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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinación de la capacidad antimicrobiana del té verde (Camellia sinensis) contra los agentes potencialmente patógenos Escherichia coli, Salmonella enterica, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, Candida albicans y Aspergillus niger]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Determination of the antimicrobial capacity of green tea (Camellia sinensis) against the potentially pathogenic microorganisms Escherichia coli, Salmonella enterica, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, Candida albicans and Aspergillus niger.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Many studies can be found in scientific literature demonstrating the antimicrobial capacity of different herbs, including green tea. Nevertheless, many results are divergent or cannot be compared. Several green tea formulations may be found in market, but there is scarce or non-information about its activity. In this work, the potential antimicrobial effect of 50 samples of dry green tea and in 10% infusion against Escherichia coli, Salmonella enterica, Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Candida albicans and Aspergillus niger distributed in the metropolitan area of Costa Rica, was determined. This activity was compared with the effect produced by Chinese origin green tea (Camellia sinensis). Different solvents were evaluated for preparing polyphenol enriched extracts from green tea samples. Total phenols were determined using the Folin-Ciocalteu spectrophotometric methodology, using galic acid as reference. Antimicrobial activity of green tea extracts and infusions was evaluated using the microplate methodology described by Breuking (2006). Ethanol was the most efficient solvent used for the polyphenol extractions. There was no antimicrobial effect of the different green tea extracts and infusions against the microorganisms evaluated, except for Listeria monocytogenes, where the extracts of 70% of samples analyzed and the control showed an inhibitory effect in the 10,5 mg/mL and 1,05 mg/L concentrations. None of the infusions tested, including the control, showed any effect against this bacteria.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font FACE="Verdana" COLOR="#211d1e">     <p align="center"><b>Determinación de la capacidad antimicrobiana del té verde (Camellia  sinensis) contra los agentes potencialmente patógenos Escherichia coli,  Salmonella enterica, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, Candida  albicans y Aspergillus niger</b></p> </font>  <font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#211d1e">     <p align="center"><b>Andreína Mora, Jonathan Parra, José M. Chaverri, María  Laura Arias.</b></p>     <p align="justify">Centro de Investigaciones en Enfermedades Tropicales (CIET) y  Facultad de Microbiología, Universidad de Costa Rica. Instituto de  Investigaciones Farmacéuticas (INIFAR), Facultad de Farmacia, Universidad de  Costa Rica</p>     <p align="justify"><b>RESUMEN</b>.</p>     <p align="justify">En la literatura científica mundial, existen muchos estudios  que demuestran la capacidad antimicrobiana de diferentes hierbas, incluyendo el  té verde. No obstante, muchos resultados son divergentes o no comparables.  También, existen en el mercado muchas formulaciones de té verde, de las cuales  hay poca información respecto a su actividad. En el presente trabajo se  determinó el potencial efecto antimicrobiano contra cepas de Escherichia coli,  Salmonella enterica, Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Candida  albicans y Aspergillus niger de 50 muestras diferentes de té verde seco y en  infusión al 10%, distribuidas de manera comercial en Costa Rica. Se contrastó su  actividad con la del té verde (Camellia sinensis) de origen chino. Se evaluaron  diferentes solventes para preparar extractos ricos en polifenoles a partir del  té verde. Los fenoles totales se determinaron mediante el método  espectrofotométrico de Folin-Ciocalteu usando el ácido gálico como material de  referencia. La evaluación de la capacidad antimicrobiana del extracto y las  infusiones de té verde se llevó a cabo mediante el método de microplatos  descrito por Breukink (2006). El etanol fue el solvente que mostró mayor  eficiencia. No hubo efecto antimicrobiano de las diferentes muestras contra los  microorganismos evaluados, excepto con Listeria monocytogenes, dondese evidenció  un efecto inhibitorio en las concentraciones de 10,5 y 1,05 mg/mL de los  extractos en el 70% de marcas analizadas y en el control. Ninguna de las  infusiones evaluadas, incluyendo la del té control mostró efecto inhibitorio  contra esta bacteria.