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<publisher-name><![CDATA[Instituto de Investigaciones Clínicas "Dr. Américo Negrette", Facultad de Medicina, Universidad del Zulia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Ingeniería de tejidos y producción de piel humana in vitro]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Tissue engineering and construction of human skin in vitro]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Central de Venezuela Facultad de Ciencias Instituto de Biología Experimental]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Tissue engineering is the new science that has come to make possible the growth of new organ tissue from small fragments of healthy tissue, thus partially or totally restoring the lost functions of ill tissues or organs, as shown by the achievements made with the culture of skin, cornea or cartilage. Thus far, this new science is able to ensure the recovery of lost functions and, doubtlessly, in a near future will be capable of developing tissues and organs not unlike natural ones. In our laboratory we have began the development of tissue engineering techniques for the successful construction of in vitro skin with the aim at mid term of producing cornea and cartilage. In a first clinical trial, these techniques were applied in the treatment of chronic skin lesions and the advantages and reach of these new tools were demonstrated for the effective solution of problems with would otherwise not be easily solved through the use of conventional treatments.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <BASEFONT SIZE="3">     <P ALIGN="center"><font face="Verdana" size="3" color="#1f1a17"><b>Ingenier&#237;a de tejidos y producci&#243;n de piel humana <I>in vitro</I>.&nbsp;</b></font></P>     <P ALIGN="center"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Francisco Arvelo.</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Laboratorio de Cultivo de Tejidos y Biolog&#237;a de Tumores, Centro de Biolog&#237;a  Celular, Instituto de Biolog&#237;a Experimental, Facultad de Ciencias, Universidad  Central de Venezuela. Apartado 47114, Caracas 1041A, Venezuela. Correo  electr&#243;nico: franarvelo@yahoo.es&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">Autor de correspondencia: Francisco Arvelo. Instituto de Biología Experimental, Facultad de Ciencias, Universidad Central de Venezuela, Calle Suapure, Colinas de Bello Monte. Caracas, Venezuela. Telfs: (0212)7510111 7510944 7510766 7510377. Correo electrónico: franarvelo@yahoo.es&nbsp;</font></P>     <P ALIGN="justify"><font face="Verdana"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"> Resumen</FONT></B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2">. La ingenier&#237;a de tejidos es la nueva ciencia que con sus t&#233;cnicas  innovadoras est&#225;n haciendo posible fabricar nuevos tejidos a partir de  peque&#241;os fragmentos de tejidos sanos, logrando restaurar la funcionalidad  parcial o total de tejidos u &#243;rganos da&#241;ados, como lo ejemplifican los  logros alcanzados con los cultivos de piel, c&#243;rnea o cart&#237;lago. Por ahora  esta nueva ciencia es capaz de asegurar la recuperaci&#243;n de la funci&#243;n perdida  y sin duda, en un futuro no lejano, ser&#225; capaz de desarrollar tejidos y  &#243;rganos que sean similares a los naturales. En nuestro laboratorio hemos  iniciado el desarrollo de las t&#233;cnicas de ingenier&#237;a de tejidos para la  elaboraci&#243;n de piel <I>in vitro</I>, teniendo como objetivo, a mediano plazo,  la producci&#243;n de c&#243;rnea y cart&#237;lago. En un primer ensayo cl&#237;nico se aplicaron  estas t&#233;cnicas para el tratamiento de pacientes con lesiones cr&#243;nicas de  la piel, demostrado las bondades y el alcance de estas nuevas herramientas  para la soluci&#243;n efectiva de problemas de dif&#237;cil abordaje terap&#233;utico  por medio de los tratamientos convencionales.</FONT></font></P>     <P ALIGN="justify"><font face="Verdana"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"> Palabras clave:&nbsp;</FONT></B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"><I>In vitro</I>, queratinocito, ingenier&#237;a de tejidos, equivalente epid&#233;rmico.&nbsp;</FONT></font></P>     <P ALIGN="center"><font face="Verdana"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2">Tissue engineering and construction of human skin </FONT> </B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"><I><B>in vitro</B></I><B>.