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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The genetic structure and lineage diversity of Pyricularia grisea in the Venezuelan rice zone were characterized using 448 monosporic isolates of P. grisea from commercial varieties, experimental lines, foreign varieties and international differential lines grown in plots during 1998, 1999 and 2000, in the Barinas, Cojedes, Guarico and Portuguesa states. Characterization was made by polymerase chain reaction amplification using primers Pot2-1 and Pot2-2. Seven lineages were identified as Ven-1, Ven-2, Ven-3, Ven-4, Ven-5, Ven-6 and Ven-7. The study of the genetic relations between the lineages of P. grisea generated three homogenous groups, the first formed by Ven-5, the second formed by the lineages Ven-2, Ven-3, Ven-4 and Ven-7, and the third by the lineages Ven-1 and Ven-6. Frequency counts were of 76.34, 11.16, 5.58, 2.01, 2.23, 1.56 and 1.12% for Ven-1 to Ven-7, respectively. The equitability index fit by resampling techniques identifies the State of Guarico as the "hot spot site".]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Caracterizou-se a estrutura genética e a diversidade de linhagens de Pyricularia grisea, na zona arrozeira venezuelana. Se empregaram 448 isolamentos monospóricos de P. grisea provenientes de variedades comerciais, linhas experimentais, variedades forâneas e linhas diferenciadoras internacionais durante as colheitas dos anos 1998, 1999 e 2000, nos estados de Barinas, Cojedes, Guárico e Portuguesa. A caracterização se realizou a través da reação em cadeia da polimerasa com os iniciadores Pot2-1 e Pot2-2. Foram identificados sete linhagens, identificados como Ven-1, Ven-2, Ven-3, Ven-4, Ven-5, Ven-6 e Ven-7. O estudo das relações genéticas entre as linhagens de P. grisea gerou três grupos homogêneos, o primeiro formado pela linhagem Ven-5, o segundo pelas linhagens Ven-2, Ven-3, Ven-4 e Ven-7, e o terceiro pelos linhagens Ven-1 e Ven-6. A distribuição de freqüências foi de 76,34; 11,16; 5,58; 2,01; 2,23; 1,56; e 1,12% para o Ven-1 ao Ven-7, respectivamente. O índice de eqüidade ajustado por re-amostragem identifica ao estado Guárico como o "hot spot site".]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Diversidad genética]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Sitio caliente]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <B>    <P align="center"><font face="Verdana" size="3">ESTRUCTURA GEN&Eacute;TICA Y DIVERSIDAD DE LINAJES DE <I>Pyricularia grisea</I> EN LA ZONA ARROCERA VENEZOLANA</font></P>     <P align="center"><font face="Verdana" size="2">Asia Y. Zambrano, Ariadne Vegas, Reinaldo Cardona, Zulay Guti&eacute;rrez y Jhonny R. Demey</font></P> </B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Asia Y. Zambrano. </font> <B><font face="Verdana" size="2">Doctora en Ciencias Agr&iacute;colas, Universidad Central de Venezuela (UCV). Investigador, Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (INIA-CENIAP), Venezuela. Direcci&oacute;n: Apartado 4521. Maracay, 2101. Venezuela. e-mail: azambrano@inia.gob.ve</font></P> </B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Ariadne Vegas. </font> <B><font face="Verdana" size="2">Doctora en Ciencias Agr&iacute;colas, UCV, Venezuela. Investigador, INIA-CENIAP, Maracay, Venezuela.</font></P> </B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Reinaldo Cardona.</font><B> <font face="Verdana" size="2"> Master en Fitopatolog&iacute;a, Universidad Centro Occidental Lisandro Alvarado, Venezuela. Investigador, INIA-Portuguesa, Venezuela.</font></P> </B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Zulay Guti&eacute;rrez. </font> <B><font face="Verdana" size="2">T&eacute;cnico Superior, Instituto Tecnol&oacute;gico Alonso Gamero, Venezuela. T&eacute;cnico Asociado a la Investigaci&oacute;n, INIA-CENIAP, Maracay, Venezuela.</font></P> </B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Jhonny R. Demey. </font> <B><font face="Verdana" size="2">Master en Estad&iacute;stica, UCV, Venezuela. Bioestad&iacute;stico, Centro de Biotecnolog&iacute;a, Fundaci&oacute;n Instituto de Estudios Avanzados (IDEA), Venezuela. e-mail: jdemey@reacciun.ve</font> </B></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se caracteriz&oacute; la estructura gen&eacute;tica y la diversidad de linajes de Pyricularia grisea, en la zona arrocera venezolana. Se emplearon 448 aislamientos monosp&oacute;ricos de P. grisea provenientes de variedades comerciales, l&iacute;neas experimentales, variedades for&aacute;neas y l&iacute;neas diferenciadoras internacionales durante las cosechas de los a&ntilde;os 1998, 1999 y 2000, en los estados de Barinas, Cojedes, Gu&aacute;rico y Portuguesa. La caracterizaci&oacute;n se realiz&oacute; a trav&eacute;s de la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa con los iniciadores Pot2-1 y Pot2-2. Fueron identificados siete linajes, identificados como Ven-1, Ven-2, Ven-3, Ven-4, Ven-5, Ven-6 y Ven-7. El estudio de las relaciones gen&eacute;ticas entre los linajes de P. grisea gener&oacute; tres grupos homog&eacute;neos, el primero formado por el linaje Ven-5, el segundo por los linajes Ven-2, Ven-3, Ven-4 y Ven-7, y el tercero por los linajes Ven-1 y Ven-6. La distribuci&oacute;n de frecuencias fue de 76,34; 11,16; 5,58; 2,01; 2,23; 1,56; y 1,12% para el Ven-1 al Ven-7, respectivamente. El &iacute;ndice de equidad ajustado por remuestreo identifica al estado Gu&aacute;rico como el &quot;hot spot site&quot;.