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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antimicrobial effect of ethanol extract of leaf neem (Azadirachta indica A. Juss) on Listeria monocytogenes]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad de Carabobo Instituto de Investigaciones en Nutrición (INVESNUT) Facultad de Ciencias y Tecnología (FACYT)]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Antimicrobial effect of ethanol extract of leaf neem (Azadirachta indica A. Juss) on Listeria monocytogenes. Listeria monocytogenes is a pathogen causing foodborne illness. In seeking to control its spread using natural substances in order to show if the leaf ethanol extract of neem (Azadirachta indica A. Juss) has antimicrobial effect on L. monocytogenes ICTA-12446, was proposed. The extract was obtained from neem leaves, which was subjected to drying for 8 days. It was reduced in size mechanically, and subjected to cold soak for 3 days, using 96% ethanol in amber vessels, filtered and concentrated in rot evaporator. Concentrated was solubilized with dimethylsulfoxide (DMSO) and standarized to achieve a concentration of 60 mg/mL Listeria monocytogenes was inoculated in nutrient broth with extract solutions at different concentrations (20, 30, 40, 50 and 60mg/mL), four contact times (2.5, 5, 10 and 15 minutes) were used. Completed each time it was diluted and inoculated on nutrient agar by extension for 24h at 37ºC. The count of Colony Forming Units UFC was taking. Comparing the concentrations of the extract between 20 and 60mg /mL significant difference was appreciate, while 30, 40 and 50 mg/mL show a similar behavior. Contrasting contact times observed between time 2.5 min and the remaining p = 0.03. The minimum time where there was some kind of inhibition was 2.5 minutes, and minima inhibitory concentration of 20mg/mL. The four contact times yield microbial inhibition percentages of 100% by using 60mg/L. It is concluded that ethanol extract of neem leaf has an inhibitory effect on L. monocytogenes.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Antimicrobial effect of ethanol extract of leaf neem  (Azadirachta indica A. Juss) on Listeria monocytogenes</font></b></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Luis Guillermo Ramírez Mérida, Alba Morón de Salim, Doris Reyes,  Ariana Rivero, Luz A. Sánchez, Luz K. Sánchez.</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Facultad de Ciencias y Tecnología (FACYT). Instituto de Investigaciones en  Nutrición (INVESNUT).  Universidad de Carabobo Sede Valencia, Venezuela.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  <b>RESUMEN: </b>Listeria monocytogenes es un patógeno  causante de enfermedades alimentarias. En la búsqueda de  controlar su propagación utilizando sustancias naturales  se planteó el objetivo de mostrar si el extracto etanólico  foliar de neem (Azadirachta Indica A. Juss.) tiene efecto  antimicrobiano sobre L. monocytogenes ICTA-12446. El  extracto se obtuvo a partir de hojas de neem sometidas a  secado por 8 días, se redujeron de tamaño mecánicamente, se  sometieron a maceración en frío por 3 días usando etanol 96%  en recipientes ámbar, se filtró y concentró en rota evaporador.  Se estandarizó el concentrado con dimetilsulfóxido (DMSO)  a una concentración de 60 mg/L. Listeria monocytogenes  ICTA-12446, fue inoculado en caldo nutriente junto con  soluciones del extracto a diferentes concentraciones (20,  30, 40, 50 y 60 mg/L), se emplearon tiempos de contacto  (2.5, 5, 10 y 15 minutos). Cumplido cada tiempo se  realizaron diluciones seriadas e inocularon en agar nutritivo  por extensión durante 24 h a 37ºC. Se efectuó el recuento  en Unidades Formadoras de Colonias UFC. Al comparar  las concentraciones del extracto se evidencia entre 20 y  60 mg/mL diferencia significativa, mientras que en 30, 40 y  50 mg/mL un comportamiento similar. Al contrastar  tiempos de contacto, se observa que entre el tiempo  2.5 min y los restantes un p=0,03. El tiempo mínimo donde  existió inhibición fue 2.5 minutos, y concentración mínima  inhibitoria de 20 mg/mL. Los cuatro tiempos de contacto  arrojan porcentajes de inhibición microbiana de 100% al  emplear 60mg/mL. Se concluye que el extracto etanólico  foliar de neem posee un efecto inhibitorio sobre Listeria  monocytogenes.