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B31">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hemingay]]></surname>
<given-names><![CDATA[R. W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Karchsy]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Chemistry and significance of condensed tanins]]></source>
<year>1989</year>
<page-range>139161</page-range><publisher-loc><![CDATA[New York ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Plenum Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B32">
<label>32</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Oh]]></surname>
<given-names><![CDATA[HI]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hoff]]></surname>
<given-names><![CDATA[JE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Haff]]></surname>
<given-names><![CDATA[LA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Immobilized condensed tannins and their interactions with proteins]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Sci]]></source>
<year>1985</year>
<volume>50</volume>
<page-range>1652</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B33">
<label>33</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bartolomé]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bengoechea]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gálvez]]></surname>
<given-names><![CDATA[MC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pérez-IIzarbe]]></surname>
<given-names><![CDATA[FJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hernández]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Estrella]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gómez-Cordovés]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Photo-diode array detection for elucidation of the structure of phenolic compounds]]></article-title>
<source><![CDATA[J Chromatogr. A]]></source>
<year>1993</year>
<volume>655</volume>
<page-range>119-125</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B34">
<label>34</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hertog]]></surname>
<given-names><![CDATA[MGL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hollman]]></surname>
<given-names><![CDATA[PCH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Katan]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Content of potentially anticarcinogenic flavonols of 28 vegetables and 9 fruits commonly consumed in the Netherlands]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1992</year>
<volume>40</volume>
<page-range>2379-2383</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B35">
<label>35</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Crozier]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lean]]></surname>
<given-names><![CDATA[MEJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Morag]]></surname>
<given-names><![CDATA[SM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Black]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Quantitative analysis of the flavonoid content of Commercial Tomatoes Onions: Lettice and Celery]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1997</year>
<volume>47</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>590-595</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B36">
<label>36</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ferreres]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gil]]></surname>
<given-names><![CDATA[MI]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Castañer]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tomás-Barberán]]></surname>
<given-names><![CDATA[FA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phcnolic metabolites in red pigmented lettuce (Lacluca saliva): Changes with minimal processing and cold storage]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1997</year>
<volume>45</volume>
<page-range>4249-4254</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B37">
<label>37</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Price]]></surname>
<given-names><![CDATA[KR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rhodes]]></surname>
<given-names><![CDATA[MJC]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Analysis of the Major Flavonol Glycosides Present in Four Varieties of Onion (Allium cepa) and Changes in Composition resulting from Autolysis]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>1997</year>
<volume>74</volume>
<page-range>331-339</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B38">
<label>38</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Price]]></surname>
<given-names><![CDATA[AR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bacon]]></surname>
<given-names><![CDATA[JR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rhodes]]></surname>
<given-names><![CDATA[MJC]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of storage and domestic processing on the content and composition of flavonols glucosydes in onions (Allium cepa)]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1997</year>
<volume>45</volume>
<page-range>938-942</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B39">
<label>39</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Justesen]]></surname>
<given-names><![CDATA[U]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Knuthsen]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Leth]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Quantilative analysis of flavonols, flavones and flavonones in fruits, vegetables and beverages by high-performance liquid chromatography with photo-diode array and mass spectrometric detection]]></article-title>
<source><![CDATA[J Chromatogr A]]></source>
<year>1998</year>
<volume>799</volume>
<page-range>10 1-110</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B40">
<label>40</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bengoechea]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hemández]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Quesada]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bartolomé]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Estrella]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gómez-Cordovés]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Structureofhydroxycinnamic acid derivates, established by high performed liquidchromatography awith photo diode array detection]]></article-title>
<source><![CDATA[Chromatographia]]></source>
<year>1995</year>
<volume>41</volume>
<numero>1-2</numero>
<issue>1-2</issue>
<page-range>94-98. I 41</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B41">