</font></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Summary</b></font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">The genetic structure and lineage diversity of Pyricularia grisea in the Venezuelan rice zone were characterized using 448 monosporic isolates of P. grisea from commercial varieties, experimental lines, foreign varieties and international differential lines grown in plots during 1998, 1999 and 2000, in the Barinas, Cojedes, Guarico and Portuguesa states. Characterization was made by polymerase chain reaction amplification using primers Pot2-1 and Pot2-2. Seven lineages were identified as Ven-1, Ven-2, Ven-3, Ven-4, Ven-5, Ven-6 and Ven-7. The study of the genetic relations between the lineages of P. grisea generated three homogenous groups, the first formed by Ven-5, the second formed by the lineages Ven-2, Ven-3, Ven-4 and Ven-7, and the third by the lineages Ven-1 and Ven-6. Frequency counts were of 76.34, 11.16, 5.58, 2.01, 2.23, 1.56 and 1.12% for Ven-1 to Ven-7, respectively. The equitability index fit by resampling techniques identifies the State of Guarico as the &quot;hot spot site&quot;.</font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Resumo</b></font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Caracterizou-se a estrutura gen&eacute;tica e a diversidade de linhagens de Pyricularia grisea, na zona arrozeira venezuelana. Se empregaram 448 isolamentos monosp&oacute;ricos de P. grisea provenientes de variedades comerciais, linhas experimentais, variedades for&acirc;neas e linhas diferenciadoras internacionais durante as colheitas dos anos 1998, 1999 e 2000, nos estados de Barinas, Cojedes, Gu&aacute;rico e Portuguesa. A caracteriza&ccedil;&atilde;o se realizou a trav&eacute;s da rea&ccedil;&atilde;o em cadeia da polimerasa com os iniciadores Pot2-1 e Pot2-2. Foram identificados sete linhagens, identificados como Ven-1, Ven-2, Ven-3, Ven-4, Ven-5, Ven-6 e Ven-7.  O estudo das rela&ccedil;&otilde;es gen&eacute;ticas entre as linhagens de P. grisea gerou tr&ecirc;s grupos homog&ecirc;neos, o primeiro formado pela linhagem Ven-5, o segundo pelas linhagens Ven-2, Ven-3, Ven-4 e Ven-7, e o terceiro pelos linhagens Ven-1 e Ven-6. A distribui&ccedil;&atilde;o de freq&uuml;&ecirc;ncias foi de 76,34; 11,16; 5,58; 2,01; 2,23; 1,56; e 1,12% para o Ven-1 ao Ven-7, respectivamente. O &iacute;ndice de eq&uuml;idade ajustado por re-amostragem identifica ao estado Gu&aacute;rico como o &quot;hot spot site&quot;.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">PALABRAS CLAVE / A&ntilde;ublo / Diversidad gen&eacute;tica / Linaje / <I>Oryza sativa</I> / <I>Pyricularia oryzae </I>/ Sitio caliente /</font></P> </B><FONT SIZE=2>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: 25/01/2005. Modificado: 15/11/2005. Aceptado: 16/11/2005.</font></P> </FONT><B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Introducci&oacute;n</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">El arroz (<I>Oryza sativa </I>L.) es uno de los mayores cereales producidos a nivel mundial, supliendo aproximadamente el 23% de la energ&iacute;a <I>per c&aacute;pita</I> de seis mil millones de personas (Tan <I>et al.</I>, 2001). Ocupa el segundo lugar despu&eacute;s del trigo en superficie cosechada, pero desde el punto de vista alimenticio una mayor cantidad de poblaci&oacute;n depende del arroz. En Venezuela anualmente se cultivan alrededor de 135000ha de arroz con un producci&oacute;n anual promedio de 700000ton (IRRI, 2005), distribuidas en los estados Barinas, Cojedes, Delta Amacuro, Gu&aacute;rico y Portuguesa. Cerca del 85% de la producci&oacute;n nacional se concentra en el &aacute;rea bajo riego de los estados Gu&aacute;rico y Portuguesa, con un rendimiento promedio de 5,19t/ha (IRRI, 2005).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">El hongo piricularia (<I>Pyricularia grisea</I> (Cooke) Sacc.) es considerada la m&aacute;s devastadora enfermedad del arroz a nivel mundial, debido a su amplia distribuci&oacute;n y las graves perdidas econ&oacute;micas que ocasiona. Produce una enfermedad criptog&aacute;mica compleja debido a la variabilidad patog&eacute;nica y la rapidez con que este hongo vence la resistencia de la planta. El micelio del hongo produce una sustancia t&oacute;xica conocida como piricularina, que inhibe el crecimiento de los tejidos y los desorganiza. En las hojas, las lesiones t&iacute;picas son manchas el&iacute;pticas de color gris o blanquecino en el centro y bordes marrones a rojizo, las cuales pueden unirse dependiendo de las condiciones ambientales y de la susceptibilidad del cultivar, lo que produce la reducci&oacute;n del &aacute;rea fotosint&eacute;tica y por tanto del rendimiento. En el cuello de la pan&iacute;cula, la colonizaci&oacute;n del hongo inhibe el flujo de fotosintetizados hacia los granos en formaci&oacute;n, originando pan&iacute;culas vac&iacute;as y la ca&iacute;da de las mismas. Los cultivares susceptibles sembrados en condiciones favorables para el desarrollo del hongo pueden ser totalmente destruidos en la fase de pl&aacute;ntula o macollamiento. Cuando no hay destrucci&oacute;n total del cultivo es bastante dif&iacute;cil estimar las perdidas, por lo que no hay una estimaci&oacute;n exacta de las mismas, pero se considera que las perdidas son proporcionales al porcentaje del &aacute;rea foliar o del cuello de la pan&iacute;cula afectada (Ou, 1985).