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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Características físicas y antioxidantes de semillas y productos de mostaza negra (Brassica nigra) y amarilla (Brassica alba)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Physical and antioxidant characteristics of black (Brassica nigra) and yellow mustard (Brassica alba) seeds and their products]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de las Américas Puebla Departamento de Ingeniería Química, Alimentos y Ambiental ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The composition, some physical properties (density, refraction index, and color), antioxidant capacity (DPPH), and fatty acid profile of seeds of black (Brassica nigra) or yellow mustard (Brassica alba) were evaluated, as well as for their oils and residues from oil extraction. Density of the black and yellow mustard oils were 0.912 ± 0.01 and 0.916 ± 0.01 g/mL, respectively; their refraction indexes were 1.4611 ± 0.01 and 1.4617 ± 0.01, respectively; being not significantly different (p>0.05) between two mustards. Color parameters of the black and yellow mustard oils presented greenish-yellow tones and reddish-yellow tones, respectively; regarding antioxidant activities, these ranged from 25 mg equivalents of Trolox/100 g in the yellow mustard oil to 1,366 mg equivalents of Trolox/100 g in the residues from oil extraction of black seed mustard. The fatty acid profile of the black mustard seed revealed that its predominant fatty acid is oleic (22.96%), followed by linoleic (6.63%) and linolenic (3.22%), whereas for yellow mustard seed the major fatty acid is erucic (6.87%), followed by oleic (5.08%) and linoleic (1.87%) acids.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font FACE="Verdana">     <p align="center"><b>Características físicas y antioxidantes de semillas y  productos de mostaza negra (Brassica nigra) y amarilla (Brassica alba)</b></p> </font>  <font FACE="Verdana" SIZE="2">     <p align="center"><b>Beatriz Mejía-Garibay, José Ángel Guerrero-Beltrán, Enrique  Palou, Aurelio López-Malo</b></p>     <p align="justify">Departamento de Ingeniería Química, Alimentos y Ambiental,  Universidad de las Américas Puebla, México.</p>     <p align="justify"><b>RESUMEN</b>: En este trabajo se evaluaron la composición,  algunas características físicas (densidad, índice de refracción y color),  capacidad antioxidante (DPPH) y perfil de ácidos grasos de semillas de mostaza  negra (Brassica nigra) y amarilla (Brassica alba), sus aceites y residuos de la  extracción del aceite. La densidad de los aceites de mostaza negra y amarilla  fue de 0,912 ± 0,01 y 0,916 ± 0,01 g/mL, respectivamente; y el índice de  refracción fue de 1,4611 ± 0,01 y 1,4617 ± 0,01, respectivamente, no mostrando  diferencias significativas (p&gt;0,05) entre las dos mostazas. Los parámetros de  color del aceite de semilla de mostaza negra y amarilla tienden hacia los tonos  amarillos-verdosos y tonos amarillos-rojizos, respectivamente; respecto a la  actividad antioxidante, se observó una variación desde 25 mg equivalentes de  Trolox/100 g en el aceite de semilla de mostaza amarilla hasta 1,366 mg  equivalentes de Trolox/100 g en la pasta residual de mostaza negra. El perfil de  ácidos grasos de la semillas de mostaza negra muestran que el ácido graso  predominante es el oleico (22,96%), seguido por linoleico (6,63%) y linolénico  (3,22%), mientras que para la semilla de mostaza amarilla es el erúcico (6,87%),  seguido por oleico (5,08%) y linoléico (1,87%).</p>     <p align="justify"><b>Palabras clave</b>: Capacidad antioxidante, DPPH, mostaza  negra (Brassica nigra), mostaza amarilla (Brassica alba).</p>     <p align="center"><b>Physical and antioxidant characteristics of black (Brassica  nigra) and yellow mustard (Brassica alba) seeds and their products.</b></p>     <p align="justify"><b>SUMMARY</b>: The composition, some physical properties (density,  refraction index, and color), antioxidant capacity (DPPH), and fatty acid  profile of seeds of black (Brassica nigra) or yellow mustard (Brassica alba)  were evaluated, as well as for their oils and residues from oil extraction.  