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<journal-title><![CDATA[Archivos Latinoamericanos de Nutrición]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Manifestaciones clínicas y cambios en la química sérica y tisular en ratas tratadas con vitamina D3 (calciferol)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Clinical signs and changes in serum and tissue chemistry in rats treated with vitamin D3 (calciferol)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In the present work the effect of subcutaneous administration of 250, 500 and 750 ìg (10.000, 20.000 and 30.000 IU, respectively) of vitamin D3 (calciferol) daily for eight days, on serum concentrations of vitamin D3 and 25- hydroxyvitamin D3 (25-OH-D3) and on serum and tissue concentrations of Ca, Zn, Cu and Fe in 45 white male Wistar rats, aged 12 weeks and weighing 180-200 g, have been studied. The group control was integrated by 15 healthy rats with similar characteristics (strain, gender, age and weight) that treated animals. Administration of high doses of calciferol produced a hypervitaminosis D characterized by a significant (p3 and 25-OH-D3, diverse clinical signs (such as, anorexia, marked loss of body weight, bloody diarrhea, bilateral conjunctivitis, and death), hypercalcemia, hypozincaemia, hypercupremia, hypoferraemia and an alteration in the tissue distribution of Ca, Zn, Cu and Fe as compared with untreated controls. Hypercalcemia and inflammation are prominent findings in hypervitaminosis D. Inflammation or infection induce systemic changes, collectively known as the acute phase response. Among the varied alterations that together produce this response are hypoferraemia, hypozincaemia and hypercupremia. It is likely that these responses are mediated, in part, by production and release of cytokines such as interleukin 1, interferons (IFN-alpha), interleukin 6 (Il-6) and tumor necrosis factor (TNF). The development of hypoferraemia during inflammation requires hepcidin, an iron regulatory hormone, a disulfide-rich peptide, produced in the liver in response to the release of Il-6 during inflammation/ infection. In conclusion, our results provide evidence that short-term administration of high doses of vitamin D determined diverse clinical signs and produced a marked increase of serum vitamin D3 and 25-OH-D3 and a marked alteration in the serum and tissue concentrations of Ca, Zn, Cu, and Fe. These changes depend on the doses given of vitamin D.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p style="line-height: 100%" align="center"><b><font face="Verdana" size="3">Manifestaciones clínicas y cambios en la química sérica y tisular en ratas tratadas con vitamina D<sub>3</sub> (calciferol)</font></b>                         <p style="line-height: 100%" align="center"><font size="2" face="Verdana">Alarcón-Corredor O.M., Villarroel J., Alfonso                     R., Rondón C.</font></p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font size="2" face="Verdana">Departamento de Qu&iacute;mica. Facultad de Ciencias.                     Escuela de Nutrici&oacute;n y Diet&eacute;tica. Facultad de Medicina. ULA. M&eacute;rida. Venezuela</font></p>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <b><font face="Verdana" size="2">RESUMEN</font>                     </b>                     </span>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font size="2" face="Verdana"><span style="font-weight: normal; color: #221E1F">En                     el presente trabajo se estudió el efecto de la administración                     subcutánea de 250, 500 y 750 &#956;g (10.000,</span> <span style="font-weight: normal; color: #221E1F">20.000                     y 30.000 UI, respectivamente) de vitamina D<sub>3 </sub>(calciferol)/día                     durante 8 días, sobre las concentraciones séricas de                     vitamina D<sub>3 </sub>y de 25-hidroxivitamina D<sub>3 </sub>(25-OH-D<sub>3</sub>)                     y sobre las concentraciones séricas y tisulares de Ca, Zn,                     Cu y Fe en 45 ratas macho Wistar, de 12 semanas de edad y                     con pesos entre 180 y 200 gramos. El grupo control estuvo                     integrado por 15 ratas Wistar sanas, con género, edad y                     peso similares a los animales tratados. La administración                     del calciferol a dosis altas produjo una hipervitaminosis D                     que se caracterizo por un aumento en el contenido sérico de                     la vitamina D<sub>3 </sub>y de 25-OH-D<sub>3</sub>, diversos                     signos clínicos (por ejemplo, anorexia, pérdida marcada de                     peso, diarreas sanguinolentas, conjuntivitis bilateral y                     muerte), hipercalcemia, hipocincemia, hipercupremia,                     hipoferremia y una alteración en la distribución tisular                     de Ca, Zn, Cu y Fe en comparación con los controles no                     tratados. La hipercalcemia y la inflamación son un hallazgo                     prominente en la hipervitaminosis</span> <span style="font-weight: normal; color: #221E1F">D.                     La inflamación o la infección inducen cambios sistémicos,                     conocidos colectivamente como la respuesta de fase aguda.                     Entre las variadas alteraciones que produce esta respuesta                     encontramos hipoferremia, hipocincemia e hipercupremia. Es                     probable que estas respuestas estén mediadas, en parte, por                     la producción y liberación de citocinas como la                     interleucina 1, interferones (IFN-alfa), la interleucina 6                     (Il-6) y el factor de necrosis tumoral (TNF). El desarrollo                     de la hipoferremia durante la inflamación requiere de                     hepcidina, un péptido rico en enlaces disulfuro, regulador                     del metabolismo del hierro, sintetizado en el hígado en                     respuesta a la liberación de Il-6 durante la inflamación/infección.                     