</B></FONT></font></P>     <P ALIGN="justify"><font face="Verdana"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"> Abstract.</FONT></B> <FONT COLOR="#1f1a17" size="2">  Tissue engineering is the new science that has come to make possible  the growth of new organ tissue from small fragments of healthy tissue,  thus partially or totally restoring the lost functions of ill tissues or  organs, as shown by the achievements made with the culture of skin, cornea  or cartilage. Thus far, this new science is able to ensure the recovery  of lost functions and, doubtlessly, in a near future will be capable of  developing tissues and organs not unlike natural ones. In our laboratory  we have began the development of tissue engineering techniques for the  successful construction of in vitro skin with the aim at mid term of producing  cornea and cartilage. In a first clinical trial, these techniques were  applied in the treatment of chronic skin lesions and the advantages and  reach of these new tools were demonstrated for the effective solution of  problems with would otherwise not be easily solved through the use of conventional  treatments.</FONT></font></P>     <P ALIGN="justify"><font face="Verdana"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"> Key words:&nbsp;</FONT></B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"><I>In vitro</I>, keratinocyte, tissue engineering, epidermal equivalent.&nbsp;</FONT></font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Recibido: 24-04-2006. Aceptado: 14-09-2006.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> INTRODUCCI&#211;N&nbsp; </FONT></B> </P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> El desarrollo de la biolog&#237;a celular y molecular, con sus grandes logros  t&#233;cnicos y cient&#237;ficos, han hecho posible que comience una nueva era de  la medicina moderna. Uno de los retos de esta medicina ha sido el hecho  de poder restaurar o mejorar la funci&#243;n de &#243;rganos y tejidos lesionados  por enfermedades o traumatismos. La cirug&#237;a de transplantes a partir de  &#243;rganos y tejidos extra&#237;dos de donantes es parte de esta medicina reparadora.  La Ingenier&#237;a Tisular como se denomina actualmente a la tecnolog&#237;a de la  futura medicina es la que nos acerca a ese objetivo, ya que nos permite,  a partir de un peque&#241;o fragmento de tejido recuperar la funcionalidad global  del tejido u &#243;rgano da&#241;ado. Por otra parte, es importante se&#241;alar que la  posibilidad actual de la ingenier&#237;a tisular es la recuperaci&#243;n de la funci&#243;n  perdida, ya que la formaci&#243;n de &#243;rganos y tejidos similares a los naturales  es todav&#237;a una ciencia ficci&#243;n.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Dentro de este amplio campo de investigaci&#243;n y desarrollo biom&#233;dico, destaca  por sus logros e importancia primordial la Ingenier&#237;a de Tejidos, por lo  que, el Laboratorio de Cultivo de Tejidos del Instituto de Biolog&#237;a Experimental  de la Facultad de Ciencias de la UCV se ha interesado en este nuevo campo,  y ha desarrollado con &#233;xito las t&#233;cnicas para el cultivo de piel humana  y su aplicaci&#243;n terap&#233;utica. As&#237; mismo, en un futuro inmediato tambi&#233;n  se ha propuesto desarrollar las t&#233;cnicas que nos permitan obtener c&#243;rnea,  cart&#237;lago y hueso con los mismos fines. Esto nos ha conducido a presentar  un proyecto que nos permita crear, dentro del actual laboratorio de Cultivo  de Tejidos, la Unidad de Ingenier&#237;a de Tejidos con el fin de producir los  tejidos para satisfacer las demandas del sistema nacional de salud tanto  p&#250;blico como privado.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> INGENIER&#205;A DE TEJIDOS&nbsp; </FONT></B> </P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Durante los &#250;ltimos 50 a&#241;os uno de los principales logros de la medicina  moderna ha sido poder restaurar o mejorar la funci&#243;n de algunos tejidos  y &#243;rganos lesionados por enfermedades o traumatismos con la cirug&#237;a de  transplante a partir de &#243;rganos y tejidos extra&#237;dos de donantes. En la  actualidad estas t&#233;cnicas han comenzado a ser no solo complementadas, sino  incluso sustituidas exitosamente mediante la ingenier&#237;a de tejidos, nueva  ciencia que con sus t&#233;cnicas basadas en el cultivo de c&#233;lulas in vitro  est&#225;n haciendo posible la producci&#243;n de tejidos que sustituyan a los lesionados,  abriendo tambi&#233;n la posibilidad de fabricar nuevos &#243;rganos. A partir de  un peque&#241;o fragmento de tejido se puede lograr restaurar la funcionalidad  parcial o total de los tejidos u &#243;rganos da&#241;ados, como lo ejemplifican  los logros alcanzados con los cultivos de piel, c&#243;rnea, cart&#237;lago, hueso,  m&#250;sculo, tejido nervioso y tejido glandular, entre otros.