<label>41</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bartolomé]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hemández]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bengocchea]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Qucsada]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gómez-Cordovés]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Estrella]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determination of some structure feautures of procyanidins and related compounds by photo diode array detection]]></article-title>
<source><![CDATA[J Chromatogr A]]></source>
<year>1996</year>
<volume>723</volume>
<page-range>19- 26</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B42">
<label>42</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Yinrong]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Foo]]></surname>
<given-names><![CDATA[L Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Identification and cuantification of major polyphenols in apple pomace]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem]]></source>
<year>1997</year>
<volume>59</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>187-194</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B43">
<label>43</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hakkinen]]></surname>
<given-names><![CDATA[SH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Karenlampy]]></surname>
<given-names><![CDATA[SO]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Heinonen]]></surname>
<given-names><![CDATA[IM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mykkanen]]></surname>
<given-names><![CDATA[HM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Torronen]]></surname>
<given-names><![CDATA[AR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[HPLC method for screening of flavonoids and phenolic acids y berries]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>1998</year>
<volume>77</volume>
<page-range>543- 541</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B44">
<label>44</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Spanos]]></surname>
<given-names><![CDATA[GA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wrolstad]]></surname>
<given-names><![CDATA[RE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Heatherbell]]></surname>
<given-names><![CDATA[D.A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[lntluence of processing and storage on the phenolic composition of apple juices]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1990</year>
<volume>38</volume>
<page-range>1572-1579</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B45">
<label>45</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lee]]></surname>
<given-names><![CDATA[HS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Carter]]></surname>
<given-names><![CDATA[RD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barros]]></surname>
<given-names><![CDATA[SM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dezman]]></surname>
<given-names><![CDATA[DJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Castle]]></surname>
<given-names><![CDATA[WS]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Chemical characterization by liquid chromatography of Moro blood orange juices]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Compos Ana1ysis]]></source>
<year>1990</year>
<volume>3</volume>
<page-range>9-14</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B46">
<label>46</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Spanos]]></surname>
<given-names><![CDATA[GA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wrolstad]]></surname>
<given-names><![CDATA[RE]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenolics of apple. pear, and white grape juices and their changes with processing and storage-A review]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1992</year>
<volume>40</volume>
<page-range>1478-1487</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B47">
<label>47</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Litridou]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Linssay]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schols]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bergmans]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Posthumus]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tsimidou]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Boskou]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenolic compounds in virgen olive oils: fractionation by solid phase extraction and antioxidant activity assessment]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>1997</year>
<volume>74</volume>
<page-range>169-174</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B48">
<label>48</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Haslam]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Plant polyphenols]]></source>
<year>1989</year>
<publisher-loc><![CDATA[Cambridge ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Cambridge University Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B49">
<label>49</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Clifford]]></surname>
<given-names><![CDATA[MN]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rámirez-Martínez]]></surname>
<given-names><![CDATA[JL]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenols and caffeine in wet-processing coffc beans and coffe pulp]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem]]></source>
<year>1991</year>
<volume>40</volume>
<page-range>35</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B50">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hemingway]]></surname>
<given-names><![CDATA[R.W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Laks]]></surname>
<given-names><![CDATA[P.E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Plant Polyphenols: Synthesis, Properties, Significance]]></source>
<year>1992</year>
<page-range>859-880</page-range><publisher-loc><![CDATA[New York ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Plenum Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B51">
<label>51</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mazza]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Miniati]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Anthocyanins in fruits, vegetables and grains]]></source>
<year>1994</year>
<publisher-loc><![CDATA[Boca Ratón^eFL FL]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[CRC Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B52">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Geissman]]></surname>
<given-names><![CDATA[T.A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Tl1eChemistry of Flavonoid Compounds]]></source>
<year>1962</year>
<page-range>513-535</page-range><publisher-loc><![CDATA[Oxford ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Pergamon Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B53">
<label>53</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Marwan]]></surname>