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">El mecanismo de resistencia gen&eacute;tica a piricularia ha sido atribuido a genes dominantes de efectos mayores (Kiyosawa <I>et al</I>., 1986) y en otros casos a grupos de genes de efectos menores (Lin, 1986 y Wang <I>et al</I>., 1989), constituyendo el desarrollo de variedades resistentes a la enfermedad la v&iacute;a m&aacute;s econ&oacute;mica para su control y con menor impacto ambiental. Sin embargo, esta resistencia es usualmente superada despu&eacute;s de que los cultivares son liberados, debido a los continuos cambios y evoluci&oacute;n del pat&oacute;geno, los cuales dan origen a nuevos patotipos en el ecosistema compatibles con los cultivares resistentes. La liberaci&oacute;n de variedades resistentes requiere la implementaci&oacute;n de pr&aacute;cticas agr&iacute;colas integrales que tomen en cuenta la interacci&oacute;n entre los genes de resistencia y las poblaciones del pat&oacute;geno, la din&aacute;mica de virulencia del hongo y el flujo de genes a las malezas y a especies silvestres relacionadas al arroz (Roca <I>et al.</I>, 1996)</font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los aspectos de mayor importancia a ser considerados en el desarrollo de variedades con resistencia duradera a la enfermedad causada por el hongo piricularia son la identificaci&oacute;n del sitio (<I>hot spot site</I>)<I> </I>donde se realizar&aacute; la selecci&oacute;n de progenitores y l&iacute;neas, y la identificaci&oacute;n fiable de las<B> </B>razas del hongo. En el primer aspecto, Correa-Victoria y Zeigler (1994) indican que un sitio ser&aacute; considerado m&aacute;s caliente o <I>hot spot site</I> si existe una alta presi&oacute;n de la enfermedad y diversidad del pat&oacute;geno asociada a condiciones ambientales favorables al desarrollo del hongo. En el segundo, la gran variabilidad patog&eacute;nica del hongo es una de las mayores limitantes en el mejoramiento gen&eacute;tico (Ahn, 1994), por lo que la utilizaci&oacute;n del concepto de linaje o familias gen&eacute;ticas con caracter&iacute;sticas similares e identificadas a trav&eacute;s de <I>‘fingerprinting’</I> del ADN del hongo y de su espectro de virulencia en pruebas de invernadero, reduce la complejidad del manejo del gran n&uacute;mero de razas del hongo (Guimaraes <I>et al</I>., 1996, 1998; George <I>et al</I>., 1998), permitiendo establecer programas de mejoramiento basados en la teor&iacute;a de exclusi&oacute;n de linajes (Levy <I>et al</I>., 1991).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Para el estudio de la estructura gen&eacute;tica e identificaci&oacute;n de linajes de <I>P. grisea </I>se han<I> </I>utilizado dos metodolog&iacute;as. Levy <I>et al.</I> (1991) agrupan la poblaci&oacute;n del hongo en familias gen&eacute;ticas a trav&eacute;s de la utilizaci&oacute;n de la secuencia repetitiva de ADN conocida como MGR586 o <I>‘fingerprinting’</I> del ADN. Esta sonda que utiliza la t&eacute;cnica RFLP (<I>Restriction Fragment Length Polymorphism</I>) restringiendo el ADN del hongo con la enzima <I>EcoRI</I>,<I> </I>detecta entre 50 y 60 perfiles geon&oacute;micos. George <I>et al.</I> (1998) desarrollaron la t&eacute;cnica rep-PCR (<I>Repetitive Element-Based Polymerase Chain Reaction</I>) usando los iniciadores Pot-2, la cual posee la misma sensibilidad para discriminar los aislamientos de <I>P. grisea </I>que la t&eacute;cnica RFLP, pero es m&aacute;s simple y econ&oacute;mica, demostr&aacute;ndose la correspondencia entre los linajes definidos por rep-PCR y por RFLP.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se han realizado numerosos estudios moleculares de diversidad gen&eacute;tica de<I> P. grisea</I> con aislamientos del hongo provenientes de diferentes regiones del mundo, detect&aacute;ndose que est&aacute;n compuestos de peque&ntilde;os n&uacute;meros, entre 2 y 8, de linajes bien diferenciados. Se han detectado 6 linajes en Colombia (Levy <I>et al.</I>, 1991, 1993), 7 linajes en Filipinas (Zeigler <I>et al.</I>, 1995), 5 linajes en Europa (Francia, Hungr&iacute;a, Italia, Portugal y Espa&ntilde;a; Roumen <I>et al.</I>, 1997), 8 linajes en Estados Unidos (Correl <I>et al.</I>, 2000), 2 linajes en Brasil (Prabhu <I>et al</I>., 2002) y 5 linajes en Ir&aacute;n (Javan-Nikkhah <I>et al.</I>, 2004). La conformaci&oacute;n de la referencia internacional de la diversidad del pat&oacute;geno permitir&aacute; la selecci&oacute;n de fuentes de resistencia para regiones productoras de arroz del mundo.