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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Reactivación de la infección chagásica en ratas Wistar gestantes]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Wistar rats with chronic Trypanosoma cruzi infection were subjected to a parasitological, immunological, histopathological and immunohistochemical examination for a reactivation of the infection during gestation and after giving birth. Results showed a control of patent and/or sub-patent parasitemias; high concentrations of specific anti-T. cruzi antibodies, a moderate reduction in IgG levels and a significant increase in IgM (P<0.05) after the first week of gestation; and absence of flagellate forms of T. cruzi in the amniotic fluid. Histopathology showed parasitic persistence in cardiac muscle fibers and in the uterus, mild myocarditis and myositis with signs of chronicity; moderate inflammatory infiltrate, without parasitism in the placenta stroma or brain. Immunohistochemical examination showed the presence of a nest of amastigotes in the skeletal muscle with abundant antigen deposits in sections of the heart, uterus, brain and placenta, revealing the presence of trypomastigotes in the tissue. Finally, the factors that might lead to a reactivation of T. cruzi infection in gestating Wistar rats are discussed.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <BASEFONT SIZE="3">     <P ALIGN="center"><b><FONT COLOR="000000" size="3" face="Verdana"> Reactivación de la infección chagásica en ratas Wistar gestantes </FONT></b></P>      <P ALIGN="center"><b><FONT COLOR="000000" size="3" face="Verdana"> Reactivation of the Chagasic Infection in Wistar Rats in Gestation </FONT></b></P>      <P ALIGN="center"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Moreno B., Elio; Méndez I., Maidé; Alarcón M., Maritza; Araujo A., Sonia  y Lugo de Yarbuh, Ana </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Laboratorio de Parasitología Experimental (LAPEX). Dpto. de Biología, Facultad  de Ciencias, Universidad de los Andes. Mérida 5101, Venezuela. Teléfono:  0274-2401244, Fax: 0274-241286. E-mail: emorenob@ula.ve </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Resumen </FONT></B></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> En este trabajo investigamos en ratas Wistar crónicamente infectadas con  <I>Trypanosoma cruzi</I>, la reactivación de la infección durante la gestación  y después del parto, mediante un estudio parasitológico, inmunológico,  histopatológico e inmunohistoquímico. Los resultados mostraron un control  de las parasitemias patentes y/o subpatentes; títulos elevados de anticuerpos  específicos anti-<I>T. cruzi</I>, detectándose en las ratas gestantes una disminución  en los niveles de IgG y un incremento significativo de la IgM (P&lt;0,05)  a partir de la primera semana de gestación; ausencia de formas flageladas  de <I>T. cruzi</I> en el líquido amniótico. La histopatología reveló, persistencia  parasitaria a nivel de las fibras musculares cardíacas y de la musculatura  lisa del útero grávido; establecimiento de una discreta miocarditis y miositis  con características de cronicidad; moderado infiltrado inflamatorio, sin  parasitismo en placentas y cerebro. El estudio inmunohistoquímico demostró  la presencia de un nido de amastigotes en el músculo esquelético y abundantes  depósitos antigénicos en las secciones de corazón, útero, cerebro y placentas,  lo que demuestra la presencia de tripomastigotes en esos tejidos. Finalmente,  se discuten los factores que pudieran inducir la reactivación de la infección  por <I>T. cruzi</I> en ratas Wistar gestantes. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> Palabras</FONT></B><font face="Verdana"><FONT COLOR="000000"> <B>  clave: </B></FONT> <FONT COLOR="000000"> <I>Trypanosoma cruzi</I>, infección chagásica, rata Wistar, gestante.</FONT></font></font></P>      <P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Abstract </FONT></B></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Wistar rats with chronic <I>Trypanosoma cruzi</I> infection were subjected to  a parasitological, immunological, histopathological and immunohistochemical  examination for a reactivation of the infection during gestation and after  giving birth. Results showed a control of patent and/or sub-patent parasitemias;  high concentrations of specific anti-<I>T. cruzi</I> antibodies, a moderate reduction  in IgG levels and a significant increase in IgM (P&lt;0.05) after the first  week of gestation; and absence of flagellate forms of <I>T. cruzi</I> in the amniotic  fluid. Histopathology showed parasitic persistence in cardiac muscle fibers  and in the uterus, mild myocarditis and myositis with signs of chronicity;  moderate inflammatory infiltrate, without parasitism in the placenta stroma  or brain. Immunohistochemical examination showed the presence of a nest  of amastigotes in the skeletal muscle with abundant antigen deposits in  sections of the heart, uterus, brain and placenta, revealing the presence  of trypomastigotes in the tissue. Finally, the factors that might lead  to a reactivation of <I>T. cruzi</I> infection in gestating Wistar rats are discussed. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> Key</FONT></B><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> <B>  words: </B><I>Trypanosoma cruzi</I>, chagasic infection, Wistar rats, gestation.