<given-names><![CDATA[AJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nagel]]></surname>
<given-names><![CDATA[CW]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Separation and purification of hydroxycinnamic acid derivates in cranberries]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Sci]]></source>
<year>1982</year>
<volume>47</volume>
<page-range>585</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B54">
<label>54</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Haslam]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lilley]]></surname>
<given-names><![CDATA[TH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Natural astringency in foodstuffs: Molecualr Interpretation CRC]]></article-title>
<source><![CDATA[Crit Rev Food Sci Nutr]]></source>
<year>1988</year>
<volume>27</volume>
<page-range>1-25</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B55">
<label>55</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Macheix]]></surname>
<given-names><![CDATA[JJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fleuriet]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Billot]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Fruit phenolics]]></source>
<year>1990</year>
<publisher-loc><![CDATA[Boca Raton^eFL FL]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[CRC Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B56">
<label>56</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[White]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Tannins, their occurrence and significance]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>1987</year>
<volume>8</volume>
<page-range>377- 392</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B57">
<label>57</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hagerman]]></surname>
<given-names><![CDATA[AE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Butler]]></surname>
<given-names><![CDATA[LO]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determination of protein in tanin-protein precipitates]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1980</year>
<volume>28</volume>
<page-range>944- 959</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B58">
<label>58</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Siebert]]></surname>
<given-names><![CDATA[KJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Troukhanova]]></surname>
<given-names><![CDATA[NV]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lynn]]></surname>
<given-names><![CDATA[PY]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Nature of polyphenol: Protein interactions]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1996</year>
<volume>44</volume>
<page-range>80-85</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B59">
<label>59</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Yaper]]></surname>
<given-names><![CDATA[Z]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Clandinin]]></surname>
<given-names><![CDATA[DR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of tanins in rape seed meal on its nutritional value for chicks]]></article-title>
<source><![CDATA[Poult Sci]]></source>
<year>1972</year>
<volume>52</volume>
<page-range>222-228</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B60">
<label>60</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Davis]]></surname>
<given-names><![CDATA[AB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hoseney]]></surname>
<given-names><![CDATA[RC]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Grain sorghum condensed tannins: I. Isolation, estimation, and selective adsorption by starch]]></article-title>
<source><![CDATA[Cereal Chem]]></source>
<year>1979</year>
<volume>56</volume>
<page-range>310-317</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B61">
<label>61</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Watson]]></surname>
<given-names><![CDATA[TG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Inhibition of microbial fermentation by sorghum grain and malt]]></article-title>
<source><![CDATA[J Applied Bacteriology]]></source>
<year>1975</year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B62">
<label>62</label><nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Coudray]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bousset]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pépin]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tressol]]></surname>
<given-names><![CDATA[JC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Belanger]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rayssiguier]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Effect of acute ingestion of polyphenol compounds on zinc and copper absorption in thr rat Utilisation of stable isotopes and ICP/MS technique]]></source>
<year>1997</year>
<conf-name><![CDATA[ Polyphenols in foods. Proceedings of a European COST concerted action scientific workshop 1997]]></conf-name>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>173-178</page-range><publisher-loc><![CDATA[Aberdeen ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B63">
<label>63</label><nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hurrell]]></surname>
<given-names><![CDATA[RF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Reddy]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cook]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Intluence of polyphenol- containing beverage on iron absorption]]></source>
<year>1997</year>
<conf-name><![CDATA[ Polyphenols in foods. Proceedings of a European COST concerted action scientific workshop, 1997]]></conf-name>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>169- 172</page-range><publisher-loc><![CDATA[Aberdeen ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B64">
<label>64</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hurrell]]></surname>
<given-names><![CDATA[RF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Reddy]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cook]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Inhibition of non-haem iron absorption in man by polyphenolic-containing beverage]]></article-title>
<source><![CDATA[Blitish J Nutrition]]></source>
<year>1999</year>
<volume>81</volume>
<page-range>289-295</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B65">
<label>65</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Disler]]></surname>
<given-names><![CDATA[PB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lynch]]></surname>
<given-names><![CDATA[SR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Charlton]]></surname>
<given-names><![CDATA[RW]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Torrance]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bothwell]]></surname>
<given-names><![CDATA[TH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Walker]]></surname>