En conclusión, nuestros resultados proporcionan evidencias                     que la administración de altas dosis de vitamina D, a corto                     plazo, determina diversos signos clínicos, produce un                     marcado aumento de las concentraciones séricas de la                     vitamina D<sub>3 </sub>y de 25-OH-D<sub>3 </sub>y una                     marcada alteración en las concentraciones séricas y                     tisulares de Ca, Zn, Cu y Fe, que dependen de las dosis                     inyectadas de vitamina D.</span></font></p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><b><span style="color: #221E1F"><font size="2" face="Verdana">Palabras                     clave: </font></span></b><font size="2" face="Verdana"><span style="font-weight: normal; color: #221E1F">Vitamina                     D<sub>3</sub>, calciferol, intoxicación, signos clínicos,                     hipercalcemia, hipocincemia, hipercupremia, hipoferremia,                     citocinas</span></font></p>                         <p align="center" style="line-height: 100%"><span>                     <b><font face="Verdana" size="2">Clinical signs and changes in serum and tissue chemistry in rats treated with vitamin D<sub>3</sub> (calciferol)</font>                     </b>                     </span>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <b><font face="Verdana" size="2">SUMMARY</font>                     </b>                     </span>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <font face="Verdana" size="2">In the present work the effect of subcutaneous administration of 250, 500 and 750 &igrave;g (10.000, 20.000 and 30.000 IU, respectively) of vitamin D<sub>3</sub> (calciferol) daily for eight days, on serum concentrations of vitamin D3 and 25- hydroxyvitamin D<sub>3</sub> (25-OH-D<sub>3</sub>) and on serum and tissue concentrations of Ca, Zn, Cu and Fe in 45 white male Wistar rats, aged 12 weeks and weighing 180-200 g, have been studied. The group control was integrated by 15 healthy rats with similar characteristics (strain, gender, age and weight) that treated animals. Administration of high doses of calciferol produced a hypervitaminosis D characterized by a significant (p<0.05) increase in serum vitamin D<sub>3</sub> and 25-OH-D<sub>3</sub>, diverse clinical signs (such as, anorexia, marked loss of body weight, bloody diarrhea, bilateral conjunctivitis, and death), hypercalcemia, hypozincaemia, hypercupremia, hypoferraemia and an alteration in the tissue distribution of Ca, Zn, Cu and Fe as compared with untreated controls. Hypercalcemia and inflammation are prominent findings in hypervitaminosis D. Inflammation or infection induce systemic changes, collectively known as the acute phase response. Among the varied alterations that together produce this response are hypoferraemia, hypozincaemia and hypercupremia. It is likely that these responses are mediated, in part, by production and release of cytokines such as interleukin 1, interferons (IFN-alpha), interleukin 6 (Il-6) and tumor necrosis factor (TNF). The development of hypoferraemia during inflammation requires hepcidin, an iron regulatory hormone, a disulfide-rich peptide, produced in the liver in response to the release of Il-6 during inflammation/ infection. In conclusion, our results provide evidence that short-term administration of high doses of vitamin D determined diverse clinical signs and produced a marked increase of serum vitamin D<sub>3</sub> and 25-OH-D<sub>3</sub> and a marked alteration in the serum and tissue concentrations of Ca, Zn, Cu, and Fe. These changes depend on the doses given of vitamin D.</font>                     </span>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <font face="Verdana"><b><font size="2">Key words:</font>                     </b><font size="2"> Vitamin D<sub>3</sub>, calciferol, intoxication, clinical signs, hypercalcemia, hypozincaemia, hypercupremia, hypoferraemia, citokines</font>                     </font>                     </span>                         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="line-height: 100%" align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Recibido: 07/04/2011</font>                     </b>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Aceptado: 29/08/2011</font>                     </b></p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font size="2" face="Verdana"><span style="color: #221E1F"><b>INTRODUCCIÓN</b></span></font></p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font size="2" face="Verdana"><span style="color: #221E1F">Fisiológicamente,                     la vitamina D<span style="font-weight: normal; color: #221E1F"><sub>3                     </sub>(VD<sub>3</sub>) no es biológicamente activa por sí                     misma y debe ser primero hidroxilada en el hígado muy                     probablemente por el CYP2R1, una enzima citocromo                     P450-monooxigenasa microsomal, para producir la forma plasmática                     de la vitamina D, la 25-hidroxivitamina-D<sub>3 </sub>(25-OH-D<sub>3</sub>).                     Este compuesto en concentraciones fisiológicas es biológicamente                     inactivo y debe ser convertido posteriormente en una forma                     hormonal activa, la 1,25-dihidroxivitamina-D<sub>3 </sub>(1,25-(OH)2-D<sub>3</sub>)                     para realizar las funciones fisiológicas de la vitamina D.                     