<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0798-0264</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Archivos Venezolanos de Farmacología y Terapéutica]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[AVFT]]></abbrev-journal-title>
<issn>0798-0264</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Sociedad Venezolana de Farmacológia  y Farmacológia Clínica y Terapéutica. Escuela de MedicinaJosé Maria Vargas. Cátedra de Farmacológia, piso 3, esquina san jacinto, San José Caracas]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0798-02642006000100002</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Modulación de la expresión del asa de regulación hierro libre-óxido nítrico sintetasa de células dendríticas por quelantes de hierro]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ponte-Sucre]]></surname>
<given-names><![CDATA[Alicia]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Central de Venezuela Facultad de Medicina Instituto de Medicina Experimental]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Caracas ]]></addr-line>
<country>Venezuela</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2006</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2006</year>
</pub-date>
<volume>25</volume>
<numero>1</numero>
<fpage>11</fpage>
<lpage>17</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0798-02642006000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0798-02642006000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0798-02642006000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[El papel de las células dendríticas es fundamental en la señalización de la infección por Leishmania desde la piel hasta los ganglios linfáticos; sin embargo, la proliferación de Leishmania en estas células está restringida. En el macrófago, célula hospedera de Leishmania por excelencia, los parásitos proliferan irrestrictamente y el control de la infección depende directamente de los niveles de óxido nítrico. Debido a que la disponibilidad de hierro celular modula la actividad de la enzima óxido nítrico sintetasa del macrófago y para analizar las causas de la restricción de la proliferación de Leishmania en células dendríticas, en este trabajo evaluamos la influencia del hierro libre intracelular sobre la funcionalidad de células de dendríticas y la infección por Leishmania major. Los resultados demuestran que la en células de Langerhans de la piel expuestas a quelantes de hierro la infección por Leishmania major y la expresión del receptor de transferrina disminuyen, sin alterar la producción de óxido nítrico y otras propiedades funcionales de la célula. La incubación de células dendríticas de médula ósea con quelantes de hierro no afecta la infección por Leishmania major ni la producción de óxido nítrico de la célula. Estos resultados demuestran que la restricción de la proliferación de Leishmania en células dendríticas es independiente de los niveles de hierro celular y de los niveles de óxido nítrico.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The immune changes associated to the experimental infection of mice with Leishmania major and the leading role played by the Langerhans cells in the signalling of the infection from the skin up to the lymphatic ganglions are well known; however, the physiological mechanisms that restrict parasite proliferation in these cells have not been yet identified. In macrophages, control of infection is associated with nitric oxide production. The availability of cellular iron modulates this effector’s system, including the activity of the enzyme nitric oxide synthase. Herein, and in an attempt to analyze if the iron metabolism- nitric oxide synthase expression loop described in other immune cells is present in dendritic cells, we have analyzed the effect of iron chelators as deferroxamine and pyridoxal-isoniconoyl hidrazone on different functions of dendritic cells isolated from BALB/c mice bone marrow. The results suggest that the control of Leishmania infection in dendritic cells is independent of the iron metabolism- nitric oxide synthase expression loop.