<given-names><![CDATA[Rb]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mayet]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The effect of tea on iron absorption]]></article-title>
<source><![CDATA[Out]]></source>
<year>1975</year>
<volume>16</volume>
<page-range>193-200</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B66">
<label>66</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hallberg]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rossander]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of different drinks on the absorption of non-heme iron from composite meals]]></article-title>
<source><![CDATA[Human Nutrition and Applied Nutrition]]></source>
<year>1982</year>
<volume>36</volume>
<page-range>116-123</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B67">
<label>67</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Shahidi]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wanasundara]]></surname>
<given-names><![CDATA[PKJPD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenolic antio.xidants]]></article-title>
<source><![CDATA[Crit Rev Food Sci Nutr]]></source>
<year>1992</year>
<volume>32</volume>
<page-range>67-103</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B68">
<label>68</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Morck]]></surname>
<given-names><![CDATA[TA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lynch]]></surname>
<given-names><![CDATA[SR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cook]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[lnhibition of food iron absorption by coffee]]></article-title>
<source><![CDATA[Am J Clin Nutr]]></source>
<year>1983</year>
<volume>37</volume>
<page-range>416-420</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B69">
<label>69</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lunte]]></surname>
<given-names><![CDATA[JM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Blankenship]]></surname>
<given-names><![CDATA[KD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Scott]]></surname>
<given-names><![CDATA[AR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Detection and identification of procyanindins and flavonoids in wine by dual-electrode liquid chromatography]]></article-title>
<source><![CDATA[Analyst]]></source>
<year>1988</year>
<volume>113</volume>
<page-range>99-103</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B70">
<label>70</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Coudray]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bousset]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tressol]]></surname>
<given-names><![CDATA[JC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pépin]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rayssiguier]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Short-term ingestion of chlorogenic or caffeic acids decreases zinc but not copper absorption in rats, utilization of stable isotopes and inductively-coupled plasma mass specttrometttry technique]]></article-title>
<source><![CDATA[British J Nutrition]]></source>
<year>1998</year>
<volume>80</volume>
<page-range>574-584</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B71">
<label>71</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ganjii]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kies]]></surname>
<given-names><![CDATA[CV]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Zinc bioavailability and tea consumption: study in healthy humans consuming self-selected and laboratory controlled diets]]></article-title>
<source><![CDATA[P1ant foods for human Nutrition]]></source>
<year>1994</year>
<volume>46</volume>
<page-range>267-276</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B72">
<label>72</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Record]]></surname>
<given-names><![CDATA[IR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mclnerney]]></surname>
<given-names><![CDATA[JK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dreosti]]></surname>
<given-names><![CDATA[IE]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Black tea, green tea, and tea polyphenols: effects on trace elements status in weaning rats]]></article-title>
<source><![CDATA[Biological trace elements research]]></source>
<year>1996</year>
<volume>5</volume>
<page-range>27-43</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B73">
<label>73</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Brune]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rossander]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[hallberg]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Iron absorption and phenolic compounds: Importance of different phenolic structures]]></article-title>
<source><![CDATA[Europ J Clin Nutr]]></source>
<year>1989</year>
<volume>43</volume>
<page-range>547-558</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B74">
<label>74</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Wang]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cao]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Prior]]></surname>
<given-names><![CDATA[RL]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Total antioxidant capacity of fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1996</year>
<volume>44</volume>
<page-range>701-705</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B75">
<label>75</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hertog]]></surname>
<given-names><![CDATA[MGL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kromhout]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aravanis]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[B1ackburn]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Buzina]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fidanza]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Flavonoid intake and long term risk of coronary heart disease and cancer in the Seven Countries]]></article-title>
<source><![CDATA[Study Arch Intern Med]]></source>
<year>1995</year>
<volume>155</volume>
<page-range>381-386</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B76">
<label>76</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ito]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fukushima]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hasegawa]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ogiso]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Carcinogenety of butylated hydroxy anisole in F344 rats]]></article-title>
<source><![CDATA[J Natl Cancer Inst]]></source>
<year>1983</year>
<volume>70</volume>
<page-range>343-347</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B77">
<label>77</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Velioglu]]></surname>
