<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0004-0622</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Archivos Latinoamericanos de Nutrición]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[ALAN]]></abbrev-journal-title>
<issn>0004-0622</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Sociedad Latinoamericana de Nutrición]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0004-06222008000300014</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Contenido de polifenoles y actividad antioxidante de varias semillas y nueces]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Polyphenol content and antioxidant activity of several seeds and nuts]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Padilla]]></surname>
<given-names><![CDATA[F. C]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rincón]]></surname>
<given-names><![CDATA[A. M]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bou-Rached]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Central de Venezuela Facultad de Farmacia Unidad de Análisis de Alimentos]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Caracas ]]></addr-line>
<country>Venezuela</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>09</month>
<year>2008</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>09</month>
<year>2008</year>
</pub-date>
<volume>58</volume>
<numero>3</numero>
<fpage>303</fpage>
<lpage>308</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0004-06222008000300014&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0004-06222008000300014&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0004-06222008000300014&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Los alimentos de origen vegetal en especial las frutas y los vegetales presentes en la dieta de acuerdo a estudios epidemiológicos realizados, pueden ejercer un efecto protector contra algunas enfermedades tales como el cáncer y trastornos cardiovasculares. Esta propiedad se debe a la presencia de compuestos bioactivos con capacidad antioxidante como la vitamina C, E, b-caroteno, y una mezcla compleja de compuestos fenólicos. El objetivo de este trabajo fue estudiar en una serie de productos de origen vegetal, la relación entre el contenido de polifenoles totales y la actividad antioxidante. Los polifenoles fueron determinados luego de su extracción en solución metanólica por el método de Folin-Ciocalteau. La actividad antioxidante fue evaluada usando los métodos del b-caroteno/linoleato, el poder reductor, y la actividad antirradical. Los productos estudiados fueron las semillas y/o pericarpios de: Theobroma cacao (cacao), Campsiandra comosa Benth (chiga), Sorghum bicolor, L. Moench (sorgo), Melicoccus bijugatus (mamón). El pericarpio del mamón presentó el más bajo contenido de polifenoles (1,40 EAGg/100g) y el cacao el más alto (6,66 EAGg/100g). El poder reductor del cacao resultó ser el más alto y equivalente al poder reductor de 5,80g de ácido ascórbico /100g, seguido por la chiga. Asimismo, las semillas de chiga y de cacao presentaron una actividad antioxidante, comparable a la del butil hidroxianisol antioxidante sintético. El mayor poder antirradical lo presentó la semilla de chiga con un EC50 de 2,67 g/gDPPH. El contenido de polifenoles totales se correlaciona bien con la actividad antioxidante; asimismo, estas semillas o granos podrían tener los efectos beneficiosos para la salud atribuidos a otras frutas y vegetales.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Foods from plant origin not only provide human diet with certain antioxidant vitamins (C, E and &#946;-carotene), but also a complex mixture of polyphenols, with antioxidant activity. Numerous studies have been focused on the protective and preventing effect of this antioxidant activity on certain degenerative illnesses such as cardiovascular, cancer, and neurological diseases, cataracts and oxidative stress dysfunctions. The objective of this work was to evaluate total polyphenol content and antioxidant activity of several seeds, nuts, or grains such as Theobroma cacao, Campsiandra comosaBenth (chiga), Sorghum bicolor, L. Moench, Melicoccus bijugatus (genip). Total polyphenol content was assessed by the Folin-Ciocalteau method and the antioxidant activity by the &#946;.carotene/linoleate, reducing power, and the anti-radical activity methods. Results showed genip pericarp with the lowest polyphenol content (1.40 gGAE/100g), and cacao beans with the highest (6.66 gGAE/100g). Reducing power of cacao beans was also the highest and similar to the reducing power of 5,80g ascorbic acid /100g, followed by Campsiandra comosa. Moreover, Campsiandra comosa and cacao seeds presented an antioxidant activity comparable to that of the butylhydroxianisol, a synthetic antioxidant. The highest anti-radical activity was shown by Campsiandra comosa with an EC50 of 2.67 g/gDPPH. Total polyphenol content shows a good correlation with the antioxidant activity. Moreover, these seeds might have the same health beneficial effects attributed to other fruits and vegetables.