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Cuando una enfermedad o lesi&#243;n da&#241;a tejidos enteros, se pueden aislar,  cultivar, y amplificar suficientemente c&#233;lulas sanas en el laboratorio,  y luego ser transplantadas a las zonas afectadas para reparar las partes  lesionadas. Con una muestra del tama&#241;o de una estampilla postal se puede  cultivar suficiente piel de repuesto para recubrir todo el cuerpo de una  victima de quemaduras graves; as&#237; mismo podemos tomar una peque&#241;a muestra  de la cornea sana de un paciente con una lesi&#243;n de este &#243;rgano, cultivarla  y as&#237; obtener una nueva cornea, incluso ahora pueden aislarse c&#233;lulas madre,  cultivarse y hacer los transplantes exitosamente con ellas. Por tanto,  para &#147;construir&#148; un tejido es importante tener las c&#233;lulas que constituyen  el tejido y el sustrato sobre el cual se desarrollen. As&#237;, para obtener  un tejido <I>in vitro</I> es importante manejar un n&#250;mero elevado de c&#233;lulas,  lo cual constituye un reto, ya que usualmente una muestra de tejido es  muy peque&#241;a y el n&#250;mero inicial de funcionales muy reducido, por lo que  el problema fundamental es expandir las c&#233;lulas en cultivo para obtener  un n&#250;mero considerable y suficiente de las mismas. En cuanto al segundo  requerimiento, tambi&#233;n ser&#225; un reto la &#147;construcci&#243;n&#148; de una matriz extracelular  id&#243;nea para el tejido que se quiere restaurar, la cual es una estructura  necesaria para que las c&#233;lulas tengan una disposici&#243;n tridimensional que  les permita tanto crecer como desarrollar las funciones fisiol&#243;gicas que  le son propias.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><font face="Verdana"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"> LA PIEL HUMANA </FONT></B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2"> <I><B> IN VITRO</B></I><B>&nbsp;</B> </FONT></font></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> La piel constituye el &#243;rgano m&#225;s grande del cuerpo humano, protegi&#233;ndolo  del medio ambiente (contra fuerzas mec&#225;nicas, factores qu&#237;micos, radiaciones,  cambios de temperatura, microorganismos, y manifiesta signos y s&#237;ntomas  de enfermedades sist&#233;micas) y jugando adem&#225;s un papel importante en otras  funciones vitales tales como metab&#243;licas (s&#237;ntesis de vitamina D, reserva  de grasas, eliminaci&#243;n de desechos, equilibrio hidroelectrol&#237;tico, secuestro  de t&#243;xicos), nervioso (asiento de receptores nerviosos: tacto, temperatura,  presi&#243;n, dolor) y psicol&#243;gica (expresi&#243;n de emociones, contacto afectivo,  autoimagen, cosm&#233;tica) (1). Esto ha hecho que se haya generado la necesidad  de crear un sustituto para la misma ante las lesiones y da&#241;os que pueden  produc&#237;rsele por enfermedades, accidentes, traumatismos o cirug&#237;as extensas.  Por ello, a lo largo de la historia, se hicieron m&#250;ltiples intentos de  obtener un medio natural o artificial capaz de sustituir la piel da&#241;ada  o perdida, pero solo los grandes avances hechos en biolog&#237;a celular en  el siglo XX permitieron, a partir de la d&#233;cada de los a&#241;os 50, que se iniciaran  y se desarrollaran diversas t&#233;cnicas que permitieran alcanzar ese objetivo.  Dentro de todas las t&#233;cnicas ensayadas destacan las desarrolladas a partir  de las t&#233;cnicas para el cultivo de c&#233;lulas <I>in vitro</I>, haciendo posible que  las c&#233;lulas aisladas de un organismo puedan sobrevivir y multiplicarse  por largo tiempo o por tiempo indefinido.