<given-names><![CDATA[YS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mazza]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gao]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Oomah]]></surname>
<given-names><![CDATA[BD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity and total phenolics in selected fruits, vegetables and grain products]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1998</year>
<volume>46</volume>
<numero>10</numero>
<issue>10</issue>
<page-range>4113-4117</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B78">
<label>78</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Decker]]></surname>
<given-names><![CDATA[EA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenolics: Prooxidants or antioxidants?]]></article-title>
<source><![CDATA[Nutritional Reviews]]></source>
<year>1997</year>
<volume>55</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>396-398</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B79">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Huang]]></surname>
<given-names><![CDATA[M.T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ho]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Li]]></surname>
<given-names><![CDATA[C.Y]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Phenolic compounds in food and their effects on health: II. Antioxidants and cancer prevention]]></source>
<year>1992</year>
<page-range>54-68</page-range><publisher-loc><![CDATA[Washington, DC ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[American Chemical Society]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B80">
<nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hudson]]></surname>
<given-names><![CDATA[B.J.F. de]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Elsevier Appliede Sciences]]></source>
<year>1990</year>
<page-range>171-180</page-range><publisher-loc><![CDATA[London ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Food Antioxidants]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B81">
<label>81</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Miller]]></surname>
<given-names><![CDATA[NJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rice-Evans]]></surname>
<given-names><![CDATA[CA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Factors influencing the antioxidant activity determined by the ABTS+ radical cation assay]]></article-title>
<source><![CDATA[Free Radical Research]]></source>
<year>1997</year>
<volume>26</volume>
<page-range>195-199</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B82">
<label>82</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Wang]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cao]]></surname>
<given-names><![CDATA[Gy]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Prior]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Total antioxidantcapacity of fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1996</year>
<volume>44</volume>
<page-range>701-705. 83</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B83">
<label>83</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Vinson]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dabbagh]]></surname>
<given-names><![CDATA[YA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Serry]]></surname>
<given-names><![CDATA[MM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jang]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Plant flavonoids, especially tea flavonols, are powerful antioxidants using an in vitro model for heart disease]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1995</year>
<volume>43</volume>
<page-range>2800-2802</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B84">
<label>84</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hollman]]></surname>
<given-names><![CDATA[PCH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Katan]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Absorption, metabolism and health effects of dietary flavonoids in man]]></article-title>
<source><![CDATA[Biomed and Pharmacother]]></source>
<year>1997</year>
<volume>51</volume>
<page-range>305-310</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B85">
<label>85</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rice-Evans]]></surname>
<given-names><![CDATA[CA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Miller]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Paganga]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Structure-Antioxidant: activity relationships of flavonoids and phenolic acids]]></article-title>
<source><![CDATA[Free Radical Biology and Medicine]]></source>
<year>1996</year>
<volume>20</volume>
<numero>7</numero>
<issue>7</issue>
<page-range>933-956</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B86">
<label>86</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Guohua]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sofic]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ronald]]></surname>
<given-names><![CDATA[LP]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant and prooxidant behaviourofflavonoids: Structure activity relationships]]></article-title>
<source><![CDATA[Free I Radical Biology and Medicine]]></source>
<year>1997</year>
<volume>22</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>749-760</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B87">
<label>87</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Grootveld]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Halliwell]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Aromatic hydroxylation as a potencial measure of hydroxyl radical formation in vivo]]></article-title>
<source><![CDATA[Biochem Joumal]]></source>
<year>1986</year>
<volume>238</volume>
<page-range>499-504</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B88">
<label>88</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Satué-Gracia]]></surname>
<given-names><![CDATA[MT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Heinonen]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Frankel]]></surname>
<given-names><![CDATA[EN]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Anthocyanins as antioxidants on human low-densidity lipoprotein and lecitin-liposome systems]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chcm]]></source>
<year>1997</year>
<volume>45</volume>
<page-range>3362-3367</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B89">
<label>89</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Stavric]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mulagenic food flavonoids]]></article-title>
<source><![CDATA[Federation Proceedings]]></source>
<year>1984</year>
<volume>43</volume>
<page-range>2454-2458</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B90">