Density of the black and yellow mustard oils were 0.912 ± 0.01 and 0.916 ± 0.01  g/mL, respectively; their refraction indexes were 1.4611 ± 0.01 and 1.4617 ±  0.01, respectively; being not significantly different (p&gt;0.05) between two  mustards. Color parameters of the black and yellow mustard oils presented  greenish-yellow tones and reddish-yellow tones, respectively; regarding  antioxidant activities, these ranged from 25 mg equivalents of Trolox/100 g in  the yellow mustard oil to 1,366 mg equivalents of Trolox/100 g in the residues  from oil extraction of black seed mustard. The fatty acid profile of the black  mustard seed revealed that its predominant fatty acid is oleic (22.96%),  followed by linoleic (6.63%) and linolenic (3.22%), whereas for yellow mustard  seed the major fatty acid is erucic (6.87%), followed by oleic (5.08%) and  linoleic (1.87%) acids.</p>     <p align="justify"><b>Key words</b>: Antioxidant capacity, DPPH, black mustard (Brassica  nigra), yellow mustard (Brassica alba).</p>     <p align="justify">Recibido: 19-11-2014 Aceptado: 13-03-2015</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>INTRODUCCIÓN</b></p>     <p align="justify">Existen numerosos reportes relacionados a la actividad  antioxidante de fracciones de plantas y especias (1). Los antioxidantes  sintéticos están siendo restringidos debido a posibles efectos negativos  relacionados con la salud (2). Por otra parte, una gran variedad de especias han  sido reconocidas por tener propiedades medicinales y poseer efectos benéficos  para la salud, tales como actividad antioxidante, estimulación digestiva,  actividad antimicrobiana, efecto hipolipidémico, actividad anti-mutagénica y  potencial anti-carcinogénico, entre otros (3, 4).</p>     <p align="justify">La mostaza (Brassica spp.) es una de las especias que desde  la antigüedad ha sido usada como fuente de aceite comestible e ingrediente en  infinidad de alimentos; además en la medicina tradicional, como antídoto contra  picaduras de escorpión y mordidas de víboras. Esta especia ocupa el tercer lugar  como el condimento más importante después de la sal y la pimienta. Las mostazas  son miembros de las familias Cruciferaceae o Brassicaceae. El género Brassica  consiste de 150 especies de plantas anuales o bienales, algunas de las cuales  son cultivadas para obtener aceite o ser usadas como forraje. Las tres especies  de mostaza más cultivadas son las llamadas, negra (Brassica nigra), blanca o  amarilla (Brassica alba) y parda (Brassica juncea). La diferencia entre estos  tipos de mostazas son los compuestos químicos denominados glucosinolatos; la  semilla de mostaza amarilla contiene “sinalbina” y las semillas de mostaza parda  y negra contienen “sinigrina”. Estos glucosinolatos son compuestos que se  encuentran en forma natural en las plantas de la familia Brassicaceae, y son  parte de su mecanismo de defensa frente a insectos, los glucosinolatos pueden  presentarse junto con la enzima que los puede hidrolizar, y son los responsables  de los olores y sabores característicos tanto de la semilla como de los  productos de mostaza (5). La toxicidad de los glucosinolatos, en dosis elevadas,  es atribuida a la actividad de sus derivados hidrolizados: los isotiocianatos,  tiocianatos, oxazolidinonas y los nitrilos (6).</p>     <p align="justify">Los extractos obtenidos de semillas del género Brassicaceae  tienen potente actividad antioxidante; esta se debe a los compuestos fenólicos  presentes (7). Las harinas obtenidas de semillas de mostaza contienen compuestos  fenólicos bioactivos en forma de ácido sinápico y sus derivados; estos  compuestos han demostrado fuerte actividad antioxidante en comparación con otros  antioxidantes naturales (8). Los compuestos bioactivos son componentes  minoritarios de los alimentos, considerados no nutrientes, parcialmente  biodisponibles en el organismo y que han demostrado tener diversos efectos  positivos en la salud del consumidor. Los polifenoles y carotenoides ejercen su  principal acción biológica a través de mecanismos de anti-oxidación y secuestro  de radicales libres (9).</p>     <p align="justify">Existen diversos estudios relacionados con la composición  química y biosíntesis de algunos compuestos (10, 11) en semillas de mostaza; sin  embargo, existen pocos estudios relacionados con las características físicas y  actividad antioxidante de estas semillas (7, 12) así como de sus productos. El  propósito de este estudio fue evaluar la composición, algunas características  físicas, capacidad antioxidante y perfil de ácidos grasos de semillas de mostaza  negra y amarilla, sus aceites y residuos de la extracción de dichos aceites.</p>     <p align="justify"><b>MATERIALES Y MÉTODOS</b></p>     <p align="justify">Las semillas de mostaza negra (Brassica nigra) y amarilla (Brassica  alba) se adquirieron en tiendas de materias primas de la Ciudad de Puebla  (México). Los ácidos 2,2´-Difenil-1-picrilhidracilo (DPPH), 6-hidroxi-2,5,7,8-tetrametilcroman-2carboxílico  (Trolox), pirogálico y tridecanoico, la solución de amiloglucosidasa, la  solución de &#945;-amilasa estable y proteasa fueron adquiridos de Sigma Chemical Co.  (St. Louis, MO, EE.UU.). El metanol, ácido clorhídrico, éter etílico, sulfato de  sodio, trifluoruro de boro (grado analítico), ácido nítrico, etanol, acetona,  fosfato dibásico de sodio anhidro, fosfato monobásico monohidratado de sodio,  hidróxido de sodio y ácido sulfúrico fueron adquiridos de J.T. Baker Chemical  Co. (Philipsburg, NJ, EE.UU.).</p>     <p align="justify">Extracción de aceite: Se empleó un extractor tipo prensa para  extracción de aceites marca Samson GB- 9001 (Seúl, Corea del Sur) para obtener  en frío el aceite a partir de semillas de mostaza amarilla y negra, el aceite  extraído se filtró para eliminar los residuos. El aceite y la pasta residual  después de la extracción del aceite se almacenaron en refrigeración (4ºC) hasta  su análisis (no más de 1 día).</p>     <p align="justify">Densidad, índice de refracción y color de los aceites: La  densidad de los aceites se determinó mediante el uso de un picnómetro de vidrio.  Éste se llenó con el aceite y se colocó en un baño con agua destilada a 25°C  durante 15 min. La densidad se calculó mediante la relación masa/volumen. El  índice de refracción de los aceites de mostaza se determinó con un refractómetro  digital Reichert AR200 (Depew, NY, EE.UU.) a 25ºC de acuerdo a la metodología  propuesta por la AOAC (13). El color de los aceites se midió transfiriendo 15 mL  a una celda de cuarzo usando un colorímetro Color Gard System 05 (BYK Gardner,  Reston, EE.UU.). Se determinaron los parámetros L*, a*, b* en modo de  transmitancia.</p>     <p align="justify">Análisis proximal: El análisis proximal se realizó en las  semillas y pastas residuales (después de la extracción del aceite) de mostaza.  Las determinaciones de humedad, grasa (extracto etéreo), proteína, contenido de  cenizas y contenido de fibra dietética se ejecutaron de acuerdo a las  metodologías reportadas en la AOAC (13). Todas las determinaciones se realizaron  por triplicado. Los carbohidratos totales se calcularon por diferencia.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Capacidad antioxidante: La capacidad antioxidante se  determinó en extractos obtenidos según lo reportado (14, 15) y de acuerdo al  método descrito por Sreeramulu y Raghunath (12) y por Yu et al. (16). Se  obtuvieron extractos de acuerdo a la metodología reportada por Sing et al. (14)  con ligeras modificaciones. La extracción de los compuestos con capacidad  antioxidante se realizó con diferentes cantidades de muestra dependiendo de su  naturaleza (aceite, pasta residual de la extracción de aceite o semilla entera).  Se emplearon 15 mL de aceites de mostaza negra y amarilla, y 500 mg de semilla  entera (molida) o pasta residual de la obtención del aceite. Las diferentes  cantidades de muestra se mezclaron con 20 mL de metanol al 70% acidificado con  HCl al 0,1% y se agitaron durante 4 h a temperatura ambiente (13).  Posteriormente, las muestras se centrifugaron a 10.000 rpm durante 15 min a 10ºC;  el sobrenadante se separó y se filtró a través de papel filtro Whatman No.1.</p>     <p align="justify">La actividad de atrapamiento del radical DPPH se basa en la  habilidad del antioxidante para atrapar cationes del radical DPPH (16). Se  tomaron 100 &#956;L de cada uno de los extractos y se colocaron en tubos de ensayo,  se añadieron 2,9 mL de DPPH (0,1 mM), se mezclaron vigorosamente usando un  vortex y se midió la absorbancia inicial (ABS inicial) a 517 nm usando un  espectofotómetro UV-visible marca UNICO® 2800H (Dayton, NJ, EE.UU.). A la mezcla  se le dejó reaccionar en oscuridad por 30 min (tiempo seleccionado en base a  pruebas previas, y que corresponde al tiempo suficiente para el desarrollo de la  reacción) a temperatura ambiente y se midió la absorbancia final (ABS final) a  517 nm. Con los datos anteriores se calculó el % de inhibición aplicando la <a href="#ec1">Ecuación 1</a>.</p>     <p align="center"><a name="ec1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v65n2/art08ec1.gif" width="316" height="124"></a></p>     