</p>     <p align="justify"><b>Palabras clave</b>: Té verde, acción antimicrobiana,  polifenoles</p>     <p align="center"><b>Determination of the antimicrobial capacity of green tea (Camellia  sinensis) against the potentially pathogenic microorganisms Escherichia coli,  Salmonella enterica, Staphylococcus aureus, Listeria monocytogenes, Candida  albicans and Aspergillus niger.</b></p>     <p align="justify"><b>SUMMARY</b>.</p>     <p align="justify">Many studies can be found in scientific literature  demonstrating the antimicrobial capacity of different herbs, including green  tea. Nevertheless, many results are divergent or cannot be compared. Several  green tea formulations may be found in market, but there is scarce or non-information  about its activity. In this work, the potential antimicrobial effect of 50  samples of dry green tea and in 10% infusion against Escherichia coli,  Salmonella enterica, Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Candida  albicans and Aspergillus niger distributed in the metropolitan area of Costa  Rica, was determined. This activity was compared with the effect produced by  Chinese origin green tea (Camellia sinensis). Different solvents were evaluated  for preparing polyphenol enriched extracts from green tea samples. Total phenols  were determined using the Folin-Ciocalteu spectrophotometric methodology, using  galic acid as reference. Antimicrobial activity of green tea extracts and  infusions was evaluated using the microplate methodology described by Breuking  (2006). Ethanol was the most efficient solvent used for the polyphenol  extractions. There was no antimicrobial effect of the different green tea  extracts and infusions against the microorganisms evaluated, except for Listeria  monocytogenes, where the extracts of 70% of samples analyzed and the control  showed an inhibitory effect in the 10,5 mg/mL and 1,05 mg/L concentrations. None  of the infusions tested, including the control, showed any effect against this  bacteria.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Key words</b>: Green tea, antimicrobial activity,  polyphenols</p>     <p align="justify">Recibido: 03-09-2013 Aceptado: 22-10-2013</p>     <p align="justify"><b>INTRODUCCIÓN</b>.</p>     <p align="justify">Las sustancias naturales han sido utilizadas, desde tiempos  ancestrales, para el control de agentes de importancia clínica en Salud Pública,  así como para prevenir el deterioro de productos alimenticios o controlar la  presencia de microorganismos patógenos en estos. Inicialmente, los productos  naturales, incluyendo especias, plantas, hierbas y productos afines eran usados  ampliamente con este fin. No obstante, estos fueron sustituidos paulatinamente  por los antibióticos (1,2). A finales del siglo XX se empezó a asociar el uso de  estos últimos con efectos adversos, incluyendo la aparición y dispersión de  cepas resistentes, razón por la cual los productos naturales recobraron fuerza  como uso alternativo o complementario en el control de diversas enfermedades,  con el propósito de mejorar y disminuir el riesgo para la salud (3,4).</p>     <p align="justify">El té verde ha sido conocido, tradicionalmente, por sus  propiedades antimicrobianas y antioxidantes (1). Los principios bioactivos de  éste incluyen bases tipo xantina y polifenoles (flavonoides, catecoles, taninos  catéquicos y ácidos fenólicos) (5) considerándose las catequinas como los  agentes de mayor importancia y actividad (6).</p>     <p align="justify">En la literatura científica mundial, existen muchos estudios  que demuestran la actividad antimicrobiana de diferentes hierbas, incluyendo el  té verde, contra agentes microbianos de interés en la salud pública (7).  