<label>90</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Malaveille]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hautefeuille]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pignatelli]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Talaska]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vineis]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bartsch]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Dietary phenolics as anti-mutagens and inhibitors of tobacco-related DNA adduction in the urothelium ofsmokers]]></article-title>
<source><![CDATA[Carcinogenesis]]></source>
<year>1996</year>
<volume>17</volume>
<numero>10</numero>
<issue>10</issue>
<page-range>2193-2200</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B91">
<label>91</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Knekt]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jarvinen]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Seppanen]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Heliovaara]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Teppo]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pukkala]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aromaa]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Dietary flavonoids and the risk of lung cancer and other malignant neoplasms]]></article-title>
<source><![CDATA[Am J Epidemiol]]></source>
<year>1997</year>
<volume>146</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>223-230</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B92">
<label>92</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hermann]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[On the occurrence of f1avonols and flavone glycoside in vegetables]]></article-title>
<source><![CDATA[Z. Lebensm. Unters Forsch]]></source>
<year>1988</year>
<volume>186</volume>
<page-range>1-5</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B93">
<label>93</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Nelson]]></surname>
<given-names><![CDATA[IR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cummings]]></surname>
<given-names><![CDATA[DG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of tannin content and temperature on storage of propionic acid treated grain sorghum]]></article-title>
<source><![CDATA[Agron J]]></source>
<year>1975</year>
<volume>67</volume>
<page-range>71-76</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B94">
<label>94</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cliftord]]></surname>
<given-names><![CDATA[MN]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Review: Clhorogenic acids and other cinnamates-nature, occurrence, and dietary hurden]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>1999</year>
<volume>79</volume>
<page-range>362-372</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B95">
<nlm-citation citation-type="confpro">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hulse]]></surname>
<given-names><![CDATA[J .H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Polyphenols in cereal s and legumes]]></source>
<year>1980</year>
<conf-name><![CDATA[ The Intern Develop Res. Centre]]></conf-name>
<conf-loc> </conf-loc>
<page-range>43-59</page-range><publisher-loc><![CDATA[Ottawa ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B96">
<label>96</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mosel]]></surname>
<given-names><![CDATA[HD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Herrman]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The phenolics of fruits: III. The contents of catechins and hydroxicinnamic acids in pome and stone fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[Z. Lebensm. Unters Forsch]]></source>
<year>1974</year>
<volume>154</volume>
<page-range>6-12</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B97">
<label>97</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Stohr]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Herrmann]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The phenolics of fruits: V. The phenols of strawberries and their changes during development and ripeness of fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[Z. Lebensm. Unters. Forsch]]></source>
<year>1975</year>
<volume>158</volume>
<page-range>341-348</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B98">
<label>98</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hermann]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The phenolics of fruits: I. Our Knowledge of occurrence and concentrations of fruit phenolics and of their variations in the growing fruit]]></article-title>
<source><![CDATA[Z. Lebensm. Unters. Forsch]]></source>
<year>1973</year>
<volume>151</volume>
<page-range>41-50</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B99">
<label>99</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hermann]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Flavonols and flavones in food plants: A review]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Technol]]></source>
<year>1976</year>
<volume>11</volume>
<page-range>433-449</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B100">
<label>100</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Schuster]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Herrmann]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Hydroxibenzoic and hydroxycinnamic acid derivates in soft fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytochem]]></source>
<year>1985</year>
<volume>24</volume>
<page-range>2761</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B101">
<label>101</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Moller]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hermann]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Quinic acid esters of hidroxicinnamic acids in stone and pome fruit]]></article-title>
<source><![CDATA[Phytochem]]></source>
<year>1983</year>
<volume>22</volume>
<page-range>477</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B102">
<label>102</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bengoechca]]></surname>
<given-names><![CDATA[ML]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sancho]]></surname>
<given-names><![CDATA[Al]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bartolomé]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Estrella]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gómez- Cordovés]]></surname>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hemández]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenolic composition of industrially manufactured purées and concentrates from peach and Apple fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem]]></source>
<year>1997</year>
<volume>45</volume>
<page-range>4071-4075</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B103">