La hidroxilación final de la vitamina D<sub>3 </sub>se                     realiza en las células tubulares proximales del riñón por                     el CYP27B1, una citocromo P450monooxigenasa (1&#945;-hidroxilasa)                     que requiere O2 molecular y ferrodoxina reducida,                     estrechamente regulada por las necesidades de calcio y fósforo                     (1).</span></span></font></p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font size="2" face="Verdana"><span style="color: #221E1F">Se                     conocen diversas interacciones entre estos metabolitos de la                     VD<span style="font-weight: normal; color: #221E1F"><sub>3 </sub>y                     el Zn, Fe y Cu, a tal punto que el estado nutricional del Zn                     modula la respuesta del 1,25OH<sub>2</sub>-D<sub>3 </sub>frente                     al agotamiento corporal de Ca y de P (2), quizás por un                     efecto del metal sobre la actividad de la 1&#945;-hidroxilasa                     renal. En ratas intoxicadas con Cu, la conversión de la                     25-OH-D<sub>3 </sub>en 1,25-OH<sub>2</sub>-D<sub>3 </sub>está                     alterada. In vitro, la actividad de la 1&#945;-hidroxilasa                     de la 25-OH-D<sub>3 </sub>está disminuida en las                     mitocondrias renales de los animales intoxicados con Cu (3).                     Heldenberg et al.(4) en niños con anemia ferropénica y                     concentraciones séricas bajas de 25-OH-D<sub>3</sub>,                     encontraron que el tratamiento con sales de hierro aumenta                     las concentraciones séricas de Fe y de 25-OH-D<sub>3</sub>,                     llegando a la conclusión que la carencia de hierro inhibe                     la transformación de la vitamina D en 25-OH-D<sub>3 </sub>y/o                     altera la absorción de la vitamina D a nivel intestinal,                     además la carencia alimentaria de Zn, por su parte,                     incrementa la concentración sérica de 25-OH-D<sub>3</sub>.</span></span></font></p>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <font face="Verdana" size="2">Los p&aacute;rrafos precedentes muestran la interacci&oacute;n tan estrecha entre estos elementos traza y la vitamina D. Tomando en consideraci&oacute;n la hip&oacute;tesis de que la administraci&oacute;n de dosis altas de vitamina D<sub>3</sub> (calciferol) produce un aumento marcado de las concentraciones s&eacute;ricas y tisulares de Ca, Zn, Cu y Fe, a partir de un modelo experimental se pretende evaluar la aparici&oacute;n de manifestaciones cl&iacute;nicas y la modificaci&oacute;n de las concentraciones s&eacute;ricas y tisulares de estos elementos en relaci&oacute;n a las diferentes dosis de calciferol administradas a ratas sanas. Por esta raz&oacute;n, en el presente trabajo se estudi&oacute; el efecto de la administraci&oacute;n de dosis altas de vitamina D<sub>3</sub> (calciferol) sobre el contenido s&eacute;rico y tisular de Ca, Zn, Cu y Fe en ratas blancas sanas. Simult&aacute;neamente se valoro el contenido s&eacute;rico de vitamina D<sub>3</sub> y de 25-OH-D<sub>3</sub> y se investigo la presencia de manifestaciones cl&iacute;nicas determinadas por la hipervitaminosis D<sub>3</sub>.</font>                     </span>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <b><font face="Verdana" size="2">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font>                     </b>                     </span>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <font face="Verdana" size="2">El Protocolo fue aprobado por el Departamento de Nutrici&oacute;n, Escuela de Nutrici&oacute;n, Facultad de Medicina (ULA), que se encarg&oacute; de velar por el buen uso y cuidado de los animales de laboratorio y aval&oacute; los procedimientos experimentales utilizados en estas ratas.</font>                     </span>     <p style="line-height: 100%" align="justify"> <font size="2" face="Verdana"> <SPAN style="color: #221E1F" ><b>Diseño experimental</b> </SPAN ></font></p>     <P style="line-height: 100%" align="justify"> <font size="2" face="Verdana"> <SPAN style="font-weight: normal; color: #221E1F" >Se utilizaron 60 ratas blancas macho Wistar, de edad y peso uniforme (160-170 g) mantenidas en jaulas individuales de acero inoxidable, en el ambiente del Laboratorio, durante dos semanas, para las adaptaciones correspondientes. Se controló la temperatura y la humedad del cuarto entre 23-25°C y 55-67%, respectivamente. Todas las ratas se alimentaron con una dieta basal formulada en nuestro Laboratorio. Las ratas se alimentaron ad libitum y se les permitió el libre acceso al agua de bebida.</SPAN ></font></P>                         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <font face="Verdana" size="2">Al finalizar este periodo, los animales se distribuyeron al azar en 4 grupos, con 15 ratas en cada uno, sin que hubiese diferencias significativas previas entre los promedios de peso de los distintos grupos. Los grupos G1 al G3 (grupos tratados) recibieron diariamente inyecciones                     subcutáneas de 250 &#956;g (10.000 UI), 500 &#956;g (20.000 UI) y 750 &#956;g (30.000 UI) de calciferol (Vitamina D<sub>3</sub> Sigma; 25 &#956;g = 1000 UI) disueltos en aceite de ma&iacute;z, durante 8                     días. Al grupo control (GC) se le administr&oacute; por la misma v&iacute;a, y durante el mismo lapso, aceite de ma&iacute;z. A las 24 horas de administrada la &uacute;ltima dosis de vitamina D o de aceite de ma&iacute;z, seg&uacute;n los casos, los animales se anestesiaron con &eacute;ter et&iacute;lico, en campana de vidrio y se les extrajo sangre por punci&oacute;n del seno retro-orbitario, mediante tubos de microhematocrito. Las muestras se recolectaron en tubos de centr&iacute;fuga graduados, sin