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Las referencias iniciales para el cultivo de piel hacen alusi&#243;n al cultivo  celular en forma de explantes celulares (2). Aun cuando este tipo de t&#233;cnica  no permit&#237;a una proliferaci&#243;n epitelial suficiente, se pudo demostrar que  los cultivos celulares obtenidos eran v&#225;lidos y transplantables a animales,  y el r&#225;pido desarrollo de nuevas t&#233;cnicas hicieron posible realizar los  cultivos a partir de c&#233;lulas disgregadas, estableci&#233;ndose diversos modelos  (3), pero en l&#237;neas generales, las colonias obtenidas por estos m&#233;todos  no permit&#237;an la realizaci&#243;n de subcultivos celulares por sobrecrecimiento  de los fibroblastos o parad&#243;jicamente por ausencia de los mismos.&nbsp; </FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> CULTIVO DE QUERATINOCITOS HUMANOS&nbsp; </FONT></B> </P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Rheinwald y col. en 1975 (4), a partir de los trabajos con una l&#237;nea celular  epitelial cut&#225;nea o queratinocitos originada de un teratoma de rat&#243;n, establecieron  las condiciones necesarias y fundamentales para cultivar, de forma indefinida,  este tipo de c&#233;lulas. En el mismo a&#241;o, estos autores aplicaron sus t&#233;cnicas  a los queratinocitos humanos normales, obteni&#233;ndose cultivos que pod&#237;an  ser transferidos seriadamente. Ellos demostraron que las deficiencias encontradas  para el cultivo de las c&#233;lulas epiteliales no se deb&#237;an a limitaciones  intr&#237;nsecas de ellas, sino a las complejas relaciones con las c&#233;lulas del  par&#233;nquima. Era por tanto, posible, obtener en cultivo un tejido epitelial  diferenciado, si se empleaba la t&#233;cnica apropiada que no obviara tal relaci&#243;n.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> El desarrollo <I>in vivo</I> de las c&#233;lulas epiteliales, as&#237; como su diferenciaci&#243;n  y multiplicaci&#243;n, dependen de complejas interacciones con la matriz extracelular,  as&#237; como de diferentes est&#237;mulos procedentes de los fibroblastos y sus  productos (5). Bas&#225;ndose en este principio, Rheinwald y col. introducen  en su t&#233;cnica de cultivo una capa celular adicional llamada <I>feeder layer  </I>para que estimule la proliferaci&#243;n y maduraci&#243;n de los queratinocitos.  Para este fin utilizaron fibroblastos de rat&#243;n, la l&#237;nea celular 3T3, previamente  irradiada con 6000 rads o tratadas con Mitomicin C durante 2 horas, ello  con el fin de inhibir su multiplicaci&#243;n (6).Este tratamiento previo con  los fibroblastos permite que se adquieran las siguientes caracter&#237;sticas:  a) promueven el crecimiento, diferenciaci&#243;n y adhesi&#243;n de los queratinocitos;  b) secretan prote&#237;nas de matriz extracelular y factores de crecimiento;  c) inhiben la proliferaci&#243;n de los fibroblastos humanos (2). La adicci&#243;n  de las c&#233;lulas 3T3 a los cultivos de los queratinocitos sirven de soporte  y estimula al desarrollo de los mismos, promoviendo su crecimiento, diferenciaci&#243;n  y adhesi&#243;n e impidiendo el crecimiento de los fibroblastos humanos. La  <I>feeder layer</I> permite expresar a los queratinocitos caracter&#237;sticas diferenciales,  y tambi&#233;n se demostr&#243; que las deficiencias encontradas inicialmente para  el cultivo de las c&#233;lulas epiteliales no se deben en realidad a limitaciones  intr&#237;nsecas de dicho tipo celular, sino m&#225;s bien a las complejas relaciones  entre los queratinocitos y los fibroblastos (7).&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Los queratinocitos disgregados, con una concentraci&#243;n adecuada de c&#233;lulas  3T3, forman una monocapa en la superficie de la placa de cultivo de forma  tal que en las etapas finales del cultivo se suele observar una capa continua  de queratinocitos y una ausencia total de fibroblastos (8). Southgate y  col. en 1987 (9), realizaron estudios microsc&#243;picos de estos cultivos y  demostraron la presencia de estratificaci&#243;n e incluso evidenciaron fen&#243;menos  de queratinizaci&#243;n en las capas m&#225;s superficiales.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> APLICACI&#211;N CL&#205;NICA&nbsp; </FONT></B> </P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> En 1980 Banks-Schelegel y col. demuestran la viabilidad del epitelio cut&#225;neo  obtenido <I>in vitro</I> emple&#225;ndolo como injerto en animales de experimentaci&#243;n,  lo cual llev&#243; al perfeccionamiento de estas t&#233;cnicas haciendo posible la  utilizaci&#243;n de estos tejidos, obtenidos en el laboratorio, en la pr&#225;ctica  cl&#237;nica (10, 11).