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<journal-title><![CDATA[Investigación Clínica]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Instituto de Investigaciones Clínicas "Dr. Américo Negrette", Facultad de Medicina, Universidad del Zulia]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de virus papiloma humano (HPV) a partir de muestras celulares de cuello uterino en base líquida: Correlación con la inmunorreactividad de la proteína p16INK4a]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The liquid-based cervical cytology improves the quality of the sample and the residual sample could be used efficiently to carry out complementary tests, such as the detection of HPV DNA and the immunocytochemical biomarkers study. The purpose of this study was to correlate the presence of HPV and immunoexpression of p16INK4a in liquid-based cervical samples to examine the utility of these new tools in the detection of cervical cancer. The included patients (n=67) presented an abnormal cytology or previous cervical pathology. The HPV detection and genotyping were carried out with PCR-SPF10/LiPA (INNOLiPA Extra Amp) and for p16INK4a immunodetection was used antibody clone E6H4. The conventional cytology provided the same cytologic interpretations that those of liquid-based cytology. The overall HPV prevalence was 43.3% (29/67). HPV16 was the most frequent viral type (31.03%) and 48.3% of the cases were infected with multiple HPV types. p16INK4a immunoexpression was observed in 35.8% of liquid-based cytological samples and this was significantly (p < 0.020) associated to the HPV presence. These results support the evidence that the implementation of new technologies in the daily routine of the laboratory, contribute significantly in the early detection of cervical cancer and provide important data to help in the patient’s efficient management. The combined use of HPV detection and p16INK4a expression could be used for evaluation of patients with more risk to develop significant cervical lesions]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <BASEFONT SIZE="3"> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2"> <font face="Verdana" size="2"></font>     <P ALIGN="center"><FONT COLOR="#1f1a17" FACE="Verdana"> <B>Detecci&#243;n de virus papiloma humano (HPV) a partir de muestras celulares  de cuello uterino en base l&#237;quida. Correlaci&#243;n con la inmunorreactividad  de la prote&#237;na p16INK4a.</B></FONT></P> <font face="Verdana" size="2"></font>     <P ALIGN="center"><b><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <I>Morelva Toro de M&#233;ndez</I><SUP><I> 1</I></SUP><I> y Antonio Ferr&#225;ndez Izquierdo</I><SUP><I> 2</I></SUP><I>.&nbsp;</I> </FONT></b></P>     <P ALIGN="justify"> <FONT COLOR="#1f1a17" FACE="Verdana" SIZE="2"><SUP>1 </SUP>C&#225;tedra de Citolog&#237;a Exfoliativa, Facultad de Farmacia y Bioan&#225;lisis,  Universidad de Los Andes. M&#233;rida, Venezuela y </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" FACE="Verdana" SIZE="2"><SUP>2 </SUP>Servicio de Anatom&#237;a Patol&#243;gica,  Secci&#243;n de Citopatolog&#237;a, Facultad de Medicina y Odontolog&#237;a, Universidad  de Valencia, Espa&#241;a.</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">Corresponding  author: José Corado. Unit of Investigation in Immunology (UNIVENIN), Department  of Physiological Sciences, Faculty of Health Sciences, University of Carabobo.  P.O. Box 3798 Valencia 2002, Venezuela. Phone: 0058- Fax: 0058-02412184599.  E-mail: <a href="mailto:jcorado@uc.edu.ve">jcorado@uc.edu.ve</a>.</font></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Resumen.</B></FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> La citolog&#237;a del cuello uterino en base l&#237;quida mejora la calidad  de la muestra y el material residual podr&#237;a ser utilizado para realizar  pruebas complementarias, como la detecci&#243;n del virus papiloma humano (HPV)  y estudio inmunocitoqu&#237;mico de biomarcadores. El prop&#243;sito de este estudio  fue correlacionar la presencia de HPV y la inmunoexpresi&#243;n de p16INK4a  en las muestras citol&#243;gicas en base l&#237;quida para examinar la utilidad de  estas nuevas herramientas en la detecci&#243;n de c&#225;ncer de cuello uterino.  Las pacientes incluidas (n=67) presentaban una citolog&#237;a anormal o patolog&#237;a  cervical previa. La detecci&#243;n y genotipificaci&#243;n de HPV se realiz&#243; con  PCR-SPF10/LiPA (<I>INNOLiPA Extra Amp)</I> y para la inmunodetecci&#243;n de p16INK4a  se utiliz&#243; el anticuerpo clon E6H4. La citolog&#237;a convencional proporcion&#243;  los mismos hallazgos citol&#243;gicos que la citolog&#237;a en base l&#237;quida. La prevalencia  general del HPV fue de 43,3% (29/67). El HPV16 fue el tipo viral mas frecuente  (31,03%) y el 48,3% de los casos present&#243; infecci&#243;n m&#250;ltiple. En el 35,8%  de las muestras cervicales se detect&#243; inmunoexpresi&#243;n de la p16INK4a y  &#233;sta fue significativamente (p&lt;0,020) asociada a la presencia de HPV. Estos  resultados apoyan la evidencia que la implementaci&#243;n de nuevas tecnolog&#237;as  en la rutina diaria del laboratorio contribuye significativamente en la  detecci&#243;n precoz del c&#225;ncer de cuello uterino y en el aporte de datos importantes  para facilitar en el manejo cl&#237;nico adecuado de la paciente. La detecci&#243;n  de HPV combinada con la p16INK4a podr&#237;a ser utilizado en la evaluaci&#243;n  de pacientes con mayor riesgo a desarrollar lesiones cervicales significativas.</FONT></P> </MULTICOL>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Palabras clave:&nbsp;</B>citolog&#237;a l&#237;quida, HPV, p16INK4a, anormalidades celulares, patolog&#237;a cervical.</FONT></P> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2"> <font face="Verdana" size="2"></font>     <P ALIGN="center"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Detection of human papilloma virus (HPV) in liquid-based cervical samples.  