</FONT></font></P>      <P ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Recibido: 22-02-05 / Aceptado: 05-05-05</font></P>      <P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Introducción </FONT></B></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La tripanosomiasis americana o enfermedad de Chagas, es causada por el  protozoario intracelular <I>Trypanosoma cruzi</I>, el cual es transmitido al hombre  en áreas rurales endémicas por contaminación con las formas metacíclicas  contenidas en las excretas postprandiales de triatominos hematófagos de  la familia Reduviidae, subfamilia Triatominae (1). Otras vías de transmisión  del parásito (transfusional, vertical, transplantes de órganos, oral, accidentes  en el laboratorio y sexual) han sido señaladas para otras áreas y ciudades  donde los insectos vectores están presentes solo ocasionalmente como resultado  de su introducción accidental (2-4). El parásito al penetrar en el organismo  provoca reacción inflamatoria, acompañada de otros síntomas clínicos y  subclínicos con características y gravedad variable. Así, se destaca una  fase aguda inicial, con parasitemias patentes y síntomas no específicos,  seguida por una fase latente o indeterminada que puede durar toda la vida  o evolucionar a una fase crónica progresiva, produciendo la cardiopatía  chagásica y/o lesiones digestivas irreversibles (5). </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Las infecciones crónicas por <I>T. cruzi</I> a menudo se reactivan cuando los  hospedadores son inmunosuprimidos. Esta observación ha sido confirmada  por varios investigadores, quienes refieren reactivación de la infección  chagásica principalmente en pacientes con infección crónica que recibieron  transplantes y fueron tratados con inmunosupresores como terapia de protección  (6, 7). Igualmente, en pacientes con el Síndrome de Inmunodeficiencia Adquirida,  se observó reagudización de la infección por <I>T. cruzi</I> con graves repercusiones  orgánicas a nivel cerebral y cardíaca (8). Por otro lado, en modelos experimentales  la reactivación de la infección chagásica ha sido estudiada mediante reinoculaciones  exógenas del parásito (9, 10) y/o cuando los animales experimentales son  sometidos a inmunosupresores (7, 11). </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La reagudización de la infección por efecto del embarazo es un hecho aceptado  como posible en las enfermedades infecciosas crónicas en humanos. Bittencourt  (12), señaló una alta prevalencia de infecciones por <I>T. cruzi</I> en mujeres  embarazadas en áreas endémicas de diferentes países de Sudamérica. Muchas  de estas mujeres se infectaron durante su infancia en su ambiente natural  y cuando alcanzaron la edad reproductiva albergaban la fase crónica de  la enfermedad pudiendo transmitir el parásito por vía placentaria. Estas  mujeres desarrollaron embarazos aparentemente normales, presentando pocas  evidencias de cambios en la respuesta inmune humoral durante la gravidez,  que reflejasen apreciable exacerbación de la enfermedad de Chagas. Storni  y Bolsi<SUP> </SUP>(13)<SUP> </SUP>estudiando un grupo de mujeres crónicamente infectadas con  <I>T. cruzi</I>, observaron durante el embarazo un incremento de la inmunoglobulina  M (IgM), lo que interpretan como una evidencia de reactivación de la infección.  Por otro lado, Schmuñis y col (14) han señalado inmunodepresión de tipo  celular en el curso del embarazo, lo que estaría contribuyendo con la reagudización  de la infección. Estas observaciones fueron investigadas por Carlier y  col (15) quienes estudiaron la respuesta inmune humoral y celular en ratones  hembras crónicamente infectadas con <I>T. cruzi</I>, durante la gestación. Los  autores concluyeron que la gravidez está asociada a la disminución de ciertos  parámetros inmunológicos humorales y celulares, los cuales son insuficientes  para modificar el curso de la infección. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Partiendo de la premisa que la reagudización de la infección por efecto  del embarazo es un hecho aceptado como posible en las enfermedades infecciosas  crónicas en humanos, en este trabajo, nos proponemos investigar si la reactivación  de la infección chagásica crónica en ratas Wistar ocurre durante la gestación,  a través de: <B>a</B>. la detección de parasitemias patentes y subpatentes; <B>b</B>.  estimación de la respuesta inmune humoral mediante la cuantificación de  los niveles de anticuerpos anti-<I>T.</I> <I>cruzi</I> (IgG, IgM) y, <B>c.</B> evaluación de  las alteraciones histopatológicas en el corazón, músculo esquelético, cerebro,  útero y placenta, a través de técnicas histológicas e inmunohistoquímicas. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Materiales y Métodos</FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> Cepa </FONT></B><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> <B>  de </B><I><B>Trypanosoma cruzi</B></I><B>:</B> </FONT></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Utilizamos parásitos de la cepa de <I>T. cruzi</I> M/DID/Ve/92/DSM, aislada por  Ana Lugo de Yarbuh en mayo de 1992, mediante xenodiagnóstico realizado  a un <I>Didelphis marsupiales</I> hembra naturalmente infectada, procedente del  bosque experimental “El Caimital”, Municipio Obispo, Estado Barinas, Venezuela  y caracterizada desde el punto de vista biológico y bioquímico por Moreno  y col (16). </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Inoculación y apareamiento </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Un total de 21 ratas albinas juveniles (<I>Rattus</I> <I>norvegicus</I>), cepa Wistar,  hembras de 20 días de nacidas, fueron inoculadas por vía intradérmica con  aproximadamente 2x10<SUP>4</SUP> formas metacíclicas de la cepa DSM de <I>T. cruzi. </I>Los  parásitos fueron<I> </I>obtenidos a partir de las heces postprandiales del vector  <I>Rhodnius prolixus</I> con 30 días de infección siguiendo el procedimiento previamente  indicado por Moreno y col (17). Las excretas fueron homogenizadas en solución  fisiológica salina y las formas metacíclicas fueron cuantificadas, siguiendo  el método modificado por Brener (18). Un segundo grupo de 6 ratas juveniles  sanas fueron utilizadas como controles. Las ratas infectadas y los controles  sanos fueron mantenidos en jaulas separadas en el Bioterio experimental,  alimentadas con dieta comercial (ratarina<SUP>R</SUP>) y agua <I>ad</I> <I>libitum</I>. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> A los 120 días post-inoculación (pi), las ratas en fase crónica de la infección  chagásica, fueron divididas en 4 grupos experimentales: un grupo A (n=7)  de ratas vírgenes infectadas fueron mantenidas como control infectado;  las restantes ratas infectadas de los grupos B (n=7) y C (n=7), y los controles  sanos D (n=6) en <I>proestus</I> y/o <I>estrus</I> de su ciclo estral, fueron apareadas  con machos en una relación 2/1 por jaula. Al día siguiente del apareamiento,  las ratas fueron examinadas mediante un lavado vaginal con solución fisiológica  y una vez comprobada la presencia de espermatozoides en el frotis vaginal,  las ratas presumiblemente ya preñadas en un tiempo relativamente uniforme,  fueron marcadas con solución de Bouin y colocadas en jaulas individuales  con abundante ratarina y agua <I>ad libitum</I> en el bioterio experimental. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Evaluación de la infección </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Las ratas infectadas y los controles sanos, fueron muestreadas a los 7,  13 y 21 días de gravidez con el objeto de investigar exacerbación de parasitemias  patentes<SUP> </SUP>y/o subpatentes y, cambios en la respuesta inmune humoral. Las  ratas ligeramente anestesiadas con éter dietílico, fueron sangradas con  capilares heparinizados por ruptura del plexo retro-orbital del ojo derecho.  El diagnóstico parasitológico se realizó mediante exámenes directos de  muestras de sangre utilizando el microhematócrito como método de concentración  (19), e indirectos como el hemocultivo de 0,2 mL de sangre en medio de  cultivo NNN con solución fisiológica salina como fase líquida y el xenodiagnóstico  utilizando en cada caso 10 ninfas de IV estadio de <I>R. prolixus, </I>las cuales  fueron mantenidas a 26°C y 75% de humedad relativa en el insectario experimental  (17). Los cultivos mantenidos en estufa a 26°C y las ninfas de <I>R. prolixus</I>  fueron examinadas a los 30 días después de su inoculación e ingesta sanguínea,  con el objeto de detectar formas flageladas de <I>T. cruzi.</I> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los cambios en la respuesta inmune humoral fueron evaluados mediante las  técnicas de Inmunofluorescencia Indirecta (IFI) y el ensayo Inmunoenzimático  (ELISA). Para estas pruebas se utilizaron entre 0,5 y 1,0 mL de sangre  de cada rata y los sueros fueron separados por centrifugación. El antígeno  empleado se preparó con las formas flageladas de cultivos homólogos de  <I>T. cruzi</I>, colectados en fase exponencial de su crecimiento en el medio  de cultivo NNN y la ejecución de cada una de las técnicas serológicas se  realizó siguiendo los procedimientos descritos por Camargo (20)<SUP> </SUP>y Voller  y col (21). </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Colecta de líquido amniótico y procedimiento histológico </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Al término de la gestación, las ratas infectadas de los grupos (A y B)  y los controles sanos (D) fueron sacrificadas por sobreanestesia con éter  dietílico. Durante la autopsia se extrajo cuidadosamente el útero grávido  con sus órganos anexos. Con una pipeta Pasteur se hizo una pequeña incisión  sobre la membrana uterina y se extrajo de cada saco uterino alícuotas de  líquido amniótico (LA), unas para conformar un pool de LA/rata e inocular  tubos con medios de cultivo NNN y otras para ser examinadas directamente  al microscopio. Seguidamente se removieron los fetos con sus placentas,  el corazón fue cortado frontalmente en dos partes iguales, y se obtuvieron  fragmentos de músculo esquelético poplíteo del miembro superior derecho  y el cerebro. Los tejidos fueron fijados con formalina al 10% por 24 horas,  incluidos en Paraplast (Monoject Scientific, St. Louis, MO. USA) y cortados  en secciones de 6 µm de espesor en un microtomo (American Optical). Unos  cortes fueron teñidos con Hematoxilina-Eosina y Giemsa-Pappenheim-Colofonio  (22) y los otros fueron procesados para inmunohistoquímica mediante la  técnica de Peroxidasa anti-peroxidasa (PAP) (23). Al grupo C de ratas chagásicas  gestantes, se les permitió el parto normal y a los 15 días se les practicó  un muestreo parasitológico e inmunológico. Igualmente, a las crías se les  tomaron muestras de sangre de la cola para ser examinadas en fresco con  el objeto de detectar parasitemias patentes. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Análisis estadístico </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los títulos de anticuerpos específicos anti-<I>T. cruzi</I> obtenidos con la t-IFI  fueron agrupados mediante la moda aritmética y los valores de los niveles  de anticuerpos obtenidos con la ELISA fueron analizados mediante la prueba  de la Chi (x<SUP>2</SUP>) cuadrada. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Resultados </FONT></B></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Parasitemia y mortalidad </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los exámenes parasitológicos efectuados a los grupos de ratas chagásicas  antes del apareamiento (A, B y C), durante la gestación (B y C) y a los  15 días después del parto (C), no mostraron parasitemias patentes y subpatentes  evidenciables por los métodos de diagnóstico empleados. Igualmente, las  25 crías nacidas de madres con infección chagásica crónica no revelaron  parasitemias patentes. No se observó mortalidad en ninguno de los grupos  de ratas infectadas ni en las crías. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Respuesta humoral </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Anticuerpos específicos anti-<I>T. cruzi</I> fueron detectados en todos los sueros  de las ratas crónicamente infectadas. Con la t-IFI, detectamos niveles  importantes de IgG totales en los diferentes grupos experimentales. Las  ratas del grupo A (vírgenes infectadas) mostraron títulos de anticuerpos  elevados que oscilaron entre 1:1024 y 1:2048. Las ratas de los grupos B  y C durante la primera y segunda semana de gravidez, presentaron niveles  de IgG similares a los detectados en las ratas del grupo A, con una discreta  disminución de los títulos al término de la gestación en las ratas del  grupo B (1:1024) y una marcada disminución (1:512) en los animales del  grupo C. A los 15 días después del parto, las ratas del grupo C mostraron  un marcado incremento en el título de IgGs (1:2048) comparables con los  niveles detectados en las ratas vírgenes infectadas (<a href="#Tabla 1">Tabla 1</a>). </FONT></P>  <basefont>     <p ALIGN="center"><b><font color="#000000" face="Verdana" size="2"><a name="Tabla 1">Tabla 1</a>.</font></b></p>     <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Títulos de anticuerpos anti-<i>T. cruzi</i> detectados por la técnica de Inmunifluorescencia Indirecta en los sueros de ratas Wistar crónicamente infectadas con formas metacíclicas de <i>T. cruzi</i> DSM, durante la gestación y después del parto.