Ejemplos de ellos son los estudios de Bancirova (8) quien comparó la actividad  ocasionada por infusiones de té no fermentados (té verde) y fermentados (té  negro) sobre Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas  aeruginosa y Escherichia coli, concluyendo que no existen diferencias  significativas entre ambos. De manera contrastante, Almajano et al.(9) al  analizar las infusiones de varios tipos de té contra Bacillus cereus,  Pseudomonas aeruginosa, Lactobacillus acidophilus, Candida albicans,  establecieron que la mayor actividad antimicrobiana era provocada por los té no  fermentados relacionándolo con una concentración superior de polifenoles en las  muestras no fermentadas.</p>     <p align="justify">Por otro lado, Tzung et al. (3) demostraron la actividad  bactericida del té verde contra Streptococcus sanguinis, S. mutans y S. sobrinus).  De la misma manera, Yoda et al. (10) reportan una mayor susceptibilidad por  parte de bacterias Gram positivas en comparación con Gram negativos al extracto  del té verde.</p>     <p align="justify">En cuanto a la acción del té verde como conservador de  alimentos, Kumudavally et al. (11) evaluaron al extracto de té verde contra S.  aureus, E. coli y Pseudomonas sp en carne fresca, demostrando un efecto  bacteriostático sobre estas cepas, concluyendo que el uso de té verde podría  extender la vida útil de este producto hasta por 4 días sin afectar sus  características físicas, químicas y parámetros organolépticos. De la misma  manera, Chiu et al. (12) reportan que los extractos de té verde tienen un efecto  inhibitorio sobre bacterias Gram positivas asociadas a alimentos, incluyendo L.  monocytogenes, B. cereus y S. aureus.</p>     <p align="justify">Los diversos estudios realizados ponen de manifiesto el hecho  de que el té verde contiene sustancias que le confieren características  antimicrobianas de potencial uso a nivel terapéutico y de preservación de  alimentos, no obstante, muchos resultados son divergentes y no comparables. Por  otro lado, son muchas las formulaciones de té verde existentes en el mercado, de  las cuales hay poca información con respecto a su actividad. Dado lo anterior,  se pretendió con este trabajo determinar el potencial efecto antimicrobiano de  los extractos de diversas marcas de té verde seco y en infusión al 10%,  distribuidas de manera comercial en el área metropolitana de Costa Rica contra  cepas de Escherichia coli, Salmonella enterica, Listeria monocytogenes,  Staphylococcus aureus, Candida albicans y Aspergillus niger y contrastarlo con  el efecto dado el té verde (Camellia sinensis) de origen chino, considerado  estándar de comparación.</p>     <p align="justify"><b>MATERIALES Y MÉTODOS</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>1. Adquisición de las muestras de té verde</b></p>     <p align="justify">Se adquirieron en diferentes supermercados, minisúper y  tiendas de venta natural (Macrobióticas) ubicados en el Área Metropolitana de  San José, Costa Rica. Al azar se seleccionaron 5 lotes de 10 marcas diferentes  de té verde comercial, los cuales fueron transportadas a temperatura ambiente al  Laboratorio de Microbiología de Alimentos, Facultad de Microbiología,  Universidad de Costa Rica para su posterior análisis.</p>     <p align="justify">Las hojas de Camellia sinensis (Estándar de Comparación)  cultivadas fueron adquiridas en la finca “Arcas de las Hierbas” ubicada en Santa  Bárbara de Heredia, Costa Rica (USJ-101844).</p>     <p align="justify"><b>Extracción de las muestras de té verde</b></p>     <p align="justify">Se prepararon extractos ricos en polifenoles del té verde con  extracción en caliente y reflujo utilizando diferentes disolventes para  identificar aquel que extrajera mayor cantidad de polifenoles. Se utilizaron  metanol, acetona y etanol, todos al 50% v/v en agua, de acuerdo la metodología  descrita por Perva Uzunalic (6). Brevemente, se pesaron 10 g de las muestras de  té verde, y se realizó la extracción con 100 ml de cada uno de los solventes. Se  calentó a temperatura de ebullición durante 2 horas. Luego de este tiempo, se  filtraron las muestras y se eliminó el disolvente por rota evaporación. El  material seco fue almacenado en viales estériles.