Correlation with protein p16INK4a expression.</B></FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Abstract.</B></FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> The liquid-based cervical cytology improves the quality of the  sample and the residual sample could be used efficiently to carry out complementary  tests, such as the detection of HPV DNA and the immunocytochemical biomarkers  study. The purpose of this study was to correlate the presence of HPV and  immunoexpression of p16INK4a in liquid-based cervical samples to examine  the utility of these new tools in the detection of cervical cancer. The  included patients (n=67) presented an abnormal cytology or previous cervical  pathology. The HPV detection and genotyping were carried out with PCR-SPF10/LiPA  (INNOLiPA Extra Amp) and for p16INK4a immunodetection was used antibody  clone E6H4. The conventional cytology provided the same cytologic interpretations  that those of liquid-based cytology. The overall HPV prevalence was 43.3%  (29/67). HPV16 was the most frequent viral type (31.03%) and 48.3% of the  cases were infected with multiple HPV types. p16INK4a immunoexpression  was observed in 35.8% of liquid-based cytological samples and this was  significantly (p &lt; 0.020) associated to the HPV presence. These results  support the evidence that the implementation of new technologies in the  daily routine of the laboratory, contribute significantly in the early  detection of cervical cancer and provide important data to help in the  patient&#146;s efficient management. The combined use of HPV detection and p16INK4a  expression could be used for evaluation of patients with more risk to develop  significant cervical lesions.</FONT></P> </MULTICOL>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Key words:&nbsp;</B>liquid cytology, HPV, p16INk4a, cellular abnormalities, cervical patology.</FONT></P> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2">     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <b>Recibido: </b>28-04-2010. <b>Aceptado:</b> 15-07-2010.</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>INTRODUCCI&#211;N&nbsp;</B> </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> El c&#225;ncer de cuello uterino es la segunda causa de mortalidad femenina  a nivel mundial, con una elevada incidencia en pa&#237;ses subdesarrollados  constituyendo un problema de salud p&#250;blica (1). El frotis citol&#243;gico se  ha utilizado amplia y efectivamente para la pesquisa del c&#225;ncer de cuello  uterino a nivel mundial disminuyendo notablemente la mortalidad por este  tipo de neoplasia. Actualmente, se contin&#250;a utilizando la citolog&#237;a como  m&#233;todo para la detecci&#243;n precoz de esta neoplasia. Sin embargo, resultados  citol&#243;gicos inexactos, relacionados con errores de muestra y preparaciones  citol&#243;gicas no &#243;ptimas son un asunto por resolver para as&#237; mejorar la pesquisa  de las lesiones cervicales (2).&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Nuevas tecnolog&#237;as como la citolog&#237;a en medio l&#237;quido, la tipificaci&#243;n  del virus papiloma humano (HPV por sus siglas en ingl&#233;s) y el estudio de  biomarcadores se han introducido para aumentar la eficiencia de la detecci&#243;n  de c&#225;ncer de cuello uterino y sus lesiones precursoras e identificar las  pacientes de alto riesgo a desarrollar lesi&#243;n cl&#237;nicamente significativa.  La citolog&#237;a en base l&#237;quida es un m&#233;todo de preparaci&#243;n de muestras celulares  introducido en 1996 para reducir la proporci&#243;n de muestras inadecuadas  para estudio citol&#243;gico mejorando de esta forma la sensibilidad y especificidad  en la detecci&#243;n de anormalidades celulares, al obtener muestras libres  de artefactos para una mejor evaluaci&#243;n microsc&#243;pica. Adem&#225;s, el material  residual puede ser utilizado para realizar pruebas complementarias como  la detecci&#243;n de DNA de HPV y estudio inmunocitoqu&#237;mico de biomarcadores  (3-5).</FONT></P>     <P ALIGN="justify"> </MULTICOL> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2"> <FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> El sistema en base l&#237;quida proporciona muestras de excelente calidad, con  buena preservaci&#243;n del material celular y libre de elementos que pudieran  interferir en la lectura del frotis como sangre y c&#233;lulas inflamatorias  permitiendo una mayor detecci&#243;n de c&#233;lulas anormales y aumentando as&#237; la  exactitud diagn&#243;stica, al reducir los resultados citol&#243;gicos falsos negativos.  Su gran ventaja es la utilizaci&#243;n del material residual para pruebas complementarias  al estudio morfol&#243;gico. La principal desventaja se&#241;alada es su elevado  costo (6, 7).</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> El c&#225;ncer invasor de cuello uterino esta precedido por un espectro de lesiones  intraepiteliales. Ciertos tipos de HPV de alto riesgo oncog&#233;nico (HR-HPV),  como los tipos HPV 16 y 18, entre otros son considerados el factor inductor  de la carcinog&#233;nesis cervical y la causa necesaria para el desarrollo del  c&#225;ncer (8, 9). Como parte de los programas de control de c&#225;ncer cervical,  la detecci&#243;n temprana de esta infecci&#243;n permite un adecuado manejo de la  paciente dependiendo del tipo viral involucrado, para prevenir el desarrollo  de lesiones intraepiteliales de alto grado (HSIL) y c&#225;ncer (10, 11).</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Los HR-HPV interact&#250;an con las principales prote&#237;nas reguladoras del ciclo  celular (prote&#237;na Retinoblastoma/pRb y la p53) provocando su inactivaci&#243;n  funcional, con la consecuente transformaci&#243;n celular y origen de la neoplasia  maligna (12). La oncoprote&#237;na E7 de los HR-HPV se une espec&#237;ficamente a  la pRb, lo cual conduce a la liberaci&#243;n del factor de trascripci&#243;n E2F.  