</font></p>     <div align="center">       <center>   <table width="450" border="1" cellspacing="1">     <tbody>       <tr>         <td vAlign="top" width="172">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Días           de gestación</font></p>         </td>         <td colSpan="3" vAlign="top" width="262">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">TÍtulos           de IgG</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="172">               <p ALIGN="center">&nbsp;</p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">A</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">B</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">C</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="172">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">0</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:1024</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:1024</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:1024</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="172">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">7</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:1024</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:1024</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:2048</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="172">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">13</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:2048</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:2048</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:2048</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="172">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">21</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:2048</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:1024</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:512</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="172">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">15pp*</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">–-</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">–</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="77">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1:2048</font></p>         </td>       </tr>     </tbody>   </table>   </center> </div>     <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="1">* 15 días post-parto.</font></p>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Con la técnica de ELISA evaluamos las variaciones en los niveles de IgG  y de IgM en los sueros de las ratas crónicamente infectadas antes, durante  la gestación y después del parto. Los niveles de IgG en las ratas del grupo  A permanecieron más o menos constantes durante las determinaciones semanales.  Las variaciones de los niveles de IgG fueron similares en los sueros de  las ratas de los grupos B y C antes y durante la gestación, observándose  un discreto aumento no significativo durante la primera semana de gravidez  con un máximo a los 7 días de gestación, y una disminución progresiva hasta  niveles inferiores a los registrados en las ratas controles durante el  resto del período de gestación. A los 15 días después del parto, en los  sueros de las ratas del grupo C se detectaron niveles de IgG discretamente  inferiores a los observados al inicio de la gestación. En general, los  niveles de IgG decayeron en todos los grupos después de la primera semana  de gestación (<a href="#fig1">Figura 1</a>). </FONT></P>      <P ALIGN="center"><a name="fig1"><img border="0" src="/img/fbpe/km/v33n1/art07img01.gif" width="441" height="493"></a></P>      
<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> En cuanto a las variaciones de la IgM, las ratas del grupo A no presentaron  niveles apreciables de esta inmunoglobulina; por el contrario, en las ratas  de los grupos B y C se evidenció un incremento significativo (P&lt;0,05) en  los niveles de IgM desde la primera semana de gravidez hasta el término  de la gestación. Después del parto, las ratas del grupo C mostraron una  disminución progresiva de la IgM a niveles inferiores a los detectados  para el grupo control A (<a href="#fig1">Figura 1</a>). Los sueros procesados de las ratas  controles no infectadas gestantes, no mostraron reactividad. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Evaluación parasitológica del líquido amniótico </FONT></B></font></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los exámenes parasitológicos directos e indirectos realizados a las muestras  de líquido amniótico obtenido de los sacos uterinos de las ratas crónicamente  infectadas y sacrificadas a término de la gestación, no mostraron formas  flageladas de <I>T. cruzi</I>. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Evaluación histopatológica </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El estudio minucioso de las alteraciones histopatológicas del corazón,  músculo esquelético, útero, cerebro y placentas de las ratas crónicamente  infectadas con <I>T. cruzi</I> y sacrificadas a término de la gestación, reveló  de manera general el desarrollo de una miocarditis y miositis de variable  intensidad, destrucción de algunas fibras musculares, hialinización, formación  de fibrosis y persistencia de nidos de amastigotes (<a href="#fig2">Figura 2</a>). En los cortes  de útero grávido, se evidenció un moderado infiltrado linfocitario en el  miometrio asociado a un nido de amastigotes y una marcada eosinofília.  Los cortes de cerebro presentaron abundantes linfocitos en estrecho contacto  con los cuerpos neuronales, sin parasitismo tisular. En las secciones de  placentas se observaron focos de necrosis e infiltrado linfoide, proliferación  de células trofoblásticas en el estroma velloso placentario y a nivel de  las placas coriónica y desidual constituyendo un cuadro de placentitis  crónica. La ausencia de nidos de amastigotes en este órgano no descarta  el diagnóstico de la infección chagásica congénita. </FONT></P>      <P ALIGN="center"><a name="fig2"><img border="0" src="/img/fbpe/km/v33n1/art07img02.gif" width="572" height="451"></a></P>      