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>  Palabras clave:</b> Bacteriostático, bactericida, neem, extractoetanólico,  L. monocytogenes.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  <b>SUMMARY: </b>Antimicrobial effect of ethanol extract of  leaf neem (Azadirachta indica A. Juss) on Listeria monocytogenes.  Listeria monocytogenes is a pathogen causing  foodborne illness. In seeking to control its spread using natural  substances in order to show if the leaf ethanol extract of  neem (Azadirachta indica A. Juss) has antimicrobial effect  on L. monocytogenes ICTA-12446, was proposed. The extract  was obtained from neem leaves, which was subjected  to drying for 8 days. It was reduced in size mechanically,  and subjected to cold soak for 3 days, using 96% ethanol  in amber vessels, filtered and concentrated in rot evaporator.  Concentrated was solubilized with dimethylsulfoxide  (DMSO) and standarized to achieve a concentration of 60  mg/mL Listeria monocytogenes was inoculated in nutrient  broth with extract solutions at different concentrations (20,  30, 40, 50 and 60mg/mL), four contact times (2.5, 5, 10 and  15 minutes) were used. Completed each time it was diluted  and inoculated on nutrient agar by extension for 24h at  37ºC. The count of Colony Forming Units UFC was taking.  Comparing the concentrations of the extract between 20 and  60mg /mL significant difference was appreciate, while 30,  40 and 50 mg/mL show a similar behavior. Contrasting contact  times observed between time 2.5 min and the remaining  p = 0.03. The minimum time where there was some kind of  inhibition was 2.5 minutes, and minima inhibitory concentration  of 20mg/mL. The four contact times yield microbial inhibition  percentages of 100% by using 60mg/L. It is concluded  that ethanol extract of neem leaf has an inhibitory effect  on L. monocytogenes.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>  Key words: </b>Bacteriostatic, bactericidal, neem, ethanol extract,  L. monocytogenes.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">    <b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Listeria monocytogenes se caracteriza por ser un  bacilo Grampositivoaerobio o anaerobio facultativo.  Se le considera un patógeno mesófilo, aunque tiene  la capacidad de desarrollarse a temperaturas de  refrigeración y rangos de pH muy variables lo cual  le diferencia de otras bacterias patógenas. Esta  capacidad de adaptación tanto a condiciones como  ambientes hostiles, hacen que L. monocytogenes  presente un potencial fenotípico que actúa como  factor de virulencia. Puede causar brotes delisteriosis,  enfermedad esta que genera manifestaciones graves  en el individuo tales como meningitis y/o encefalitis,  abortos o infecciones neonatales y septicemias  afectando principalmente a mujeres embarazadas,  ancianos e inmunocomprometidos (1).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Alimentos contaminados con L. monocytogenes  son una de las principales causas de brotes de listeriosis;  y pueden conducir a las denominadas enfermedades  transmitidas por los alimentos (ETA), lo que llevaría  a un problema de salud pública. En vista que se ha  reportado la presencia del patógeno en una amplia  variedad de alimentos entre ellos vegetales frescos y  productos lácteos procesados (2,3), medidas de control  sencillas y eficaces para prevenir o disminuir su acción  deben ser establecidas. El uso de biocontroladores  obtenidos a partir de extractos de plantas, ha venido  siendo una alternativa útil y eficiente para controlar  patógenos de alimentos a escala de laboratorio (4).  El árbol de neem (Azadirachta Indica A. Juss) de  la familia Meliaceae, se ha utilizado en la medicina  tradicional contra varias enfermedades humanas.  Su hoja posee una diversidad de compuestos como  hidratos de carbono, minerales, aminoácidos y su  principal componente activo la azadiractina, le confiere  una amplia gama de actividades farmacológicas y  aplicaciones medicinales (5). Se ha demostrado una  cierta actividad antimicrobiana de extractos de neem  sobre diferentes microorganismos como Escherichia  coli, Staphylococcus aureus y bacteriófagos (6).  