</p>     <p align="justify"><b>Cuantificación de los polifenoles totales presentes en las  muestras de té verde</b></p>     <p align="justify">Los fenoles totales se determinaron mediante el método  espectrofotométrico de Folin-Ciocalteu. Se utilizó el ácido gálico como material  de referencia. Brevemente, se realizó una curva de referencia con ácido gálico,  utilizando concentraciones de 1 &#956;g/mL, 5 &#956;g/mL, 10 &#956;g/mL, 100&#956;g/mL y 150 &#956;g/mL.  La prueba se realizó utilizando un microlector de placas de Biotek Synergy HT, y  una placa de 96 pocillos. A cada pocillo se le agregó 100&#956;L de carbonato de  sodio (Na2 CO3) al 20%, 50 &#956;L de la dilución del extracto y 50 &#956;L de reactivo  Folin-Ciocalteu 0,5 N. Se realizó la lectura a una longitud de onda de 750 nm,  después de un tiempo de incubación de 30 minutos a temperatura ambiente.</p>     <p align="justify">El análisis estadístico del contenido de fenoles totales se  realizó con el programa IBM® SPSS® Statistics v.19 (IBM Company© 2010),  aplicando una Análisis de Varianza (ANDEVA) con valor &#945; = 0.05.</p>     <p align="justify"><b>Preparación de la infusión de las muestras de té verde</b></p>     <p align="justify">Se siguió el método descrito por el fabricante. Brevemente,  se procedió a medir un volumen total de 250 mL de agua destilada en un  Erlenmeyer estéril, el cual fue llevado al punto de ebullición, luego de lo cual  se procedió a agregar una bolsita de la muestra de té verde dejándola en reposo  por un tiempo de 3 minutos. Transcurrido este tiempo se sacó la bolsita de té. A  partir de esta infusión inicial se procedió a preparar diluciones seriadas  decimales hasta 10<sup>-4</sup>.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>Determinación de la capacidad antimicrobiana de las  muestras de té verde</b></p>     <p align="justify">La evaluación de la actividad antimicrobiana del extracto y  las infusiones de té verde se llevó a cabo mediante el método en microplatos  descrito por Breukink (2010) (13).</p>     <p align="justify">Se utilizó una concentración 10 mg/ml del extracto,  concentración escogida con base en el trabajo de Tzung Hsun et al. (3). A partir  de esta concentración se realizaron diluciones seriadas decimales hasta una  dilución de 10-4 utilizando caldo Muller Hilton.</p>     <p align="justify">La evaluación de la capacidad antimicrobiana de las  infusiones de las muestras de té verde, se realizó siguiendo la misma  metodología. A partir de la infusión inicial preparada tal y como se describió  anteriormente, también se prepararon diluciones decimales seriadas hasta 10<sup>-4</sup>  utilizando caldo Müller Hilton.</p>     <p align="justify">El extracto y la infusión del té verde fueron evaluados  contra los siguientes microorganismos: Escherichia coli (ATCC 25922), Salmonella  enteritis (ATCC 13076), Listeria monocytogenes (ATCC 19116), Staphylococcus  aureus(ATCC 25923), Apergillus niger(Micoteca: UCR) y Candida albicans (ATCC  10231). Cada uno procedentes de cultivos de 24 horas y llevados a una turbidez  ajustada al standard de McFarland 0,5.</p>     <p align="justify">El inóculo de C. albicans se preparó a partir de un cultivo  en agar glucosado de Sabouraud de 24 horas de incubación. Se realizó una  suspensión inicial de las levaduras en 5 ml de solución salina estéril y se  procedió a ajustar su densidad celular también con solución salina estéril  contra un estándar de McFarland de 0,5.</p>     <p align="justify">El inóculo estandarizado de A. niger se preparó a partir de  tubos inclinados de agar Sabouraud glucosado, inoculados con el hongo e  incubados por 7 días a 30°C. Para la obtención de las conidias, se procedió a  agregar 1 ml de solución salina estéril (0,85%) al tubo, y las conidias fueron  desprendidas pasando un aplicador estéril sobre la superficie del cultivo. La  suspensión de las esporas fue transferida con una pipeta Pasteur estéril a un  tubo cónico estéril y el volumen se ajustó a 5 ml con solución salina estéril.  Las esporas en suspensión fueron contadas utilizando una Cámara de Neubauer y se  ajustó su concentración al Standard de McFarland 0,5 utilizando solución salina  estéril.