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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Calidad bacteriológica y detección de Bacillus cereus toxigénicos en arroz blanco cocido expendido en el área metropolitana de la provincia de San José, Costa Rica]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Bacteriological quality and toxigenic Bacillus cereus detection in cooked white rice sold at the Metropolitan Area of San José, Costa Rica.. The wide use of rice is one of the factors that favors its implication in food borne diseases, and one of the most important pathogens associated to it is Bacillus cereus. The aim of this work was to evaluate the microbiological quality of 50 samples of white cooked rice sold in restaurants at the Metropolitan Area of San José, Costa Rica, including the determination of the total aerobic plate count, the Most Probable Number of total and fecal coliforms and Escherichia coli. MPN of Bacillus cereus and the detection of nheA, nheB and nHeC genes, associated to its toxicity, was also performed. Procedures described in the Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods were followed for the bacteriological analysis, multiplex PCR was used for the detection of genes following the methodology described by Hansen et al, 2001. 46% of the samples analysed were positive for total coliforms, 34% for fecal coliforms, 16% for E. coli and 10% for B. cereus, being 8% toxigenic. These facts suggest that white cooked rice may represent a risk for Pubic Health and that improvements shall be performed in order to offer a safe and high quality product to consumers.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Calidad bacteriológica y detección de  Bacillus cereus toxigénicos en arroz blanco cocido expendido en el área  metropolitana de la provincia de San José, Costa Rica</font></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Rodrigo Coto, Carolina Chaves,  María del Mar Gamboa, Maria Laura Arias</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Facultad de Microbiología,  Centro de Investigación en Enfermedades Tropicales (CIET), Universidad de Costa  Rica, Costa Rica.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b>.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El gran consumo de arroz a  nivel mundial es uno de los factores que favorece su implicación en brotes de  origen alimentario y de uno de los patógenos más importantes ligado a este  producto como el Bacillus cereus El objetivo del presente trabajo fue evaluar la  calidad microbiológica de 50 muestras de arroz blanco cocido expendido en  restaurantes de área Metropolitana de San José Costa Rica, incluyendo la  determinación del recuento total aerobio mesófilo, Número Más Probable de  coliformes totales, fecales y E. coli, B. cereus así como de detección de sus  genes nheA, nheB, y nheC. Para el análisis bacteriológico se siguieron los  procedimientos descritos en el Compendio de Métodos para el Examen  Microbiológico de Alimentos y para la detección de los genes se utililzó un PCR  múltiplex y la metodología descrita por Hansen et al., 2001. De las muestras  analizadas 46% fueron positivas por coliformes totales, 34% por coliformes  fecales, 16% por E. coli, 10% por B. cereus y un 8% por B. cereus toxigénico Lo  anterior sugiere que el consumo de arroz blanco en restaurantes puede  representar un riesgo para la salud pública y que es necesario implementar  mejoras con el fin de brindarle al consumidor un producto inocuo y de mejor  calidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: Arroz,  Bacillus cereus, calidad microbiológica</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>SUMMARY</b>.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Bacteriological quality and  toxigenic Bacillus cereus detection in cooked white rice sold at the  Metropolitan Area of San José, Costa Rica</b>.. The wide use of rice is one of  the factors that favors its implication in food borne diseases, and one of the  most important pathogens associated to it is Bacillus cereus. The aim of this  work was to evaluate the microbiological quality of 50 samples of white cooked  rice sold in restaurants at the Metropolitan Area of San José, Costa Rica,  including the determination of the total aerobic plate count, the Most Probable  Number of total and fecal coliforms and Escherichia coli. MPN of Bacillus cereus  and the detection of nheA, nheB and nHeC genes, associated to its toxicity, was  also performed. Procedures described in the Compendium of Methods for the  Microbiological Examination of Foods were followed for the bacteriological  analysis, multiplex PCR was used for the detection of genes following the  methodology described by Hansen et al, 2001. 