En las c&#233;lulas normales, la prote&#237;na inhibidora de kinasa dependiente de  ciclina p16INK4a desacelera el ciclo celular mediante inactivaci&#243;n de las  kinasas dependientes de ciclina (CDK), que se encargan de fosforilar a  la pRb. En su estado hipofosforilado, la pRb forma un complejo con el factor  E2F, con el consecuente efecto negativo sobre la p16INK4a. La p&#233;rdida funcional  de pRb conduce a la sobrexpresi&#243;n de la p16INK4a y a la proliferaci&#243;n celular  descontrolada (13). Por ello, la p16INK4a es considerada un biomarcador  con elevada sensibilidad, especificidad y valor predictivo positivo de  HSIL con expresi&#243;n activa de oncogenes de HR-HPV (14, 15).</FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Estas nuevas metodolog&#237;as han servido como complemento al estudio morfol&#243;gico  de las c&#233;lulas del cuello uterino siendo &#250;tiles en el mejoramiento de su  exactitud diagn&#243;stica y aumentando la detecci&#243;n de pacientes de mayor riesgo  a desarrollar lesiones cl&#237;nicamente significativas (16, 17).</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> El objetivo de este estudio fue correlacionar la presencia de HPV y la  inmunoexpresi&#243;n de la p16INK4a en las muestras citol&#243;gicas en base l&#237;quida  para examinar la utilidad de estas nuevas herramientas en la detecci&#243;n  de c&#225;ncer de cuello uterino y sus lesiones precursoras.</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>MATERIAL Y M&#201;TODOS</B></FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Material</B></FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se incluyeron las muestras celulares obtenidas de pacientes que acudieron  a la consulta de ginecolog&#237;a<B> </B>del Hospital Cl&#237;nico de Valencia, del Instituto  Valenciano de Oncolog&#237;a (IVO) y del ambulatorio de Massamagrell, en Valencia,  Espa&#241;a, desde el 15 de julio hasta el 15 de septiembre de 2008, por presentar  antecendentes de patolog&#237;a cervical o citolog&#237;a anormal. Las pacientes  fueron informadas sobre el estudio y fueron incluidas aquellas que aceptaron  participar en el mismo. A cada paciente se le tomaron 2 muestras cervicales:  una para elaboraci&#243;n de frotis citol&#243;gico convencional con esp&#225;tula de  Ayre y <I>cytobrush </I>y fijaci&#243;n inmediata con <I>cytofix</I> y una segunda muestra  para citolog&#237;a en medio l&#237;quido con <I>cervexbrush</I>, el cual se enjuag&#243; inmediatamente  en el vial con l&#237;quido fijador Preserv-Cytyc Thin Prep&#174; (Cytyc Corporation,  Madrid, Espa&#241;a). Los datos de cada paciente fueron obtenidos de la solicitud  del examen.</FONT></P> </MULTICOL> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2">     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Metodolog&#237;a</B></FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Preparaci&#243;n de las muestras. </B>Ambos tipos de muestra fueron sometidas a  estudio morfol&#243;gico mediante la t&#233;cnica de Papanicolaou. Las muestras celulares  en base l&#237;quida fueron procesadas en el equipo ThinPrep Cytyc&#174; (Thin-Prept  Processor, Cytyc Corporation, Madrid, Espa&#241;a). Se prepararon dos extendidos:  uno para tinci&#243;n con Papanicolaou y estudio de la morfolog&#237;a celular de  rutina y otro para determinaci&#243;n inmunocitoqu&#237;mica de la p16INK4a. Los  frotis as&#237; elaborados se fijaron durante 30 min en etanol absoluto. La  interpretaci&#243;n de los hallazgos citol&#243;gicos en ambos tipos de citolog&#237;as,  convencional y l&#237;quida, se realizaron en base a los criterios establecidos  por el Sistema Bethesda 2001 para la citolog&#237;a del cuello uterino. El material  residual de las muestras celulares en base l&#237;quida se utiliz&#243; para la detecci&#243;n  molecular del HPV. La totalidad del material residual contenido en el Presercytyc-ThinPrep  fue trasvasado a un tubo de centrifuga y centrifugado a 13.000 rpm durante  5 min. Se transfirieron 1000 &#181;L del concentrado celular a un microtubo  rotulado evitando de forma cuidadosa la contaminaci&#243;n cruzada entre las  muestras. Se le a&#241;adi&#243; 1 mL de agua bidestilada a cada microtubo, luego  se agitaron en vortex brevemente para resuspender las c&#233;lulas y finalmente,  las muestras fueron almacenadas a &#150;20&#176;C hasta su utilizaci&#243;n.</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Detecci&#243;n y tipificaci&#243;n de HPV.</B> La extracci&#243;n de DNA se realiz&#243; de forma  tradicional utilizando el m&#233;todo de fenol-cloroformo. 50 &#181;L del microtubo  con la suspensi&#243;n celular fueron centrifugados a 12.000 rpm, durante 5  min. El precipitado fue resuspendido en 500 &#181;L de soluci&#243;n de lisis compuesta  por SDS 0,5%, Tris HCl 10mM pH8, NaCl 0,15M, EDTA 5mM m&#225;s 25 &#181;L de proteinasa  K (100 &#181;g/mL) y se incub&#243; a 56&#176;C, durante 2 horas. El sobrenadante fue  almacenado a &#150;20&#176;C hasta realizar la PCR. La calidad del DNA extra&#237;do fue  comprobada con la amplificaci&#243;n del gen control interferon mediante el  uso de los cebadores INF150 DR y DF que generaron un fragmento de 150 pb.  La detecci&#243;n del DNA viral se llev&#243; a cabo utilizando el kit de trabajo  de INNO LiPA genotyping Extra Amp (Innogenetics, Barcelona, Espa&#241;a) y siguiendo  las indicaciones de la casa comercial. Este kit amplifica un segmento de  65 pb de la regi&#243;n L1 del genoma viral, que permite detectar por lo menos  54 tipos distintos de HPV. En cada PCR se incluyeron controles positivos  (CPOS) obtenidos a partir de muestras de cuello uterino previamente tipificadas,  as&#237; como el proporcionado por la casa comercial. Los controles negativos  (CNEG) estaban constituidos &#250;nicamente por mezcla de reacci&#243;n y 10 &#181;L de  agua bidestilada. La PCR se llev&#243; a cabo en un volumen final de 40 &#181;L m&#225;s  10 &#181;L DNA problema/CPOS/CNEG. Finalmente, todos los micromicrotubos de  reacci&#243;n fueron ubicados en un termociclador (GeneAmp &#174; PCR system 2700,  Applied Biosystem), bajo las siguiente condiciones: 37&#176;C 10 min, 94&#176;C 9  min, durante 40 ciclos: 94&#176;C 30 segundos, 52&#176;C 45 segundos, 72&#176;C 45 segundos  y 10 min a 72&#176;C para extensi&#243;n final. Los productos fueron visualizados  en gel de agarosa al 3%. Para la tipificaci&#243;n de las secuencias virales  presentes fue utilizado el ensayo de INNO-LiPA HPV genotyping <I>Extra</I>, que  permite la identificaci&#243;n de 28 tipos espec&#237;ficos de HPV, de bajo y alto  riesgo.