anticoagulante y despu&eacute;s se centrifugaron a 2.500 rpm, durante 15 minutos, a fin de asegurar la pronta obtenci&oacute;n de los sueros que se utilizaron para las determinaciones correspondientes. Despu&eacute;s de extraer la sangre, los animales se decapitaron con una guillotina Harvard y se desangraron durante 1-3 minutos. Se practic&oacute; laparotom&iacute;a mediana dejando al descubierto los l&oacute;bulos hep&aacute;ticos y los ri&ntilde;ones. Para minimizar la contaminaci&oacute;n sangu&iacute;nea, el h&iacute;gado y el ri&ntilde;&oacute;n derecho se perfundieron in situ a trav&eacute;s de la vena porta y la arteria renal derecha, respectivamente, con una soluci&oacute;n fr&iacute;a de sacarosa 0,25M (p/v) libre de metales. Al final del periodo de perfusi&oacute;n, el h&iacute;gado y el ri&ntilde;&oacute;n, se disecaron y se colocaron en un plato de Petri, colocado sobre hielo. De cada uno de los &oacute;rganos, se pesaron trozos de 1 g, en balanza de precisi&oacute;n, que se prepararon y se sometieron a digesti&oacute;n &aacute;cida asistida por microondas, de acuerdo al m&eacute;todo de Burguera et al. (5). La instrumentaci&oacute;n y la t&eacute;cnica empleada para la determinaci&oacute;n de los cationes en los sueros y en los digeridos &aacute;cidos se publicaron previamente (6). La vitamina D<sub>3</sub> y su metabolito, el 25-OH-D<sub>3</sub>, se determinaron mediante HPCL l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n en fase reversa por detecci&oacute;n de diodos, de acuerdo con la t&eacute;cnica descrita por Brunetto et al. (7).</font></span>     <p style="line-height: 100%; margin-bottom: 5px" align="justify"> <b><font size="2" face="Verdana"> <SPAN style="color: #221E1F" >Análisis estadístico </SPAN ></font></b></p>     <P style="line-height: 100%; margin-bottom: 9px" align="justify"> <font size="2" face="Verdana"> <SPAN style="font-weight: normal; color: #221E1F" >Los resultados se expresaron como promedios y desviaciones típicas. Se asignó un valor de p&lt;0.05 como valor de &#945; para el análisis de dos colas. El tamaño de la muestra utilizado en este estudio confiere un poder estadístico del 0,85 y un nivel de detección de diferencia del 20% con una desviación estándar de 10. Las diferencias entre los valores séricos y tisulares de los cationes y la concentración de VD<SPAN style="font-family:'serif', 'Times New Roman PSMT', serif; font-size:8pt; font-weight:normal" ><Sub>3 </Sub></SPAN >y de su metabolito, entre los grupos tratados y el control, se estimaron mediante el ANOVA de una vía y la prueba de Tukey post-ANOVA. El análisis de regresión lineal se utilizó para establecer las relaciones entre los diversos cationes séricos y tisulares, la concentración de VD<SPAN style="font-family:'serif', 'Times New Roman PSMT', serif; font-size:8pt; font-weight:normal" ><Sub>3 </Sub></SPAN >y su metabolito y las dosis adm<font color="#221E1F">nistradas de vitamina D. Toda</font></SPAN > <SPAN style="font-family:'serif', 'Times New Roman PSMT', serif; font-size:11pt; font-weight:normal; color:#221E1F" >p&lt;0,05 se considero</SPAN > <SPAN style="font-family:'serif', 'Times New Roman PSMT', serif; font-size:11pt; font-weight:normal; color:#221E1F" > estadísticamente <font COLOR="#221e1f">significativa. Los análisis </font></SPAN ><span>se realizaron utilizando el paquete <font COLOR="#221e1f">estadístico </font>STATGRAPHICS PLUS 5.0.                     </span> </font></P>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <b><font face="Verdana" size="2">RESULTADOS</font>                     </b>                     </span>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <font face="Verdana" size="2"><b>Hallazgos clinicos</b></font>                     </span>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <font face="Verdana" size="2">Con la dosis de 250 &#956;g de vitamina D<sub>3</sub>, el hallazgo                     más significativo fue la aparición de </font>                     </span>                     <font color="#221e1f" size="2" face="Verdana">una diarrea                     mucosanguinolenta a partir de la segunda dosis en la gran                     mayoría de los animales experimentales; igualmente, se pudo                     observar pérdida del apetito y de peso. En este grupo                     ninguna rata falleció. El grupo de animales que recibió                     una dosis de 500 &#956;g mostraron a partir de las 48 horas,                     una conjuntivitis concomitantemente con diarrea                     mucosanguinolenta, pérdida de peso, poliuria, letargia,                     debilidad muscular y vómitos hemorrágicos. En este grupo 2                     ratas fallecieron al séptimo día de iniciada la                     administración del calciferol. En el grupo tratado con 750                     &#956;g de calciferol se observó a partir de las 24 horas:                     marcada diarrea mucosanguinolenta, disminución de la                     diuresis con emisión de orinas blanquecinas, pérdida                     exagerada de peso, malas condiciones generales, marcada                     conjuntivitis bilateral y hemorragias a nivel conjuntival.                     En este grupo se produjo la muerte de dos ratas en el octavo                     día de iniciada la administración de la vitamina.