<P ALIGN="justify"><font size="2"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Evaluación inmunohistoquímica </FONT></B></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los cortes de corazón, útero, cerebro y placentas tratados con la técnica  de PAP, mostraron una marcada reacción con depósitos antigénicos dispersos  en los tejidos, sin parasitismo tisular apreciable. En las fibras musculares  esqueléticas del grupo B se observó un nido de amastigotes intacto sin  proceso inflamatorio y abundantes depósitos antigénicos (<a href="#fig3">Figura 3</a>). </FONT></P>      <P ALIGN="center"><a name="fig3"><img border="0" src="/img/fbpe/km/v33n1/art07img03.gif" width="580" height="434"></a></P>      
<P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Discusión </FONT></B></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La necesidad de contar con un modelo animal en donde el curso de la infección  chagásica experimental y la patología evolucionen de manera similar a la  humana, ha representado uno de los grandes obstáculos para el estudio de  manera integral de la enfermedad de Chagas. En este sentido, la rata albina  (<I>R. norvegicus</I>) cepa Wistar, considerada por diferentes investigadores  como un animal susceptible a las infecciones naturales y experimentales  con las distintas cepas de <I>T.</I> <I>cruzi</I>, incorpora un mínimo de atributos que  fueron originalmente precisados para un modelo animal, tales como variaciones  en la repuesta humoral y celular, alteraciones electrocardiográficas y  cambios patológicos que semejan, en parte, a lo que ocurre en la enfermedad  de Chagas humana (16, 24, 25). Con estos antecedentes y la incomodidad  de utilizar el ratón (<I>M. musculus</I>) por su pequeño tamaño y por su alta  susceptibilidad a las infecciones por <I>T. cruzi</I>, justifican la selección  del modelo ratas para los fines de este trabajo. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los resultados del presente estudio mostraron que después del inoculo inicial  de formas metacíclicas de <I>T. cruzi</I>, las ratas juveniles desarrollaron un  cuadro infeccioso agudo, caracterizado por parasitemias patentes, sin mortalidad  alguna y apreciables alteraciones histopatológicas a nivel de los tejidos  cardíaco, esquelético y nervioso, similar al descrito por Scorza y Scorza  (24) y Araujo (26) en este modelo experimental. Las ratas infectadas en  fase crónica, gestantes, mostraron un control sobre la presencia de parásitos  circulantes en la sangre, y la gravidez no produjo exacerbación de la parasitemia  evidenciable a través de los métodos de diagnóstico parasitológicos empleados  (17, 19). Estos hallazgos están de acuerdo con los obtenidos por Carlier  y col (15) en ratones así como con las observaciones de Bittencourt en  humanos (3). No obstante, Storni y Bolsi<SUP> </SUP>(13), estudiaron mediante la aplicación  de xenodiagnóstico y exámenes serológicos el comportamiento del parasitismo  durante el embarazo en mujeres con serología positiva a <I>T. cruzi</I>, detectando  que en el curso del embarazo, y especialmente en el último trimestre, se  facilitó la multiplicación del parásito, evidenciándose un cuadro serológico  similar al de la infección aguda. En este mismo orden de ideas, Menezes  y col (27) evaluaron los perfiles de parasitemia en 119 mujeres crónicamente  infectadas con <I>T. cruzi</I> aplicando xenodiagnósticos durante y después del  embarazo. Los autores observaron que la frecuencia de xenodiagnósticos  positivos y los niveles de parasitemia aumentaron durante el embarazo,  especialmente en el 3° trimestre, disminuyendo después del parto. Una de  estas madres con xenodiagnóstico positivo, transmitió la infección de manera  transplacentaria a su hijo. Por otro lado, Brabin (28) señaló que el embarazo  modifica la respuesta inmunológica a la infección chagásica, produciendo  exacerbación de la parasitemia. Sin embargo, Bittencourt (12) apuntaba  que mujeres en estado crónico de la enfermedad de Chagas desarrollan embarazos  aparentemente normales, presentando pocas evidencias que indiquen cambios  en la respuesta inmune o reflejen exacerbación de la infección. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Las infecciones producidas por <I>T. cruzi</I> en ratas, estimulan una fuerte  y heterogénea respuesta inmune humoral demostrada por la presencia de anticuerpos  específicos anti-<I>T. cruzi</I> circulantes, los cuales pertenecen fundamentalmente  a la clase IgM de las inmunoglobulinas durante la fase aguda y predominio  de las IgG e IgA durante las fases latente y crónica de la infección (29).  En el presente estudio, las ratas de los grupos A, B y C que cursaban la  fase crónica de la infección chagásica, antes del apareamiento, mostraron  niveles elevados de anticuerpos humorales similares a los detectados en  otros modelos experimentales con infección chagásica crónica (15, 29, 30).  La cinética de los perfiles serológicos de IgG e IgM detectados en los  sueros de las ratas crónicamente infectadas durante el período de la gestación  (grupos B y C), sugieren la reactivación de la infección chagásica, ya  que los niveles de IgG disminuyeron levemente a partir de la primera semana  de gestación, mientras que la IgM se incrementó significativamente alcanzando  niveles similares a los observados en las infecciones agudas (10, 29).  En las ratas gestantes que se les permitió el parto normal (grupo C), los  niveles de IgG e IgM regresaron a valores similares a los detectados inicialmente  en el grupo control infectado (A). Estos resultados, son similares a los  observados en humanos por Szarfman y col (31) y Storni y Bolsi (13) quienes  detectaron anticuerpos anti-<I>T. cruzi</I> IgM en el suero de algunas mujeres  embarazadas que cursaban la fase crónica de la enfermedad de Chagas. Los  autores refieren que del grupo de seis mujeres embarazadas, con niveles  importantes de IgM en su suero sanguíneo, dos madres transmitieron la infección  congénita a sus hijos, lo que interpretaron como evidencia de una reactivación  de la infección. En este mismo orden de ideas, Schmuñis y Szarfman (32),  estudiando la presencia de IgM específica y la aplicación de xenodignósticos  repetidos en mujeres embarazadas, demostraron que los niveles de IgM en  las madres chagásicas fue superior al observado en madres no chagásicas;  también encontraron una mayor proporción de xenodiagnósticos positivos  en las mujeres chagásicas embarazadas que en aquellas no embarazadas, lo  que sugiere que el embarazo reactiva la infección. Estas observaciones  han sido confirmadas en parte por Reyes y col (33), quienes utilizando  el ensayo inmunoenzimático (ELISA), detectaron IgM específica en el suero  de diez madres las cuales transmitieron la infección congénita a sus hijos.  