</p>     <p align="justify">Para la determinación de la actividad antimicrobiana, se  procedió a agregar en cada pocillo de la placa 100 &#956;L del cultivo bacteriano a  evaluar así como 100 &#956;L de la dilución seriada de la muestra de té verde a  evaluar. Las placas correspondientes a las bacterias y levaduras fueron  incubadas a 35°C por 18-24 h, y las de A. niger por 5 días a temperatura  ambiente. Así mismo, se evaluaron controles positivos de los microorganismos y  controles negativos de los medios y de la muestra.</p>     <p align="justify">La lectura de la prueba se realizó de manera cualitativa,  calificando en cruces el crecimiento y comportamiento de los microorganismos  según se detalla en el <a href="#tab1">Tabla 1</a>.</p>     <p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v63n3/art08tab1.gif" width="547" height="140"></a></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>RESULTADOS</b></p>     <p align="justify">Extracción de las muestras de té verde y su contenido de  fenoles totales.</p>     <p align="justify">El etanol fue el solvente que mostró mayor eficiencia en la  extracción de polifenoles a partir de las muestras de té verde, tal y como se  muestra en el <a href="#tab2">Tabla 2</a>. Utilizando la extracción con etanol  al 50% v/v se cuantificó el contenido de fenoles totales en cada muestra, los  resultados se muestran en la <a href="#fig1">Figura 1</a>.</p>     <p align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v63n3/art08tab2.gif" width="356" height="180"></a></p>     
<p align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v63n3/art08fig1.gif" width="459" height="439"></a></p>     
<p align="justify">El análisis por ANDEVA demostró diferencias significativas en  el contenido de compuestos fenólicos totales entre los diferentes lotes de té  verde comercializados en Costa Rica (p = 0.002).</p>     <p align="justify">El valor de compuestos fenólicos totales en la muestra de té  verde cultivado fue de 26.0 ± 0.2 mgEAG/100g; lo que muestra que el contenido de  fenoles totales en las diferentes marcas es similar o superior al encontrado en  las hojas de Camelia sinensis cultivada.</p>     <p align="justify"><b>Determinación de la capacidad antimicrobiana de las  diferentes muestras de té verde.</b></p>     <p align="justify">Los resultados obtenidos demuestran un efecto inhibitorio  sobre Listeria monocytogenes, en la concentración de 10,5 mg/ml en los extractos  de las diferentes marcas así como en el té control. Este efecto también fue  observado al evaluar la dilución 10-1 de los extractos en el 70% de marcas  analizadas y en el control. No obstante, el efecto de las diferentes muestras de  té verde fue nulo contra Escherichia coli, Salmonella enterica, Staphylococcus  aureus, Candida albicans y Aspergillus niger, tanto en la modalidad de extracto  como de infusión (datos incluyen al té verde puro y al estándar de comparación).</p>     <p align="justify"><b>DISCUSIÓN</b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En los últimos tiempos, se ha limitado el uso de persevantes  sintéticos en alimentos, razón por la cual se ha generado una creciente atención  hacia el uso de antimicrobianos naturales. Entre los antimicrobianos naturales  presentes en plantas más estudiados se encuentran los compuestos polifenólicos  (14).</p>     <p align="justify">Cabe destacar que la mayoría de los estudios relacionados con  la extracción de polifenoles en alimentos se basan en el uso de mezclas de  solventes acuoso-orgánico y pH ácidos, por sus características fisicoquímicas  que permiten un mejor rendimiento y estabilidad de los componentes extraídos  (15). La elección del solvente con mejor capacidad de extracción de compuestos  fenólicos del té verde resulta primordial, ya que diversas condiciones pueden  influir en la eficacia y rendimiento del material extraído, incluyendo la  naturaleza química del solvente, temperatura, pH, relación del disolvente,  método utilizado, entre otros.