&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Esta nueva metodolog&#237;a, que permite obtener a partir de una peque&#241;a biopsia  y en un tiempo relativamente corto, una gran cantidad de tejido aut&#243;logo  ha revolucionado el tratamiento de los pacientes quemados, curaci&#243;n de  &#250;lceras cr&#243;nicas, lesiones extensas de la piel y la correcci&#243;n de defectos  cut&#225;neos, brindando ventajas con respecto a otros tipos de tratamientos,  como los que usan piel de cad&#225;veres o los auto injertos, hasta hace muy  poco tiempo ampliamente usados.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Si bien el perfeccionamiento del sistema de cultivo de c&#233;lulas epiteliales  iniciado por Rheinwald y col. abri&#243; la posibilidad de poder expandir otros  epitelios distintos al cut&#225;neo, una de las principales utilidades en la  pr&#225;ctica cl&#237;nica ha sido el cultivo de queratinocitos para el tratamiento  de personas seriamente quemadas (4). Los grandes problemas cl&#237;nicos que  acarrean estos pacientes son muchos y complejos, por lo que a lo largo  del tiempo se crearon numerosos sustitutos cut&#225;neos biol&#243;gicos y sint&#233;ticos  para aportar una cobertura al tejido lesionado y profundamente da&#241;ado.  Pese a ello el paciente con una superficie ampliamente quemada presentaba  un pron&#243;stico vital, funcional y est&#233;tico p&#233;simo, pero los avances logrados  con la aplicaci&#243;n de las nuevas t&#233;cnicas empleando c&#233;lulas cultivadas ha  sido crucial.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Mediante el cultivo de c&#233;lulas, a partir de una biopsia m&#237;nima de piel  sana, se puede obtener en un per&#237;odo relativamente corto una gran cantidad  de piel aut&#243;loga, &#250;til para transplantar, no existe morbilidad por complicaciones  de la zona donante y al tratarse de un injerto aut&#243;logo se obvia el problema  de rechazo inmunol&#243;gico. La consolidaci&#243;n de las t&#233;cnicas de cultivo de  queratinocitos ha generado la publicaci&#243;n de innumerables trabajos motivados  por la aplicaci&#243;n cl&#237;nica de las misma (12, 13). Por otra parte, es importante  el desarrollo de una base d&#233;rmica (compuesta por una matriz extracelular  conteniendo fibroblastos d&#233;rmicos) sobre la que el cultivo cl&#225;sico de queratinocitos  consiga gran expansi&#243;n, diferenciaci&#243;n completa, y posibilidades de &#233;xito  tras el transplante. Hasta la presente est&#225;n descritas distintas superficies  sobre las que los queratinocitos podr&#225;n desarrollarse, aunque con ninguna  de ellas se ha logrado obtener un &#225;rea de piel suficiente para las necesidades  de un paciente con gran superficie de quemaduras (14). La fibrina, prote&#237;na  derivada del fibrin&#243;geno sangu&#237;neo, aunque no es un compuesto natural de  la dermis, es la base para la reparaci&#243;n de heridas (15), ya que act&#250;a  como hemost&#225;tico, y en un primer momento es la matriz extracelular provisional  necesaria para que las c&#233;lulas inicien el proceso reparador. El plasma  humano puede ser utilizado como fuente de matriz d&#233;rmica para el crecimiento  de los queratinocitos, y la obtenci&#243;n de la l&#225;mina de piel artificial (16).  Para poder solucionar el per&#237;odo de tiempo cr&#237;tico que transcurre desde  el momento de la toma de la muestra hasta obtener el epitelio transplantable,  se utilizan actualmente productos comerciales derivados de las investigaciones  de la ingenier&#237;a de tejidos, como lo son el Dermagraft, y Transcyte, que  son pol&#237;meros de diferente composici&#243;n (&#225;cido poliglic&#243;lico, col&#225;geno tipo  I) mezclados con fibroblastos los cuales funcionan como sustitutos cut&#225;neos  temporales que proporcionan una cobertura al lecho de la quemadura evitando  tanto la p&#233;rdida de fluidos y electrolitos como una barrera para impedir  la contaminaci&#243;n (17, 18). Tambi&#233;n se utilizan como cobertura temporal  la piel de cadaver (homoinjerto), ya que se considera como una de las mejores  coberturas, y que pueden utilizarse bien sea frescos o conservados (19).  