46% of the samples analysed were  positive for total coliforms, 34% for fecal coliforms, 16% for E. coli and 10%  for B. cereus, being 8% toxigenic. These facts suggest that white cooked rice  may represent a risk for Pubic Health and that improvements shall be performed  in order to offer a safe and high quality product to consumers.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Key words</b>: Rice,  Bacillus cereus, microbiological quality</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: 28-05-2012 Aceptado:  13-08-2012</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El arroz es el cereal más  cultivado el mundo y es el segundo de mayor consumo después de trigo (1). El  gran consumo de este grano a nivel mundial es uno de los factores que favorece  su implicación en brotes de origen alimentario y de uno de los patógenos más  importantes ligado a este producto es Bacillus cereus El objetivo del presente  trabajo fue evaluar la calidad microbiológica de 50 muestras de arroz blanco  cocido expendido en Area Metropolitana de San José Costa Rica, incluyendo la  determinación del recuento total aerobio mesófilo, Número Más Probable de  coliformes totales, fecales y E. coli, B. cereus así como de detección de sus  genes nheA, nheB, y nheC. Para el análisis bacteriológico se siguieron los  procedimientos descritos en el Compendio de Métodos para el Examen  Microbiológico de Alimentos y para la detección de los genes se utililzó un PCR  múltiplex y la metodología descrita por Hansen et al., 2001. De las muestras  analizadas 46% fueron positivas por coliformes totales, 34% por coliformes  fecales, 16% por E. coli y 10% por B. cereus y un 8% por B. cereus toxigénico Lo  anterior sugiere que el consumo de arroz blanco en restaurantes puede  representar un riesgo para la salud pública y que es necesario implementar  mejoras con el fin de brindarle al consumidor un producto inocuo y de mejor  calidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En Costa Rica el arroz  representa la principal fuente de alimentación y en el período 2005/2006 se  calculó un consumo per cápita por año de aproximadamente 52 kilogramos, unos de  los mayores de la región latinoamericana (2).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Dentro de las enfermedades  transmitidas por alimentos, uno de los patógenos más importantes ligado al arroz  es Bacillus cereus (3). Desde la década del setenta en países como Finlandia y  el Reino Unido se ha relacionado a este microorganismo con intoxicaciones  alimentarias posterior al consumo de arroz (3).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">B. cereus es un bacilo Gram  positivo, formador de esporas, aerobio facultativo, habitante saprófito del  suelo (4) que se encuentra ampliamente distribuido en el ambiente (5). Debido a  esta amplia distribución es que se facilita su acceso a los alimentos (6).  Dentro de sus principales reservorios en el ambiente se encuentra la materia  orgánica en descomposición, agua dulce y salada, vegetales, fomites y el tracto  gastrointestinal de invertebrados (7).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Esta bacteria ha sido  relacionada con una amplia gama de patologías, las más comunes son las  enfermedades diarreicas y eméticas; sin embargo también se ha relacionado con  infecciones del tracto respiratorio, urinario, del sistema nervioso central,  endocarditis, osteomielitis, endoftalmitis, entre otras (8). La patogenicidad de  esta bacteria, ya sea en infecciones intestinales o extraintestinales, se  encuentra íntimamente asociada con la producción de exoenzimas o toxinas. Dentro  de estas toxinas se describen cuatro hemolisinas (9), tres fosfolipasas, una  toxina emética (cerúlida), y tres enterotoxinas formadoras de poros: la  hemolisina BL (Hbl), la enterotoxina no hemolítica (Nhe), y la citotoxina K  (10,11).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La patogénesis por B. cereus en  el tracto gastrointestinal se debe a que las células vegetativas ingeridas,  producen y secretan las enterotoxinas que inducen el síndrome diarreico (Hbl,  Nhe y citotoxina K); o a que la toxina emética, un péptido cíclico codificado  por un plásmido, que es producida en los alimentos e ingerida ya preformada (8).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aunque se han descrito casos  del tipo emético asociados con niveles de B. cereus de 10<sup>3</sup> UFC/g de  alimento contaminado, se estima que la dosis infectiva mínima para ambos tipos  de síndrome, se encuentra aproximadamente entre 105-108 UFC/g de alimento  consumido (11). El tipo de síndrome que se presenta con mayor frecuencia varía  de acuerdo al país en estudio, por ejemplo en Japón el síndrome emético es diez  veces más frecuente que el diarreico, mientras que en Europa y Norteamérica es  más frecuente el diarreico (11).