<p align="justify">A partir del porcentaje de inhibición y la ecuación de la  curva estándar del antioxidante de referencia se calculó la concentración del  antioxidante (expresado en equivalentes de Trolox) en la muestra. Para la  preparación de la curva estándar, en tubos de ensayo se colocaron desde 0 hasta  100 &#956;L de Trolox de concentración 25 mg/100 mL, el volumen correspondiente de  metanol al 70% acidificado con HCl al 0,1% para hacer un volumen de 100 &#956;L, se  mezclaron perfectamente y posteriormente se siguió el mismo procedimiento que  para los extractos. Una vez obtenidas las absorbancias, se calculó el porcentaje  de inhibición de acuerdo a la <a href="#ec1">Ecuación 1</a> y se graficaron los  promedios de cada solución estándar en función de la concentración (&#956;g) de  Trolox presente. Al graficar los datos anteriores, se obtuvo por regresión  lineal la ecuación de la curva estándar para obtener la concentración de Trolox  presente en las muestras analizadas.</p>     <p align="justify">Perfil de ácidos grasos en semillas de mostaza y aceites de  mostaza: El análisis de composición de ácidos grasos fue realizado de acuerdo al  método 996.06 de la AOAC (13). Los ácidos grasos fueron transformados en  metil-ésteres añadiendo 2 mL de éter etílico a 100 mg de la grasa extraída de  las semillas o aceite y evaporando a sequedad en un baño María a 40°C.  Posteriormente se enfrío la mezcla y se añadieron 2 mL de trifluoruro de boro  (7% BF3) y 1 mL de tolueno incubando a 100°C por 45 min. La solución fue  enfriada y mezclada con 1 mL de n-hexano, 1 mL de agua destilada y 1 g de  sulfato de sodio, esta mezcla se agitó por 1 min y se formaron dos capas; se  tomaron de la capa superior los metilésteres y fueron transferidos a un vial de  2 mL y almacenados a 4°C para su posterior análisis por cromatografía. La  composición de ácidos grasos se determinó por cromatografía de gases con un  equipo Agilent Technologies 6890 Series GC System (Palo Alto, CA, EE.UU.)  acoplado a un detector de ionización de flama y una columna capilar SUPELCO  SP2560 de 32mm de D.I. x 0.25&#956;m de df (Bellefonte, PA, EE.UU.). La temperatura  inicial del horno fue 50°C (2 min) y se incrementó hasta 250°C (10 min) a  12°C/min. La temperatura del detector fue 300°C. El gas de arrastre fue helio de  alta pureza (99,999%), usado a un flujo de 40 mL/s y el gas auxiliar fue  nitrógeno a un flujo de 30 ml/min. El inyector Split (10:1) se mantuvo a 250°C y  el volumen de inyección fue de 1,0 &#956;L. La identificación de los metilésteres de  ácidos grasos se realizó por comparación directa de sus tiempos de retención con  el patrón FAME (Fatty Acid Methyl Ester Mix SUPELCO Cat. N°18918-1 AMP).</p>     <p align="justify">Análisis estadístico: Los resultados se expresan en términos  de la media y la desviación estándar de al menos 3 determinaciones  independientes. Los resultados fueron analizados mediante análisis de varianza  (&#945; = 0,05) utilizando el programa Minitab 16 (Minitab, Inc. PA, EE.UU.).</p>     <p align="justify"><b>RESULTADOS</b></p>     <p align="justify">En la <a href="#tab1">Tabla 1</a> se muestran los resultados  obtenidos de la composición proximal de las semillas de mostaza negra y  amarilla, así como para las pastas residuales, resultantes de la extracción de  aceite. Las semillas de mostaza analizadas se caracterizan por su bajo contenido  de humedad (6,62% y 7,31% para semilla de mostaza negra y amarilla,  respectivamente), elevado contenido de grasa, 33,62% y 22,26% para mostaza negra  y amarilla, respectivamente; así como un aporte proteínico importante Los  contenidos de proteína fueron de 26,88% y 27,32% para las pastas de semillas de  mostaza negra y amarilla, respectivamente, mientras que el contenido de cenizas  fue mayor en la pasta de mostaza amarilla que en la pasta de mostaza negra. Otro  de los componentes mayoritarios fue la fibra dietética, esta se encontró en  mayor porcentaje en la pasta de semilla de mostaza negra en comparación con la  encontrada en la pasta de semilla de mostaza amarilla.</p>     <p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v65n2/art08tab1.gif" width="540" height="300"></a></p>     
<p align="justify">Para analizar las características físicas de los aceites, fue  necesario obtener las muestras de aceite a partir del prensado mecánico de las  semillas de mostaza negra y mostaza amarilla. Para el caso de la semilla de  mostaza negra se obtuvo un rendimiento del 30,6% de aceite y para la mostaza  amarilla del 41,2%. En la <a href="#tab2">Tabla 2</a> se muestran los resultados  obtenidos para densidad, color e índice de refracción de los aceites de las  semillas de mostaza estudiadas. Los valores encontrados son similares para los  aceites de ambas semillas. Con respecto al color, L* designa la luminosidad (0  negro; 100 blanco), a* la contribución de color rojo (+) o verde (-) y b* color  amarillo (+) o azul (-). De acuerdo a los resultados obtenidos, el aceite de  semilla de mostaza negra tiende hacia colores amarillos-verdosos y el aceite de  mostaza amarilla tiende hacia colores amarillos-rojizos. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v65n2/art08tab2.gif" width="567" height="159"></a></p>     