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Polifenoles]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[actividad antioxidante]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Theobroma cacao]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Melicoccus bijugatus]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Campsiandra comosa]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Sorghum bicolor]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Polyphenols]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[antioxidant activity]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Theobroma cacao]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Melicoccus bijugatus]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Campsiandra comosa]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Sorghum bicolor]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Contenido de polifenoles y  actividad antioxidante de varias semillas y nueces</b></font></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">F. C. Padilla, A. M. Rincón,  L. Bou-Rached</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Universidad Central de  Venezuela, Facultad de Farmacia, Unidad de Análisis de Alimentos. Caracas,  Venezuela</font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p align="justify"><b>RESUMEN</b></p>     <p align="justify">Los alimentos de origen vegetal en especial las frutas y los  vegetales presentes en la dieta de acuerdo a estudios epidemiológicos  realizados, pueden ejercer un efecto protector contra algunas enfermedades tales  como el cáncer y trastornos cardiovasculares. Esta propiedad se debe a la  presencia de compuestos bioactivos con capacidad antioxidante como la vitamina  C, E, b-caroteno, y una mezcla compleja de compuestos fenólicos. El objetivo de  este trabajo fue estudiar en una serie de productos de origen vegetal, la  relación entre el contenido de polifenoles totales y la actividad antioxidante.  Los polifenoles fueron determinados luego de su extracción en solución  metanólica por el método de Folin-Ciocalteau. La actividad antioxidante fue  evaluada usando los métodos del b-caroteno/linoleato, el poder reductor, y la  actividad antirradical. Los productos estudiados fueron las semillas y/o  pericarpios de: <i>Theobroma cacao </i>(cacao)<i>, Campsiandra comosa </i>Benth  (chiga), <i>Sorghum bicolor,</i> L. Moench (sorgo),<i> Melicoccus bijugatus</i>  (mamón). El pericarpio del mamón presentó el más bajo contenido de polifenoles  (1,40 EAGg/100g) y el cacao el más alto (6,66 EAGg/100g). El poder reductor del  cacao resultó ser el más alto y equivalente al poder reductor de 5,80g de ácido  ascórbico /100g, seguido por la chiga. Asimismo, las semillas de chiga y de  cacao presentaron una actividad antioxidante, comparable a la del butil  hidroxianisol antioxidante sintético. El mayor poder antirradical lo presentó la  semilla de chiga con un EC<sub>50</sub> de 2,67 g/gDPPH. El contenido de  polifenoles totales se correlaciona bien con la actividad antioxidante;  asimismo, estas semillas o granos podrían tener los efectos beneficiosos para la  salud atribuidos a otras frutas y vegetales.</p>     <p align="justify"><b>Palabras clave:</b> Polifenoles, actividad antioxidante, <i>Theobroma cacao</i>,<i>  Melicoccus bijugatus</i>, <i>Campsiandra comosa</i>, <i>Sorghum bicolor</i>.</p>     <p align="center"><b>Polyphenol content and antioxidant activity of several  seeds and nuts</b></p>     <p align="justify"><b>SUMMARY</b></p>     <p align="justify">Foods from plant origin not only provide human diet with  certain antioxidant vitamins (C, E and &#946;-carotene), but also a complex mixture  of polyphenols, with antioxidant activity. Numerous studies have been focused on  the protective and preventing effect of this antioxidant activity on certain  degenerative illnesses such as cardiovascular, cancer, and neurological diseases,  cataracts and oxidative stress dysfunctions. The objective of this work was to  evaluate total polyphenol content and antioxidant activity of several seeds,  nuts, or grains such as <i>Theobroma cacao, Campsiandra comosa</i>Benth (chiga), <i>Sorghum bicolor,</i> L. Moench,<i> Melicoccus bijugatus</i> (genip). Total  polyphenol content was assessed by the Folin-Ciocalteau method and the  antioxidant activity by the &#946;.carotene/linoleate, reducing power, and the anti-radical  activity methods. Results showed genip pericarp with the lowest polyphenol  content (1.40 gGAE/100g)<i>, </i>and cacao beans with the highest (6.66 gGAE/100g).  Reducing power of cacao beans was also the highest and similar to the reducing  power of 5,80g ascorbic acid /100g, followed by <i>Campsiandra comosa</i>.  Moreover, <i>Campsiandra comosa </i>and cacao seeds presented an antioxidant  activity comparable to that of the butylhydroxianisol, a synthetic antioxidant.  The highest anti-radical activity was shown by <i>Campsiandra comosa</i> with an  EC<sub>50</sub> of 2.67 g/gDPPH. Total polyphenol content shows a good  correlation with the antioxidant activity. Moreover, these seeds might have the  same health beneficial effects attributed to other fruits and vegetables.</p>     <p align="justify"><b>Key words: </b>Polyphenols, antioxidant activity, <i> Theobroma cacao</i>,<i> Melicoccus bijugatus</i>, <i>Campsiandra comosa</i>, <i> Sorghum bicolor</i>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Recibido: </b>02/07/2008<b> Aceptado: </b>19/09/2008</p>     <p align="justify"><b>INTRODUCCION</b></p>     <p align="justify">Los alimentos de origen vegetal en especial las frutas,  vegetales, nueces, vino tinto y jugos presentes en la dieta, de acuerdo a  estudios epidemiológicos realizados pueden ejercer un efecto protector contra  algunas enfermedades tales como el cáncer, trastornos cardiovasculares y  cerebrovasculares (1). Esta propiedad se debe a la presencia de compuestos  bioactivos con capacidad antioxidante como la vitamina C, E, b-caroteno, y una  mezcla compleja de compuestos fenólicos. Los polifenoles son compuestos  provenientes del metabolismo secundario de las plantas y se encuentran  naturalmente en alimentos y bebidas de origen vegetal. Desde el punto de vista  químico se caracterizan por la presencia de uno o más anillos tipo benceno.  