&nbsp; </FONT></P> </MULTICOL> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2">     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Detecci&#243;n inmunocitoqu&#237;mica de p16INK4a. </B>Las muestras celulares fueron  rehidratadas con agua destilada. La recuperaci&#243;n antig&#233;nica se llev&#243; a  cabo con un tamp&#243;n de citrato 1:10 en un ba&#241;o a 95&#176;C. Despu&#233;s de enfriar  las muestras a temperatura ambiente, la peroxidasa end&#243;gena fue bloqueada  con peroxido de hidr&#243;geno al 3%. Luego, a los tubos se le a&#241;adieron 200  &#181;L del anticuerpo primario anti-p16INK4a clon E6H4 (Dako) diluci&#243;n 1:50  y se incubaron durante 1 hora a temperatura ambiente. Seguido, se colocaron  500 &#181;L del anticuerpo secundario comercial (Dako) durante 15 minutos y  el complejo avidina-biotina comercial (Dako) durante 15 minutos. Finalmente,  la reacci&#243;n fue revelada con diaminobenzidina (DAB) durante 10 minutos  y se realiz&#243; una contra tinci&#243;n con hematoxilina de Harris, durante 30  segundos. La evaluaci&#243;n se efectu&#243; con un microscopio de luz considerando  los patrones de tinci&#243;n en las diferentes c&#233;lulas epiteliales normales  y anormales (18, 19). Las muestras citol&#243;gicas fueron consideradas positivas  si presentaban m&#225;s de 10 c&#233;lulas bien preservadas con tinci&#243;n marr&#243;n nuclear  y/o citoplasm&#225;tica. Las c&#233;lulas inflamatorias, bacterias y moco con tinci&#243;n  no fueron tomadas en cuenta.</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>An&#225;lisis estad&#237;stico</B></FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> El an&#225;lisis estad&#237;stico se llev&#243; a cabo usando el paquete SPSS 12.0 y la  prueba de Chi-cuadrado (</FONT><FONT COLOR="#1f1a17" FACE="Verdana" SIZE="2">c<SUP>2</SUP>) fue utilizada para la correlaci&#243;n de las variables.  Un valor <I>p</I> igual a 0,05 o menor fue considerado estad&#237;sticamente significativo.</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>RESULTADOS</B></FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se incluyeron 67 muestras citol&#243;gicas del cuello uterino tomadas de forma  tradicional y en base l&#237;quida. La edad de las pacientes oscil&#243; en el rango  de 20-77 a&#241;os, con una media de 40,9 a&#241;os. Algunas muestras (30%) recolectadas  de forma tradicional mostraron amontonamiento celular, sangre e inflamaci&#243;n  o ausencia de c&#233;lulas endocervicales; sin embargo, estas limitantes no  afectaron la interpretaci&#243;n citol&#243;gica, ya que los resultados de &#233;stas  coincidieron con la interpretaci&#243;n de las muestras recolectadas en base  l&#237;quida, en la totalidad de los casos. En ambos tipos de muestras se observaron  claramente las c&#233;lulas caracter&#237;sticas de lesi&#243;n cervical (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). Las  citolog&#237;as fueron clasificadas en: 44 (63,8%) negativas para lesi&#243;n intraepitelial  o malignidad (NLIM), 1 (1,5%) con atipias de origen a determinar (ASC-US),  16 (23,1%) con lesi&#243;n intraepitelial escamosa de bajo grado (LSIL) y 8  (11,6%) con lesi&#243;n intraepitelial escamosa de alto grado (HSIL). No hubo  ning&#250;n caso de c&#225;ncer invasor. La prevalencia general de la infecci&#243;n por  HPV en las muestras celulares fue de 43,3% (29/67). El tipo viral espec&#237;fico  m&#225;s frecuente fue el HPV16 en 9/29 (31,03%) seguido del HPV66 en 2/29 (6,89%).  Los tipos HPV18, HPV31, HPV33 y HPV X se presentaron en la misma proporci&#243;n  (3,45%), un tipo viral por caso. El 48,3% (14/29) mostr&#243; infecci&#243;n m&#250;ltiple  y esta se present&#243; en varias combinaciones, sin importar el resultado citol&#243;gico  y predominando los HPV de alto riesgo oncog&#233;nico: 6 casos eran NLIM y el  resto presentaba anormalidades en c&#233;lulas epiteliales. La distribuci&#243;n  de la presencia de HPV de acuerdo a los resultados citol&#243;gicos fue: NLIM  8 casos (18,2%), 1 caso de ASC-US (100%), 12 casos de LSIL (75%) y el 100%  de los casos de HSIL (8 casos). Las muestras celulares en base l&#237;quida  mostraron un m&#237;nimo de c&#233;lulas inflamatorias y detritus celulares, las  c&#233;lulas epiteliales se observaron bien preservadas y dispersas sobre el  fondo de frotis limpio, lo cual permiti&#243; la observaci&#243;n clara de las c&#233;lulas  inmunorreactivas para p16INK4a. La inmunorreactividad fue de intensidad  variable dependiendo de la presencia de alteraciones morfol&#243;gicas. Se observ&#243;  inmunotinci&#243;n en c&#233;lulas inflamatorias, c&#233;lulas profundas y de tipo metapl&#225;sicas  inmaduras morfol&#243;gicamente sin atipias, as&#237; como en bacterias, pero menos  intensa que la observada en las c&#233;lulas anormales. Se detect&#243; expresi&#243;n  inmunocitoqu&#237;mica de la prote&#237;na p16INK4a en el 35,8% (24/67) de los casos.  