</font>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <b><font face="Verdana" size="2">Hallazgos bioquimicos</font>                     </b>                     </span>                         <p align="justify" style="line-height: 100%"><span>                     <font face="Verdana" size="2">Concentraci&oacute;n s&eacute;rica de vitamina D<sub>3</sub> y de 25-OH-D<sub>3</sub> La concentraci&oacute;n s&eacute;rica de vitamina D<sub>3</sub> y de 25-OH-D<sub>3</sub> en las ratas tratadas con vitamina D<sub>3</sub> se muestra en la                     <a href="#TABLA 1"> Tabla 1</a>. El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n simple demostr&oacute; que la vitamina D<sub>3</sub> (r= 0,864) y la 25-OHD3 (r= 0,997) incrementan sus concentraciones s&eacute;ricas significativamente (p<0,05) en las ratas tratadas con calciferol. El an&aacute;lisis estad&iacute;stico tambi&eacute;n demostr&oacute; diferencias significativas (p<0,05) al comparar las concentraciones de la vitamina D<sub>3</sub> y de la 25-OH-D<sub>3</sub> entre los diversos grupos tratados y el grupo control; en este sentido, el incremento en las concentraciones de estos compuestos es directamente proporcional a las dosis administradas de vitamina D<sub>3</sub>.</font>                     </span>                     <span>   <font face="Verdana" size="1">                                 <p style="line-height: 100%" align="center"><b><font size="2" face="Verdana"><a name="TABLA 1">TABLA 1</a></font></b></p>                               <p style="line-height: 100%" align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Concentraciones séricas de vitamina D y de 25-OH-D<sub>3</sub> en ratas tratadas con vitamina D<sub>3</sub> (calciferol)</font></b></p>                               ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="line-height: 100%" align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v61n3/art03tab1.gif" width="488" height="207">                           </p>                     </font>     
<p style="line-height: 100%" align="justify"> <b><font size="2" face="Verdana"> <SPAN style="color: #221E1F" >Concentración sérica de los cationes valorados </SPAN ></font></b></p>     <P style="line-height: 100%" align="justify"> <font size="2" face="Verdana"> <SPAN style="font-weight: normal; color: #221E1F" >Las variaciones en las concentraciones séricas de los cationes en los animales tratados se muestran en la <a href="#TABLA 2"> Tabla 2</a>. El análisis de regresión simple demostró que el Ca (r= 0,965) y el Cu (r= 0,965) incrementan sus concentraciones significativamente (p&lt;0,05) mientras que las concentraciones de Zn (r=-0,961) y Fe (r=0,978) disminuyen (p&lt;0,05) en los animales tratados. El análisis estadístico mediante el ANOVA de una vía demostró diferencias significativas al comparar las concentraciones séricas de los metales valorados entre el grupo control sano y los grupos tratados con vitamina D. La mayor variación de las concentraciones séricas de los metales valorados se encontró en los animales tratados con 30.000 UI de vitamina D<Sub>3 </Sub>(750 &#956;g de colecalciferol). El análisis de regresión simple también demostró relaciones significativas y positivas entre Ca-Cu (r= 0,985), Ca-vitamina D<Sub>3 </Sub>(r= 0,937) y Ca-25-OH-D<Sub>3 </Sub>(r= 0,991) mientras la relación Ca con los elementos Zn y Fe (r=-0,997; r=-0,889, respectivamente) son significativas (p&lt;0,05) e inversamente proporcionales.</SPAN ></font></P>   <font face="Verdana" size="1">                                 <p style="line-height: 100%" align="center"><b><font size="2" face="Verdana"><a name="TABLA 2">TABLA 2</a></font></b></p>                               <p style="line-height: 100%" align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Concentraciones séricas y tisulares de Ca, Zn, Cu y Fe en ratas tratadas con vitamina D<sub>3</sub> (calciferol)</font></b></p>                               <p style="line-height: 100%" align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v61n3/art03tab2.gif" width="579" height="399">                           </p>                     </font>     
<P style="line-height: 100%" align="justify"> <b><font size="2" face="Verdana"> <SPAN style="color: #221E1F" >Concentración hepática</SPAN > <SPAN style="font-family:'serif', 'Times New Roman PS', serif; font-size:11pt; color:#221E1F" >de los cationes valorados</SPAN ></font></b></P>     <P style="line-height: 100%" align="justify"> <font size="2" face="Verdana"> <SPAN style="font-weight: normal; color: #221E1F" >La concentración hepática de Ca, Zn, Cu y Fe en el hígado de las ratas tratadas con vitamina D<Sub>3 </Sub>se muestra en la <a href="#TABLA 2"> Tabla 2</a>. El análisis de regresión simple demostró que el Ca (r= 0,886), el Zn (r= 0,957) y el Fe (r= 0,978) incrementan sus concentraciones significativamente (p&lt;0,05) mientras que la concentración de Cu (r= -0,983) disminuye significativamente (p&lt;0,05) en los animales tratados. El análisis estadístico mediante el ANOVA de una vía demostró diferencias significativas al comparar las concentraciones hepáticas de los metales valorados entre el grupo control sano y los grupos tratados con vitamina D. La mayor variación de las concentraciones séricas de los metales valorados se encontró en los animales tratados con 750 &#956;g de calciferol.</SPAN ></font></P>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Concentraci&oacute;n renal de los cationes valorados</font>                     </b></p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las concentraciones de Ca, Zn, Cu y Fe en el ri&ntilde;&oacute;n de las ratas tratadas con vitamina D<sub>3</sub> se muestran en la                     <a href="#TABLA 2"> Tabla 2</a>. El an&aacute;lisis de regresi&oacute;n simple demostr&oacute; que el Ca (r= 0,967%) y el Fe (r= 0,995) incrementan sus concentraciones (p<0,05) mientras que las concentraciones de Zn (r=-0,989) y de Cu (r= -0,873) disminuyen significativamente (p<0,05) en los animales tratados. El analisis estadistico mediante el ANOVA de una via demostro diferencias significativas (p<0,05) entre el grupo sano y los grupos tratados con vitamina D. La mayor variacion de las concentraciones sericas de los metales valorados se encontro en los animales tratados con 750 &#956;g de calciferol.