Ellos se relacionan directamente con algunas características de los alimentos  como son el sabor, color, la palatabilidad y el valor nutricional. Entre estos  compuestos se encuentran los ácidos fenólicos y flavonoides como el ácido  cumárico y la quercetina y los taninos, entre los cuales el más activo  biológicamente es la epicatequina. Estos fenoles con peso molecular  relativamente alto tienen un poder antioxidante 20 veces más fuerte que la  vitamina E (1).</p>     <p align="justify">La actividad antioxidante, consecuencia de la presencia y estructura química de  los polifenoles, ha centrado interés en los posibles efectos beneficiosos para  la salud de los alimentos y bebidas ricos en polifenoles (2). Los antioxidantes  protegen el organismo de los radicales libres, moléculas altamente reactivas que  pueden da?ar el organismo a nivel celular. Este da?o producido por los radicales  libres puede aumentar el riesgo al desarrollo de cáncer, enfermedades  cardiovasculares y otras enfermedades degenerativas. Los antioxidantes  desactivan los radicales libres, minimizando el da?o y protegiendo el organismo  de este tipo de enfermedades. Esto ha traído Interés en los antioxidantes  presentes de forma natural en la dieta humana (3). Todas las semillas utilizadas  en el estudio son comestibles, aun en el caso de las semillas de mamón las  cuales son usadas por los indígenas de la región del Orinoco (Venezuela y  Colombia) en casos de diarrea en niños y en la forma de harina en la preparación  de pan para sustituir el casabe (4).</p>     <p align="justify">El objetivo de este trabajo fue estudiar en una serie de productos de origen  vegetal <i>Theobroma cacao</i>, <i>Campsiandra comosa</i> Benth (chiga), <i> Sorghum bicolor</i>, <i>L. Moench</i> (sorgo), <i>Melicoccus bijugatus</i>  (mamón), el contenido de polifenoles totales, su relación con la actividad  antioxidante, además de aportar datos para la ampliación de la tabla de  composición de alimentos.</p>     <p align="justify"><b>MATERIALES Y METODOS</b></p>     <p align="justify">Obtención y preparación de las muestras: Las muestras secas de cacao fueron  obtenidas en Caucagua, Edo Miranda, la chiga en la región del alto Apure, el  sorgo variedad Himeca 400 donado por la empresa SEMINACA (Palo Negro, Aragua) y  el mamón en el mercado en Caracas. Las semillas de mamón se liofilizaron. Tanto  las semillas de cacao como de mamón se desgrasaron previamente, a temperatura  ambiente con hexano. Todas las muestras fueron sometidas a molienda y tamizadas  por un tamiz malla 60, y luego se les determinó el contenido de humedad a1000 C.</p>     <p align="justify">Extracción y cuantificación de los polifenoles: 1g de muestra se extrajo a  temperatura ambiente con una mezcla acidificada de metanol-agua (50:50) durante  1h con agitación constante, se centrifuga a 3000 rpm y se filtra, el residuo se  extrae luego con acetona-agua (70:30), se centrifuga y se filtra, los filtrados  se combinan en el balón aforado de100ml y se lleva a volumen con una mezcla  50:50 de las dos soluciones extractivas (5). En una alícuota de 0.5 ml del  extracto se determinan los polifenoles totales con el método de Folin-Ciocalteau  (6) usando una curva patrón de ácido gálico en un rango de concentración de 20 -  500 ?g/ml. Los resultados se expresan como equivalentes de ácido gálico (EAG)  g/100g de muestra seca.</p>     <p align="justify">Poder reductor: Se determino por el método de Yen y Duh (7) tomando 1 ml del  extracto metanólico, y comparando la absorbancia leída contra una curva patrón  de ácido ascórbico, expresando los resultados en equivalentes de ácido ascórbico  (EAAs) g/100g de muestra seca.</p>     <p align="justify">Método de decoloración del ?-caroteno. La actividad antioxidante de los  extractos fue evaluada por medio del sistema modelo del ?-caroteno-linoleato (8)  modificado en el sentido que se utiliza el mismo extracto metanólico y no se  realiza una extracción de las muestras con etanol. 1ml de una solución de  ?-caroteno en cloroformo (0,2 mg/mL) se mezcla en un balón aforado de 50ml con  20 mg de ácido linoleico y 200mg Tween 40. Se evapora el cloroformo con  corriente de nitrógeno, al residuo se a?aden lentamente con agitación vigorosa,  10 ml de agua destilada y oxigenada por agitación, para formar la emulsión, se  lleva a volumen con agua destilada. Se toman alícuotas de 4ml de la emulsión y  se colocan en tubos de ensayo que contienen: a) 0,2 ml del extracto metanólico  de la muestra, b) 0,2 ml de una solución de (100ppm) BHA en metanol que se usa  como comparación, c) 0,2ml de metanol como control y. d) un blanco con 4 ml de  la emulsión sin adición de ?-caroteno y 0,2 ml de metanol. Se leen las  absorbancias a 470nm de todos los tubos al tiempo cero (t=0). Los tubos se  cubren con papel de aluminio, se colocan en un baño de agua a 500C y se leen las  absorbancias cada 15min hasta desaparición del color del ?-caroteno en el tubo  control. La extracción se realiza por duplicado y las lecturas de las  absorbancias se realizan por triplicado para todos los ensayos. Todos los  reactivos usados fueron grado analítico.