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Células de Langerhans]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[células dendriticas]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[deferroxamine]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[pyridoxal-isoniconoyl hidrazone]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[metabolismo del hierro]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[óxido nítrico sintetasa]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Leishmania]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Langerhans cells]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[dendritic cells]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[deferroxamine]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[pyridoxal-isoniconoyl hidrazone]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[iron metabolism]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[nitric oxide synthase]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Leishmania]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana" size="3">Modulación de la expresión del asa de regulación hierro libre-óxido nítrico sintetasa de células dendríticas por quelantes de hierro</font></b></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">Alicia Ponte-Sucre </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Laboratorio de Fisiología Molecular, Instituto de Medicina Experimental, Facultad de Medicina, Universidad Central de Venezuela, Caracas, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2"><b><font face="Verdana">Correspondencia: </font></b><font face="Verdana">Laboratorio de Fisiología Molecular, Instituto de Medicina Experimental, Universidad Central de Venezuela, Apdo. 68256, Caracas 1062-A, Venezuela.<span style="mso-tab-count:1"> </span>Tel.: (0058)(212)(6053665) Fax: (0058)(212)(6934351) <span style="mso-tab-count:1"> </span><b>E-mail: aiponte@reacciun.ve</b></font></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El papel de las células dendríticas es fundamental en la señalización de la infección por <i>Leishmania</i> desde la piel hasta los ganglios linfáticos; sin embargo, la proliferación de <i>Leishmania</i> en estas células está restringida. En el macrófago, célula hospedera de <i>Leishmania</i> por excelencia, los parásitos proliferan irrestrictamente y el control de la infección depende directamente de los niveles de óxido nítrico. Debido a que la disponibilidad de hierro celular modula la actividad de la enzima óxido nítrico sintetasa del macrófago y para analizar las causas de la restricción de la proliferación de <i>Leishmania</i> en células dendríticas, en este trabajo evaluamos la influencia del hierro libre intracelular sobre la funcionalidad de células de dendríticas y la infección por <i>Leishmania</i> major. Los resultados demuestran que la en células de Langerhans de la piel expuestas a quelantes de hierro la infección por <i>Leishmania</i> major y la expresión del receptor de transferrina disminuyen, sin alterar la producción de óxido nítrico y otras propiedades funcionales de la célula. La incubación de células dendríticas de médula ósea con quelantes de hierro no afecta la infección por <i>Leishmania</i> <i>major</i> ni la producción de óxido nítrico de la célula. Estos resultados demuestran que la restricción de la proliferación de <i>Leishmania</i> en células dendríticas es independiente de los niveles de hierro celular y de los niveles de óxido nítrico. </font></p>     <p align="justify"><font size="2"><b><font face="Verdana">Palabras claves:</font></b><font face="Verdana"> Células de Langerhans, células dendriticas, deferroxamine, pyridoxal-isoniconoyl hidrazone, metabolismo del hierro, óxido nítrico sintetasa, Leishmania</font></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">The immune changes associated to the experimental infection of mice with Leishmania major and the leading role played by the Langerhans cells in the signalling of the infection from the skin up to the lymphatic ganglions are well known; however, the physiological mechanisms that restrict parasite proliferation in these cells have not been yet identified. In macrophages, control of infection is associated with nitric oxide production. The availability of cellular iron modulates this effector’s system, including the activity of the enzyme nitric oxide synthase. Herein, and in an attempt to analyze if the iron metabolism- nitric oxide synthase expression loop described in other immune cells is present in dendritic cells, we have analyzed the effect of iron chelators as deferroxamine and pyridoxal-isoniconoyl hidrazone on different functions of dendritic cells isolated from BALB/c mice bone marrow. The results suggest that the control of Leishmania infection in dendritic cells is independent of the iron metabolism- nitric oxide synthase expression loop.</font></p>     <p align="justify"><font size="2"><b><font face="Verdana">Key Words:</font></b><font face="Verdana"> Langerhans cells, dendritic cells, deferroxamine, pyridoxal-isoniconoyl hidrazone, iron metabolism, nitric oxide synthase, Leishmania </font></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Introducción</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La infección experimental de ratones con <i>Leishmania major</i> ha permitido precisar factores involucrados en la respuesta inmune contra <i>Leishmania.