Los autores también señalan que esta IgM no fue detectada en el suero sanguíneo  de otras doce madres infectadas quienes no transmitieron la enfermedad. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La presencia de formas flageladas de <I>T. cruzi</I> en el líquido amniótico es  una evidencia de la infección congénita (34). En nuestro trabajo, a pesar  de no observar tripomastigotes en las muestras individuales y en el “pool”  de líquido amniótico examinadas, no descartamos la presencia de formas  flageladas en este medio. Esta aseveración fue recientemente comprobada  por Araujo (26), quién observó formas flageladas de <I>T. cruzi</I> en tubos con  medio de cultivo inoculados con el “pool” de líquido amniótico obtenido  de ratas con infección chagásica aguda, y por Moreno y col (35) quienes  observaron tripomastigotes en el líquido amniótico obtenido de tres sacos  uterinos de una ratoncita con infección chagásica aguda, sacrificada al  término de la gestación. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Alteraciones histopatológicas fueron evidentes en los órganos maternos.  Los cortes de corazón y músculo esquelético de las ratas del grupo B mostraron  una miocarditis y miositis focal con características de cronicidad, destrucción  de algunas fibras musculares con discreta fibrosis y persistencia de parásitos  en el tejido muscular cardíaco; tales hallazgos coinciden con los resultados  publicados por Moreno y col (36) en ratas hembras crónicamente infectadas  con <I>T. cruzi</I> y en humanos con enfermedad de Chagas crónica (37, 38). En  el útero grávido se observó un nido de amastigotes, lo que sugiere la posibilidad  de infección en las crías durante su desarrollo intrauterino. Estos amastigotes,  en un momento dado, podrían multiplicarse activamente, transformándose  en tripomastigotes que se liberarían después de la ruptura celular y podrían  atravesar la membrana del saco uterino y producir la infección fetal (3,  26). Igualmente, se evidenció un moderado infiltrado linfocitario en el  miometrio y abundantes eosinófilos, lo que índica posibles efectos de la  infección por <I>T. cruzi</I>. En los cortes de placentas, se observó de manera  general la instauración de una moderada placentitis, sin parasitismo evidenciable.  Recientemente, Moreno y col (36) demostraron la presencia de parásitos  a nivel de las células trofoblásticas y vellositis, de variable intensidad,  en placentas de ratas crónicamente infectadas con formas sanguícolas de  <I>T. cruzi</I>. Señalan los autores que la presencia de parásitos en la parte  vascular de la placenta, sugiere una posible infección fetal. Similares  hallazgos han sido reportados en placentas humanas, en donde se ha detectado  la presencia de una placentitis chagásica con las vellosidades del epitelio  trofoblástico necrotizado e intenso parasitismo. Este parasitismo placentario  no necesariamente tendría una estricta correlación con la infección fetal,  dado que se han observado casos de enfermedad de Chagas congénita sin el  hallazgo histológico de <I>T. cruzi</I> y nidación placentaria sin infección fetal  (3, 39). </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> En cuanto al tropismo placentario, nuestros resultados podrían interpretarse  según los criterios sostenidos por Andrade (40) y Delgado y Santos-Buch  (41), quienes señalaron que cepas de <I>T. cruzi</I> de diferente origen, presentan  distinto tropismo por la placenta, por lo que la transmisión congénita  depende de la cepa del parásito y de la capacidad fagocítica de los macrófagos  de las vellosidades placentarias. Investigaciones más recientemente, realizadas  por Vago y col (42) y Macedo y col (43) mediante el uso de técnicas moleculares  han demostrado que diferentes cepas y clones de <I>T. cruzi </I>presentan diferencias  en tropismo hacia los tejidos del hospedador vertebrado, estos autores  han formulado la hipótesis denominada “el modelo clonal histotrópico” para  la patogénesis de la enfermedad de Chagas. De conformidad con lo anterior  la cepa DSM de <I>T. cruzi</I> tendría un bajo o inexistente tropismo placentario,  lo cual explicaría en parte la diferencia en la transmisión congénita del  parásito. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El estudio inmunohistoquímico, permitió demostrar la presencia de un pseudoquiste  intracelular en la musculatura esquelética en el grupo C, así como una  marcada reacción con abundantes depósitos antigénicos en el perimisio.  Por las características morfológicas que presenta este pseudoquíste de  parásitos, se podría pensar que es de formación reciente, lo que apoyaría  la tesis de la reactivación de la infección. Por otro lado, la presencia  de depósitos antigénicos en las secciones de corazón, útero, cerebro y  placentas, revelados por la reacción de PAP y el infiltrado inflamatorio  presente, probablemente corresponda a parásitos provenientes de la ruptura  de células hospedadoras infectadas, dispersos entre las células inflamatorias  que median su destrucción. La presencia parasitaria, también ha sido demostrada  con estas técnicas sensibles, como son la IFI y PAP en otras infecciones  experimentales (10, 44) y en humanos con infección chagásica crónica (37,  38). </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Conclusiones </FONT></B></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los resultados obtenidos en el presente trabajo sugieren que en el modelo  experimental rata Wistar crónicamente infectada con <I>T. cruzi</I>, la gravidez  modifica la respuesta inmunológica a la infección, produciéndose de esta  manera reactivación de la infección, con signos característicos a los observados  durante la fase aguda de la enfermedad de Chagas. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Aunque no se observó exacerbación de parasitemias patentes y subpatentes  de <I>T. cruzi</I> en las ratas gestantes, por los métodos de diagnóstico empleados,  el estudio histológico mostró un nido de amastigotes en la musculatura  esquelética comparable a los observados en infecciones agudas recientes. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La gravidez modificó los perfiles de producción de las inmunoglobulinas.  La IgG se mantuvo elevada en las ratas crónicamente infectadas y decayeron  en todos los grupos después de la primera semana de la gestación, mientras  que la IgM, mostró un aumento significativo a partir de la primera semana  de la gestación, regresando a los niveles iniciales después del parto. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El tratamiento de los tejidos con la técnica de PAP, reveló una marcada  reacción con abundantes depósitos antigénicos apreciables y detección de  un pseudoquiste en la musculatura esquelética. Este hallazgo corrobora  la persistencia de parásitos aislados en las ratas con infección crónica,  y la presencia de nidos de amastigotes de reciente formación. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Finalmente, podemos afirmar que, la gravidez produjo la reactivación de  la infección chagásica en el modelo experimental rata Wistar crónicamente  infectadas con <I>T.&nbsp;cruzi</I> DSM; y que las madres infectadas pueden transmitir  transplacentariamente el parásito a un número reducido de su progenie,  independientemente si cursa la infección aguda y/o crónica de la infección. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Agradecimientos </FONT></B></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Al Consejo de Desarrollo Científico, Humanístico y Tecnológico de la Universidad  de los Andes por el financiamiento a través de los Proyectos C-1184-03-03-A,  1181-03-B. FONACIT Proyecto S1-2002000500. </FONT></P>      <p align="justify" style="line-height: 100%"><b><font color="#000000" size="2" face="Verdana">Referencias Bibliográficas</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1. Hoare C. The trypanosomes of mammals. Ed. Blackwell. Sci Publi Oxford &amp; Edinburgh; 1972.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329540&pid=S0075-5222200500010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">2. Amato Neto V., Lopes MH., Setsu UE., de Sousa RMAR., Pinto Dias JC. Outras formas de transmissão do <i>Trypanosoma cruzi</i>. Rev Pat Trop. 2000; 29 (suppl.): 115-129.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329541&pid=S0075-5222200500010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">3. Bittencourt AL. Tansmissão vertical da doença de Chagas. Rev Pat Trop. 2000; 29 (suppl): 101-113.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329542&pid=S0075-5222200500010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">4. Moraes-Souza H. Transmissão transfusional da doença de Chagas. Rev Pat Trop. 2000; 29 (suppl): 9-100.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329543&pid=S0075-5222200500010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">5. World Health Organization. Control of Chagas’disease. Technical Report Series. 1991; 811.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329544&pid=S0075-5222200500010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">6. Bestetti RB., Castillo OT., Teno LAC., Freitas O. Absence of <i>Trypanosoma cruzi</i> myocardial infection reactivation in Chagas’heart transplant. Cardiovasc Pathol. 1994; 3: 257-259.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329545&pid=S0075-5222200500010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">7. Boullon F., Sinagra AJ., Riarte A., Lauricella M., Barra J., Besanson M., et al. Experimental cardiac transplantation and chronic Chagas’ disease in dogs. Transplant Proc. 1988; 20: 432-437.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329546&pid=S0075-5222200500010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">8. Rocha A, Ferreira MS, Nishioka SA, Lopes ER. Interação com a sindrome da inmunodeficiencia adquirida (AIDS). En: Brener, Z, Andrade ZA, Barral-Neto M, editores. <i>Trypanosoma cruzi</i> e doença de Chagas. Editora Guanabara-Koogan Brasil 2000. p. 406-415.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329547&pid=S0075-5222200500010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">9. Machado E., Fernandez A., Murta S., Victro R., Camilo D., Pinheiro, S., et al. A study of experimental reinfection by <i>Trypanosoma cruzi </i>in dogs. Am J Trop Med Hyg. 2001;<i> </i>65: 958-965.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329548&pid=S0075-5222200500010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">10. Martens ML. Efectos de reinoculaciones por <i>Trypanosoma cruzi </i>en un modelo murino (<i>Mus musculus</i>) experimentalmente infectado [Tesis de Licenciatura en Biología]. Mérida: Universidad de los Andes; 2002.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329549&pid=S0075-5222200500010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">11. Sinagra AJ., Riarte A., Lauricella M., Segura E. Reactivation of experimental chronic <i>Trypanosoma cruzi </i>infection after immunosuppressive treatment by cyclosporine A and betametasone. Transplant. 1993; 55: 1431-1434.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329550&pid=S0075-5222200500010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">12. Bittencourt AL. Possible risk factors for vertical tansmission of Chagas’disease. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1992; 34: 403-408.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329551&pid=S0075-5222200500010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">13. Sorni P., Bolsi FL. Embarazo y parasitismo por <i>Trypanosoma cruzi. </i>Med (B.Aires). 1979; 39: 193-197.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329552&pid=S0075-5222200500010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">14. Schmuñis GA., Vattuone VH., Szarfman A., Pesce UJ. Cell mediated inmunity in mice inoculated with epimastigotes or trypomastigotes of <i>Trypanosoma cruzi</i> (Chagas, 1909). Rev Path Trop. 1973; 10: 119-180.