Existen otros productos de origen natural como son xenoinjertos de piel  (cerdo) o membrana amni&#243;tica (20, 21). El epitelio cut&#225;neo obtenido in  vitro, aparte de ser usado para el tratamiento de quemados, tambi&#233;n se  ha empleado con &#233;xito para el tratamiento est&#233;tico de enfermedades cut&#225;neas  cr&#243;nicas o extensas que requieran una amplia sustituci&#243;n de tejido para  su correcci&#243;n. As&#237;, se han utilizado en el tratamiento de &#250;lceras cut&#225;neas  cr&#243;nicas (22, 23), <I>nevus gigantes </I>(24, 25) epidermolisis bullosa (26, 27),  lesiones en la mucosa oral y uretral (28, 29) y la hipomelanosis extensa  (30, 31). El campo abierto por estas investigaciones y su uso cada vez  mayor en la practica m&#233;dica apenas est&#225; comenzando, cada vez m&#225;s su uso  es exigido y generalizado, siendo un &#225;rea en expansi&#243;n, sin olvidar que  la experiencia obtenida con la aplicaci&#243;n cl&#237;nica de los tejidos obtenidos  <I>in vitro</I> han servido a la vez para poner de manifiesto las dificultades  todav&#237;a existentes que se plantean a la hora de generalizar el uso de los  mismos.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> CIENCIA EN EXPANSI&#211;N&nbsp; </FONT></B> </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Teniendo en cuenta el gran inter&#233;s que representa este tipo de t&#233;cnica  en cuanto a su aplicabilidad cl&#237;nica y a las ventajas que supone sobre  otros tratamientos, tenemos que considerar que es dentro del campo de los  cultivos epid&#233;rmicos donde las investigaciones han tenido m&#225;s &#233;xito, poni&#233;ndose  de manifiesto sus ventajas, pero tambi&#233;n sus inconvenientes. No podemos  obviar que con su desarrollo se abri&#243; la posibilidad de poder aplicar estas  t&#233;cnicas a otros tipos celulares, fundamentalmente a otros epitelios. Esta  nueva metodolog&#237;a propone tambi&#233;n la aplicaci&#243;n de las t&#233;cnicas de cultivo  celular ya conocidas sobre matrices biodegradables que sirvan de soporte  para su injerto en el hu&#233;sped (32). Con los &#233;xitos alcanzados en el manejo  de las c&#233;lulas epiteliales se iniciaron los estudios para obtener las condiciones  &#243;ptimas para el crecimiento, desarrollo y diferenciaci&#243;n en cultivo de  diferentes tejidos especializados y tipos celulares, as&#237; como su aplicaci&#243;n  en cl&#237;nica. Ejemplo de estos adelantos, ensayos y aplicaciones en cl&#237;nica,  se ha trabajado con cart&#237;lago (33, 34), tend&#243;n (35, 36), hueso (37, 38),  urotelio (39, 40), intestino (41, 42), v&#225;lvulas cardiacas (43, 44), c&#243;rnea  (45). Por nuestra parte, nuestro laboratorio ha iniciado el camino con  el cultivo de piel y su aplicaci&#243;n en cl&#237;nica, habi&#233;ndose generado una  gran expectativa, y ha planteado la necesidad de crear la unidad de ingenier&#237;a  de tejidos (46).&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> Es importante destacar, que en nuestro pa&#237;s no existe un laboratorio especializado  que haya desarrollado esta t&#233;cnica de la obtenci&#243;n piel artificial, y que  su creaci&#243;n podr&#225; suministrar material a bajo costo, y con la urgencia  requerida. Adem&#225;s, mejorar&#225; las alternativas terap&#233;uticas de los pacientes  con lesiones en la piel, siendo una de &#233;stas el autoinjerto obtenidos a  partir del cultivo de queratinocitos derivados de un peque&#241;o fragmento  de su propia piel. El desarrollo y aplicaci&#243;n cl&#237;nica de estos autoinjertos  es lo m&#225;s conveniente para el paciente por las siguientes razones: a) disminuci&#243;n  del riesgo de rechazo del injerto, b) disminuci&#243;n del riesgo de infecciones,  c) disminuci&#243;n del n&#250;mero de intervenciones quir&#250;rgicas a que son sometidos  los pacientes a ser injertados con su propia piel, aumentando la agresi&#243;n  tanto f&#237;sica como psicol&#243;gica, d) disminuci&#243;n de probabilidades de reintervenciones  posteriores por formaci&#243;n de cicatrices y contracturas indeseables, e)disminuci&#243;n  de costos tanto por estad&#237;a hospitalaria como por ausencia laboral, f)  una mejor calidad de recuperaci&#243;n del paciente y g) r&#225;pida incorporaci&#243;n  del paciente a la vida normal.