Determinación de cobre, magnesio y zinc en leucocitos mononucleares mediante espectrometría de absorción atómica con llama. 

Kareem Rahn-Chique, Nereida Carrión y Miguel Murillo. 

Centro de Química Analítica, Escuela de Química, Facultad de Ciencias, Universidad Central de Venezuela. Caracas, Venezuela. 

Autor de correspondencia: Kareem Rahn-Chique. Actualmente en el Instituto Venezolano de Investigaciones Científicas (IVIC). Centro de Estudios Interdisciplinarios de la Física (CEIF), Carretera Panamericana Km. 11, Apdo. 20632, Caracas, Venezuela. Telf: +58 2125041980. Fax: +58 2125041915. Correo electrónico: krahn@ivic.gob.ve 

Resumen.

En este trabajo se evaluó un nuevo microinyector de inyección en flujo para la determinación de Cu, Mg y Zn en células mononucleares de la sangre. Este dispositivo permitió analizar muestras en el orden de microlitros mediante espectrometría de absorción atómica con llama, es fácil de construir y adaptar al inyector convencional del espectrofotómetro de absorción atómica. En la determinación de Cu, Mg y Zn se obtuvieron límites de detección de 106, 65 y 37 µg L^–1, respectivamente. En las pruebas de recuperación de estos elementos en leucocitos mononucleares se encontraron porcentajes de recuperación entre 98 y 110%. 

Determination of copper, magnesium and zinc in mononuclear leukocytes by flame atomic absorption spectrometry.

Abstract.

Recibido: 27-02-2012. Aceptado: 27-09-2012

INTRODUCCIÓN 

El cobre, el magnesio y el zinc son elementos traza esenciales involucrados en procesos indispensables en el crecimiento y reproducción de los seres vivos. El cobre está presente en un gran número de enzimas, por lo que las manifestaciones clínicas de su deficiencia están asociadas a fallas enzimáticas (1). Está involucrado en procesos fundamentales como la producción de energía, el metabolismo del oxígeno y del hierro, la maduración de la matriz extracelular y los neuropéptidos, y la señalización neuroendocrina (2). El magnesio es un cofactor para cerca de 300 enzimas que participan en el metabolismo de los alimentos y en la síntesis de muchos productos, así mismo, toma parte en la transmisión y actividad neuromuscular. Interviene en la síntesis de ácidos grasos y proteínas, la fosforilación de la glucosa y sus derivados en las vías glucolíticas y las reacciones transcetolasa (1). El zinc se encuentra en el organismo casi exclusivamente como Zn²⁺ enlazado a numerosas proteínas celulares. Es el oligoelemento intracelular más abundante (3). Es fundamental para el crecimiento y la diferenciación celular. Su déficit provoca efectos adversos muy pronunciados en los tejidos de rápido recambio celular, en especial, el sistema inmunitario (4). Los niveles de los elementos traza en el cuerpo humano se han estudiado con el propósito de relacionar las deficiencias de estos elementos con enfermedades crónicas y mala absorción (5-15). Los valores de concentración de estos elementos en eritrocitos, plasma y suero, conducen a conclusiones contradictorias con respecto a los niveles intracelulares, especialmente en enfermedades metabólicas como la diabetes mellitus (9, 16-20). Kruse-Jarres y col. (9), han indicado que la evaluación de los niveles de los elementos traza en células sanguíneas puede ser más útil para relacionarlos con una patología clínica que si son determinados en plasma, debido a que elementos como el zinc y el cobre participan en varios procesos enzimáticos a nivel celular y además el Mg²⁺ es un catión intracelular (7). Mielcarz y col. (20), sugirieron que los leucocitos podrían ser considerados mejores indicadores de los niveles de los elementos traza que los eritrocitos, el plasma o el suero, porque son células nucleadas homogéneas, además de ser metabólicamente más activas por tener un mayor intercambio de minerales que los eritrocitos (21) y por su estrecha relación con el sistema inmunológico. 

La literatura sobre la determinación de Cu, Mg y Zn en leucocitos mononucleares, es reducida. De ellos, el Mg ha sido el más estudiado en esta matriz. Se ha determinado por espectrometría de absorción atómica con llama (EAA-LL) (7, 11-13, 22), por activación de neutrones (INAA) (23) y espectrofotometría de fluorescencia atómica (6, 8). El Cu (9, 13, 14, 21, 24) y el Zn (9, 13, 21, 25) han sido determinados por espectrometría de absorción atómica con horno de grafito (EAA-HG). 

Debido a que la EAA-LL requiere de volúmenes en el orden de los mililitros de muestra para determinar la concentración de un elemento, se han desarrollado algunos dispositivos de inyección de flujo para analizar muestras de bajo volumen (26, 27). En este trabajo se diseñó un microinyector en flujo y se optimizaron las condiciones experimentales para la determinación de Cu, Mg y Zn en muestras de leucocitos mononucleares. 