La inmunoexpresi&#243;n fue intensa en las c&#233;lulas anormales (<a href="#fig2">Fig. 2</a>). Hubo  asociaci&#243;n estad&#237;sticamente significativa (p &lt; 0,02) entre la expresi&#243;n  de p16INK4a y la presencia de HPV. En aquellas muestras positivas para  HPV se observ&#243; expresi&#243;n de la prote&#237;na p16INK4a con mayor frecuencia que  en las HPV negativas. De 29 casos HPV positivos, 24 (83%) mostraron inmunorreactividad  ante p16INK4a. De 38 casos HPV negativo, s&#243;lo 2 (5%) mostraron inmunoreactividad  frente a 36 (95%) sin reacci&#243;n. Al correlacionar el hallazgo citol&#243;gico  con la presencia de HPV y la inmunorreactividad de la p16INK4a (<a href="#tab1">Tabla I</a>)  no se encontr&#243; correlaci&#243;n entre estas variables (p=0,280). Sin embargo,  las muestras citol&#243;gicas NLIM en su mayor&#237;a fueron negativas para HPV (36/44)  y las pocas c&#233;lulas reactivas (4/44) eran metapl&#225;sicas inmaduras sin atipias  y de intensidad leve. El &#250;nico caso de ASC-US, aunque positivo para HPV,  no mostr&#243; reacci&#243;n para p16INK4a. Los casos HPV positivo/p16INK4a positiva  presentaron en su mayor&#237;a anormalidades en c&#233;lulas epiteliales: 12 LSIL  (85,7%) y las 8 HSIL (100%); 4 (9%) casos NLIM/HPV positivo tambi&#233;n mostraron  expresi&#243;n de la p16INK4a (<a href="#fig2">Fig.&nbsp;2</a>).</FONT></P>     <P ALIGN="center"> <a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/ic/v52n1/art02fig1.gif" align="center" width="559" height="429"></a></P>     
<P ALIGN="center"> </MULTICOL><font face="Verdana" size="2"><b>&nbsp;Fig. 1.</b> Imágenes de la  citología convencional A (10X), C (40X) y en base líquida B (40X), D (40X). Caso  1. Lesión Intraepitelial Escamosa de bajo grado/infección por virus papiloma  humano (LSIL/HPV): coilocitos (flecha). Caso 2. Lesión Intraepitelial Escamosa  de alto grado (HSIL): células metaplásicas discarióticas.</font></P>     <P ALIGN="center"><a href="#fig2" name="fig2"> <img border="0" src="..//img/fbpe/ic/v52n1/art02fig2.gif" width="562" height="649" align="center"></a></P>     
<P ALIGN="center"><font face="Verdana" size="2"><b>Fig. 2.</b> Inmunocitoquímica.  Células inmaduras anormales (HSIL) con inmunorreactividad para p16INK4a (1-4),  (40X). Dos casos de LSIL (5 y 8) y p16INK4 positivos (20X y 10X). El caso de  células escamosas con atipias de significado indeterminado/ASC-US (6) fue  negativo para p16INK4a. Una muestra LSIL (7) con coilocitos sin reacción para  p16INK4a.</font></P>     <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana"><b> <a name="tab1">TABLA I.</a> </b>RELACIÓN DE LA INMUNOEXPRESIÓN DE p16INK4a,  PRESENCIA DE HPV Y HALLAZGOS CITOLÓGICOS&nbsp; </font></p>     <div align="center">   <table id="table1" width="580">     <tr>       <td bgColor="#aaa9a9" vAlign="top" rowSpan="2" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">&nbsp; </font>       </td>       <td bgColor="#aaa9a9" vAlign="top" rowSpan="2" width="101">           ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">Nº casos&nbsp;       </font></td>       <td bgColor="#aaa9a9" vAlign="top" width="101" colSpan="2">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">p16INK4a</font></td>       <td bgColor="#aaa9a9" vAlign="top" width="101" colSpan="2">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">HPV</font></td>     </tr>     <tr>       <td bgColor="#aaa9a9" vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">Reactivos&nbsp;       </font></td>       <td bgColor="#aaa9a9" vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">Sin        reacción&nbsp; </font></td>       <td bgColor="#aaa9a9" vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">Positivo&nbsp;       </font></td>       <td bgColor="#aaa9a9" vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">Negativo&nbsp;       </font></td>     </tr>     <tr>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">NLIM&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">44&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">4(9%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana"><b>       40(91%)&nbsp;</b> </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">&nbsp;8(18,2%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana"><b>       36(81,8%)&nbsp;</b> </font></td>     </tr>     <tr>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">ASC-US&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">1&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">-&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">1(100%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">&nbsp;1(100%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">-&nbsp; </font>       </td>     </tr>     <tr>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">LSIL&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">14&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">12(85,7%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">&nbsp;2(14,3%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">12(85,7%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">2(14,3%)&nbsp;       </font></td>     </tr>     <tr>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">HSIL&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">8&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">&nbsp;8(100%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">-&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">&nbsp;8(100%)&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">-&nbsp; </font>       </td>     </tr>     <tr>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">Total&nbsp;       </font></td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">67&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">24&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">43&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">29&nbsp; </font>       </td>       <td vAlign="top" width="101">           <p align="center"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">38&nbsp; </font>       </td>     </tr>   </table> </div>     <p align="justify"><font color="#1f1a17" size="2" face="Verdana">NLIM = negativo  para lesión intraepitelial o malignidad. ASC-US = atipias de significado  indeterminado. LSIL&nbsp;=&nbsp;lesión intraepitelial escamosa de bajo grado. HSIL =  lesión intraepitelial de alto grado. VPH = virus papiloma humano.