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">En Venezuela se han realizado estudios preliminares de estandarizaci&oacute;n de la metodolog&iacute;a de amplificaci&oacute;n de rep-PCR (Arnao <I>et al.</I>, 2003). Con el objeto de generar la informaci&oacute;n b&aacute;sica que contribuya a la estrategia de mejoramiento, en el presente trabajo se caracteriza la estructura gen&eacute;tica y se estudia la diversidad de linajes de <I>P. grisea</I> en la zona arrocera venezolana, a trav&eacute;s de la t&eacute;cnica rep-PCR.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Materiales y M&eacute;todos</font></P> </B><I>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Material vegetal</font></P> </I>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La colecci&oacute;n del hongo se realiz&oacute; en parcelas comerciales de los estados venezolanos de Barinas, Cojedes, Gu&aacute;rico y Portuguesa, en las localidades de Toruno, San Carlos, Bancos de San Pedro y Araure. El muestreo fue realizado de manera aleatoria sobre las variedades comerciales, l&iacute;neas experimentales, variedades for&aacute;neas y l&iacute;neas diferenciadoras internacionales sembradas durante las cosechas de los a&ntilde;os 1998, 1999 y 2000, y se afijo proporcionalmente sobre el &aacute;rea sembrada por localidad, a raz&oacute;n de 25, 19, 47 y 9% para los estados Barinas, Cojedes, Gu&aacute;rico y Portuguesa, respectivamente, que representan el 98% del &aacute;rea total sembrada de arroz en Venezuela.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las fuentes de aislamiento del hongo se obtuvieron de 27 cultivares, de los cuales ARAURE 1, ARAURE 2, ARAURE 3, ARAURE 4, CIMARRON, FONAIAP 1, FONAIAP 2, CT 15 y PALMAR son variedades comerciales que han sido sembradas en Venezuela durante los &uacute;ltimos 20 a&ntilde;os; CMCEPA, FD9702, FD9706, LINEA 6 y PN97A004 son l&iacute;neas experimentales; BLUEBONNET 50, CAPI 93, FANNY, IR8, IRGA416, MUDGO, ORYZICA LLANO 5, ORYZICA 1, UF1 y UF4 son variedades for&aacute;neas; y CALORO, DULAR y SHA TIA TSAO l&iacute;neas diferenciadoras internacionales.</font></P>  <I>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aislamiento y multiplicaci&oacute;n del hongo</font> </P> </I>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La recolecci&oacute;n de las hojas infectadas en el campo, el aislamiento y la multiplicaci&oacute;n del hongo en el laboratorio fueron realizadas seg&uacute;n metodolog&iacute;a descrita por Guimaraes <I>et al</I>. (1996). Los aislamientos fueron obtenidos en campo de hojas enfermas de los diferentes cultivares sembrados a partir de secciones de hojas con una sola lesi&oacute;n, lavada previa colocaci&oacute;n en c&aacute;mara h&uacute;meda. Los aislamientos fueron incubados por 24 a 48h en ambiente de laboratorio con el objeto de inducir la esporulaci&oacute;n. Una vez esporuladas las lesiones, con la ayuda de un microscopio estereoscopio y un hisopo met&aacute;lico, se tomaron esporas que fueron transferidas y esparcidas en cajas de Petri est&eacute;ril contentivas de agar-agua acidificado (AAA). A las 24h de ser transferidas, se tomaron secciones de AAA contentivas de una sola espora germinada, ubicada con la ayuda del microscopio y se colocaron 5 trozos por caja de Petri est&eacute;ril contentiva de agar-salvado de arroz (ASA) obteniendo as&iacute; los aislamientos monosp&oacute;ricos. La identificaci&oacute;n de <I>P. grisea</I> fue confirmada con la ayuda de un microscopio compuesto.</font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Cada aislamiento se almacen&oacute; sobre papel de filtro seco bajo refrigeraci&oacute;n (-4ºC) hasta su utilizaci&oacute;n. Los aislamientos fueron reactivados colocando una secci&oacute;n de papel de filtro contentivo de micelio y esporas del hongo en una c&aacute;psula de Petri est&eacute;ril conteniendo ASA. Se obtuvo un total de 448 aislamientos monosp&oacute;ricos de <I>P. grisea</I> provenientes de hojas de arroz infectadas en campo.</font></P>  <I>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Extracci&oacute;n y amplificaci&oacute;n del ADN</font></P> </I>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">El ADN total de cada aislamiento monosp&oacute;rico de <I>P. grisea </I>se extrajo mediante el protocolo de miniextracci&oacute;n con CTAB descrito en CIAT (1994), la cuantificaci&oacute;n se realiz&oacute; por comparaci&oacute;n visual con el ADN de fago </font><font size="2" face="Symbol">l</font><font face="Verdana" size="2"> no digerido y su amplificaci&oacute;n se efectu&oacute; seg&uacute;n metodolog&iacute;a propuesta por George <I>et al.</I> (1998) y CIAT (1994).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las amplificaciones del ADN se realizaron en una mezcla de reacci&oacute;n final de 25µl constituida por 2,5mM de tamp&oacute;n 10X (10mM tris HCl; pH 9,0; 50mM KCl; 0,1% Triton<sup>&reg;</sup> X-100); 1,5mM de MgCl<sub>2</sub>; 750µM de sulfato de amonio; 0,185mM de dNTPs (A, C, G y T); 2,5U de Taq polimerasa (Promega<sup>&reg;</sup>); 100ng de ADN; y 0,5µM de cada uno de los iniciadores <I>Pot2-1</I> [5'-CGG AAG CCC TAA AGC TGT TT-3'] y <I>Pot2-2</I> [5'-CCC TCA TTC GTC ACA CGT TC-3']. Se adicion&oacute; 20µl de aceite mineral para cubrir la reacci&oacute;n.