Considerando el comprobado efecto inhibitorio que  posee las hojas del neem sobre estos microrganismos, y  buscando una medida para controlar el desarrollo de L.  monocytogenes como patógeno alimentario, evitar su  presencia y proliferación en los alimentos, se propuso  evaluar el efecto bacteriostático y/o bactericida que  pudiese tener el extracto etanólico foliar del neem  (Azadirachta indica A. Juss) sobre L. monocytogenes  y de esta forma dar paso a la aplicación de posibles  biocontroladores como métodos alternativos que  mejoren la calidad microbiológica de los alimentos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><b>  MATERIALES Y METODOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>  Preparación del extracto etanólico foliar</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Arboles de neem ubicados en la U.E “Luisa del  Valle Silva” del campus Bárbula de la Universidad  de Carabobo, fueron identificados y autenticados  por un botánico del Departamento de Biología en la  Facultad de Ciencias y Tecnología de la Universidad  de Carabobo. Se recolectaron hojas de los mismos  las cuales fueron lavadas vigorosamente con agua  corriente del grifo y un enjuagado final con agua  destilada estéril. El material fue cortado en pedazos  pequeños y luego colocado en estufa a 70 ºC durante  ocho días. Posteriormente se redujo el tamaño de  forma mecánica y se pulverizó hasta obtener partículas  finas, se sometió a maceración en frío usando etanol  96% en recipientes ámbar por 3 días; se filtró y  concentró utilizando un concentrador Eppendorf  5301, manteniendo una temperatura de 45°C por 90  min tiempo donde el etanol fue eliminado. Se tomó  una alícuota de 0,06 g del extracto concentrado y se  solubilizó con 1 mL de dimetilsulfóxido (DMSO) de  grado analítico para lograr una concentración final de  60 mg/mL (7). A partir de este estándar se prepararon  soluciones con concentraciones de 20, 30, 40 y 50 mg/  mL.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>  Preparación del inóculo microbiano</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Se tomó el cultivo de L. monocytogenes ICTA-  12446 de 24 horas de crecimiento en agar nutritivo.  A partir de allí y con ayuda de un asa de platino se  sembró un nuevo cultivo y se incubó a 37°C en caldo  nutritivo durante un período de 24 horas. Posterior a  este período de tiempo, se realizó una suspensión de  la bacteria con agua estéril, ajustando la densidad de  la suspensión del cultivo mediante la comparación  de medidas de turbidez en un espectrofotómetro  (EMCLAB, EMC-11D-V) con respecto a un estándar  de 0,5 de Mc Farland de BaSO4, a fin de garantizar  un inóculo inicial de 108 UFC de L. monocytogenes/  mL. Se verificó la viabilidad de la cepa de  L. monocytogenes ICTA- 12446 para cerciorarse de su  crecimiento y autenticidad en placas de agar nutriente  y placas de agar PALCAM incubándose durante 24 h  a 37ºC (8).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Efecto antimicrobiano del extracto etanólico  foliar de la planta neem (Azadirachta Indica A. Juss)  Para esta evaluación se utilizó el método de  dilución en agar. Las diferentes concentraciones  del extracto etanólico de neem fueron enfrentadas  con una suspensión de L. monocytogenes ICTA-  12446, de 108 UFC en una relación a partes iguales  y empleando cuatro tiempos de contacto (2.5, 5, 10  y 15 minutos). Cumplido cada tiempo de contacto se  realizaron diluciones seriadas del extracto (20, 30, 40,  50 y 60mg/mL) se tomaron 100 &#956;L y se inocularon  en agar nutritivo por extensión con ayuda de una  espátula de Drigalski, se incubaron por 24 h a 37ºC.  Luego se efectuó el recuento de microorganismos  en UFC el cual fue considerado como el número de    microorganismos sobrevivientes.  La concentración mínima inhibitoria (CMI) se  definió como la concentración más baja de extracto de  la planta donde se observó un porcentaje de inhibición  de 100%. (9). Por otro lado, el tiempo mínimo de  inhibición (TMI) se estableció como el tiempo más  bajo en el cual se alcanzó una inhibición de crecimiento  microbiano de 100%. Se utilizó como control negativo  etanol en cantidades que corresponden al volumen  más alto presente en el ensayo de dilución en agar.  Además, placas de agar nutritivo inoculadas sin el  extracto etanólico de neem añadido sirvieron como  control positivo.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>  Análisis de los Datos</b></font></p>     <p><font face="Verdana"><font size="2">  El porcentaje de inhibición microbiana se realizó  mediante la </font><b><font size="2">fórmula:</font></b></font></p>     <p><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v66n1/art07.2.jpg" width="348" height="166"></p>     