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Debido a que la intoxicación  alimentaria por B. cereus no es de reporte obligatorio en ningún país, no se  conocen datos exactos acerca de su incidencia o sobre su efecto en la inocuidad  de los alimentos. Los pocos países que han realizado estudios a profundidad  sobre este patógeno han encontrado que B. cereus es un agente etiológico  frecuente en intoxicaciones alimentarias (11,12); en Noruega e Islandia se  reportaron porcentajes de aislamiento en intoxicaciones alimentarias entre  47-22% , respectivamente (11).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aunado a lo anterior, la  presencia de B. cereus en los alimentos no es suficiente para determinar su  potencial patogénico, por lo que la identificación o no de los genes que  codifican sus toxinas es necesaria para establecer el potencial toxigénico de  las cepas, de manera que se pueda esclarecer realmente el riesgo sanitario del  consumo de los alimentos contaminados (13).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Tomando en cuenta lo  anteriormente expuesto, se puede apreciar la importancia de realizar un estudio  que determine la frecuencia de B. cereus en muestras de arroz blanco cocido de  restaurantes del área metropolitana nacional, así como la presencia de los genes  nheB, nheA y nheC de la toxina Nhe en los aislamientos obtenidos.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Recolección de muestras</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las muestras que se utilizaron  en este proyecto fueron de arroz blanco cocido obtenido de 50 restaurantes  localizados en los cantones de Tibás, Desamparados, Moravia, Goicoechea, Montes  de Oca, Curridabat y el cantón central de San José, Costa Rica. El análisis de  las mismas se realizó en el Laboratorio de Alimentos y Aguas de la Facultad de  Microbiología, localizado en la Universidad de Costa Rica. Las muestras fueron  transportadas en frío al laboratorio, para evitar el crecimiento de los  microorganismos y la contaminación de las mismas. El análisis de éstas se  realizó dentro de las 24 horas posteriores a su adquisición.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Para llevar a cabo el análisis,  se aplicaron los procedimientos descritos en el Compendio de Métodos para el  Examen Microbiológico de Alimentos (14). Se tomaron 25 g del alimento y se  mezclaron con 225 mL de Agua Peptonada Estéril (APE) al 0,1% en un homogenizador  Stomacher®400 Circulator de la marca Seward, de esta suspensión se hicieron  cuatro diluciones decimales adicionales (10<sup>-1</sup> a 10<sup>-5</sup>).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Recuento total aerobio  mesófilo</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A partir de cada dilución  realizada, se tomaron 100 &#956;L que se colocaron sobre una placa de Petri con agar  Estándar + 2,3,5-cloruro trifenil tetrazolium al 0,5% (TTC) y se esparcieron con  asa de Drigalski. Se incubaron a 35° C durante 48 horas. Luego de la incubación  se contaron las colonias rojizas en los platos de Petri que contuvieran entre 25  y 250 colonias y se calculó el número de UFC/g multiplicando el número de  colonias por el factor de dilución.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Número más probable de  coliformes totales, fecales y E. coli</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Prueba presuntiva</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se transfirió 1mL de las  diluciones preparadas a una serie de 3 tubos de Caldo Lactosado Simple (CLS) con  campana de Durham, los cuales se incubaron a 35° C por 48 horas. Los tubos que  presentaron gas y crecimiento bacteriano se consideraron presuntamente  positivos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Prueba confirmatoria</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Coliformes totales: Los tubos  presuntamente positivos se subcultivaron a caldo bilis verde brillante (CBVB)  utilizando palillos de madera estériles. Se incubaron por 48 horas a 35° C, los  tubos con gas y crecimiento bacteriano se utilizaron para determinar el NMP de  coliformes totales /g.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Coliformes fecales: Los tubos  presuntamente positivos se subcultivaron a caldo E. coli (EC) utilizando partir  de los tubos positivos de caldo E. coli (EC) utilizando palillos de madera  estériles. Se incubaron a 35° C durante 24 horas. Se confirmó la presencia de E.  coli evaluando la producción de indol con el reactivo de Ehrlich y xilol.