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La amplificaci&oacute;n fue realizada en un termociclador modelo GeneE (TECHNE<sup>&reg;</sup>), bajo los siguientes perfiles de temperatura: 1 ciclo de desnaturalizaci&oacute;n a 95ºC por 2,5min; 4 ciclos cada uno con un segmento de desnaturalizaci&oacute;n a 94ºC por 1min; uno de alineamiento de iniciadores a 62ºC por 1min; y uno de extensi&oacute;n a 65ºC por 10min. Ello fue seguido por 26 ciclos cada uno con 30s a 95ºC de desnaturalizaci&oacute;n, 1min a 62ºC de alineamiento de <I>primer</I> y 10min a 65ºC de extensi&oacute;n, con un ciclo de extensi&oacute;n final a 65ºC por 10min.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los productos de PCR fueron separados electrofor&eacute;ticamente en geles de agarosa al 1,0% y buffer TBE 1X, corridos por 4h a 120V, visualizando los fragmentos de amplificaci&oacute;n con bromuro de et&iacute;dio y se fotografiaron con una pel&iacute;cula tipo Polaroid 667.</font></P>  <I>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">An&aacute;lisis de los datos</font></P> </I>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Para el an&aacute;lisis molecular de los linajes, los fragmentos de amplificaci&oacute;n obtenidos fueron codificados como 0 y 1 para fragmentos ausentes y presentes, respectivamente. El contenido de informaci&oacute;n polim&oacute;rfica (PIC) y el error est&aacute;ndar Bootstrap asociado a este, se utilizaron para evaluar la capacidad del iniciador en detectar el polimorfismo del locus en los linajes de <I>P. grisea </I>caracterizados (Anderson <I>et al.,</I> 1993). Se calcul&oacute; la probabilidad de obtener parejas id&eacute;nticas de alelos por cambio de alelo en los linajes seg&uacute;n metodolog&iacute;a descrita por Wetton <I>et al. </I>(1987) y Ramakrishna <I>et al. </I>(1994), modificada por Demey <I>et al</I>. (2003).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Con los patrones generados se estudiaron las relaciones gen&eacute;ticas entre los linajes de <I>P. grisea</I> a trav&eacute;s de la representaci&oacute;n gr&aacute;fica generada por el m&eacute;todo no-jerarquico del <I>Neighbor Joining</I> (Saitou y Nei, 1987) y la disimilitud debida al coeficiente de Dice (Dice, 1945). La estabilidad de la agrupaci&oacute;n se estudi&oacute; a trav&eacute;s del &aacute;rbol de consenso generado por remuestreo (n=1000; Felsenstein, 1985; Nei y Kumar, 2000).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La equidad, calculada como &Iacute;ndice de diversidad de Shannon / Ln (n&uacute;mero de especies) (Pielou, 1975) ajustada por remuestreo para n=1000 seg&uacute;n metodolog&iacute;a descrita por Pla (2004), es utilizada para estimar la diversidad de los linajes de <I>P. grisea</I> por localidad, a&ntilde;os y para el total en estudio. El &iacute;ndice de equidad derivado de los vectores de frecuencias por linaje, remuestreados con reemplazo, proporciona una medida relativa de la homogeneidad en que se distribuyen los 448 aislamientos monosp&oacute;ricos de <I>P. grisea</I> dentro de los diferentes linajes y permite confrontar las localidades y determinar el sitio m&aacute;s caliente o <I>hot spot site</I>, bajo el supuesto que el menor valor del &iacute;ndice de equidad esta asociado a una menor diversidad o mayor concentraci&oacute;n en alguno de los linajes presentes.</font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Todos los an&aacute;lisis se realizaron utilizando Info-Gen ver. 1 (Balzarini <I>et al.</I>, 2003), InfoStat ver. Profesional (InfoStat, 2004), Resampling Stats ver. 5,02 (Resampling, 1999), FreeTree ver. 0.9.1.50 (Pavlicek <I>et al.</I>, 1999) y Treeview ver. 1.6.0. (Page, 1996).</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Resultados y Discusi&oacute;n</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">El m&eacute;todo de extracci&oacute;n de ADN fue simple, r&aacute;pido y eficiente, produciendo entre 200 y 300ng/µl de ADN de buena calidad. Los iniciadores<I> Pot2-1 y Pot2-2 </I>detectaron<I> </I>siete linajes, identificados como Ven-1, Ven-2, Ven-3, Ven-4, Ven-5, Ven-6 y Ven-7. El patr&oacute;n electrofor&eacute;tico y la identidad gen&eacute;tica en pares de bases de los linajes venezolanos de <I>P. grisea</I> se muestran en la <a href="#f1"> Figura 1</a>. El contenido de informaci&oacute;n polim&oacute;rfica (PIC) promedio fue de 0,2518 ±0,1191 con un valor m&iacute;nimo de 0,2149 y un m&aacute;ximo de 0,3698; este valor m&aacute;ximo de PIC correspondi&oacute; a los loci <I>Pot2-</I>125, <I>Pot2-</I>2008, <I>Pot2-</I>2019, <I>Pot2-</I>2322 y <I>Pot2-</I>2428, lo que representa m&aacute;s del 50% del contenido de informaci&oacute;n polim&oacute;rfica del intervalo te&oacute;rico de 0,01 a 0,50, por lo que estos fragmentos de amplificaci&oacute;n pueden ser usados como referencia en subsecuentes investigaciones. El &iacute;ndice de similaridad promedio fue de 0,2006 ±0,0323. La probabilidad de que dos diferentes linajes venezolanos de<I> P. grisea</I>, usando los iniciadores <I>Pot-2,</I> tengan igual identidad es de 2,51x10<sup>-16</sup>, lo que indica un alto grado de confianza en la identificaci&oacute;n hasta de 10<sup>16</sup> linajes comparados simult&aacute;neamente, permitiendo detectar el linaje espec&iacute;fico de cada uno de los 448 aislamientos monosp&oacute;ricos de <I>P. grisea </I>provenientes de las muestras de hojas de las variedades comerciales, l&iacute;neas experimentales, variedades for&aacute;neas y l&iacute;neas diferenciadoras internacionales, sembradas entre los a&ntilde;os 1998 y 2000.