</p>     <p align="justify">Los resultados del contenido que compuestos fenólicos  totales, concuerdan con los obtenidos por Chan et al., (16), donde se  demostraron diferencias significativas entre diferentes marcas de té verde  obtenidas en supermercados. Dado que el contenido de compuestos fenólicos varía  de acuerdo a la marca de té verde, es importante cuantificar el efecto  antimicrobiano de diferentes marcas comerciales distribuidas en el mercado  costarricense, pon el fin de determinar posibles diferencias en su actividad  biológica.</p>     <p align="justify">Varios estudios, incluyendo los de Perva Uzunalic (6) y Nihal  Turkmen (17), han probado varios solventes y concentraciones de éstos para  determinar el más eficiente en la extracción de compuestos fenólicos. A  diferencia del presente estudio, ambos seleccionan a la acetona, poniendo de  manifiesto la influencia e importancia de las condiciones de extracción  utilizadas en el resultado final.</p>     <p align="justify">En cuanto a la acción antimicrobiana obtenida en el presente  estudio contra los diversos microorganismos analizados, los resultados  demuestran que no hubo efecto contra Escherichia coli, Salmonella enteritis,  Staphylococcus aureus, Candida albicans y Aspergillus niger, no obstante, se  evidenció susceptibilidad aumentada de Listeria monocytogenes ante los  polifenoles extraídos de las tisanas del té verde y del té verde puro (estándar  de comparación). Se mostró un efecto inhibitorio en la concentración de 10.5 mg/ml  y en la dilución 10-1 en 7 de las 10 marcas analizadas; este efecto no fue  observado en las diluciones mayores ni en las infusiones de las diferentes  muestras, por lo que se podría decir que el efecto de los polifenoles es  dependiente de la concentración, tal y como es mencionado por Von Staszewski et  al.(18). Este dato es de gran importancia dada la ubicuidad de este patógeno,  así como su capacidad de sobrevivencia en condiciones adversas. Resultados  similares a los descritos fueron obtenidos por Kim et al, (14) donde todas las  bacterias Gram negativas evaluadas mostraron una resistencia a los extractos de  té, en comparación con las Gram positivas, incluyendo S. aureus y  L.monocytogenes que sí mostraron inhibición parcial.</p>     <p align="justify">Cabe destacar que todas las marcas de té verde evaluadas  mostraron la misma efectividad que el estándar de comparación escogido, lo cual  permite inducir que el componente antimicrobiano presente en el estándar de oro  se conserva en las diferentes tisanas de té analizadas en el estudio.</p>     <p align="justify">Existen varias hipótesis sobre el mecanismo de acción de los  polifenoles contra diferentes microorganismos, y de cómo interfieren en el  crecimiento ejerciendo ya sea un efecto bacteriostático o bactericida. Un  estudio presentado en el año 2007 por Shimamura (19) muestra que la galato de  epigalocatequina (EGCG) se une al peptidoglicano de las bacterias y forma  precipitados, produciendo una interrupción en el proceso de biosíntesis de la  pared bacteriana. Por otro lado, Arakawa (20) sugiere que la formación de  peróxido de hidrogeno por la acción de la EGCG con especies reactivas de oxígeno  en presencia de la superóxido dismutasa (SOD) causa daño a la membrana celular.</p>     <p align="justify">En cuanto a los hongos, algunos estudios mencionan que la  ECGC podría interferir en el metabolismo de los folatos y de esta manera inhibir  la producción del ergosterol, el cual es importante porque es uno de los  componentes esenciales de su pared celular (21).</p>     <p align="justify">Diversos autores describen que la susceptibilidad de las  bacterias patógenas al té verde es divergente, dependiendo de la especie y cepa  bacteriana evaluada (14). Se ha demostrado que la susceptibilidad hacia la ECGC  varía dependiendo de la composición de la pared celular de cada especie. Al  respecto el estudio de Yoda et al. (10), mostró que la ECGC presenta una mayor  facilidad para unirse directamente al peptidoglicano, siendo las bacterias Gram  positivas las más susceptibles debido a la ausencia de una membrana externa. Lo  anterior permite explicar el efecto inhibitorio observado contra L.  monocytogenes en el presente trabajo.