<p align="justify">En la <a href="#tab3">Tabla 3</a> se muestran los resultados  obtenidos respecto a la capacidad antioxidante de las semillas y de los  diferentes productos derivados de las mostazas estudiadas. Las semillas de  mostaza contienen cantidades importantes de compuestos extraíbles en comparación  con los aceites y por lo tanto mayor actividad antioxidante. La actividad  antioxidante varía de 25,88 mg Trolox/100 g en el aceite de semilla de mostaza  amarilla, hasta 1366,88 mg Trolox/100 g en la pasta residual de la semilla de  mostaza negra.</p>     <p align="center"><a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v65n2/art08tab3.gif" width="492" height="229"></a></p>     
<p align="justify">La concentración de ácidos grasos en semillas y aceites de  mostazas negra y amarilla se muestran en la <a href="#tab4">Tabla 4</a>. Para la  semilla de mostaza negra el ácido graso predominante es el oleico (32,93%)  seguido por el linoleico (6,84%) y linolénico (3,43%). La cantidad total de  ácidos grasos mono-insaturados es mayor en el aceite de mostaza amarilla en  comparación con los determinados en el aceite de mostaza negra, este mismo  comportamiento se observa para el caso de los ácidos grasos poliinsaturados. El  perfil de ácidos grasos muestra valores importantes, en el caso de la mostaza  amarilla, para los ácidos erúcico (40,80%), linolénico (21,64%), oleico (19,62%)  y linoleico (8,43%) y en el caso de la mostaza negra el ácido predominante es el  oleico (53,34%), seguido por linoleico (19,02%) y linolénico (10,83%). Estos  porcentajes son importantes debido a que la calidad y digestibilidad de los  aceites vegetales comestibles son determinadas por la cantidad y composición de  ácidos grasos insaturados. De acuerdo a los resultados obtenidos (<a href="#tab4">Tabla  4</a>), los perfiles de ácidos grasos son diferentes para las semillas y los  aceites de mostaza. En el caso del aceite de mostaza negra, éste contiene mayor  cantidad de ácido linolénico (10,83%) y linoleico (19,02%) en comparación con la  cantidad de ácido linolénico (3,43%) y linoleico (6,84%) presente en la semilla  de la misma especie, este mismo comportamiento se observa para el aceite de  mostaza amarilla en comparación con la semilla.</p>     <p align="center"><a name="tab4"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v65n2/art08tab4.gif" width="494" height="362"></a></p>     
<p align="justify"><b>DISCUSIÓN</b></p>     <p align="justify">Los resultados obtenidos en el análisis proximal muestran que  el aporte proteínico observado para las semillas de mostaza amarilla (25,3%) y  negra (20,4%) es elevado, en comparación con otras semillas tales como chía  (19,9%), linaza (19,9%), amaranto (12- 19%), maíz (9,4-14,2%) y trigo (14-17%)  (17). Por otra parte, la base de datos de la USDA (15) reporta valores de  proteína, carbohidratos y humedad para mostazas similares a los observados en el  presente estudio. Cabe mencionar que en la literatura se encuentran diversos  estudios que han determinado la composición nutricional de la mostaza sin  diferenciar entre las variedades amarilla o negra (15, 17). Es importante  resaltar que las pastas residuales después de la extracción de aceite de las  semillas de mostaza negra y amarilla presentaron mayor contenido de proteínas  (26,88% y 27,32% respectivamente), y fibra dietética (21,13% y 17,85%  respectivamente). En el caso de la fibra dietética, la concentración obtenida es  mayor que la encontrada en las semillas enteras y a las reportados en harina de  maíz (7,7-12,0 % b.s.), harina de arroz (2,4 % b.s), avena (15,4% b.s), harina  de trigo (15,6 % b.s.), y harina de sorgo (6,6% b.s), entre otros (18, 19). Es  importante mencionar que la fibra dietética juega un importante rol en la salud  intestinal y se ha asociado con la disminución de enfermedades del corazón,  hipertensión, diabetes y obesidad (20), por otro lado se ha reportado que una  parte de los compuestos bioactivos presentes en las muestras vegetales, ya sean  antioxidantes o no, están asociados a los componentes de la fibra dietética,  como consecuencia de la habilidad de formar complejos con proteínas y  polisacáridos (20-22).Los valores de grasa y humedad de dichas pastas residuales  son menores en comparación con los obtenidos para las semillas, este  comportamiento era previsible debido al proceso de prensado realizado por el  cual se obtuvieron las pastas y el aceite. El rendimiento de aceite obtenido es  comparable con los datos reportados (23) cuyos valores oscilan entre 24-40% de  rendimiento en aceite. Puede observarse (<a href="#tab2">Tabla 2</a>) que los  aceites obtenidos por prensado presentaron valores similares en sus propiedades  físicas a los reportados por el Codex Alimentarius (24) para aceites vegetales.  