</font>                     </p>                     <font face="Verdana" size="1">                     </font>                         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="line-height: 100%" align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">DISCUSI&Oacute;N</font>                     </b>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">La vitamina D<sub>3</sub> administrada en exceso determin&oacute; una hipervitaminosis D aguda que se demostr&oacute; por el marcado incremento de los niveles s&eacute;ricos de la vitamina D<sub>3</sub> y de su metabolito: el 25-OH-D<sub>3</sub>, la hipercalcemia, los signos cl&iacute;nicos descritos y los cambios en las concentraciones s&eacute;ricas y tisulares de los metales cuantificados.</font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">El incremento en la concentraci&oacute;n s&eacute;rica de la vitamina D y de su metabolito en las ratas tratadas con vitamina D es un hecho descrito en la literatura. El marcado incremento en la concentraci&oacute;n del 25-OHD<sub>3</sub> se debe a que la reacci&oacute;n de 25-hidroxilaci&oacute;n de la vitamina D, a nivel hep&aacute;tico, es un proceso que no est&aacute; sujeto a una estricta regulaci&oacute;n homeost&aacute;tica (1), por consiguiente, cuanto mayor es la cantidad de vitamina D administrada es mayor la cantidad de 25-OH-D<sub>3</sub> producida. El 25-OH-D<sub>3</sub> circula normalmente a concentraciones de 30 a 50 ng/ml en la mayor&iacute;a de las especies. Sin embargo, durante la intoxicaci&oacute;n con vitamina D, se incrementa de 200 a 400 ng/ml (8). Cuando circula en concentraciones muy altas el 25- OH-D<sub>3</sub> puede competir efectivamente con la 1,25- OH2-D<sub>3</sub> por los receptores en el intestino y el hueso e inducir acciones habitualmente atribuibles al 1,25- OH2-D<sub>3</sub>. Por esta raz&oacute;n, el 25-OH-D<sub>3</sub> se piensa que es el factor cr&iacute;tico en la intoxicaci&oacute;n por vitamina D (9). En la mayor&iacute;a de las especies, la concentraci&oacute;n plasm&aacute;tica de 1,25-OH2-D<sub>3</sub> disminuye durante la intoxicaci&oacute;n (9) o se mantiene en concentraciones normales (10). Los estudios de Littledike y Horst (8) en vacas lecheras son muy definitivos en este punto y sugieren que el CYP27B1 renal est&aacute; efectivamente inhibido en esta situaci&oacute;n.</font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font size="2" face="Verdana"><SPAN style="font-weight: normal; color: #221E1F" >Shephard y DeLuca (10) sugieren que los roedores pueden tolerar concentraciones plasmáticas de 25-OH-D<Sub>3 </Sub>en el rango de 250-1000 nmol/L (100-400 ng/mL), aunque otros investigadores indican que las concentraciones plasmáticas de 25-OH-D<Sub>3 </Sub>asociadas con la toxicidad son siempre superiores a 375 nmol/L (150 ng/mL) (8). Sin embargo, incluso en ausencia de pruebas definitivas para establecer el metabolito responsable, la gran cantidad de estudios realizados en animales y en humanos sobre la intoxicación por vitamina D indican que la concentración plasmática de 25-OH-D<Sub>3 </Sub>es un buen biomarcador de la toxicidad, y que el umbral para los síntomas tóxicos es                     &#8776; 750 nmol/L (300 ng/mL), (11) que concuerda con nuestros resultados. Cuando la 25-OH-D<Sub>3 </Sub>circula a concentraciones tan elevadas, que sobrepasan su capacidad de combinación a la proteína transportadora de vitamina D (DBP), llega al receptor de vitamina D (VDR) localizado en el núcleo de las células blanco y causa una exagerada expresión de los genes, con las secuelas características (11).</SPAN ></font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">En los animales tratados encontramos un incremento (p<0,05) significativo en las concentraciones de Ca en sangre (hipercalcemia) y en tejidos, que concuerda con los trabajos previos realizados en humanos y en diferentes especies (12, 13). Esta hipercalcemia se considera secundaria al incremento en la destrucci&oacute;n del tejido &oacute;seo, que determina la salida del cati&oacute;n en grandes cantidades hacia la sangre (14).</font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los signos cl&iacute;nicos detectados en la presente investigaci&oacute;n se caracterizan entre otros, por diarrea mucosanguinolenta, poliuria, letargia, debilidad muscular, v&oacute;mitos hemorr&aacute;gicos, p&eacute;rdida exagerada de peso, conjuntivitis bilateral, hemorragias a nivel conjuntival y muerte que coinciden con los descritos en la literatura (15). La inflamaci&oacute;n de la conjuntiva y la hemorragia a nivel corneal se deben a la deposici&oacute;n de calcio descrita, a este nivel, por Imaizumi et al. (16) en ratas y perros.</font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">La hipercalcemia, a su vez, cuando se prolonga causa precipitaciones de sales de calcio y de f&oacute;sforo predominantemente en diversos &oacute;rganos blandos (ri&ntilde;ones, coraz&oacute;n, pulm&oacute;n, est&oacute;mago, h&iacute;gado y otros &oacute;rganos), que provocan un marcado da&ntilde;o inflamatorio, que puede evolucionar hasta una necrosis, lo cual compromete el normal funcionamiento de estos &oacute;rganos (17-20).