<p><font face="Verdana" size="2">  Donde:</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">  M0: concentración microbiana inicial  Mf: concentración microbiana final.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Para determinar los cambios en la dinámica  poblacional en UFC de L. monocytogenes ICTA-  12446, de acuerdo a las concentraciones del  extracto etanólico de neem usadas en el estudio;  se promediaron y se graficaron los valores en UFC  obtenidas, a fin de presentar las respectivas tendencias  de variación microbianas, comparando cada uno de  los tratamientos mediante la aplicación de la prueba de  correlación de Spearman (prueba no paramétrica que  mide la diferencia entre una distribución observada  y otra esperada) empleando un nivel de confianza  de 95%. Los datos fueron procesados a través del  programa estadístico STATISTIX 9.0.0. Todas las  evaluaciones se realizaron por cuadruplicado.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  <b>RESULTADOS</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  La figura 1 muestra los resultados correspondientes  al comportamiento de L. monocytogenes ICTA-  12446,en los diferentes tiempos de contacto evaluados  para cinco concentraciones del extracto. En todas las  concentraciones de extracto evaluadas, se observa una  disminución progresiva lo que es algo comparable con  un modo de acción estática.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  En los tiempos de contacto 2.5 y 5 minutos se  observó un descenso progresivo de la población  microbiana conforme se incrementa la concentración  del extracto etanólico foliar de neem; sin embargo,  a los 2.5 minutos, se presenta una disminución  significante del crecimiento cuando la concentración  del extracto es de 50mg/mL, mientras que, a los 5  minutos de contacto este fenómeno se observó a partir  de la concentración de 40mg/mL. De igual forma se  pudo observar que cuando se incrementa el tiempo  de contacto, se obtiene un descenso más marcado de  la población microbiana de L. monocytogenes ICTA-  12446, esto se evidencia a los 10 minutos con una  concentración de 20mg/mL del extracto etanólico  de neem; por su parte en el tiempo de contacto más  elevado empleado (15 minutos) la disminución  se hizo evidente en relación a cualquiera de las  concentraciones del extracto etanólico foliar de neem  utilizada en el ensayo, siendo los niveles más bajos  encontrados para la concentración de 50 y 60 mg/mL.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  En la figura 2 se muestra el porcentaje de inhibición  alcanzado luego de evaluar los diferentes tiempos  de contacto del extracto etanólico de neem con el  cultivo de L. monocytogenes ICTA-12446. Se observa  que en los cuatro tiempos de contacto utilizados  se llega a porcentajes de inhibición microbiana de  100% cuando se emplea la concentración de 50 y  60mg/mL. Las variables restantes utilizadas van  aumentando el porcentaje de inhibición microbiana  de forma proporcional a medida que se aumenta la  concentración del extracto y el tiempo de contacto.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Al comparar las concentraciones del extracto  se evidencia que existe diferencia estadísticamente  significativa (p = 0,002) entre las concentraciones de 20  y 60 mg/mL, mientras que las concentraciones de 30,  40, 50 y 60 mg/mL tienden a tener un comportamiento  relativamente similar. El mismo análisis comparó  los tiempos de contacto, encontrándose diferencia  significativa entre el tiempo de 2.5 minutos y  los restantes (5, 10 y 15 minutos) (p = 0,03), no  presentando diferencias significativas entre los 5, 10  y 15 minutos (p = 0,18).</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Se evidencia que el tiempo mínimo requerido para  observar algún tipo de inhibición del crecimiento de  L. monocytogenes ICTA-12446,utilizando extracto  etanólico foliar de neem (Azadirachta indica A. Juss)  bajo el criterio establecido para el TMI es de 2.5  minutos; mientras que la CMI sería de 20mg/mL de  extracto etanólico.</font></p>     <p><a name="f1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v66n1/art07.3.jpg" width="509" height="441"></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p><a name="f2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v66n1/art07.4.jpg" width="609" height="409"></p>     