Esta norma establece valores para la densidad relativa en un rango de 0,910 a  0,921 g/mL a 20°C y para índice de refracción de 1,461 a 1,469.</p>     <p align="justify">Respecto a la capacidad antioxidante observada para las  semillas de mostaza negra (1.323,22 mg Trolox/100 g) y amarilla (1.273,57 mg  Trolox/100 g), ésta fue mayor al compararla con los valores reportados (12) para  girasol (850,12 mg Trolox/100 g), cártamo (228,33 mg Trolox/100 g), linaza  (135,32 mg Trolox/100 g) y ajonjolí (154,14 mg Trolox/100 g). La capacidad  antioxidante para semilla de mostaza negra determinada en este estudio (1.323,22  mg Trolox/100 g) es similar al reportado (1.155 mg Trolox /100 g) por Sreeramulu  y Raghunath (12).</p>     <p align="justify">Los valores obtenidos para los aceites de mostaza negra  (32,27 mg Trolox/100 g) y amarilla (25,88 mg Trolox/100 g) son mayores que los  reportados (12) para aceites de cacahuate (22,1 mg Trolox/100 g), girasol (12,4  mg Trolox/ 100 g) y palma (12,1 mg Trolox/ 100 g). A partir de los resultados  obtenidos en este estudio, el orden en el que se observa una mayor capacidad  antioxidante de los productos de la mostaza es: pasta residual, semilla y  aceite. Estos resultados coinciden con lo reportado por Arranz y colaboradores  (25), quienes mencionan que la parte desgrasada de la semilla de mostaza  (residuo) presenta mayor capacidad antioxidante. Es importante mencionar que los  componentes de la semilla de mostaza negra (Brassica nigra) muestran mayor  capacidad antioxidante en comparación con los de la mostaza amarilla (Brassica  alba). Estas variaciones son similares a las reportadas para otras semillas;  como es el caso del ajonjolí, en el que se menciona que la semilla de ajonjolí  negra es ampliamente usada en países asiáticos, debido a su potente actividad  antioxidante en comparación con la semilla de ajonjolí blanco (26).</p>     <p align="justify">Al analizar la composición de ácidos grasos de la semilla de  mostaza amarilla, el ácido graso predominante es el oleico (7,37%), seguido por  erúcico (6,87%) y linoleico (1,87%). El ácido oleico se encuentra en la mayoría  de las grasas y aceites naturales, en el caso de la semilla de mostaza negra se  encuentra en mayor proporción en comparación con los aceites de semillas de  linaza y chía (15,76 y 8,91%, respectivamente) (27). Así mismo este valor de  ácido oleico en mostaza negra se encuentra en proporciones semejantes a los  valores reportados (28). La cantidad de grasa mono-insaturada se encuentran en  mayor proporción en ambas semillas en comparación con las grasas saturadas y  poli-insaturadas, predominando, en la mostaza negra las grasas mono-insaturadas  (20.57%). El ácido erúcico es característico de las crucíferas (29). Los ácidos  linoleico y linolénico son esenciales para el ser humano, a partir de estos  ácidos grasos son sintetizados los ácidos araquidónico, eicosapentanoico y  docosahexaenoico, los cuáles desempeñan un papel esencial en las interacciones  fisiológicas de coordinación entre las células. Las principales fuentes de ácido  linolénico incluyen a nueces, semillas y aceites vegetales. Las almendras, chía,  nueces y linaza, aportan 0,4, 3,9, 6,8 y 22,8 g/100 g de ácido linolénico,  respectivamente; comparando estos porcentajes con los resultados obtenidos para  las semillas de mostaza negra (3,43%) y amarilla (2,41%) se puede considerar a  la mostaza como una fuente importante de este ácido graso.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Cabe destacar que, en general los aceites de semillas  vegetales aportan contenidos importantes de ácido linoleico; sin embargo, son  pocos los que aportan ácido linolénico; como es el caso de canola, soya, colza y  nuez que aportan 12, 7, 11 y 10 g/100 g de aceite, respectivamente (27). La  presencia de ácido linoleico es fundamental, su importancia radica  fundamentalmente es que es un precursor de ácidos grados de mayor longitud de  cadena (30) entre ellos, el araquidónico, lo que lo caracteriza como un ácido  esencial para el metabolismo y su importancia radica en que estos contienen  ingredientes nutracéuticos esenciales para el crecimiento y el buen estado de la  piel y el pelo así como el ácido linoleico participa en la síntesis de  prostaglandinas, en la generación de membrana, y en otros procesos biológicos  relacionados con la regeneración celular (30).