</font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados tambi&eacute;n demuestran como hechos caracter&iacute;sticos hipocincemia, hipercupremia e hipoferremia y alteraciones en la distribuci&oacute;n tisular de estos elementos traza. Es un hecho conocido que la inflamaci&oacute;n/ infecci&oacute;n induce cambios sist&eacute;micos, conocidos colectivamente como la respuesta de fase aguda. Entre las variadas alteraciones que producen esta respuesta encontramos: hipoferremia, hipocincemia e hipercupremia. Es probable que estas respuestas est&eacute;n mediadas, en parte, por la producci&oacute;n y liberaci&oacute;n de citocinas como la interleucina 1 (Il-1), la interleucina 6 (Il-6), los interferones                     (IFN-alfa<sub>2</sub>) y el factor de necrosis tumoral (TNF) (21). Estos cambios se piensa que son aspectos beneficiosos de la respuesta de fase aguda temprana y se pueden considerar como un mecanismo de defensa frente a los procesos infecciosos/inflamatorios (22). La mayor&iacute;a de estos cambios se observan en cuesti&oacute;n de horas o d&iacute;as despu&eacute;s de la aparici&oacute;n de la infecci&oacute;n o la inflamaci&oacute;n (22). La Il-1, una prote&iacute;na termol&aacute;bil, que se libera en los tejidos lesionados, y que favorece la captaci&oacute;n de Zn y de Fe a nivel del tejido hep&aacute;tico, con una salida incrementada de Cu hacia la circulaci&oacute;n, se se&ntilde;ala, por algunos investigadores, como el principal mediador de la respuesta de fase aguda y como una posible causa de los cambios s&eacute;ricos de los oligoelementos asociados con esta respuesta (23).</font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">La disminuci&oacute;n del Zn y de los amino&aacute;cidos s&eacute;ricos y su dep&oacute;sito elevado en el h&iacute;gado es fundamental para la s&iacute;ntesis incrementada de las diversas “prote&iacute;nas de fase reactiva aguda” (entre ellas, la ceruloplasmina), que intervienen en los mecanismos de defensa del hu&eacute;sped frente a los procesos inflamatorios e infecciosos (24). La alteraci&oacute;n del Cu es com&uacute;n durante los estados infecciosos e inflamatorios (22). Se cree que los cambios en el metabolismo del Cu son secundarios a un aumento de la s&iacute;ntesis hep&aacute;tica y a la liberaci&oacute;n de ceruloplasmina y del Cu hacia el plasma. Este hecho es de importancia: primero, porque la ceruloplasmina tiene propiedades antiinflamatorias y gobierna la capacidad antioxidante del plasma y, segundo, porque el Cu tiene propiedades bactericidas y antiinflamatorias (25). El aumento de la concentraci&oacute;n s&eacute;rica de Cu, generalmente empieza muy pronto en el curso de una inflamaci&oacute;n aguda o de una infecci&oacute;n, pero es menos acelerada en comparaci&oacute;n con los cambios que presentan el Zn y el Fe (22).</font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">La anemia que se observa com&uacute;nmente en pacientes con hipervitaminosis D es una entidad cl&iacute;nica bien conocida (26,27) y posiblemente relacionada con la hipoferremia y la diarrea mucosanguinolenta detectadas en esta condici&oacute;n experimental. En la actualidad se conoce que la citoquina inflamatoria Il-6 (28) induce la producci&oacute;n hep&aacute;tica de hepcidina, un p&eacute;ptido rico en enlaces –S-S, de fase reactiva aguda que inhibe la absorci&oacute;n intestinal y la liberaci&oacute;n de Fe desde los macr&oacute;fagos e incrementa el secuestro del metal en sus &oacute;rganos de dep&oacute;sito (29) con producci&oacute;n de una anemia ferrop&eacute;nica.</font>                     </p>                         ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, nuestros resultados proporcionan evidencias que la administraci&oacute;n de altas dosis de vitamina D, a corto plazo, determina hipercalcemia, diversos signos cl&iacute;nicos, produce un marcado aumento de las concentraciones s&eacute;ricas de la vitamina D<sub>3</sub> y de 25-OH-D<sub>3</sub> y una marcada alteraci&oacute;n en las concentraciones s&eacute;ricas y tisulares de Zn, Cu y Fe, que dependen de las dosis inyectadas de vitamina D. En el presente estudio no se determin&oacute; la concentraci&oacute;n plasm&aacute;tica del                     1,25-(OH)<sub>2</sub>-vitamina D<sub>3</sub> y de diversas prote&iacute;nas como la prote&iacute;na C reactiva (PCR), la ceruloplasmina y el orosomucoide (prote&iacute;nas de fase reactiva aguda) que son muy &uacute;tiles para documentar de una manera m&aacute;s efectiva la presencia de la inflamaci&oacute;n en estos animales, los cuales ser&aacute;n evaluados en investigaciones futuras en la hipervitaminosis D aguda experimental.</font>                     </p>                         <p style="line-height: 100%" align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS</font>                     </b></p>                         <!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">1.                     Jones G, Strugnell SA, DeLuca HF. Current understanding of the molecular actions of vitamin D. Physiol Rev. 1998; 78: 1193-231.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514455&pid=S0004-0622201100030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">2.                     Kimmel PL, Gubish CT, Watkins DW, Langman CB. Zinc nutritional status modulates the response of 1, 25- dihydroxycholecalciferol to calcium depletion in rats. J. Nutr. 1992; 122: 1576-81.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514456&pid=S0004-0622201100030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">3.                     Carpenter TO, Pendrak ML, Anast CS. Metabolism of 25-hydroxyvitamin D in copper-laden rat: a model of Wilson&#39;s disease Am. J. Physiol. 1988; 254: E150-4.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514457&pid=S0004-0622201100030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">4.                     Heldenberg D, Tenenbaum G, Weisman Y. Effect of iron on serum 25-hydroxyvitamin D and 24, 25-dihydroxyvitamin D concentrations. Am. J. Clin. Nutr. 1992; 56: 533-6.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514458&pid=S0004-0622201100030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">5.                     Burguera JL, Burguera M, Matousek de Abel de La Cruz A, et al. Microwave-aided micro-dissolution of biological samples prior to flow injection-atomic absorption spectrometry analysis. At. Spectr. 