</i> Los macrófagos y las células de Langerhans (LC) de la piel fagocitan los parásitos y la resolución de la infección ocurre debido a la muerte del parásito por los macrófagos activados (Liew y col., 1993). Las LC de la piel fagocitan parásitos, restringen su replicación y están implicadas en la señalización de la infección desde la piel a los nodos linfáticos y en la activación de células T (Moll, 1993).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aunque líneas celulares de macrófagos deficientes en los mecanismos de producción de especies reactivas de oxígeno eliminan los amastigotes de Leishmania (Scott y col., 1985) y controlan la infección, compuestos tipo superóxido, peróxido de hidrógeno, radicales oxhidrilos y el óxido nítrico (NO) son cruciales en la defensa del hospedero en contra de <i>Leishmania</i> (Miller y Britigan, 1997). La producción de NO es el mecanismo más eficiente de eliminación de Leishmania (Green y col., 1990) y en el modelo murino de ratones BALB/c, macrófagos activados por interferón gamma (IFN-</font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Times New Roman; mso-ascii-font-family: Arial; mso-hansi-font-family: Arial; mso-bidi-font-family: Arial"><font size="2" face="Symbol">g</font></span><font face="Verdana" size="2">) aumentan significativamente su producción de NO (Ding y col., 1988; Green y col., 1990; Nathan y Hibbs, 1991). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Múltiples funciones efectoras de los macrófagos están reguladas por el status férrico celular (Kemp, 1993). Por ejemplo, la activación de macrófagos por IFN-</font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Times New Roman; mso-ascii-font-family: Arial; mso-hansi-font-family: Arial; mso-bidi-font-family: Arial"><font size="2" face="Symbol">g</font></span><font face="Verdana" size="2"> aumenta los niveles de hierro secuestrado por moléculas distintas a ferritina, la expresión de la enzima NO sintetasa (iNOS) y la producción de NO y de neopterina (Miller y Britigan, 1997), molécula implicada en la toxicidad antimicrobicida mediada por radicales libres, peróxidos y cloruros. Por su parte, el aumento de los niveles de hierro libre inhiben la producción basal de NO, disminuye la activación de los monocitos mediada por IFN-</font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Times New Roman; mso-ascii-font-family: Arial; mso-hansi-font-family: Arial; mso-bidi-font-family: Arial"><font size="2" face="Symbol">g</font></span><font face="Verdana" size="2">, la expresión de complejo de histocompatibilidad (MHC) II, la formación de neopterina, la producción de factor de necrosis tumoral, la transcripción de iNOS y producción de NO, y la citotoxicidad contra microorganismos invasores (Weiss y col., 1995, 1997, Harhaji y col., 2004). Los quelantes de hierro tipo desferroxamina aumentan la activación mediada por IFN-</font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Times New Roman; mso-ascii-font-family: Arial; mso-hansi-font-family: Arial; mso-bidi-font-family: Arial"><font size="2" face="Symbol">g</font></span><font face="Verdana" size="2"><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Times New Roman; mso-ascii-font-family: Arial; mso-hansi-font-family: Arial; mso-bidi-font-family: Arial"> </span>en estas células (Weiss y col., 1992). LC aisladas de piel no expresan la enzima iNOS y la adición de donadores de NO o el uso de inhibidores de iNOS no altera la tasa de infección (Blank y col., 1996). Estos resultados sugieren que LC de piel de ratón no expresan iNOS y que un mecanismo alternativo controla la replicación del parásito. Debido a ello, y con el fin de evaluar en LC el asa de regulación hierro libre-expresión de iNOS, en este trabajo analizamos la influencia de quelantes de hierro como desferroxamina, pyridoxal-isonicotinoyl-hidrazona y salicylaldehido-isonicotinoyl-hidrazona sobre la funcionalidad de células de dendríticas y la infección por<i> Leishmania major</i>. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados demuestran que la exposición de LC a quelantes de hierro reduce la infección por <i>Leishmania </i>major, sin alterar otras propiedades funcionales, incluyendo la producción de NO. En células dendríticas de médula ósea (BMDC) los quelantes de hierro no afectan la infección por <i>Leishmania major</i> ni la producción de NO. Estos resultados sugieren que el control de la infección con <i>Leishmania</i> en células dendríticas es independiente de los niveles de hierro libre intracelular y de NO.