</p>     <p align="justify">La cantidad del ácido linolénico presente en los aceites de  mostaza amarilla (21,64%) y negra (10,83%) es alta en comparación con los  aceites comunes tales como girasol (0,3%), maíz (2%), soya (4,5-11%) y palma  (0,2%) (17). Cabe destacar que en el aceite de mostaza amarilla se observa la  mayor concentración de ácido linolénico (21,64%). Estos datos muestran que a  partir del aceite se obtendrían los beneficios de los ácidos grasos  poli-insaturados (linolénico y linoleico).</p>     <p align="justify"><b>CONCLUSIONES</b></p>     <p align="justify">Este estudio reveló que las propiedades físicas (densidad,  color e índice de refracción) son diferentes para las dos especies de semilla de  mostaza (negra y amarilla). Estas semillas, además de ser una fuente potencial  de antioxidantes muestran que de acuerdo a su composición químico proximal se  caracterizan por un alto contenido de grasa (23,9 a 29,6 g /100 g) y proteína  (20,44 a 25,39 g/100g), el contenido de ácido erúcico se encuentra en mayor  porcentaje en la mostaza amarilla. Existen diferencias en el contenido de  antioxidantes de los diferentes productos de los dos tipos de mostaza  estudiadas, tanto en las semillas (1.273,57 a 1.323,22 mg de Trolox /100 g) como  en los residuos (1.130,24 a 1.366,88 mg de Trolox /100 g) y aceites (25,88 a  32,27 mg de Trolox /100 g). Este estudio proporciona información sobre la  importante actividad antioxidante que exhibe esta especia, tanto como semilla o  como pasta residual libre de aceite, así como el contenido detallado de los  ácidos grasos contenidos en el aceite y las semillas, lo que permitirá a la  industria alimentaria examinar otros usos potenciales basados en las propiedades  que presentan estas semillas o sus productos.</p>     <p align="justify"><b>AGRADECIMIENTOS</b></p>     <p align="justify">Los autores agradecen al Consejo Nacional de Ciencia y  Tecnología (CONACyT) de México por el apoyo financiero para el proyecto. B.  Mejía-Garibay agradece el apoyo para la realización de sus estudios de doctorado  al CONACyT y a la Universidad de las Américas Puebla, México.</p>     <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b></p>     <!-- ref --><p align="justify">1. Kappor IPS, Singh, B., De Lampazona, M. &amp; Catalan.  Chemistry and in vitro antioxidant activity of volatile oil and oleoresins of  black pepper (Piper nigrum). J Agric Food Chem. 2009; 57: 5358-5364.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=530019&pid=S0004-0622201500020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify">2. Ito, N., Fukushima, S., Hasegawa, A., Shibata, M. &amp; Ogiso,  T. Carcinogenicity of butylated hidroxy anisole in F344 rats. J Natl Cancer  Inst.1983; 70: 343-347.</p>     <p align="justify">3. Srinivasan, K. Role of spices beyond food flavoring:  Nutraceuticals with multiple health effects. Food Rev Int. 2005; 21: 167-188.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">4. Pizzale, L., Bortolomeazzi, R., Vichi, S., Uberegger, E. &amp;  Conte, L.S. Antioxidant activiy of sage (Salvia officinalis and S. fruticosa)  and oregano (Origanum onites and O. indercedens) extracts related to their  phenolic compounds content. J Sci Food Agric. 2002; 82:1645-1651.</p>     <p align="justify">5. Thomas, K., Kuruvilla, M. &amp; Hrideek, T.K. Mustard.  Handbook of Herbs and Spices. CRC Press. Boca Raton. Fla. EE.UU. 2004; 360-373.</p>     <p align="justify">6. Traka, M. &amp; Mithen, R. Glucosinolates, isothiocyanates and  human health. Phytochemistry Reviews, 2009; 8(1): 269-282.</p>     <p align="justify">7. Kozlowska, H., Rotkiewicz, D. &amp; Zadernowski, R. Phenolics  acids in rapeseed and mustard. J Am Oil Chem Soc. 1983; 60(6): 1119-1123.</p>     <p align="justify">8. Rice-Evans, C.A., Miller, N.J. &amp; Paganga, G. Structure  antioxidant activity relationships of flavonoids and phenolic acids. Free Radic  Biol Med. 1996; 20(7): 933-956.</p>     <p align="justify">9. Goñi, I., Díaz Rubio, ME., Perez-Jimenez, J.,  &amp; Saura-Calixto, F. Towards an updated methodology for measurement of dietary  fiber including associated polyphenols in food and beverages. Food Res Int.  2009; 42:840-846.