MATERIALES Y MÉTODOS 

Materiales 

Todos los reactivos utilizados fueron de grado analítico: buffer fosfato salino (PBS) (pH 7,4 a 25 °C); Ficoll® 400 tipo 400; Tritón X-100 (Sigma); Uromirón 300 mgI mL^–1 (Schering AG); heparina sódica 1000 unidades mL^–1 (Farmionni Scalpi); ácido nítrico (HNO₃) 65% v/v (Riedel de Häen); solución patrón 1g L^–1 de Zn (Fixanal ®); solución patrón de 1 g L^–1 de Cu y Mg (Fluka Chemic); peróxido de hidrógeno (H₂O₂) 35% p/v (Riedel de Häen) y agua desionizada 18 W cm^–1.

Las medidas de absorbancia fueron realizadas con un espectrofotómetro de absorción atómica con llama (GBC Scientific Equipment, modelo Avanta P, Australia) bajo las condiciones instrumentales mostradas en la Tabla I y empleando una llama acetileno/aire. Se usó una bomba peristáltica (Instrument S.A. modelo PETEC). Se utilizó una centrífuga (IEC Centra modelo GP8R) para la separación de los leucocitos mononucleares. El conteo celular se realizó con un microscopio (Zeiss ICS model Standard 25) empleando una cámara de Neubauer.

TABLA I. CONDICIONES INSTRUMENTALES DE LECTURA DE LA ABSORBANCIA 

Dispositivo de introducción de muestras 

Debido al bajo volumen de muestras de células mononucleares (1 mL) que se obtiene de una muestra de 10 mL de sangre, se diseñó un microinyector en flujo cuyo esquema se muestra en la Fig. 1. El microinyector se insertó en el capilar del nebulizador del espectrofotómetro a fin de permitir la inyección de microlitros de muestras. Constó de un cilindro de nylon con un conducto central de un milímetro de diámetro, al cual se le incorporó un canal lateral de acero inoxidable formando una “Y”. Este canal se insertó perforando el cilindro principal de nylon y fijándolo con pegamento. Por este canal se introdujeron las soluciones con una inyectadora de 1 mL de capacidad (Hamilton, USA) a través de un septo ubicado en uno de los extremos del canal de acero inoxidable. El canal central del cilindro principal transportaba la solución portadora (agua desionizada) impulsada por una bomba peristáltica, con el objeto de mantener un flujo de solución constante. A ambos lados del dispositivo, se colocaron conectores de plástico que permitieron la inserción de mangueras a través de las cuales circulaban las soluciones de entrada y de salida del dispositivo. Para mayor información, en la Fig. 2 se muestra una foto del dispositivo conectado al espectrofotómetro de absorción atómica de llamas.

La solución de Ficoll® se preparó a partir de 11,25 g de Ficoll® 400 y diluyéndolos en un volumen de 125 mL de agua desionizada. Esta solución se mantuvo durante 24 horas a una temperatura de 4°C a fin de solubilizar el sólido. Sobre esta solución, se añadieron de 18 a 20 mL de solución contrastante de Uromiron hasta ajustar la densidad de la solución final a un valor de 1,077 g mL^–1. Esta solución se mantuvo refrigerada a 4°C hasta su uso. Las soluciones patrones fueron preparadas por diluciones sucesivas de una solución de 1g L^–1 de cada elemento. Los rangos de los patrones de calibración para Cu, Mg y Zn fueron 0,1-2; 0,1-1 y 0,1-1,5 µg mL^–1 respectivamente; conteniendo HNO₃ al 0,1% p/v y Triton X-100 al 0,5% p/v.

Muestras 

Las muestras de sangre fueron recolectadas de donantes voluntarios del Servicio de Endocrinología del Hospital José María Vargas (Caracas, Venezuela). A cada donante se le extrajeron 20 mL de sangre completa en tubos recolectores que contenían 0,5 mL de heparina sódica como anticoagulante. 

Procedimiento de separación  de leucocitos mononucleares de sangre completa 

La separación de leucocitos mononucleares se realizó mediante el gradiente de densidad generado por el Ficoll® (28). Una vez obtenido el botón celular de leucocitos mononucleares, se procedió a eliminar los glóbulos rojos residuales agregando 1 mL de agua desionizada y dejándolo reposar durante 40 segundos a 25°C, induciendo de esta manera la ruptura de la membrana celular. Seguidamente se adicionaron 3 mL de PBS a la suspensión celular, se centrifugó a 1400 rpm durante 10 minutos a 4°C y posteriormente se desechó el sobrenadante. Este último proceso se repitió tres veces, para finalmente obtener el botón de leucocitos mononucleares limpio, el cual fue suspendido en 5 mL de solución PBS. De esta suspensión se realizó el conteo celular. Una vez finalizado esto, la suspensión fue centrifugada a 1400 rpm durante 10 min a 4°C y se extrajo el sobrenadante para conservar el botón celular a –10°C hasta su análisis.