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La actividad antioxidante de los extractos se basó en tres parámetros  diferentes: la actividad antioxidante (A<sub>A</sub>), la relación de la  velocidad de oxidación (R<sub>or</sub>) y el coeficiente de la actividad  antioxidante (C<sub>AA</sub>).</p>     <p align="justify">El índice de actividad antioxidante (A<sub>A</sub>) fue determinada como el  porcentaje de inhibición relativa al control,</p>     <p align="center"><i>A</i></font><i><font size="2" face="Verdana">a</font><font size="2" face="Verdana">  = </font></i><font size="2" face="Verdana">[(<i>Rcontrol-Rmuestra</i>) / (<i>Rcontrol</i>)]100</font></p> <font size="2" face="Verdana">     <p align="justify">en donde R<sub>control</sub> y R<sub>muestra</sub>  representan la velocidad de decoloración del b-caroteno sin y con la adición de  antioxidante respectivamente. La velocidad de degradación (Rd) fue calculada de  acuerdo con cinética de primer grado:</p>     <p align="center"><i>R</i>d = ln(<i>At</i>/<i>Ax</i>)(l<i>t</i>)</p>     <p align="justify">donde <i>ln</i> es el log natural, A<sub>t</sub> es la  absorbancia inicial a 470nm a (t = 0) y A<sub>x</sub> es la absorbancia a 470nm  a t=15, 30, 45,… min. </p>     <p align="justify">La relación de la velocidad de oxidación se calcula según:</p> </font><font size="1" face="Verdana">     <p align="center"><font size="2">R<sub>OR</sub> = R<sub>muestra</sub> / R<sub>control</sub></font></p> </font><font face="Verdana" size="2">     <p align="justify">Donde R<sub>muestra</sub> y R<sub>control</sub> representan  la velocidad de decoloración del b-caroteno sin y con la adición de antioxidante  respectivamente.</p>     <p align="justify">El coeficiente de la actividad antioxidante (C<sub>AA</sub>)  es calculado usando:</p> </font><font size="1" face="Verdana">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2">C<sub>AA</sub> = [(A<sub>m (90)</sub> - A<sub>c  (90)</sub> / A<sub>c (0)</sub> - A<sub>c (90)</sub>)] 1000</font></p> <font face="Verdana" size="2">     <p align="justify">donde A<sub>M (90)</sub> es la absorbancia de la muestra  conteniendo antioxidante a un tiempo t=90 min., A<sub>C (90)</sub> es la  absorbancia del control a un tiempo t=90 min., y A<sub>C (0)</sub> es la  absorbancia del control a t = 0 min.</p>     <p align="justify"><b>Actividad antirradical DPPH </b></p>     <p align="justify">La capacidad antioxidante se determinó mediante método del  radical DPPH* (1,1-difenil-2-picril- hidracil) (5) el cual se basa en la  utilización del radical libre del (DPPH*) en solución metanólica al 0,025g/L. La  reacción se realizó usando 3,9 mL de esta solución de DPPH y 0,1mL de soluciones  del extracto metanólico de la muestra a diferentes concentraciones. La  absorbancia se leyó a 515nm a intervalos de tiempo diferentes hasta que la  reacción alcanzó un equilibrio (time at the steady state). El porcentaje de DPPH*  remanente fue calculado como sigue:</p>     <p align="justify"></font><font size="1" face="Verdana"><b><font size="2"> %DPPHrem = [(Abs a 515 nm) muestra/ (Abs: 515 nm) control] x 100</font></b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A partir del grafico de este  porcentaje versus la concentración de la muestra se obtiene el EC<sub>50</sub>  definido como la cantidad de la muestra (g de muestra) necesarios para disminuir  en un 50% la absorbancia. A valores mas bajos de EC<sub>50</sub> mayor la  actividad antioxidante. El tiempo necesario para alcanzar el equilibrio a la  concentración de EC<sub>50</sub> (TEC<sub>50</sub>) se calcula gráficamente.  Como el EC<sub>50</sub> y el TEC<sub>50</sub> afectan la capacidad antirradical  se calcula la eficiencia antirradical (EA) que combina estos dos factores:</font></p>     <p align="center"><font size="2">EA = 1/EC<sub>50</sub> TEC<sub>50</sub></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Análisis estadístico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Todas las determinaciones se  realizaron por triplicado y se expresaron los valores como los promedios ± la  desviación estándar (DE).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados (<a href="#tab1">Tabla 1</a>)  muestran al pericarpio del mamón (<i>M. bijugatus</i>) con el valor más bajo de  contenido de polifenoles (1,40 gEAG/100g) seguido por el sorgo, semilla de  mamón, pericarpio y semilla de chiga (<i>C. comosa</i>), y las nueces de cacao  presentaron el más alto contenido (6,66 gEAG/100g). El poder reductor de las  semillas de cacao fue también el más alto y equivalente al poder reductor de una  solución de 5,80g ácido ascórbico /100g, seguido por la chiga (<i>C. comosa</i>)  con un poder reductor de 3,79g/100g.</font></p>     <p align="center"> <a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v58n3/art14tab1.gif" width="580" height="257"></a></p> <font face="Verdana" size="2">     
<p align="justify">Existen una variedad de métodos para la determinación de la  actividad antioxidante, entre ellos el método de decoloración del -caroteno, en  el cual se produce la oxidación del -caroteno en presencia del ácido linoleico.  La <a href="#fig1">Figura 1</a> presentan el efecto de los extractos comparados con el BHA en los  productos estudiados semillas y/o pericarpios de: <i>T. cacao</i> (cacao), <i>C.  comosa</i> Benth (chiga), <i>S. bicolor</i>, <i>L. Moench.</i> (Sorgo), y <i>M.  bijugatus</i> (mamón).</p>     <p align="center"> <a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v58n3/art14fig1.gif" width="578" height="595"></a></p>     