</font></P>      <P align="center"><a name="f1"><img border="0" src="/img/fbpe/inci/v31n1/art12img01.gif" width="580" height="280"></a></P>      
<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La <a href="#f2"> Figura 2</a> muestra las relaciones gen&eacute;ticas entre los linajes de <I>P. grisea</I>. El &aacute;rbol genera tres grupos homog&eacute;neos, el primero formado por el linaje Ven-5, el segundo lo forman los linajes Ven-2, Ven-3, Ven-4 y Ven-7, y el tercero los linajes Ven-1 y Ven-6. As&iacute; mismo, se destaca la diferencia del Ven-5 respecto al resto de los linajes. La distribuci&oacute;n de frecuencia de los linajes fue 76,34; 11,16; 5,58; 2,01; 2,23; 1,56; 1,12% para el Ven-1 al Ven-7, respectivamente. Los resultados no permiten establecer una correspondencia entre las relaciones gen&eacute;ticas de los linajes estudiados a trav&eacute;s del &aacute;rbol de consenso y su distribuci&oacute;n. Aunque se destaca que en el 100% de los casos en que se construye el &aacute;rbol el linaje Ven-5 se diferencia del resto, la distribuci&oacute;n de frecuencia no muestra diferencias estad&iacute;sticamente significativas (p&gt;0,05) respecto a los linajes Ven-4, Ven-6 y Ven-7.</font></P>      <P align="center"><a name="f2"><img border="0" src="/img/fbpe/inci/v31n1/art12img02.gif" width="427" height="219"></a></P>      
<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La <a href="#t1"> Tabla I</a> presenta las frecuencias de los linajes de <I>P. grisea </I>por localidad y a&ntilde;o, y el &iacute;ndice de equidad asociado. Los resultados referidos al &iacute;ndice de equidad muestran que, con excepci&oacute;n del a&ntilde;o 2000, el estado Gu&aacute;rico es el sitio m&aacute;s caliente. Este &iacute;ndice ajustado por la metodolog&iacute;a del Bootstrap corrige las imperfecciones derivadas del muestreo, garantizando la calidad de los resultados obtenidos. Adicionalmente, la distribuci&oacute;n de frecuencia observada del linaje Ven-1 es &gt;75%, lo que disminuye la incertidumbre respecto a las frecuencias de ceros. Las localidades con &iacute;ndice equidad igual o cercana a 1 indican que la distribuci&oacute;n de la probabilidad de aparici&oacute;n de cada linaje es constante e igual a 1/n&uacute;mero de linajes.</font></P>      <P align="center"><a name="t1"><img border="0" src="/img/fbpe/inci/v31n1/art12tab1.gif" width="430" height="429"></a></P>      
<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Estos resultados fueron corroborados generando las diferencias necesarias para que todos los sitios tuviesen la misma frecuencia de linajes, es decir, el n&uacute;mero de linajes que hubiesen sido necesarios para producir el mismo valor de diversidad de Shannon para cada localidad. Este an&aacute;lisis de &quot;redundancia&quot; mostr&oacute; resultados similares a los obtenidos con el &iacute;ndice de equidad ajustado (datos no mostrados).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Estudios moleculares de diversidad gen&eacute;tica de <I>P. grisea</I> con aislamientos del hongo provenientes de diferentes regiones del mundo se&ntilde;alan que en relaci&oacute;n con Venezuela (7 linajes) existe menor diversidad del hongo en Brasil (Prabhu <I>et al</I>., 2002), Ir&aacute;n (Javan-Nikkhah <I>et al</I>., 2004), Francia, Hungr&iacute;a, Italia, Portugal y Espa&ntilde;a (Roumen <I>et al.</I>, 1997) y Colombia (Levy <I>et al</I>., 1991 y 1993); igual diversidad del pat&oacute;geno en Filipinas (Zeigler<I> et al</I>., 1995) y mayor diversidad de <I>P. grisea</I> en Estados Unidos (Correl <I>et al</I>., 2000). Estos resultados indican que Venezuela posee una diversidad del pat&oacute;geno que contribuye en forma significativa con la conformaci&oacute;n de la referencia internacional que permitir&aacute; la selecci&oacute;n de fuentes de resistencia para regiones productoras de arroz del mundo.</font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">El conocimiento sobre la caracterizaci&oacute;n de las familias gen&eacute;ticas de <I>P. grisea</I> presentes en el pa&iacute;s contribuir&aacute; de manera significativa al establecimiento de la estrategia de mejoramiento basada en la teor&iacute;a de exclusi&oacute;n de linajes, tomando en cuenta que en cada regi&oacute;n donde se cultiva arroz existen grupos de linajes diferentes y, por lo tanto, se deber&aacute;n seleccionar progenitores que aporten genes de resistencia a dichos grupos.