<p><font face="Verdana" size="2">  <b>DISCUSION</b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Los resultados obtenidos muestran un efecto entre  12 y 26 veces más inhibitorio que el reportado por  Mahfuzul y col (10), quienes evaluaron el efecto de  extractos de neem sobre el crecimiento de varias cepas  microbianas, encontrando que los extractos de neem  (Azadirachta Indica A. Juss) mostraban actividad  antimicrobiana de un 7 a 26% en microorganismos del  tipo Gram positivo en estudio, además destacan que  la actividad antimicrobiana se desarrolla mejor si el  extracto de la planta es etanólico, tal como el realizado  en esta investigación. Por su parte, Valarmathy y col.  (11), destacan que los extractos etanólico de neem  (Azadirachta Indica A. Juss) son más eficaces contra  algunas bacterias que extractos provenientes de otras  plantas. Esta acción es producto de las propiedades  e interacciones químicas presentes, en vista que  muchos compuestos polares como flavonoides,  taninos, alcaloides, con actividad antimicrobiana, son  fácilmente extraídos con ayuda de etanol por lo que  estos extractos presentan un eficaz efecto.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Estos porcentajes elevados de inhibición  bacteriana confirman los resultados de investigaciones  previas que indican que los extractos de las hojas de  neem (Azadirachta Indica A Juss) poseen una buena  actividad antibacteriana, siendo que la presencia  de algunos metabolitos secundarios como los  alcaloides, saponinas, esteroides, triterpenos puede  ser las responsables de este efecto mostrando el gran  potencial de los compuestos bioactivos que la planta  posee (12). La presencia de compuestos fenólicos  probablemente ejercen efectos tóxicos a nivel de la  membrana donde se acumulan y provocan una pérdida  de integridad interviniendo en la formación de las  estructuras lipídicas del microrganismo, ocasionando  daño y muerte celular. En base a esto, Barsagade y  Wagh en el año 2010 (13) sugieren que los agentes  bioactivos de la planta tienen una gran actividad  como compuestos antimicrobianos y que, por lo  tanto, pueden ser utilizados en el tratamiento de las  enfermedades infecciosas.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Se puede concluir, que aunque la concentración de  extracto de 20 mg/mL y el tiempo de 2.5 minutos fueron  las variables donde se alcanzó 100% de inhibición por  separado, partiendo desde el punto de vista estadístico,  la mejor opción a tomar en consideración para alcanzar  un efecto óptimo en conjunto sería el empleo de  30mg/mL con 5 minutos de tiempo de contacto.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  Además, los resultados obtenidos dan base para inferir  que el extracto etanólico foliar de la planta neem  (Azadirachta Indica A. Juss) puede ser una herramienta  útil para el control de Listeria monocytogenes y muy  beneficioso desde el punto de vista de la industria  alimentaria, presentando ventajas tales como: es  biodegradable, es menos tóxico que otras sustancias  coadyuvantes, y no desequilibra la biodiversidad de  los agroecosistemas dado que se estaría obteniendo un  producto natural de bajo costo que puede ser usado  como conservante lo que tendría gran impacto en  la economía ya que, al contar con un buen control  de los microorganismos, los alimentos producidos  tendrán una mejor calidad y ello se verá reflejado  en las ventas del producto. Además, podría generar  brechas de gran interés para la industria farmacéutica  porque a partir de un producto con capacidad para  inhibir microorganismos se pueden originar nuevos  antibióticos para el control de patógenos. Por otro  lado, este extracto podría utilizarse como coadyuvante  con otros compuestos que produzcan inhibición,  para así provocar efectos sinérgicos amplios para el  tratamiento y prevención de estos contaminantes en  alimentos.