<p align="justify">En la <a href="#fig1">Figura 1(A)</a> se puede observar que el pericarpio de chiga presenta una actividad antioxidante más alta que el BHA y la semilla de  chiga similar a éste. En la <a href="#fig1">Figura.1 (B)</a> se observa que la semilla de cacao es  la que presenta una actividad antioxidante ligeramente mayor que el BHA. Las  harinas del chiga y de cacao presentaron la mayor actividad antioxidante,  comparable a la del butil hidroxianisol (BHA) antioxidante sintético.</p>     <p align="justify">Cuando la capacidad antioxidante <a href="#tab2">Tabla 2</a> se expresa como el  coeficiente de actividad antioxidante (CAA), el índice de actividad antioxidante  (AA) o porcentaje de inhibición de la oxidación; se puede observar que a mayor  porcentaje de inhibición de la oxidación (AA) mayor coeficiente de actividad  antioxidante (CAA), presentando el cacao y el pericarpio de la chiga valores  similares al BHA, antioxidante sintético utilizado en la industria de alimentos.</p>     <p align="center"> <a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v58n3/art14tab2.gif" width="551" height="385"></a></p>     
<p align="justify">En la <a href="#tab3">Tabla 3</a> la actividad antirradical de las semilla y  granos muestra que de acuerdo con los datos del EC<sub>50</sub>, que representa  la cantidad de antioxidante necesaria para producir una reducción del 50% del  radical libre presente (DPPH*), el pericarpio de la chiga presenta la mejor  actividad antirradical, mientras que el sorgo tiene la menor actividad, ya que  existe una relación inversamente proporcional, a mayor valor del EC<sub>50</sub>  menor actividad antirradical (5). Cuando la actividad antioxidante se expresa  como el TEC<sub>50</sub>, que representa el tiempo necesario para alcanzar el  equilibrio a la concentración de EC<sub>50</sub>, las semillas de mamón son las  que alcanzan este 50% de inhibición en el menor tiempo, mientras que el  pericarpio de la chiga es el que obtiene el 50% inhibición en el mayor tiempo.  En cuanto a la eficiencia antirradical (EA) dato que relaciona el EC<sub>50</sub>  y el TEC<sub>50</sub>, las semillas de mamón presentan la más alta eficiencia  antirradical.</p>     <p align="center"> <a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v58n3/art14tab3.gif" width="527" height="418"></a></p>     
<p align="justify"><b>DISCUSION</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La variación entre los resultados obtenidos para el contenido  de polifenoles de las diferentes muestras se debe probablemente a diferencias en  la reactividad de cada compuesto fenólico presente con el reactivo de Folin-Ciocalteau  (9) debido a a diferencias en la estructura química. El contenido de polifenoles  de las semillas es comparable con los valores encontrados en almendras sometidas  a diferentes tratamientos térmicos (10). Por otra parte, los pericarpios  estudiados presentaron contenidos de polifenoles menores que las semillas, sin  embargo, en un estudio realizado (11) en Carya illinoinensis (pecan), los  autores encontraron que el pericarpio contenía de 6 a 18 veces mas cantidad de  polifenoles que las semillas. Estos resultados no son comparables debido a que  están expresados en equivalentes de ácido clorogénico, y como se dijo  anteriormente, la estructura química de los compuestos fenólicos presente en  este tipo de muestra afecta la reactividad con el reactivo de Foli.Ciocalteu.</p>     <p align="justify">La actividad antioxidante se ha reportado que es concomitante  con el poder reducto. Las propiedades reductoras están asociadas a la presencia  de compuestos fenólicos que ejercen su acción a través del rompimiento de la  reacción en cadena de los radicales libres por donación de un átomo de hidrógeno  (12). De esto se deduce la dependencia del poder reductor del contenido de  polifenoles en todas las muestras estudiadas, con la excepción del pericarpio  del mamón que presenta el más bajo contenido de polifenoles (1,40 EAGg/100g), y  un poder reductor mas alto que el sorgo (2,02 EAGg/100g). Es de hacer notar que  la diferencia en la estructura química de cada uno de los polifenoles presentes  en las diferentes muestras los puede hacer reaccionar como donadores de  electrones o no, característica que va influir en el poder reductor.</p>     <p align="justify">Por otra parte, las propiedades reductoras están asociadas  generalmente con la presencia de reductonas. Los compuestos flavonol/procianidinas  presentes en las semillas de cacao y chiga podrían actuar de manera similar a  las reductonas por donación de electrones (13) lo cual resulta en mayor poder  reductor y actuar de forma similar a los compuestos fenólicos presentes en  Sechium edule (Chayota) (14).</p>     <p align="justify">Los resultados de la aplicación del método de -caroteno para  los extractos de semilla y pericarpio de chiga, semilla de cacao presentan un  porcentaje de inhibición promedio (AA) de 83,00 y 87,24% comparable con el  promedio de 88,75% presentado por el BHA (antioxidante sintético).</p>     <p align="justify">Los radicales hidroperóxidos del ácido linoleico atacan y  oxidan el ?-caroteno, el cual se decolora rápidamente, registrándose una  disminución de las lecturas de la absorbancia. La presencia de extractos  antioxidantes puede retardar el proceso de decoloración por acción sobre los  radicales libres que se forman en el sistema (13). El coeficiente de actividad  antioxidante (CAA) aumenta directamente con el aumento del valor del índice de  actividad antioxidante (AA) o porcentaje de inhibición de la oxidación. Como se  puede observar en la <a href="#tab2">Tabla 2</a> a mayor porcentaje de inhibición de la oxidación  mayor coeficiente de actividad antioxidante (AA).