</font> </P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La determinaci&oacute;n del <I>hot spot site</I> o la localidad con mayor presi&oacute;n y diversidad de linajes adquiere importancia a la hora de emprender un programa de mejoramiento en la zona arrocera venezolana, ya que las localidades estudiadas presentan condiciones ambientales similares, caracterizadas por altas temperaturas, humedad relativa y diferencia entre temperaturas diurnas y nocturnas (Mu&ntilde;oz y Gamboa, 1998; Navas <I>et al.</I>, 2003), condiciones que han sido reportadas como favorables a desarrollo del hongo.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">El monitoreo de la evoluci&oacute;n que conduce a cambios importantes en el espectro gen&eacute;tico de la estructura y de la virulencia del pat&oacute;geno es importante para identificar genes de resistencia y sus combinaciones, que les permitan resistir los nuevos patotipos y prevenir la interrupci&oacute;n de la resistencia.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aunque no es posible predecir si la resistencia a una enfermedad es duradera o ef&iacute;mera, el conocimiento de la estructura gen&eacute;tica de las poblaciones del pat&oacute;geno puede ser de utilidad para hacer predicciones sobre la posibilidad de adaptaci&oacute;n del pat&oacute;geno a las variedades resistentes, lo cual es de inter&eacute;s antes de que &eacute;stas se siembren extensivamente. El conocimiento de los linajes de <I>P. grisea</I> que afectan los cultivares de arroz bajo ensayos comerciales en Venezuela es de utilidad para el establecimiento de los programas de mejoramiento tradicionales, ya que la resistencia duradera es debida a la combinaci&oacute;n multig&eacute;nica de variedades que expresan la complementariedad de la resistencia a un amplio rango de linajes del hongo.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">AGRADECIMIENTOS</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La investigaci&oacute;n fue parcialmente financiada por el INIA-CENIAP y FUNDARROZ a trav&eacute;s del proyecto: &quot;Identificaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de razas y linajes gen&eacute;ticos del hongo <I>Pyricularia grisea</I> en Venezuela&quot;.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS</font></P> </B>     <!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Ahn SW (1994) International collaboration on breeding for resistance to rice blast. En Zeigler RS, Leong SA, Teng PS (Eds.) <I>Rice blast disease</I>. CABI/IRRI. Wallingford, RU. pp 137-153.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010571&pid=S0378-1844200600010001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Anderson JA, Churchill GA, Autrique JE, Tanksley SD, Sorrells ME (1993) Optimizing parental selection for genetic linkage maps. <I>Genome 36</I>: 181-186.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010572&pid=S0378-1844200600010001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Arnao E, Vegas A, Guti&eacute;rrez Z, Mar&iacute;n C(2003) Estandarizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de PCR para la caracterizaci&oacute;n gen&eacute;tica de una poblaci&oacute;n venezolana de <I>Pyricularia</I> <I>grisea</I>.<B> </B><I>Fitopatol. Venez. 16(1)</I>: 3-10.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010573&pid=S0378-1844200600010001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Balzarini M, Di Rienzo J, Casanoves F (2003) Info-Gen: Un ambiente integrado para el an&aacute;lisis de datos gen&eacute;ticos. En <I>II Meeting Caribbean and Central American Region</I>. International Biometrics Society. Puerto Rico, USA. pp. 20.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010574&pid=S0378-1844200600010001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. CIAT (1994) <I>Taller Integraci&oacute;n de fitopatolog&iacute;a; mejoramiento y biolog&iacute;a molecular para el desarrollo de resistencia estable al a&ntilde;ublo del arroz</I> (Pyricularia grisea). Centro Internacional de Agricultura Tropical. Cal&iacute;, Colombia.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010575&pid=S0378-1844200600010001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Correa-Victora FJ, Zeigler RS (1994) Pathogenic variability in <I>Pyricularia grisea</I> at a rice blast &quot;hot spot&quot; breeding site in Eastern Colombia. <I>Plant Dis. 77</I>: 1029-1035.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010576&pid=S0378-1844200600010001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Correl JC, Harp TL, Guerber JC, Zeigler RS, Liu B, Cartwright RD, Lee FN (2000) Characterization of <I>Piricularia grisea </I>in the United States using independent genetic and molecular markers. <I>Ecol. Popul. Biol. 901</I>: 398-14-04.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010577&pid=S0378-1844200600010001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Demey JR, Zambrano AY, Fuenmayor F, Segovia V (2003) Relaci&oacute;n entre las caracter&iacute;sticas moleculares y morfol&oacute;gicas en una colecci&oacute;n de Yuca. <I>Interciencia 28</I>: 684-689.