Digestión de la muestra de leucocitos mononucleares 

El botón de leucocitos mononucleares fue descongelado dejándolo a temperatura ambiente (25°C). Este cambio brusco de temperatura facilitó la ruptura de la membrana celular y con ello la liberación de los componentes contenidos dentro de ellas. Esta ruptura celular dejó residuos sólidos suspendidos en las muestras, por lo que fue necesario tratarlas con 20 µL de H₂O₂ (35% p/v) por 24 horas hasta obtener una solución homogénea. Pasado este tiempo, se añadieron 200 µL de Tritón X-100 al 0,5% p/v. Posteriormente, la muestra fue llevada hasta un volumen final de 1 mL con agua desionizada. El Cu fue determinado directamente en esta solución, mientras que para el análisis de Mg la muestra fue diluida 10 veces y para el Zn 3 veces.

Optimización de las variables operacionales 

Las variables operacionales consideradas fueron las siguientes: tiempo de lectura, modo de lectura, flujo de solución portadora (velocidad de aspiración del nebulizador), volumen de inyección y efecto del flujo forzado con bomba peristáltica. Dichas variables fueron optimizadas de manera univariada, utilizando patrones acuosos de 1 µg mL^–1 para Cu y 0,4 µg mL^–1 para Mg y Zn. Para optimizar cada una de las variables se tomó en cuenta tanto la sensibilidad (magnitud de la señal de absorbancia) como la reproducibilidad de los resultados, medida como desviación estándar relativa (RSD) de cinco (5) determinaciones. 

Consistió en el cálculo del promedio y de la desviación estándar de cinco (5) determinaciones. La significancia estadística de diferencias entre valores promedios fue calculada con la prueba t de Student. Las pruebas que resultaron con p<0,05 fueron consideradas significativas. La reproducibilidad fue evaluada por medio de la desviación estándar relativa (RSD). La exactitud fue estudiada mediante pruebas de recuperación, ya que no se encontró un material certificado de este tipo de muestras para validar el método. Se calculó la concentración característica (C_o) para cada uno de los elementos, como un parámetro de evaluación de la sensibilidad del método. La evaluación del efecto matriz se hizo comparando los valores de la concentración de Cu, Mg y Zn en una muestra de leucocitos mononucleares obtenida por el método de adición de estándar y el método de calibración directa. Los límites de detección (LOD) fueron determinados a partir de tres curvas de calibración de cada uno de los elementos empleando el método descrito por Miller y Miller (29) tomando en cuenta la ecuación: 

                                      (1)                        

donde y_B es la señal del blanco determinada a partir del valor de la ordenada al origen del ajuste de regresión lineal y s_B es calculado como el dato estadístico, s_y/x. 

                                 (2) 

Aquí el término representa los residuales de y y n es el número de mediciones realizadas. 

RESULTADOS 

Optimización de las condiciones operacionales del microinyector 

Modo de lectura: Se ensayaron dos modos de lectura: altura de pico y área de pico. Se observó una señal de absorbancia completa para realizar una lectura confiable a los 5 y 7 segundos, respectivamente. 

Flujo de solución portadora (Velocidad de aspiración del nebulizador): En la Fig. 3 se presenta la señal de absorbancia de 50 µL de soluciones patrón de 1 µg mL^–1 de Cu, y 0,4 µg mL^–1 para Mg y Zn en función del flujo de solución portadora. Este flujo fue modificado variando la velocidad de aspiración del nebulizador. Se encontró que para el Cu la señal de absorbancia no varió significativamente al modificar el flujo de solución portadora, mientras que para el Mg y el Zn se obtuvo una máxima absorbancia a un flujo a partir del cual la señal comenzó a descender suavemente. Además, se observó que la reproducibilidad de la señal disminuyó a medida que aumentó este flujo, llegando a ser superiores al 5% de RSD. Se seleccionó el flujo de 3,60 mL min^–1, ya que con este flujo se obtuvo una buena señal de absorbancia junto con una alta precisión (RSD < 3%) para los tres elementos.

Influencia del modo de lectura en la señal de absorbancia: En la Tabla II se presentan las medidas promedios de absorbancia en los modos de altura y área de pico. Se observó una mayor señal con el modo de área de pico. Para el Cu y el Mg ambos modos de lectura fueron igualmente reproducibles a diferencia del Zn que presentó una mejor reproducibilidad en modo de área de pico. 

TABLA II. ESTUDIO DE LAS VARIABLES INSTRUMENTALES SOBRE LA SEÑAL DE ABSORBANCIA 

RSD: desviación estándar relativa. Número de determinaciones: 5. 

Influencia del volumen de inyección en la reproducibilidad de la señal: En la Tabla II se observa que en general se obtuvo una mejor precisión a mayor volumen de inyección. Para el Mg y el Zn aún con 25 µL de solución se obtuvo una buena reproducibilidad. Para el Cu se deben utilizar al menos 100 µL para obtener una reproducibilidad aceptable, debido a que exhibió una menor sensibilidad.   

TABLA III. CONDICIONES EXPERIMENTALES ÓPTIMAS PARA LA DETERMINACIÓN DE Cu, Mg Y Zn CON EL MICROINYECTOR EN FLUJO ACOPLADO AL EQUIPO DE EAA-LL 

N/A: No aplica.