</p>     <p align="justify">En estudio realizado en avellanas (15) se encontró que el CAA  depende del solvente de extracción obteniendo mejores resultados con butanol y  metanol. Estos extractos presentaron un CAA comparable al de antioxidantes  sintéticos BHA y BHT. El solvente de extracción utilizado en este estudio fue  una solución metanólica y los resultados obtenidos también fueron comparables a  los del BHA utilizado. Los valores de la relación de la velocidad de reacción  ROR y de los coeficientes de actividad antioxidante (CAA) respaldan el índice de  actividad antioxidante (AA). Cuando el ROR, que es la medida de la fuerza  antioxidante es mayor de 1, la oxidación se produce más rápidamente en presencia  de un inhibidor que en su ausencia (16). Por lo tanto mientras más bajo el ROR  mayor el poder antioxidante como se puede observar en la <a href="#tab2">Tabla 2</a>.</p>     <p align="justify">Cuando la actividad antioxidante se determina como la  actividad antirradical utilizando el radical DPPH* (<a href="#tab3">Tabla 3</a>), si se toma en  cuenta el TEC<sub>50</sub>, tiempo que el antioxidante requiere para causar una  inhibición de 50% del DPPH*, los valores encontrados permiten clasificar los  antioxidantes presentes en la mayoría de las muestras como &quot;lentos&quot; con  excepción del mamón que se clasificaría como intermedio tomando en consideración  la clasificación propuesta para algunos compuestos polifenólicos (5). Esta  clasificación considera al BHA, resveratrol y quercetina como antioxidantes  lentos pues presentaron TEC<sub>50</sub> de 103,85; 60,46 y 63,28  respectivamente. Si se consideran los valores de EA, que relaciona el EC<sub>50</sub>  y el TEC<sub>50</sub>, el poder antioxidante en los extractos de cacao, chiga y  pericarpio de semillas de mamón se clasificaría como alto porque presentan  valores de EA entre 5 x 10-3 y 10 x 10-3.</p>     <p align="justify">De acuerdo a los resultados se puede decir que el contenido  de polifenoles totales se correlaciona bien con la actividad antioxidante  expresada como poder reductor (EAAs g/100g) (<a href="#tab1">Tabla1</a>) y como actividad  antioxidante (Aa) (<a href="#tab2">Tabla 2</a>) presentando coeficientes de correlación r2 de 0,768  y 0,734 respectivamente; lo que significa que a mayor presencia de polifenoles  mayor actividad antioxidante, sin embargo la calificación del poder antioxidante  depende del tipo de método usado y el parámetro con el cual se mide. Estos  resultados sugieren que el consumo de estos productos podría tener los mismos  efectos beneficiosos para la salud que han presentado ciertas frutas y vegetales  además de su posible uso como materia prima para la obtención de antioxidantes  naturales de utilidad en la industria alimentaria, farmacéutica y cosmética.</p>     <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b></p> </font><font face="Verdana" size="2">     <!-- ref --><p align="justify">1. Weisburger JH. Mechanism of action of antioxidants as  	exemplified in vegetables, tomatoes, and tea. Food Chem. Toxicol, 1999; 37:  	943-948.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489182&pid=S0004-0622200800030001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">2. Scalbert A &amp; Williamson G. Dietary intake and  	bioavailability of polyphenols. J Nutr. 2000; 130:2109S-2114S.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489183&pid=S0004-0622200800030001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">3. Vinson JA, Hao Y, Su X &amp; Zubik L. Phenolic antioxidant  	quantity and quality in foods: vegetables. J Agric Food Chem, 1998; 46,  	3630-3634.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489184&pid=S0004-0622200800030001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">4. Bystrom LA, Lewis BA, Brown DL, Rodríguez E, Obendorf RL.  	Characterisation of phenolics by LC-UV/Vis, LC-MS/MS and sugars by GC in <i>Melicoccus bijugatus</i> Jacq. 'Montgomery' fruits. Food Chem, 2008;  	111:1017-1024.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489185&pid=S0004-0622200800030001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">5. Sánchez-Moreno C, Larrauri JA, Saura-Calixto F. A  	procedure to measure the anti-radical efficiency of polyphenols. J Sci Food  	Agric. 1998; 78:270-276.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489186&pid=S0004-0622200800030001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">6. Singleton VL, Orthofer R &amp; Lamuela-Raventos RM. Analysis  	of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of  	the Folin-Ciocalteu reagent. Meth Enzymol, 1999; 299: 152-178.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489187&pid=S0004-0622200800030001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7. Yen GC &amp; Duh PD. Antioxidant properties of methanolic  	extracts from peanut hulls. JAOCS, 1993; 70:383-386.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489188&pid=S0004-0622200800030001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">8. Suja KP, Jayalekshmy A, Arumughan C. Antioxidant activity  	of sesame cake extract. Food Chem. 2005; 91:213-219.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489189&pid=S0004-0622200800030001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <span lang="EN-GB" style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">9. Yu L,  Perret J, Davy B, Wilson J and Melby CI. Antioxidant properties of cereal  products. J Food Sci. 2002; 67: 2600-2603.