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329553&pid=S0075-5222200500010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">15. Carlier Y., Rivera MT., Truyens C., Goldman M., Lambert P., Flament J., et al. Pregnancy and humoral inmune response in mice chronically infected by <i>Trypanosoma cruzi. </i>Infect Inmunity 1987; 55: 2496-2501.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329554&pid=S0075-5222200500010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">16. Moreno EA., González N., Rivera IM., Gillén de PB., Lugo de YA., Añez N. Caracterización biológica e isoenzimática de aislados de <i>Trypanosoma cruzi.</i> Bol Malariol y San Amb. 2002; 42: 17-28.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329555&pid=S0075-5222200500010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">17. Moreno EA., Rivera IM., Moreno SC., Alarcón ME., Lugo de YA. Transmisión vertical de <i>Trypanosoma cruzi</i> en ratas Wistar durante la fase aguda de la infección. Invest Clín. 2003a; 44: 241-254.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329556&pid=S0075-5222200500010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">18. Brener Z. Observações sobre a inmunidade a superinfecções em camundongos experimentalmente inoculados con <i>Trypanosoma cruzi</i> e submetidos a tratamento. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1962; 4: 119-123.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329557&pid=S0075-5222200500010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">19. Freilij H., Müller L., Gonzalez Cappa S. Direct micromethod for diagnosis of acute and congenital Chagas’disease. J Clin Microbiol. 1983; 18: 327-330.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329558&pid=S0075-5222200500010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">20. Camargo ME. Fluorescent antibody test for the serodiagnosis of american tripanosomiasis, technical modification employing preserved culture forms of <i>Trypanosoma cruzi</i> no colostro humano. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1966; 8: 227-234.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329559&pid=S0075-5222200500010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">21. Voller A., Draper C., Bidwell D., Brtleti A. Microplate enzyme-linked-inmunosorbent assay for Chagas’disease. The Lancet 1975; 1: 426-428.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329560&pid=S0075-5222200500010000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">22. Bray R., Garnham PCC. The Giemsa colophonium methods for staining protozoa in tissue section. Indian J Malariol. 1962; 16: 152-155.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329561&pid=S0075-5222200500010000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">23. Sell P., Burton M. Identification of <i>Leishmania</i> amastigotes and their antigens in formalin fixed tissue by inmunoperoxidase staining. Trans Roy Soc Trop Med Hyg. 1981; 75: 461-468.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329562&pid=S0075-5222200500010000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">24. Scorza C., Scorza JV. Acute myocarditis in rats inoculated with <i>Trypanosoma cruzi</i> study of animals sacrificed between the fourth and twenty ninth days after infection. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 1972a; 14: 171-177.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329563&pid=S0075-5222200500010000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">25. World Health Organization. Report of the scientific working group on the development and evaluation of animal models for Chagas’disease. 1984. p. 1-10.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329564&pid=S0075-5222200500010000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">26. Araujo MA. La infección chagásica aguda en ratas Wistar gestantes [Tesis de Licenciatura en Biología]. Mérida: Universidad de los Andes; 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329565&pid=S0075-5222200500010000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">27. Menezes CAS., Bittencourt AL., Sherlock Y., Ferreira J. Avaliação da parasitemia em mulheres portadoras de infecção pelo <i>Trypanosoma cruzi</i> durante e após a gestação. Rev Soc Bras Med Trop. 1992;<i> </i>25: 109-113.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329566&pid=S0075-5222200500010000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">28. Brabin BJ. Epidemiology of infection in pregnancy. Rev Infect Dis. 1985; 7: 579-603.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329567&pid=S0075-5222200500010000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">29. Villarreal JC. Evaluación de las proteínas del glicosoma de <i>Trypanosoma cruzi</i> como antígeno, frente al isótopo de IgG en sueros de personas chagásicas e IgM en sueros de ratas Wistar [Tesis de Maestría]. Mérida: Universidad de los Andes; 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329568&pid=S0075-5222200500010000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">30. Lana M., Chiari E., Tafuri WL. Experimental Chagas’disease in dogs. Mem Inst Oswaldo Cruz 1991;<i> </i>87: 59-71.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329569&pid=S0075-5222200500010000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">31. Szarfman A., Urman J., Otalora A., Larguia A., Yanovsky JF. Specific agglutinins and inmunoglobulin levels in congenital Chagas infection. Med (B. 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Delgado MA., Santos-Buch C. Transplacental transmission and fetal parasitosis of <i>Trypanosoma cruzi</i> in outbread white swiss mice. Am J Trop Med Hyg. 1978; 27: 1108-1115.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1329580&pid=S0075-5222200500010000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify" style="line-height: 100%"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">42. Vago A., Macedo AM., Oliveira RP., Andrade LO., Chiari E., Galvao LMC., et al. Kinetoplast DNA signatures <i>of Trypanosoma cruzi</i> strains obtained directly from infected tissues. 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