</font></p> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2">     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>DISCUSI&#211;N&nbsp;</B></FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> La citolog&#237;a ha reducido significativamente la morbimortalidad femenina  por c&#225;ncer de cuello uterino en muchos pa&#237;ses. Sin embargo, las discrepancias  citohistol&#243;gicas as&#237; como el conocimiento del papel de la infecci&#243;n por  HR-HPV en la carcinog&#233;nesis cervical han impulsado el desarrollo de nuevas  estrategias de pesquisa que contribuyan en el mejoramiento de la detecci&#243;n  precoz de esta neoplasia. La implementaci&#243;n de nuevos ensayos complementarios  al estudio citol&#243;gico en la rutina diaria del laboratorio ha significado  un mayor avance en el esclarecimiento de los eventos cr&#237;ticos del origen  de este c&#225;ncer y por ende un aumento en su detecci&#243;n y prevenci&#243;n (14).&nbsp; </FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> La introducci&#243;n de la citolog&#237;a en base l&#237;quida mejora significativamente  la calidad de la muestra a evaluar permitiendo la reducci&#243;n de resultados  falsos negativos, una mayor detecci&#243;n de lesiones intraepiteliales y aprovechamiento  del material residual para realizar pruebas moleculares e inmucnocitoqu&#237;micas  complementarias (4, 6).&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> En el presente estudio, las muestras citol&#243;gicas en base l&#237;quida mostraron  un fondo de frotis limpio de moco, sangre y otros elementos enmascaradores  y se redujo al m&#237;nimo el n&#250;mero de muestras inadecuadas (5, 20). La lectura  del extendido fue m&#225;s r&#225;pida, pues el material celular se hallaba reducido  a un &#225;rea circular m&#237;nima del frotis, bien preservado y sin superposici&#243;n  celular (21). Se logr&#243; una total concordancia en la interpretaci&#243;n de ambos  tipos de muestras citol&#243;gicas (22, 23). El material residual se utiliz&#243;  para otros ensayos evitando as&#237; una nueva toma de muestra a la paciente  y demoras en el diagn&#243;stico (22).&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> La infecci&#243;n persistente por ciertos tipos de HR-HPV se ha establecido  como la principal causa del c&#225;ncer de cuello uterino y sus precursores  (9, 24). La prevalencia general de la infecci&#243;n por HPV var&#237;a en un rango  que oscila entre el 1,4%-82% dependiendo del &#225;rea geogr&#225;fica en relaci&#243;n  con las caracter&#237;sticas epidemiol&#243;gicas de la poblaci&#243;n estudiada y de  los m&#233;todos empleados para la detecci&#243;n del DNA viral (25). En este estudio,  el 43,3% de las muestras presentaban HPV, en su mayor&#237;a de alto riesgo  oncog&#233;nico. Probablemente el elevado porcentaje obtenido en este estudio  se debi&#243; a que las muestras estudiadas pertenec&#237;an a pacientes bajo vigilancia  por patolog&#237;a cervical previa. Sin embargo, estudios epidemiol&#243;gicos han  revelado que la infecci&#243;n por HR-HPV es muy com&#250;n, particularmente en pacientes  j&#243;venes (26).&nbsp;</FONT></P><basefont> </MULTICOL> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2">     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Aunque la prevalencia de la infecci&#243;n por HPV se incremente con la presencia  y el grado de las lesiones cervicales, algunos datos indican que existen  variaciones importantes en funci&#243;n de las caracter&#237;sticas de la poblaci&#243;n  estudiada (27). La distribuci&#243;n de los diferentes tipos de HPV en pacientes  con c&#225;ncer/SIL alrededor del mundo es heterog&#233;nea (28), siendo de gran  utilidad determinar los tipos de HPV mas frecuentes en las diferentes poblaciones,  en la era de la vacuna. En este estudio, el tipo viral mas frecuente fue  el HPV16 (31,3%) tanto en las citolog&#237;as normales como en las anormales,  coincidiendo con lo reportado en la amplia literatura mundial, seguido  de otros tipos virales tambi&#233;n de riesgo oncog&#233;nico como el HPV66, 18,  31, 33 y 58. Adem&#225;s, el HPV16 fue hallado en todas las categor&#237;as citol&#243;gicas,  tanto en forma &#250;nica como en coinfecci&#243;n, al igual que en otras regiones  espa&#241;olas (29). El HPV66 fue el segundo tipo viral mas frecuente, lo cual  es significativo debido a que este es considerado de probable riesgo oncog&#233;nico  (9). El HPV18 se present&#243; en una baja frecuencia (3,45%) as&#237; como los HPV31  y 33. Debido a que todos estos tipos virales se han aislado de c&#225;ncer y  HSIL es necesario conocer su verdadera prevalencia en las distintas regiones  geogr&#225;ficas, a fin de definir las necesidades profil&#225;cticas de cada regi&#243;n.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> La presencia de HPV en muestras citol&#243;gicamente normales tambi&#233;n es muy  variable; en las pacientes con citolog&#237;a normal de este estudio fue de  18,2% siendo este porcentaje semejante al encontrado en otras pacientes  espa&#241;olas (28). En los casos con anormalidades celulares se encontr&#243; HPV  en todas las categor&#237;as, siendo elevado en las LSIL y HSIL (22, 30). Dos  casos de LSIL fueron HPV negativos. Es posible que entre el 5% y el 10%  de las LSIL sean negativas para HPV, probablemente debido a resultados  moleculares falsos negativos o a una sobrevaloraci&#243;n citol&#243;gica (41). En  este estudio, las causas quiz&#225;s estuvieron relacionadas con una deleci&#243;n  de la regi&#243;n L1 del genoma viral, hipocelularidad o errores t&#233;cnicos, por  lo que a estas pacientes se les debe repetir el an&#225;lisis molecular para  HPV.