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489190&pid=S0004-0622200800030001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">10. Garrido I, Monagas M, Gómez-Cordovés C and Bartolomé B.  	Polyphenols and antioxidant properties of almond skins: Influence of  	industril processing. J Food Sci. 2008; 73:C106-C115.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489191&pid=S0004-0622200800030001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">11. Villareal-Lozoya JF, Lombardini L, Cisneros-Zeballos L.  	Phytochemical constituents and antioxidant capacity of different pecan [Carya  	illinoinensis (Wangenh.) K. Koch] cultivars&nbsp; Food Chem. 2007; 102:1241-1249.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489192&pid=S0004-0622200800030001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">12. Duh PD, Du PC &amp; Yen GC. Action of methanolic extract of  	mung hulls as inhibitors of lipid peroxidation and non lipid oxidative  	damage. Food Chem. Toxicol, 1999; 37:1055-1061.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489193&pid=S0004-0622200800030001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <span lang="EN-GB" style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">13.  Jayaprakasha GK, Singh RP &amp; &nbsp;Sacariah KK. Antioxidant activity of grape seed (Vitis  vinifera) extracts on peroxidation models in vitro. Food Chem, 2001; 73:  285-290.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489194&pid=S0004-0622200800030001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">14. Ordoñez AAL, Gómez JD, Vattuone MA, Isla MI. Antioxidant  	activities of Sechium edule (Jacq) Swartz extracts. Food Chem, 2006;  	97:452-458.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489195&pid=S0004-0622200800030001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">15. Moure A, Franco D, Sineiro J, Dominguez H, Nuñez MJ, Lema  	JM. Antioxidant activity of extracts from Gevuina avellana and Rosa  	rubiginosa defatted seeds. Food Res Intern. 2001; 34:103-109.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489196&pid=S0004-0622200800030001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">16. Marinova EM, Yanishlieva N, Kostova IN. Antioxidative  	action of the methanolic extract and some hydroxycoumarins of Fraxinus ornus  	bark. Food Chem 1994; 51:125-132.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=489197&pid=S0004-0622200800030001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
<back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Weisburger]]></surname>
<given-names><![CDATA[JH. Mechanism of action of antioxidants as exemplified in vegetables]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[tomatoes,]]></surname>
<given-names><![CDATA[and tea]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Food Chem]]></article-title>
<source><![CDATA[Toxicol,]]></source>
<year>1999</year>
<volume>37</volume>
<page-range>943-948</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Scalbert]]></surname>
<given-names><![CDATA[A & Williamson G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Dietary intake and bioavailability of polyphenols]]></article-title>
<source><![CDATA[J Nutr.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>130</volume>
<page-range>2109S-2114S</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Vinson]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hao]]></surname>
<given-names><![CDATA[Y]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Su]]></surname>
<given-names><![CDATA[X]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zubik]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phenolic antioxidant quantity and quality in foods: vegetables]]></article-title>
<source><![CDATA[J Agric Food Chem,]]></source>
<year>1998</year>
<volume>46</volume>
<page-range>3630-3634</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bystrom]]></surname>
<given-names><![CDATA[LA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lewis]]></surname>
<given-names><![CDATA[BA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Brown]]></surname>
<given-names><![CDATA[DL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rodríguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Obendorf]]></surname>
<given-names><![CDATA[RL]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Characterisation of phenolics by LC-UV/Vis, LC-MS/MS and sugars by GC in Melicoccus bijugatus Jacq: 'Montgomery' fruits]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem,]]></source>
<year>2008</year>
<volume>111</volume>
<page-range>1017-1024</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sánchez-Moreno]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Larrauri]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Saura-Calixto]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A procedure to measure the anti-radical efficiency of polyphenols]]></article-title>
<source><![CDATA[J Sci Food Agric.]]></source>
<year>1998</year>
<volume>78</volume>
<page-range>270-276</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Singleton]]></surname>
<given-names><![CDATA[VL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Orthofer]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lamuela-Raventos]]></surname>
<given-names><![CDATA[RM]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of the Folin-Ciocalteu reagent]]></article-title>