1992; 13: 67-71.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514459&pid=S0004-0622201100030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">6.                     Burguera JL, Burguera M, Alarc&oacute;n OM. Determination of sodium, potassium, calcium, magnesium, iron, copper and zinc in cerebrospinal fluid by flow injection atomic absorption spectrometry. J. Anal. At. Spectr. (JAAS) 1986; 1: 79-83.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514460&pid=S0004-0622201100030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">7.                     Brunetto MR, Obando MA, Gallignani M et al. HPLC determination of vitamin D3 and its metabolites in human serum with on-line sample clean-up. TALANTA 2004; 64: 1364-70.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514461&pid=S0004-0622201100030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">8.                     Littledike ET, Horst RL. Vitamin D3 toxicity in dairy cows. J. Dairy Sci. 1982; 65: 749-59.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514462&pid=S0004-0622201100030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">9.                     Deluca HF, Prahl JM, Plum LA. 1,25-Dihydroxyvitamin D is not responsible for toxicity caused by vitamin D or 25-hydroxyvitamin D. Arch. Biochem. Biophys. 2011; 505: 226-30.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514463&pid=S0004-0622201100030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">10.                     Shephard RM, DeLuca HF. Plasma concentrations of vitamin D3 and its metabolites in the rat as influenced by vitamin D3 or 25-hydroxyvitamin D3 intakes. Arch. Biochem. Biophys. 1980; 202: 43–53.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514464&pid=S0004-0622201100030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">11.                     Jones G. Pharmacokinetics of vitamin D toxicity. Am. J. Clin. Nutr. 2008; 98: 5825-65.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514465&pid=S0004-0622201100030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">12.                     Mellanby RJ, Mee AP, Berry JL, Herrtage ME. Hypercalcaemia in two dogs caused by excessive dietary supplementation of vitamin D. J. Small Anim. Pract. 2005; 46: 334-8.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514466&pid=S0004-0622201100030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">13.                     Joshi R. Hypercalcemia due to hypervitaminosis D: Report of seven patients. J. Trop. Pediatr. 2009; 55: 396-8.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514467&pid=S0004-0622201100030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">14.                     Selby PL, Davies M, Marks JS, Mawer EB. Vitamin D intoxication causes hypercalcaemia by increased bone resorption which responds topamidronate. Clin. Endocrinol. 1995; 43: 531-36.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514468&pid=S0004-0622201100030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">15.                     Motas-Guzm&aacute;n M, Buronfosse F, Buronfosse T, Garc&iacute;a-Fern&aacute;ndez AJ. Revisi&oacute;n de casos de intoxicaciones agudas accidentales por calcipotriol y tacalcitol en perros en el CNITV (Francia)(1999-2003). Rev. Toxicol. 2004; 21: 81-6.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514469&pid=S0004-0622201100030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">16.                     Imaizumi T, Tsuruta M, Kitagaki, T et al. Single dosis toxicity studies of calcipotriol (MC 903) in rats and dogs. J. Toxicol. Sci. 1996; 21: 277-85.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514470&pid=S0004-0622201100030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">17.                     Hilbe M, Sydler T, Fischer L, et al. Metastasic calcification in a dog attributable to ingestion of a tacalcitol ointment. Vet. Pathol. 2000; 37: 490-2.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514471&pid=S0004-0622201100030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">18.                     Duncan CJ. Role of intracellular calcium in promoting muscle damage: a strategy for controlling the dystrophic condition. Experientia 1978; 34: 1531-35.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514472&pid=S0004-0622201100030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">19.                     Grant RA, Gillman T, Hathorn M. Prolonged chemical and histochemical changes associated with widespread calcification of soft tissues following brief acute calciferol intoxication. Br J Exp Pathol. 1963; 44: 220- 32.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514473&pid=S0004-0622201100030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">20.                     Kent SP, Vawter GF, Dowben RM, Benson RE. Hypervitaminosis D in monkeys: A clinical and pathologic study. Am J Pathol. 1958; 34: 37–59.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514474&pid=S0004-0622201100030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">21.                     Shenkin A. Trace elements and inflammatory response: implications for nutritional support. Nutrition. 1995; 11(1 Suppl):100-5.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514475&pid=S0004-0622201100030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">22.                     Beisel RW. Trace elements in infectious processes. Med. Clin. N. Am.                     1976; 60: 831-48.</font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=514476&pid=S0004-0622201100030000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="line-height: 100%" align="justify"><font face="Verdana" size="2">23.                     Dinarello CA. Interleukin-l and the pathogenesis of the acute phase response. N. Engl. J. 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