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> La infecci&#243;n por m&#250;ltiples tipos de HPV es muy com&#250;n entre la poblaci&#243;n  (29) y tiene un significado controversial en relaci&#243;n a su asociaci&#243;n con  el desarrollo de c&#225;ncer de cuello uterino. Al respecto, investigaciones  se&#241;alan que la pacientes con citolog&#237;a anormal e infecci&#243;n m&#250;ltiple por  HR-HPV podr&#237;an considerarse de mayor riesgo para el desarrollo de HSIL  y c&#225;ncer; as&#237; mismo, se considera que la infecci&#243;n m&#250;ltiple favorece la  persistencia de un tipo viral oncog&#233;nico espec&#237;fico (31). En este estudio,  el 43,3% de las muestras presentaron m&#250;ltiples tipos de HPV, todos de alto  riesgo oncog&#233;nico y en diferentes combinaciones. Los tipos virales 31,  33, 45, 51, 56, 58 y 66 fueron los m&#225;s frecuentemente hallados en coinfecci&#243;n,  lo cual debe ser considerado debido a que posiblemente esta asociaci&#243;n  de tipos virales de alto riesgo favorezca de alg&#250;n modo a la carcinog&#233;nesis  cervical. La prevalencia de infecci&#243;n m&#250;ltiple por HPV en este estudio  fue semejante al porcentaje de otros investigadores, en diferentes &#225;reas  geogr&#225;ficas y en los que se incluyen pacientes con citolog&#237;as anormales  (17, 27). Aunque, en un estudio realizado en Colombia a 2.109 pacientes,  de distintas regiones del pa&#237;s y con diferentes condiciones socio-culturales,  los autores determinaron que aproximadamente el 60% de ellas ten&#237;an infecci&#243;n  m&#250;ltiple se&#241;alando que problemente el uso combinado de cebadores permiti&#243;  una mayor detecci&#243;n de estos casos (32). Se requiere entonces de investigaciones  futuras para revelar la verdadera importancia de la coinfecci&#243;n viral,  a fin de contribuir en el esclarecimiento de su participaci&#243;n en el desarrollo  del c&#225;ncer cervical.&nbsp; </FONT></P> </MULTICOL> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2">     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se considera que la p16INK4a puede ser un marcador predictivo de la presencia  de c&#233;lulas transformadas por HPV y de lesiones cl&#237;nicamente significativas  (19, 33, 34) y que su detecci&#243;n puede ser &#250;til para el diagn&#243;stico y en  la detecci&#243;n de verdaderas lesiones intraepiteliales (33). En el presente  estudio, la expresi&#243;n de la p16INK4a se observ&#243; en el 35,8% de las muestras  estudiadas y la mayor proporci&#243;n de casos eran SIL. El &#250;nico caso de ASC-US  de este estudio aunque positivo para infecci&#243;n m&#250;ltiple de HR-HPV, no expres&#243;  la p16INK4a, probablemente debido a que el DNA viral se encontraba en estado  episomal, no integrado. Por ello, es necesario estudiar un mayor n&#250;mero  de pacientes para determinar la utilidad del an&#225;lisis de p16INK4a en frotis  at&#237;picos.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> En este estudio encontramos asociaci&#243;n estad&#237;sticamente significativa entre  las c&#233;lulas anormales con expresi&#243;n de p16INK4a y la presencia HR-HPV,  lo cual confirma la utilidad de esta prote&#237;na en la identificaci&#243;n de c&#233;lulas  transformadas por el HPV (17, 35). Sin embargo, hallamos casos con sobrexpresi&#243;n  de p16INK4a y ausencia de HPV; probablemente esta inmunorreactividad se  debi&#243; a mecanismos no relacionados con el HPV, a dificultades en la interpretaci&#243;n  de los resultados inmunocitoqu&#237;micos o a que el m&#233;todo molecular no detect&#243;  el HPV presente (16, 20). Caso contrario tambi&#233;n ocurri&#243;: p16INK4a negativa/HPV  positivo, lo cual pudo deberse a la presencia de HR-HPV no integrado, HPV  de bajo riesgo oncog&#233;nico o probablemente debido a una metilaci&#243;n del gen  p16INK4a, sin expresi&#243;n del mismo por silenciaci&#243;n gen&#233;tica (16). Finalmente,  es posible que en los casos con anormalidades celulares no existieran c&#233;lulas  inmunorreactivas, debido a que en la muestra quedaron muy pocas c&#233;lulas  anormales o ninguna (20). En cualquiera de los casos, deben repetirse las  pruebas a fin de confirmar los resultados en correlaci&#243;n con los hallazgos  citol&#243;gicos. Nuestros resultados reafirman la utilidad del estudio de la  expresi&#243;n de la p16INK4a en la pesquisa de las lesiones del cuello uterino,  ya que muestra elevada especificidad diagn&#243;stica (18). Sin embargo, es  conveniente realizar el seguimiento de las pacientes con positividad para  este biomarcador, a fin de determinar su valor predictivo, lo cual ser&#225;  objeto de investigaciones futuras.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> En conclusi&#243;n, estos hallazgos apoyan la evidencia que la implementaci&#243;n  de nuevas tecnolog&#237;as en la rutina diaria del laboratorio contribuye significativamente  en la detecci&#243;n precoz del c&#225;ncer de cuello uterino aportando datos importantes,  que favorecen el manejo cl&#237;nico apropiado de la paciente. La detecci&#243;n  de HPV combinada con la p16INK4a podr&#237;a utilizarse para la evaluaci&#243;n de  pacientes con mayor riesgo a desarrollar lesiones significativas del cuello  uterino.&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>AGRADECIMIENTO&nbsp;</B> </FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Al personal m&#233;dico del Hospital Cl&#237;nico de Valencia, del Instituto Valenciano  de Oncolog&#237;a y del Ambulatorio de Massamagrell. A las pacientes.&nbsp;</FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> Este trabajo fue financiado en su totalidad por el Vicerrectorado de Pol&#237;tica  Cient&#237;fica e Investigaci&#243;n de la Universidad de Valencia. Espa&#241;a. C&#243;digo  del proyecto: UV- ESTPC-08-2421.&nbsp;</FONT></P> </MULTICOL> <MULTICOL GUTTER="31" COLS="2">     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>REFERENCIAS&nbsp;</B></FONT></P>     <!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 1. <B>Parkin DM, Bray F, Ferlay J, Pisani P. </B>Global cancer statistics, 2002.  CA J Clin 2005; 55:74-108.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189533&pid=S0535-5133201100010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 2. <B>Hutchinson ML, Zahniser DJ, Sherman ME, Herrero R, Alfaro M, Bratti MC,  Hildesheim A, Lorincz AT, Greenberg MD, Morales J, Schiffman M.</B> Utility  of liquid &#150;based cytology for cervical carcinoma screening. Cancer 1999;  87:48-55.