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> No hacemos mal cuando nos detenemos un momento en este camino que nos brinda  tantas posibilidades para reflexionar y maravillarnos de lo lejos que hemos  avanzado. Es tambi&#233;n importante no olvidar que las tecnolog&#237;as y tratamientos  que salvan vidas pueden hacerse muy costosos, y que en ocasiones pueden  producir preocupantes efectos secundarios, aunado a que en el futuro, tambi&#233;n  tendremos que enfrentarnos con decisiones muy dif&#237;ciles. Las terapias m&#225;s  avanzadas, como las que se han rese&#241;ado al inicio de esta revisi&#243;n no son  estrictamente curativas, y que de no usarse llevar&#237;an a la muerte inminente  del paciente. Independientemente de estas consideraciones necesarias, hay  que decir que a pesar de lo que acabamos de mencionar, los avances son  asombrosos al aplicar las nuevas terapias, y que las t&#233;cnicas introducidas  en a&#241;os recientes han revolucionado la cirug&#237;a pl&#225;stica y est&#233;tica. Hoy,  se puede considerar que se pueden reparar, regenerar y sustituir algunos  tejidos de &#243;rganos muy importantes.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> REFERENCIAS&nbsp; </FONT></B> </P>     <!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 1.&nbsp;<B>Gartner LP, Hiatt JL.</B> Texto Atlas de Histolog&#237;a. 2da Ed. Mc Graw Hill.  Interamericana, M&#233;xico; 2002. p:311-327.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150553&pid=S0535-5133200700030001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 2.&nbsp;<B>Navsaria HA, Sexton C, Bouvard V, Leigh IM. </B>Growth of keratinocytes with  a 3T3 feeder layer: basic techniques. En Leigh IM., Watt FM Ed. Keratinocyte  Methods. Cambridge University Press 1994. pp: 2-12.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150554&pid=S0535-5133200700030001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 3.&nbsp;<B>Karasek MA. </B>Growth and Differentiation of transplanted epithelial cell  cultures. J Invest Dermatol 1968; 51:247-252.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150555&pid=S0535-5133200700030001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 4.&nbsp;<B>Reinwald JG, Green H. </B>Serial cultivation of strains of human epidermal  keratinocytes: the formation of keratinising colonies from single cell.  Cell 1975; 6:<B> </B>331-334.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150556&pid=S0535-5133200700030001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 5.&nbsp;<B>Luker J, Crane IJ, Scully C, Prime SS. </B>The effect of 3T3 fibroblast on  the expression of anchorage independence and cornification of oral keratinocytes.  Virch Arch<B> </B>Cell Pathol 1989; 57:19-26.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150557&pid=S0535-5133200700030001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 6.&nbsp;<B>Sugimura YJ, Hata K, Torii S, Ueda M. </B>Transplantation of cultured mucosal  epithelium: an experimental study.<B> </B>J Cranio-maxillofac 1997; 24: 352-359.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150558&pid=S0535-5133200700030001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 7.&nbsp;<B>Staack A, Alexander T, Merguerian P, Terris MK. </B>Organ and species specificity  in the stimulation of transitional epithelial cell growth by fibroblasts.  Eur Urol 2001; 39:471-477.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150559&pid=S0535-5133200700030001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 8.&nbsp;<B>Raghoebar GM, Tomson AM, Scholma J, Blauw EH, Witjes MJ, Vissink A. </B>Use  of cultured mucosal grafts to cover defects caused by vestibulopasty: an  in vivo study.<B> </B>J Oral Maxillofac Sug 1995; 53: 872-878.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150560&pid=S0535-5133200700030001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 9.&nbsp;<B>Southgate J, Willians HK, Tredjdosiewic LK, Hodges GM. </B>Primary culture  of human oral epithelial cells: growth requirements and expression of differentiated  characteristics.<B> </B>Lab Invest 1987; 56: 211-233.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150561&pid=S0535-5133200700030001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 10.&nbsp;<B>Gallico GG 3rd</B><FONT COLOR="#1f1a17"><b>, O&#146;Connor NE, Compton CC, Kehinde O, Green H. </b>Permanent  coverage of large burn wounds with autologous cultured human epithelium.  N Engl J Med 1984; 311: 448-451.&nbsp;</FONT></FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150562&pid=S0535-5133200700030001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 11.&nbsp;<B>Compton CC, Gill JM, Bradford DA, Regauer S, Gallico GG, O&#180;Connor NE. </B>Skin  regenerated from cultured epithelial autografts on full thickness burn  wounds from 6 days to 5 years after grafting.