</p>     <p align="justify">Los resultados obtenidos en este trabajo demuestran que no  hubo acción inhibitoria contra S. aureus, a pesar de ser una bacteria Gram  positiva. Al respecto, algunos autores han reportado variación en la actividad  inhibitoria de los compuestos fenólicos dependiendo del medio de crecimiento  donde se determine la actividad antimicrobiana del té verde. Se describe que  medios sumamente ricos en nutrientes pueden enmascarar el efecto inhibitiorio de  los polifenoles presentes en té verde, especialmente aquellos dirigidos contra  bacterias Gram negativas y algunas bacterias Gram positivas (22).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La efectividad antioxidante y antimicrobiana de las  infusiones de té puede verse afectadas por diferentes varibles, incluyendo la  temperatura y el tiempo de preparación, lo cual puede influir en la eficiciencia  de extracción de los componentes bioactivos. Hilal y Engelhardt (23) demuestran  que al realizar este procedimiento en bolsitas de té comerciales en un tiempo de  3 o 5 minutos a 100 &#9702;C laa cantidad de compuestos fenólicos extraídos es menor,  a diferencia si este es realizado a 80&#9702;C por 15 minutos en donde la cantidad de  compuestos es mayor. Por otro lado, de Almajano et al, reportan que al realizar  las infusiones a 100 &#9702;C por 5 min, se obtiene un efecto antimicrobiano sobre  determinados microorganismos incluyendo a L. moncocytogenes y S. aereus. Los  resultados de este estudio evidencian que al realizar las infusiones del té  verde de forma tal como lo sugiere el fabricante, no se logró observar la  efectividad de éste, ya que no evidenció efecto alguno por parte de las  infusiones sobre los diferentes microorganismos analizados.</p>     <p align="justify">Todas las evaluaciones realizadas en el presente trabajo  fueron a una concentración de 10,5 mg/ ml. Probablemente, el uso de una  concentración mayor hubiera producido inhibición en otros microorganismos. La  razón de utilizar esta concentración es que se ha demostrado que concentraciones  mayores pueden resultar inaceptables debido a la fuerte astringencia y amargor  que producen (14).</p>     <p align="justify"><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p align="justify">Los resultados obtenidos en el presente estudio evidencian un  grado de inhibición por parte del té verde hacia Listeria monocytogenes, un  patógeno de gran importancia en Microbiología de Alimentos. No obstante, no se  puede dejar de lado el hecho de que las condiciones de crecimiento, recolecta,  almacenamiento y método de manufactura del té verde pueden afectar la cantidad,  la estabilidad y efectividad de los compuestos fenólicos presentes. Dado lo  anterior, aquellos alimentos en que se pretenda utilizar el té verde como  preservante deben de procesarse tratando de conservar las propiedades de éste,  de manera que no se pierda su poder antioxidante, acción antimicrobiana, sabor,  olor y color entre otros.</p>     <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b></p>     <!-- ref --><p align="justify">1. Pornpimon, M. &amp; Sakamon, D. Antimicrobial and antioxidant  activities of Indian goose berry and galangal extracts. Food Sci Technol. 2008;  4: 1153–1159.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=524150&pid=S0004-0622201300030000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">2. Rodríguez, S. &amp; Nereyda, N. Uso de agentes antimicrobianos  naturales en la conservación de frutas y hortalizas. Ra Ximhai. 2011; 7: 153-170.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=524151&pid=S0004-0622201300030000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify">3. Tzung Hsun, T., Tsung Hsien,T., You Chia, C., Chi Wei, L.  &amp; Po Jung TIn vitro antimicrobial activities against cariogenic streptococci and  their antioxidant capacities: A comparative study of green tea versus different  herbs. Food Chem. 2008. 110: 859–864, 859- 864.</p>     <p align="justify">4. Palakawong, C., Sophanodora, P., Pisuchpen, S., &amp;  Phongpaichit, S. Antioxidant and antimicrobial activities of crude extracts from  mangosteen (Garcinia mangostana L.) parts and some essential oils. Int Food Res  J. 2010. 17: 583-589.