</font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">  <b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  1. Schöbitz R, Ciampi L, Nahuelquin Y. Listeria  monocytogenes un peligro latente para la industria  alimentaria. Agro sur 2009; 37(1):1-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532782&pid=S0004-0622201600010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  2. Ramírez L, Morón de Salim A, Alfieri A, Gamboa  O. Detección de Listeria monocytogenes en queso  blanco criollo, mediante la reacción en cadena de  la polimerasa (PCR). Arch Latinoamer Nutr 2010;  60(3):254-260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532784&pid=S0004-0622201600010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  3. Ramírez L, Morón de Salim A, Alfieri A, Gamboa O.  Frecuencia de Listeria monocytogenes en muestras  de tomates (Lycopersicum esculentum) y cilantro  (Coriandrum sativum) frescos en tres supermercados  de Valencia. Venezuela. Arch Latinoamer Nutr 2009;  59(3):318-324.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532786&pid=S0004-0622201600010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  4. Negi PS. Plant extracts for the control of bacterial  growth: Efficacy, stability and safety issues for food  application. Int J FoodMicrobiol 2012; 156:7-17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532788&pid=S0004-0622201600010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  5. Subapriya R, Nagini S. Medicinal properties of neem  leaves: a review. Curr Med Chem Anticancer Agents  2005; 5(2):149-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532790&pid=S0004-0622201600010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  6. López Y, Escalante M, Martínez C, Soto J, Chaidez  C. Efecto antimicrobiano de extractos crudos de  Neem (Azadirachta Indica A. Juss) y venadillo  (Swieteniahumilis Zucc) contra E. coli, S. aureus y el  bacteriófago P22. Bioquimia 2007; 32(4):117-125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532792&pid=S0004-0622201600010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  7. Atep D, Erdoúrul Z. Antimicrobial Activities of  Various Medicinal and Commercial Plant Extracts.    Turk J. Biol. 2003; 27: 157-162.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532794&pid=S0004-0622201600010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  8. Ramírez Mérida L, Morón de Salim A, Catinella  R, Castillo L. Efecto bacteriostático y/o bactericida  del extracto de gel de Aloe vera sobre cultivos de  Listeria monocytogenes. Arch Latinoamer Nutr  2012; 62 (1): 73-78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532796&pid=S0004-0622201600010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  9. Weckesser S, Engel K, Simon-Haarhaus B, Wittmer  A, Pelz K, Schempp C.M. Screening of plant extracts  for antimicrobial activity against bacteria and yeasts  with dermatological relevance. Phytomedicine  2007;14: 508–516.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532798&pid=S0004-0622201600010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  10. Mahfuzul H, Bari M, Inatsu Y, Vijay K, Kawamoto  S. Antibacterialactivity of guava (Psidiumguajava  L.) and neem (Azadirachta Indica A. Juss) extracts  against food borne pathogens and spoilage bacteria.  Mary Ann Liebert 2007; 4(4): 481-488.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532800&pid=S0004-0622201600010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  11. Valarmathy K, Gokulakrishnan M, Kausar M,  Kusum P. A study of antimicrobialactivity of  ethanolicextracts of various plant leaves against  selected microbial species. IJPR 2010; 1(8): 293-  295</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532802&pid=S0004-0622201600010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  12. Koona S, Budida S. Antibacterialpotential of  theextracts of theleaves of Azadirachta Indica A.  Juss. NotSci Biol2011; 3(1): 65-69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532803&pid=S0004-0622201600010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">  13. Barsagade N, Wagh G. Comparative screening of  leaf extracts of common plants and weeds for their  antibacterial and antifungalactivities. Asiatic J.  Biotech Res; 3(1): 227-232.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532805&pid=S0004-0622201600010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>  Recibido</b>: 08-10-2015  <b>Aceptado: </b>19-12-2015</font></p>       ]]></body>
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