</p>     <p align="justify">10. Kelly, P.J., Bones, AM. &amp; Rossiter, J.T. Subcellular  inmunolocalization of the glucosinate sinigrin in seeding of Brassica juncea.  Planta. 1998; 206: 370- 337.</p>     <p align="justify">11. Shahidi, F. &amp; Gabon, J.E. 1990. Fate of  sinigrin in metanol/ammonia/water-hexane extraction of B. juncea mustard seed. J  Food Sci. 1990; 55: 793-795.</p>     <p align="justify">12. Sreeramulu, D. &amp; Raghunath, M. Antioxidant and  phenolic content of nuts, oil seeds, milk and milk products commonly consumed in  India. Food Nut Sci. 2011; 2: 422-427.</p>     <p align="justify">13. AOAC. Official methods of analysis of  the Association of Official Agricultural Chemists, Quinceava (Ed.), AOAC  International: Fat (total, saturated, unsaturated) in food. Gaithersburg.  Maryland. EE.UU. 2001.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">14. Sing, R.P., Chidambara, Murthy, K.N. &amp; Jayaprakash,  G.K. Studies on the antioxidant activity of pomegranate peel and seed extracts  using in vitro models. J Agric Food Chem. 2002; 50: 81-86.</p>     <p align="justify">15. Matthaus, B.  Antioxidant activity of extracts obtained from residues of different oil seeds.  J Agric Food Chem. 2002; 50: 3444-3452.</p>     <p align="justify">16. Yu, L.L., Haley, S., Perret, J.,  Harris, M., Wilson, J. &amp; Qian, M. Free radical scavenging properties of wheat  extracts. J Agric Food Chem. 50(6): 2002; 1619-1624.</p>     <p align="justify">17. USDA-Database en  <a href="http://ndb.nal.usda.gov">http://ndb.nal.usda.gov</a>. Accesada en Marzo 2014.</p>     <p align="justify">18. Saura-Calixto, F. &amp; Goñi,  I. Fibra dietética y antioxidantes en la dieta española y en alimentos  funcionales. En: Alimentos funcionales. Fundación Española para la Ciencia y la  Tecnología. Madrid, España. 2005; 167-200.</p>     <p align="justify">19. Bressani, R., Turcios, J.C.,  Reyes, L. &amp; Mérida, R. Caracterización física y química de harinas industriales  nixtamalizadas de maíz de consumo humano en América Central. Arch Latinoam Nutr,  2001; 51(3): 309-313.</p>     <p align="justify">20. Willem van der Kamp, J., Jones, J., MacCleary, B., &amp;  Topping, D. Dietary Fibre: New Frontiers for Food and Health. Academics  Publishers: Wageningen, The Netherlands, 2010; 1-586.</p>     <p align="justify">21. Saura-Calixto, F.,  Serrano, J., &amp; Goñi, I. Intake and bioaccessibility of total polyphenols in a  whole diet. Food Chem. 2007; 101: 492-501.</p>     <p align="justify">22. Vitaglione, P., Napolitano, A., &amp;  Fogliano, V. Cereal dietary fiber: a natural functional ingredient to deliver  phenolic compounds into the gut. Trends Food Sci Technol. 2008; 19:451-463.</p>     <p align="justify">23. Luthy, B. &amp; Matile, P. The mustard oil: Rectified analysis of subcellular  organization of the myrosinase system. Biochem Physiol Pflanz. 1984; 179:5-12.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">24. Codex Alimentarius Comision (CAC). Norma del codex para aceites vegetales  especificados. Food and Agriculture Organization. Italia. Roma. 2008; 1-17.</p>     <p align="justify">25.  Arranz, S., Saura, F., Shaha, S. &amp; Kroon P.A. High contents of nonextractable  polyphenols in fruit suggest that polyphenol contents of plant foods have been  underestimated. J Agric Food Chem. 2009; 57(16): 7298-7303.</p>     <p align="justify">26. Shahidi, F. &amp;  Liyana-Pathirana, C.M. Antioxidant activity of sesame fractions. Phenolic  Compounds in Foods and Natural Health Products. ACS Symp Ser Am Chem Soc 909.  Washington. EE. UU. 2005; 33&#8722;45.</p>     <p align="justify">27. Jimenez, P., Masson, L., Barriga, A.,  Chavez, J., Robert, P. Oxidative stability of oils containing olive leaf  extracts obtained by pressure, supercritical and solvent-extraction. Eur J Lipid  Sci Technol. 2002; 113:497-505.</p>     <p align="justify">28. López-Argüello, E., Barrera, C. &amp;  Bosch-Bosch, N. Analytical study of the composition of fatty acid of mustard and  mustard sauces. Grasas Aceites. 1999; 50(6): 444-447.</p>     <p align="justify">29. FAO. Utilización de  alimentos tropicales: semillas oleaginosas tropicales, Organización de las  Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación. Italia. Roma.1991.</p>     <p align="justify">30. Ronayne de Ferrer, P. Importancia de los ácidos grasos poliinsaturados en la  alimentación del lactante. Arch Argent Pediatr. 2000; 98: 231-238.</p> </font>       ]]></body>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="">
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