<B> </B>Lab Invest 1989; 60: 600-612.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150563&pid=S0535-5133200700030001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 12.&nbsp;<B>Rose JK, Herndon DN. </B>Advances in the treatment of burn patients. Burns  1997; 23: S19-S26.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150564&pid=S0535-5133200700030001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 13.&nbsp;<B>Meana A, Iglesias J, Del Rio M, Larcher F, Madrigal B, Fresno MF. </B>Large  surface of cultured human epithelium obtained on a dermal matrix based  on a lived fibroblast containing fibrin gels.<B> </B>Burns 1998; 24: 621-630.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150565&pid=S0535-5133200700030001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 14.&nbsp;<B>Braye FM, Stefani A, Venet E, Pieptu D, Tissot E, Damour O. </B>Grafting of  large pieces of human reconstructed skin in a porcine model. Br J Plast  Surg 2001; 54: 532-538.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150566&pid=S0535-5133200700030001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 15.&nbsp;<B>Singer AJ, Clark RA. </B>Cutaneous wound healing. N Engl J Med 1999; 341: 738-746.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150567&pid=S0535-5133200700030001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 16.&nbsp;<B>Llames SG, Del Rio M, Larcher F, Garc&#237;a E, Garc&#237;a M, Escamez MJ, Jorcano  JL, Holguin P, Meana A.</B> Human plasma as a dermal scalffold for the generation  of a completely autologous bioengineered skin. Transplantation 2004; 77:  350-355.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150568&pid=S0535-5133200700030001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 17.&nbsp;<B>Kremer M, Lang E, Berger AC. </B>Evaluation of dermal-epidermal skin equivalent  (&#147;composite skin&#148;) of human keratinocytes in a collagen-glycosaminoglycan  matrix (integra artificial skin). Br J Plast Surg 2000; 53:459-465.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150569&pid=S0535-5133200700030001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 18.&nbsp;<B>Rennekampff HO, Hansbrough JF, Woods V, Kiessing V. </B>Integrin and matrix  molecule expression in cultured skin replacements. J Burn Care Rehabil  1996; 17: 213-221.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150570&pid=S0535-5133200700030001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 19.&nbsp;<B>Vloemans AF, Middelkoop E, Kreis RW</B>. A historical appraisal of the use  of cryopreserved and glycerol-preserved allograft skin in the treatment  of partial thickness burns. Burns 2002; 28: S16-S20.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150571&pid=S0535-5133200700030001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 20.&nbsp;<B>Wang HJ, Chou TD, Tsou TL, Chen TM, Chen SL, Chen SG, Wei LG, Yeh KJ, Ko  YH, Wang CS, Lee WH.</B> The application of new biosynthetic artificial skin  for long-term temporary wound coverage. Burns 2005; 31:991-997.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150572&pid=S0535-5133200700030001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 21.&nbsp;<B>Ley-Chavez E, Martinez-Pardo ME, Roman R, Oliveros-Lozano J, Canchola-Martinez  E.</B> Application of biological dressing from radiosterilized amnios with  cobalt 60 and serologic studies on the handling of burns in pediatric patients.  Ann Transplant 2003; 8:6-9.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150573&pid=S0535-5133200700030001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 22.&nbsp;<B>Saap LJ, Falanga V. </B>Debridement performance index its correlation with  complete closure of diabetic foot ulcers. Wound Repair Regen 2002; 10:354-359.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150574&pid=S0535-5133200700030001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 23.&nbsp;<B>Falanga V. </B>Wound healing and its impairment in the diabetic foot. Lancet  2005; 366: 1734-1736.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1150575&pid=S0535-5133200700030001100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" size="2" face="Verdana"> 24.&nbsp;<B>Gallico G, O&#180;Connor EN, Compton CC, Kehinde O, Green H. </B>Cultured epithelial  autografts for giant congenital nevi. 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