&nbsp;</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189534&pid=S0535-5133201100010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 3. <B>Bernstein SJ, Sanchez-Ramos L, Ndubisi B. </B>Liquid-based cervical cytologic  smear study and conventional Papanicolaou smears: A metaanalysis of prospective  studies comparing cytologic diagnosis and sample adequacy. Am J Obstet  Gynecol 2001; 185:308-317.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189535&pid=S0535-5133201100010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 4. <B>McGoogan E. </B>Liquid-based cytology: the new screening test for cervical  cancer control. J Fam Plann Reprod Health Care 2004; 30:123-125.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189536&pid=S0535-5133201100010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 5. <B>Harrison WN, Teale AMJ, Jones SP, Mohammed MA. </B>The impact of the introduction  of liquid based cytology on the variation in the proportion of inadequate  samples between GP practices. BMC Public Health 2007; 7:191-195.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189537&pid=S0535-5133201100010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 6.<B> Linder J, Zahniser D. </B>The ThinPrep Pap test. A review of clinical studies.  Act Cytol 1997; 41:30-38.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189538&pid=S0535-5133201100010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 7.<B> Gim&#233;nez Mas JA, Sanz Moncasi P, Alfaro Torres J, H&#246;rndler C, Urbiola Marcilla  E.</B> Evaluaci&#243;n de dispositivos automatizados para diagn&#243;stico citol&#243;gico  en la prevenci&#243;n del c&#225;ncer de c&#233;rvix. Rev Esp Patol 2002; 35:301-314.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189539&pid=S0535-5133201100010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 8.<B> zur Hausen H.</B> Papillomavirus and cancer: from basic studies to clinical  application. Nat Rev Cancer 2002; 2:342-350.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189540&pid=S0535-5133201100010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 9.<B> Mu&#241;oz N, Bosch FX, de Sanjos&#233; S, Herrero R, Castellsagu&#233; X, Shah KV, Snijders  PJ, Meijer CJ. </B>International Agency for Research on Cancer Multicenter  Cervical Cancer Study Group. Epidemiologic classification of human papillomavirus  types associated with cervical cancer. N Engl J Med 2003; 348:518-527.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189541&pid=S0535-5133201100010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 10. <B>Molijn A, Kleter B, Quint W, van Door LJ. </B>Molecular diagnose of human papillomavirus  (HPV) infections. J Clin Vi rol 2005; 32 (Suppl 1):543-551.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189542&pid=S0535-5133201100010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 11.<B> Meijer CJ, Snijders PJ, Castle PE.</B> Clinical utility of HPV genotyping.  Gynecol Oncol 2006; 103:12-17.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189543&pid=S0535-5133201100010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 12.<B> Clarke B, Chetty R. </B>Cell cycle aberrations in the pathogenesis of squamous  cell carcinoma of the uterine cervix. Gynecol Oncol 2001; 82:238-246.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189544&pid=S0535-5133201100010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 13.<B> Serrano M. </B>The tumor suppressor protein p16INK4a. Exp Cell Res 1997; 237:7-13.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189545&pid=S0535-5133201100010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 14.<B> von Knebel Doeberitz M, Syrj&#228;nen KJ. </B>Molecular markers: How to apply in  practice. Gynecol Oncol 2006; 1003:18-20.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189546&pid=S0535-5133201100010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 15.<B> Wentzensen N, Bergeron C, Cas F, Vinokurova S, von Knebel Doeberitz M.</B>  Triage of women with ASCUS and LSIL cytology: use of qualitative assessment  of p16INK4a positive cells to identify patients with high-grade cervical  intraepithelial neoplasia. Cancer 2007; 11:58-66.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189547&pid=S0535-5133201100010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 16.<B> Samama B, Schaeffer C, Boehm N. </B>P16 expression in relation to human papillomavirus  in liquid-based cervical smears. Gynecol Oncol 2008; 109:285-290.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189548&pid=S0535-5133201100010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 17.<B> Schledermann D, Andersen BT, Bisgaard K, Dohse M, Ejersbo D, Hoelund B,  Horal P, Lindh M, Ryd W. </B>Are adjunctive markers useful in routine cervical  cancer screening?. Application of p16INK4a and HPV-PCR on ThinPrep samples  with histological follow-up. Diagn Cytopathol 2008, 36:453-459.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189549&pid=S0535-5133201100010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 18. <B>Meyer JL, Hanlon DW, Andersen BT, Rasmussen OF, Bisgaard K. </B>Evaluation  of p16INK4a expression in ThinPrep cervical specimens with the CINTec p16INK4a  assay. Cancer 2007; 111:83-92.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189550&pid=S0535-5133201100010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 19. <B>Trunk M, Dallenbach-Hellweg G, Ridder R, Ulrich K, Ikenberg H, Schneider  V, von Knebel Doeberitz M. </B>Morphologic characteristics of p16INK4a-positive  cells in cervical cytology samples. Acta Cytol 2004; 48:771-782.&nbsp; </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1189551&pid=S0535-5133201100010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="#1f1a17" SIZE="2" FACE="Verdana"> 20. <B>Pientong CH, Ekalaksananan T, Kongyngyoues B, Kritpetcharat O, Swadpnich  U, Pengsa P, Yuenyao P. </B>Immunocytochemical staining of p16INK4a protein  from conventional Pap test and its association with human papillomavirus  infection. 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