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Determinación de B. cereus</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se utilizó la técnica de Número  Más Probable descrita por Downes et al., 2001. Para ello se utilizó una serie de  tres tubos de Caldo Tripticasa Soya (CTS) con Polimixina B (0.06 mg/mL) y se  inoculó 1mL de las diluciones del homogenizado del alimento. Se incubó cada tubo  por 48 horas a 35° C. Posteriormente, a partir de los tubos que mostraron  turbidez se rayaron placas de agar Manitol-Yema de Huevo-Polimixina (MYP) que se  incubaron a 35°C por 48 horas. A partir de estas placas se escogieron las  colonias típicas de B. cereus, que se observaron grandes, irregulares, secas, de  color rosado (manitol negativo) y rodeadas por un halo opalescente (lecitinasa  positivo). Posteriormente, se realizaron varias pruebas con el fin de confirmar  o descartar la presencia de B. cereus. Estas pruebas incluyeron tinción de Gram,  oxidasa, catalasa, reducción de nitratos a nitritos, movilidad y hemólisis.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Detección de los genes nheA,  nheB, y nheC.</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se utilizó la metodología  descrita en 2001 por Hansen et al., (15), los genes de la enterotoxina Nhe de B.  cereus se detectaron mediante un PCR multiplex que utilizó ADN extraído mediante  choque térmico como molde. Para ello, una colonia bacteriana recuperada a partir  de agar Sangre incubado por 24 horas a 35°C, fue resuspendida en 500 &#956;L de  solución tamponada de fosfatos ajustada a pH = 6.8 (PBS) e incubada durante 20  minutos a 95ºC. Los detritos celulares fueron removidos mediante sedimentación  por centrifugación a 4°C por 10 min. Del sobrenadante, que contenía el ADN  extraído, se almacenaron 300 &#956;L para ser utilizados como ADN base para la  amplificación. La mezcla para la amplificación se hizo utilizando 1 &#956;L de cada  primer a 100 &#956;M (nheA 344 S, nheA 843 A, nheB 1500 S, nheB 2269 A, nheC 2820 S y  nheC 3401 A) (15), 5 &#956;L del ADN extraído por choque térmico, 25 &#956;L del “ready-to  use” 2X mastermix (Fermentas®) y 17 &#956;L de agua libre de nucleasas para un  volumen final de 50 &#956;L. El programa de amplificación incluyó 30 ciclos de  desnaturalización a 94ºC por 15 segundos, un paso de alineación a 55ºC por 45  segundos y un paso de extensión a 72ºC por 2 minutos. Como control positivo se  usó la cepa Bacillus thuringiensis var. aizawai HD 137 la cual presenta los 3  genes para la toxina Nhe, y como control negativo se empleó la cepa Eschericha  coli ATCC 25922. La electroforesis de los productos amplificados se realizó en  gel de agarosa al 2% con bromuro de etidio a una concentración final de 0,0005  mg/mL. El gel se cargó con 10 &#956;L de mezcla de carga (10 &#956;L de las muestras  amplificadas con 1 &#956;L de buffer de carga) y se corrió a 120 V durante 1 hora. Se  utilizó un marcador de peso molecular de 50 pares de bases (Fermentas ®).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los primers fueron escogidos de  los deducidos por Hansen et al., 2001 (15) para detectar los genes que codifican  para los tres componentes de la toxina Nhe y son descritos en el <a href="#tab1"> tabla 1</a>.</font></p>     <p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v62n3/art11tab1.gif" width="551" height="332"></a></p>     
<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESULTADOS</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos a  partir del recuento total aerobio mesófilo demostraron que un 30% de la muestras  tenían valores superiores a 105 UFC/g, destacándose dos muestras que presentaron  recuentos superiores a 108 UFC/g.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En el <a href="#tab2">tabla 2</a>  se muestran los resultados obtenidos para coliformes totales, fecales, E coli y  B. cereus. Cabe destacar que el 46% (n=23) de las muestras fueron positivas (&gt;3  NMP/g) por coliformes totales, el 34% (n=17) por coliformes fecales y en el 16%  (n=8) por E. coli. En cinco muestras fue posible la identificación de B. cereus  (&gt;3 NMP/g), siendo 240 NMP/g el valor más alto.</font></p>     <p align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v62n3/art11tab2.gif" width="467" height="253"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La evaluación de los  aislamientos de estas últimas muestras mediante la prueba de PCR determinó que  cuatro de ellas eran positivas por los tres genes (nheA, nheB y nheC) del operón  nhe. En la cepa restante se detectó únicamente los genes nheA y nheB (<a href="#fig1">figura  1</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v62n3/art11fig1.gif" width="469" height="405"></a></p>     