<source><![CDATA[Meth Enzymol,]]></source>
<year>1999</year>
<volume>299</volume>
<page-range>152-178</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Yen]]></surname>
<given-names><![CDATA[GC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Duh]]></surname>
<given-names><![CDATA[PD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant properties of methanolic extracts from peanut hulls]]></article-title>
<source><![CDATA[JAOCS,]]></source>
<year>1993</year>
<volume>70</volume>
<page-range>383-386</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Suja]]></surname>
<given-names><![CDATA[KP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jayalekshmy]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Arumughan]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity of sesame cake extract]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem.]]></source>
<year>2005</year>
<volume>91</volume>
<page-range>213-219</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Yu]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Perret]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Davy]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wilson]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Melby]]></surname>
<given-names><![CDATA[CI]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant properties of cereal products]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Sci.]]></source>
<year>2002</year>
<volume>67</volume>
<page-range>2600-2603</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Garrido]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Monagas]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gómez-Cordovés]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bartolomé]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Polyphenols and antioxidant properties of almond skins: Influence of industril processing]]></article-title>
<source><![CDATA[J Food Sci.]]></source>
<year>2008</year>
<volume>73</volume>
<page-range>C106-C115</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Villareal-Lozoya]]></surname>
<given-names><![CDATA[JF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lombardini]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cisneros-Zeballos]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Phytochemical constituents and antioxidant capacity of different pecan [Carya illinoinensis (Wangenh.) K]]></article-title>
<source><![CDATA[Koch] cultivars Food Chem.]]></source>
<year>2007</year>
<volume>102</volume>
<page-range>1241-1249</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Duh]]></surname>
<given-names><![CDATA[PD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Du]]></surname>
<given-names><![CDATA[PC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Yen]]></surname>
<given-names><![CDATA[GC]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Action of methanolic extract of mung hulls as inhibitors of lipid peroxidation and non lipid oxidative damage]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem Toxicol,]]></source>
<year>1999</year>
<volume>37</volume>
<page-range>1055-1061</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jayaprakasha]]></surname>
<given-names><![CDATA[GK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Singh]]></surname>
<given-names><![CDATA[RP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sacariah]]></surname>
<given-names><![CDATA[KK]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity of grape seed (Vitis vinifera) extracts on peroxidation models in vitro]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem,]]></source>
<year>2001</year>
<volume>73</volume>
<page-range>285-290</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ordoñez]]></surname>
<given-names><![CDATA[AAL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gómez]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vattuone]]></surname>
<given-names><![CDATA[MA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Isla]]></surname>
<given-names><![CDATA[MI]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activities of Sechium edule (Jacq) Swartz extracts]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem,]]></source>
<year>2006</year>
<volume>97</volume>
<page-range>452-458</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Moure]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Franco]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sineiro]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dominguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nuñez]]></surname>
<given-names><![CDATA[MJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lema]]></surname>
<given-names><![CDATA[JM]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidant activity of extracts from Gevuina avellana and Rosa rubiginosa defatted seeds]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Res Intern.]]></source>
<year>2001</year>
<volume>34</volume>
<page-range>103-109</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Marinova]]></surname>
<given-names><![CDATA[EM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Yanishlieva]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kostova]]></surname>
<given-names><![CDATA[IN]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidative action of the methanolic extract and some hydroxycoumarins of Fraxinus ornus bark]]></article-title>
<source><![CDATA[Food Chem]]></source>
<year>1994</year>
<volume>51</volume>
<page-range>125-132</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