</p>     <p align="justify">5. Paladino, S. C. Actividad antioxidante de los compuestos  fenólicos contenidos en las semillas de la vid (Vitis vinifera I.).(Tesis de  maestría inédita). Universidades Nacionales de Cuyo, Argentina. 2008.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">6. Perva Uzunalic, A., Mojca , K., Kneza, Z., Weinreich, B.,  Otto, F. &amp; Gruner, S. Extraction of active ingredients from green tea (Camellia  sinensis):Extraction efficiency of major catechins and caffeine. Food Chem.  2006. 96: 597–605.</p>     <p align="justify">7. Bansal, S., Choudhary, S., Sharma, M., Sharad Kumar, S.,  Lohan, S., Bhardwaj, V., Syan, N. &amp; Jyoti, S. Tea: A native source of  antimicrobial agents. Food Res Int. 2013. 1-17.</p>     <p align="justify">8. Bancirova, M. Comparison of the antioxidant capacity and  the antimicrobial activity of black and green tea.Food Res Int. 2010. 43:  1379–1382. </p>     <p align="justify">9. Almajano, MP., Carbó, R., Jiménez, JA. &amp; Gordon, MH.  Antioxidant and antimicrobial activities of tea infusions. Food Chem. 2008. 108:  55–63. </p>     <p align="justify">10. Yoda, Y., Qing Hu, Z., Hua Zhao, W. &amp; Shimamura, T.  Different susceptibilities of Staphylococcus and Gram-negative rods to epigallo  catechingallate. J Infect Chemother. 2004. 10: 55-58.</p>     <p align="justify">11. Kumudavally, K.V., Phanindrakumar, H.S., Tabassum, A.,  Radhakrishna, K. &amp; Bawa, A.S. Green tea – A potential preservative for extending  the shelf life of fresh mutton at ambient temperature (25 ± 2°C). Food Chem.  2008. 107: 426–433</p>     <p align="justify">12. Chiu, P. &amp; Shiuh Lai, L. Antimicrobial activities of  tapioca starch/decolorized hsian-tsao leaf gum coatings containing green tea  extracts in fruit-based salads, romaine hearts and pork slices. International J  Food Microbiol. 2010. 139: 23–30.</p>     <p align="justify">13. Breukink, E. Protocol for Minimun Inhibitory  Concentrations. Institute of Biomembranes, Universiteit Uthecht. 2010.</p>     <p align="justify">14. Kim, S; Ruengwilysup, C &amp; Fung, Y. Antibacterial Effect  of Water-Soluble Tea Extracts on Foodborne Pathogens in Laboratory Medium and in  a Food Model. J Food Prot. 2004.11: 2608-2612.</p>     <p align="justify">15. Arranz Martínez, S. Compuestos polifenólicos (extraíbles  y no extraíbles) en alimentos de la dieta española: metodología para su  determinación e identificación. (Tesis de doctorado inédita). Universidad  Complutense de Madrid, España. 2010.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">16. Chan, E., Soh, EY., Tie, PP. &amp; Law, YP. Antioxidant and  antibacterial properties of green, black, and herbal teas of Camellia sinensis.  Pharmacognosy Res. 2011. 3(4): 266-272.</p>     <p align="justify">17. Turkmen, N., Sari, F. &amp; Velioglu, Y. The effect of  cooking methods on total phenolics and antioxidant activity of selected green  vegetables. Food Chem. 2005. 93 (4): 713-718.</p>     <p align="justify">18. Von Staszewski, M., Pilosof, A. &amp; Jagus, R. (2011).  Antioxidant and antimicrobial performance of different Argentinean green tea  varieties as affected by whey proteins. Food Chem 125,186-192.</p>     <p align="justify">19. Shimamura, T., Zhao, W.-H. &amp; Qing, Z. Mechanism of action  and potential for use of tea catechin as an antiinfective agent. Anti-Infective  Agents in Medicinal Chemistry 2007. 6: 57-62.</p>     <p align="justify">20. Arakawa, H., Maeda, M. &amp; Sachie, O. Role of hydrogen  peroxide in bactericidal action of catechin.Biol Pharmaceut Bull. 2004. 27:  277-281.</p>     <p align="justify">21. Navarro Martínez, M., García, F. &amp; Rodríguez López, J.  Tea polyphenol epigallocatechin-3-gallate inhibits ergosterol synthesis by  disturbing folic acid metabolism in Candida albicans. J Antimic Chemother. 2006.  57: 1083–1092.</p>     <p align="justify">22. Toda, M., Okubo, S., Reiko, H. &amp; Shimamura, T. The  bactericidal activity of tea and coffee. Lett Appl Microbiol. 1989.8: 123-125.</p>     <p align="justify">23. Hilal, Y. &amp; Engelhardt, U. Characterisation of white tea  Comparison to green and black tea. J Consumer Protect Food Safety. 2007. 2: 414  – 421.</p> </font>       ]]></body>
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