<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El arroz blanco cocido se  encuentra dentro del grupo denominado alimentos listos para el consumo ya que no  requieren tratamientos térmicos adicionales antes de ser ingeridos por el  consumidor. La calidad bacteriológica de este alimento depende de muchos  factores incluyendo la forma de prepararlo, la clase de arroz, la forma de  servirlo y la manipulación del mismo (16).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En alimentos listos para el  consumo, varios lineamientos (17,18) recomiendan recuentos totales aerobios  mesófilos menores a 105 UFC/g de alimento. A nivel mundial se han realizado  varios estudios para estimar la carga bacteriana mesófila aerobia inicial en  arroz blanco cocido, algunos resultados incluyen los obtenidos en el Reino Unido  donde se reportan valores que oscilan entre &lt;103 a &#8805;107 UFC/g (20), en Filipinas  con un promedio de 105 UFC/g (20) y en la ciudad de Benin (Nigeria), se  encontraron valores promedio de 105 UFC/g (17). En el actual estudio se  determinó que el 30% (n=15) de las muestras tenían recuentos totales aerobios  mesófilos superiores a 105 UFC/g de alimento, lo que supera los estándares de  calidad a nivel internacional. Sin embargo, como la mayoría de estudios han  encontrado resultados en el rango de 105 UFC/g de alimento, algunos autores como  Gilbert et al. (17) abordan la posibilidad de aumentar el límite de  aceptabilidad en alimentos a base de arroz hasta 106 UFC/g de alimento (20). Aún  así, se encontró que 11 muestras superaron el valor de 106 UFC/g y dos de ellas  sobrepasaron los 108UFC/g. Niveles elevados de contaminación bacteriana en el  arroz se han relacionado con la práctica de preparar grandes cantidades del  producto en los restaurantes de manera anticipada para su posterior utilización  y el guardar el producto a temperatura ambiente por largos periodos de tiempo  antes de volver a calentarlo. Estas prácticas son particularmente comunes en  países donde el arroz es parte importante de la dieta y además se usa como  materia prima para otros alimentos (19).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La adición de productos frescos  al arroz cocinado y las prácticas incorrectas al servir los alimentos pueden  ayudar a explicar los altos porcentajes de muestras positivas (&gt;3 NMP/g) por  coliformes totales (46%) y coliformes fecales (34%), indicando mala higiene,  inadecuada cocción o contaminación post tratamiento térmico (16,20).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Por otra parte, como es  conocido, E. coli se considera el microorganismo indicador de contaminación  fecal por excelencia, esto debido a que tiene como hábitat natural el intestino  de animales vertebrados (14,20). En este trabajo se encontró que un 16% de las  muestras (n=8) eran positivas (&#8805;3 NMP/g) por E. coli. Según el Reglamento  Técnico Centroamericano RTCA 67.04.50:08 empleado para la interpretación de  resultados en el grupo 17: Alimentos listos para consumir y subgrupo 17.1:  Alimentos preparados, listos para consumir que no requiere tratamiento térmico,  para el parámetro de E. coli el límite máximo permitido es de &lt;3 NMP/g, por lo  que las ocho muestras anteriormente mencionadas no son aptas para el consumo  humano. Para la mayoría de los especímenes en los que se detectó E. coli se  sobrepasó el límite permitido, teniendo la muestra más contaminada un resultado  de 24 000 NMP/g. Tales valores implican un riesgo potencial de contaminación con  patógenos entéricos al encontrar cantidades significativas de contaminación  fecal en alimentos listos para consumo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se aisló B. cereus a partir del  10% de las muestras analizadas. Estudios nacionales previos reportan un 33% de  aislamientos en productos lácteos con especias y leches deshidratadas (13),  mientras que en un estudio realizado en Nigeria se reportó porcentajes de  aislamiento de 50% de B. cereus en diferentes clases de arroz cocido (16). Por  otro lado, en un estudio realizado en Cuba por Martino et al.,(2010) (6) se  aislaron 24 cepas de B. cereus a partir de 110 muestras de alimentos listos para  el consumo, donde la mayor incidencia se encontró en los platos elaborados a  base de arroz y de natilla. Otros estudios recientes también han reportado  recuentos altos de B. cereus en arroz y pastas en Holanda y Taiwán (16, 21).