<label>103</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kroom]]></surname>
<given-names><![CDATA[PA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Williamson]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Hydroxicinnamates in plants and food: current and future perspectives]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>1999</year>
<volume>79</volume>
<page-range>355-361</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B104">
<label>104</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Salunke]]></surname>
<given-names><![CDATA[DK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chaven]]></surname>
<given-names><![CDATA[JK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kadam]]></surname>
<given-names><![CDATA[SS]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Dietary tannins: Consequences and remedies]]></source>
<year>1990</year>
<publisher-loc><![CDATA[Boca Raton^eFL FL]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[CRC Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B105">
<label>105</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hertog]]></surname>
<given-names><![CDATA[MGL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kromhout]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aravanis]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Blackburn]]></surname>
<given-names><![CDATA[MD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Buzina]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fidanza]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Oiampaoli]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Flavonoid intake and long-term risk of Coronary Heart Disease and Cancer in the Seven countries Study]]></article-title>
<source><![CDATA[Arch Intem Med]]></source>
<year>1996</year>
<volume>155</volume>
<page-range>381-386</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B106">
<label>106</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hertog]]></surname>
<given-names><![CDATA[MGL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hollman]]></surname>
<given-names><![CDATA[PCH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Potential health effects of the dietary flavonol quercetin]]></article-title>
<source><![CDATA[Europ. J Clin Nutr]]></source>
<year>1996</year>
<volume>50</volume>
<page-range>63-71</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B107">
<label>107</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jiménez-Ramsey]]></surname>
<given-names><![CDATA[LM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rogler]]></surname>
<given-names><![CDATA[JC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Housley]]></surname>
<given-names><![CDATA[TL]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Absorption and distribution of 14C-labelled condensed tannins and related sorghum phenolics in chickens]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Foou Chem]]></source>
<year>1994</year>
<volume>42</volume>
<page-range>963-967</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B108">
<label>108</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Buchanan]]></surname>
<given-names><![CDATA[CJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wallace]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fry]]></surname>
<given-names><![CDATA[SC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Eastwood]]></surname>
<given-names><![CDATA[MA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[In vivo release of 14C labelled phenolics groups from intact dietary spinach cell walls during passage through the rat intestine]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric]]></source>
<year>1996</year>
<volume>71</volume>
<page-range>459-469</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B109">
<label>109</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Griffiths]]></surname>
<given-names><![CDATA[LA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barrow]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Metaholism of flavonoid compounds in gerrn-free rats]]></article-title>
<source><![CDATA[Bichem J]]></source>
<year>1972</year>
<volume>130</volume>
<page-range>1161-1162</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B110">
<nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cody]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Middleton]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Harbome]]></surname>
<given-names><![CDATA[J.B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Plant flavonoids in biology and Medicine: biochemical, pharrnacological. structure-activity relationships]]></source>
<year>1986</year>
<publisher-loc><![CDATA[New YorK ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B111">
<label>111</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Manach]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Morand]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Demigne]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Bioavalability of rutin and quercetin in rats]]></article-title>
<source><![CDATA[FEBS Lett]]></source>
<year>1997</year>
<volume>409</volume>
<page-range>12-16</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B112">
<label>112</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sfakianos]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Coward]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kirk]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barnes]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Intestinal uptake and biliary excretion of the isoflavone genistein in rats]]></article-title>
<source><![CDATA[J Nutr]]></source>
<year>1997</year>
<volume>127</volume>
<page-range>1260-1268</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B113">
<label>113</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Formica]]></surname>
<given-names><![CDATA[JV]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Regelson]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Reviewof the biology of quercet and related bioflavonoids]]></article-title>
<source><![CDATA[Fd Chem Toxic]]></source>
<year>1995</year>
<volume>33</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>1061-1080</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B114">
<label>114</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mizuma]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ohta]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Awazu]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The B-anomeric and glucose preterences f glucose transport carrier for intestinal active absorption of monosaccharide conjugates]]></article-title>
<source><![CDATA[Biochem Biophy Acta]]></source>
<year>1994</year>
<volume>1200</volume>
<page-range>117-122</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