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010578&pid=S0378-1844200600010001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Dice LR (1945) Measures of the amount of ecologic association between species. <I>Ecology 26</I>:297-302.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010579&pid=S0378-1844200600010001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Felsenstein J (1985) Confidence limits on phylogenies: An approach using the bootstrap. <I>Evolution 39</I>: 783-791.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010580&pid=S0378-1844200600010001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Filippi MC, Prabhu AS, Levy EM (1999) Differential compatibility of <I>Pyricularia grisea</I> isolates with some Brazilian irrigated rice cultivars. <I>Fitopatol. Bras. 24</I>: 447-450.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010581&pid=S0378-1844200600010001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. George MLC, Nelson RJ, Zeigler RS, Leungh H (1998) Rapid population analysis of Magnaporthe grisea by using rep-PCR and endogenous repetitive DNA sequences. <I>Phytopathology 88</I>: 223-229.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010582&pid=S0378-1844200600010001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Guimaraes EP, Ospina P, Correa-Victoria E (1996) Empleo del concepto de linajes de <I>Pyricularia grisea</I> para escoger germoplasma de arroz resistente. <I>Fitopatol. 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Javan-Nikkhah M, McDonald B, Banke S, Hedjaroude GA (2004) Genetic structure of Iranian <I>Pyricularia grisea </I>populations based on rep-PCR fingerprinting. <I>Eur. J. Plant Pathol. 110</I>: 909-919.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010587&pid=S0378-1844200600010001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Kiyosawa S, Mackill DJ, Bonman JM, Tanaka Y, Ling ZZ (1986) An attempt of classification of world’s rice varieties based on reaction pattern to blast fungus strains. <I>Bull. Nat. Inst. Agrobiol. 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Levy M, Correa-Victoria F, Zeigler R, Xu S, Hamer J (1993) Genetic diversity of rice blast fungus in a disease nursery in Colombia. <I>Phytopathology 83</I>: 1427-1433.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010590&pid=S0378-1844200600010001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Lin SC (1986) Genetic analysis of minor gene resistance to blast in japonica rice. En <I>Rice Genetics</I>. International Rice Research Institute. 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Navas M, Gamboa C, Torres O, Salazar M, Mar&iacute;n C, Crespo J, Guti&eacute;rrez R (2003) Estimaci&oacute;n de la &eacute;poca de mayor presi&oacute;n de in&oacute;culo de <I>Pyricularia grisea</I> Sacc. en el campo experimental del Centro de Investigaciones Agropecuarias del Estado Barinas, Venezuela. <I>Investigaci&oacute;n Agr&iacute;cola 8</I>(2) www.redpav-fpolar.info.ve/danac/volumen8/ art2/index. html</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010593&pid=S0378-1844200600010001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">24. Nei M, Kumar S (2000) <I>Molecular Evolution and Phylogenetics</I>. Oxford University Press. 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Page RDM (1996) TREEVIEW: An application to display phylogenetic trees on personal computers. <I>Computer Applications in the Biosciences. 12:</I> 357-358.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010596&pid=S0378-1844200600010001200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">27. Pavlicek A, Hrda S, Flegr J (1999) FreeTree - Freeware program for construction of phylogenetic trees on the basis of distance data and bootstrap/jackknife analysis of the tree robustness. 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Pla L (2004) Bootstrap confidence intervals for the Shannon biodiversity index: A simulation study. <I>J Agric. Biol. Environ. Stat. 9</I>: 1-15.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010599&pid=S0378-1844200600010001200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">30. Prabhu AS, Filippi MC, Araujo LG, Faria JC (2002) Genetic and phenotypic characterization of isolates of <I>Pyricularia grisea</I> from the rice cultivars epagri 108 and 109 in the state of Tocantins. <I>Fitopatol. 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Resampling (1999) <I>Resampling Stats</I> ver. 5,02. Resampling Stats Inc. Arlington, EEUU.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010602&pid=S0378-1844200600010001200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">33. Roca W, Correa-Victora FJ, Mart&iacute;nez C, Tohme J, Lentini Z, Levy M (1996) Developing durable resistance to rice blast: Productivity and environmental considerations. 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Wang Z, Mackill DJ, Bonman JM (1989) Inheretance of partial resistance to blast in indica rice cultivars. <I>Crop Sci. 29</I>: 848-853.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1010607&pid=S0378-1844200600010001200037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">38. 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