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La determinación de B. cereus  mediante la técnica de NMP realizada en este estudio reveló cinco muestras  positivas (&gt;3NMP/g) pero con niveles bajos de contaminación por este patógeno,  siendo 240 NMP/g el valor más alto encontrado. Los criterios de aceptabilidad  para alimentos positivos por B. cereus son diversos, algunas fuentes citan como  satisfactorios niveles &lt;103 UFC/g, aceptables entre 103-&lt;104 UFC/g,  insatisfactorios entre 104-&lt;105 UFC/g, e inaceptables/ potencialmente patógenos  &gt;105 UFC/g (20). Otras autoridades citan niveles &lt;102 UFC/g como satisfactorios,  entre 102 a &lt;103 como aceptables, entre 103 y &lt;104 como insatisfactorios y &#8805;104  como peligrosos (20-22). Sin importar cuáles criterios de interpretación sean  utilizados, los resultados encontrados en esta investigación señalan valores que  no representan un riesgo para la salud del consumidor, no obstante, la presencia  de B. cereus en alimentos listos para el consumo generalmente se ha relacionado  con manejos inadecuados luego de la cocción (6).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aunque muchos autores  consideran que valores bajos representa un bajo riesgo de intoxicación  alimentaria por B. cereus, se ha reportado que al tratarse de alimentos ya  cocidos, desprovistos de la mayoría de los microorganismos competidores,  mantenidos a temperaturas fuera del rango térmico sugerido por largos periodos  de tiempo, el riesgo de una infección o intoxicación por este patógeno aumenta  considerablemente (23-24). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La presencia de B. cereus en el  alimento no es suficiente para determinar el riesgo real de producir infección  en el consumidor, por lo que es importante determinar el potencial toxigénico de  las cepas aisladas (10,13). De acuerdo a los resultados obtenidos del PCR,  cuatro de los cinco aislamientos de B. cereus contaban con los genes nheA, nheB  y nheC del operón nhe; y por lo tanto se consideran capaces de producir la  toxina Nhe. Algunos estudios indican que el operón hbl se encuentra presente en  aproximadamente 50% de los aislamientos de B. cereus y el nhe en cerca del 100%  de las cepas (11). En un estudio danés realizado por Rosenquist et al. (21) se  identificaron 40 cepas de B. cereus en alimentos listos para el consumo, las  cuales eran todas positivas por el operón nhe. En muchos casos de intoxicaciones  alimentarias por B. cereus, la toxina Nhe actúa de forma exclusiva (25), por lo  que el aislamiento de cepas con los tres genes codificados por el operón nhe no  solo implica la producción de toxina si no también la posibilidad de causar una  toxiinfección aún en ausencia de otra toxina (Hbl o CytK). Se sabe que la  presencia de nheC junto con nheA y nheB es esencial para producir la actividad  citotóxica del complejo Nhe en ensayos con células Vero (25). Al parecer la  función de nheC es similar al de un “catalizador”, ya sea ayudando a unir a nheA  con nheB (luego que nheB se acople con la célula blanco) o facilitando cambios  conformacionales (25), por lo que los productos de los tres genes son  indispensables para la actividad biológica de la toxina; es por esto que la  muestra donde solo se detectaron los genes nheA y nheB, no se considera capaz de  producir una toxina Nhe funcional. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Teniendo en cuenta los  hallazgos obtenidos durante esta investigación que incluyen un 46% de muestras  positivas por coliformes totales, 34% por coliformes fecales, 16% por E. coli y  10% por B. cereus y un 8% por B. cereus toxigénicos se sugiere que el consumo de  arroz blanco en restaurantes puede representar un riesgo para la salud pública y  que se deberían implementar mejoras en las medidas higiénicas, el procesamiento,  la manipulación y el almacenamiento del alimento, con el fin de brindarle al  consumidor un producto inocuo y de mejor calidad.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Instituto Interamericano de  Cooperación para la Agricultura IICA. Estudio de la cadena agroalimentaria de  arroz en la República Dominicana. 2006. 1-94.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=518329&pid=S0004-0622201200030001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Conarroz. Laboratorio de  Control de Calidad. 2011. En línea. www.conarroz.com. Consultado el 21 de Julio  2011</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Pan T, Wang T, Lee C, Chien S &amp; Horng C. Food- Borne disease outbreaks  due to bacteria in Taiwan, 1986 to 1995. J Clin Microbiol. 1997. 35: 1260–1262.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Martínez J. Desarrollo de métodos rápidos para el control del Bacillus cereus  en alimentos. Tesis Doctoral Universidad de Valencia. 2008.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Ash C, Farrow J,  Dorsch M, Stackenbrandt E &amp; Collins M. Comparative analysis of Bacillus  anthracis, Bacillus cereus, and related species on the basis of reverse  transcriptase of 16S rRNA. Int J Syst Bacteriol. 1991. 41: 343–346.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Martino  T, Leyva V, Puig Y, Machin M, Aportela N &amp; Ferrer,Y. Bacillus cereus y su  implicación en la inocuidad de los alimentos. Parte I. Rev Cub Salud Púb. 2010.  36: 128-138.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Jensen G, Hansen B, Ellenberg J, &amp; Mahillon J. The hidden  lifestyles of Bacillus cereus and relatives. Environm Microbiol. 2003. 5:  631–640.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Bottone E. Bacillus cereus, a volatile human pathogen. Clin  Microbiol Rev. 2010. 23: 382–398.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Lund T, DeBuyser M &amp; Granum P. A new  cytotoxin from Bacillus cereus that may cause necrotic enteritis. Mol. Microbiol.  2000. 38: 254–261.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Saki C, Luchi T, Ishii A, Kumagai K &amp; Takagi T. Bacillus  cereus brain abscesses occurring in severely neutropenic patients: successful  treatment with antimicrobial agents, granulocyte colony-stimulating factor, and  surgical drainage. Int. Med. 2001. 40: 654–657.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Granum P. Bacillus cereus  and food poisoning. Applications and systematics of Bacillus and relatives.  2002. 141-159.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Schmidt K. WHO Surveillance  Programme for Control of Foodborne Infections and Infections and Into xications  in Europe. Sixth Report 1990-1992. 1995.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Blanco W, Arias M, Pérez C,  Rodríguez C &amp; Chaves C. Detección de Bacillus cereus toxigénicos en productos  lácteos con especias y leches deshidratadas colectadas en Costa Rica. ALAN.  2009. 59: 402-406.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Pouch DF. Compendium of  methods for the microbiological examination of foods. 4a ed. APHA. US. 2001.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Hansen B &amp; Hendriksen N. Detection of enterotoxic Bacillus cereus and Bacillus  thuringiensis strains by PCR analysis. Appl Envirom Microbiol. 2001. 67: 185–189</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Wogu M, Omoruyi M, Odeh H &amp; Guobadia J. Microbial load in ready-to-eat rice  sold in Benin City. J Microbiol &amp; Antimicrobiol. 2011. 3: 29-33.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Gilbert R,  De Louvois J, Donovan T, Little C, Nye K, Ribeiro C, Richards J, Roberts D &amp;  Bolton F. Guidelines for the microbiological quality of some ready-toeat foods  sampled at the point of sale. Commun Dis Public Health 2000. 3: 163-167.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. FSAI, Food Safety Authority of Ireland. Guidelines for the Interpretation of  Results of Microbiological Analysis of Some Ready-to-eat Foods Sampled at Point  of Sale, Guidance, Note No. 2001. 3: 1–12.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Azanza P. Aerobic plate counts of  Philippine ready-toeat foods from take-away premises. J Food Safety. 2005. 25:  80–97.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. New South Wales, Food Authority. Microbiological quality guide for  ready-to-eat foods, A guide to interpreting microbiological results. 2009.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Rosenquist H, Smidt L, Andersen S, Jensen G &amp; Wilcks A. Occurrence and  significance of Bacillus cereus and Bacillus thuringiensis in ready-to-eat food.  FEMS Microbiol Lett. 2005. 25: 129-136.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">22. Food Standards Australia New Zeland.  Guidelines for the microbiological examination of ready - to - eat foods. 2001.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">23. Mendes R, de Azeredo R, Coelho A, de Oliveira S &amp; Coelho M. Contaminação  ambiental por Bacillus cereus em unidade de alimentação e nutrição. Rev Nutr  Campinas. 2004. 17: 255-261.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">24. Ghelardi E, Celandroni F, Salvetti S, Barsotti  C, Baggiani A &amp; Senesi S. Identification and characterization of toxigenic  Bacillus cereus isolates responsible for two food-poisoning outbreaks. FEMS  Microbiol Lett. 2002. 208: 129-34.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. Lindbäck T, Fagerlund A, Rødland M &amp;  Granum P. Characterization of the Bacillus cereus Nhe Enterotoxin. Microbiol.  2004. 150: 3959–3967.</font></p>       ]]></body>
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