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Materiales y Métodos</b></font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Parásitos</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Promastigotes de <i>Leishmania</i> (L.) <i>major</i> (MHOM/IL/81/FE/BNI) se cultivaron en medio RPMI 1640, a 26 ºC, suplementado con glutamina 2 mM, suero fetal bovino (SFB) al 10%, Hepes 10 mM pH 7,5, gentamicina 160 µg/ml, NaHCO3- 7,5% y 2-mercaptoetanol 5x10<sup>-5</sup> M (medio completo) (Sigma-Aldrich Chemikalien, Taufkirchen, Alemania). Para generar las formas amastigotes, promastigotes en fase estacionaria de crecimiento se inyectaron en la base de la cola de ratones BALB/c (Charles River Breeding Laboratories, Sulzfeld, Alemania). Para aislar los amastigotes, las lesiones desarrolladas en la base de la cola se cortaron estérilmente, homogeneizaron y pasaron a través de un tamiz de metal. La suspensión celular se centrifugó a 350, 700 y 1000 x g, 10 min a temperatura ambiente (TA). Los parásitos se colectaron en el pellet de 1000 x g y resuspendieron en medio completo, se estimó su densidad y se usaron inmediatamente.</font></p>     <p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Aislamiento de las células de Langerhans y de las células dendríticas de médula ósea </font></i></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las suspensiones de LC se prepararon a partir de piel de oreja de ratón BALB/c tripsinizada (Koch y col., 1990). Las mitades ventrales gruesas se incubaron a 37 °C con 10 ml de tripsina 1% (Sigma-Aldrich Chemikalien), en solución salina fosfatada (PBS), 90 min, mientras que las mitades dorsales delgadas se incubaron a 37 °C con 10 ml de tripsina 0.6% en PBS, 45 min. Estas preparaciones contienen 3-5% de LC puras que expresan el MHC II (Kampgen y col., 1991).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las células dendríticas (BMDC) se aislaron de médula ósea de ratones BALB/c (Lutz y col, 1999) y cultivaron en cápsulas de Petri a 37 °C, 5 % CO2 (2 10<sup>6</sup> células en 10 ml de medio completo y 200 U ml<sup>-1</sup> de GM-CSF (granulocyte macrophage-colony stimulating factor) (PeproTech, London, Gran Bretaña) fresco. Al día 0, 3 y 6 de comenzar el cultivo, se añadieron 5 ml de medio completo y 200 U ml<sup>-1</sup> de GM-CSF. Las células se colectaron al día 10 y se resuspendieron a una densidad de 1 x 106 ml<sup>-1</sup> en medio completo.</font></p>     <p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Efecto de los quelantes de hierro sobre la infección </font></i></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">LC o DC, 3 x 10<sup>6</sup> por pozo se incubaron 24 h, a 37 °C, 5% CO<sub>2</sub> en platos de 12 pozos en ausencia de estimulantes, o en presencia de 100 ng ml<sup>-1</sup> LPS (Sigma-Aldrich Chemikalien), o 50 µM desferroxamina (DFO) (Sigma-Aldrich Chemikalien), pyridoxal-isonicotinoyl-hidrazona (PIH) o salicylaldehido-isonicotinoyl-hidrazona (SIH) y se infectaron con 3 x 10<sup>7</sup> amastigotes de L. major. La carga parasitaria se estimó coloreando las células infectadas según la metodología de Channon y col. (1984). </font></p>     <p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Efecto de los quelantes de hierro sobre la migración de las células de Langerhans</font></i></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Para evaluar la migración de LC, las orejas de ratón se escindieron y se colocaron sobre medio completo y se incubaron a 37 °C, 5% CO2 en platos de 12 pozos en ausencia de estimulantes, o en presencia de 100 ng ml<sup>-1</sup> LPS, o 50 µM DFO, PIH o SIH. Al cabo de tres días el medio de cultivo se colectó y se estimó la densidad de células dendríticas presentes.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i>Efecto de los quelantes de hierro sobre la expresión de marcadores de superficie</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">LC, 3 x 10<sup>6</sup> por pozo se incubaron 24 h, 37 °C, 5 % CO2 en platos de 12 pozos en ausencia de estimulantes, o en presencia de 100 ng ml<sup>-1</sup> LPS, o 50 µM DFO, PIH o SIH. Al día siguiente se colectaron las células no adheridas. La expresión de los marcadores de superficie se evaluó en las LC colectadas. Estas se incubaron 30 min a 4 °C con un anticuerpo anti ratón-I-A<i><sup>d</sup></i>-biotinilado (BD Biosciences Pharmingen, Wiesbaden, Alemania) y los anticuerpos contra factores co-estimulatorios rata-anti CD80 (B7-1) y rata-anti CD86 (BD Biosciences Pharmingen), o contra el receptor de transferrina rata-anti-CD71 (BD Biosciences Pharmingen), o contra los receptores para IL-1&#946;rata-anti IL-1 RI y rata-anti-IL-1 RII (BD Biosciences Pharmingen) y los isotipos respectivos a una diluci&#963;n 1:100 en PBS, 2% SFB. Seguidamente se marcaron con estreptavidina-FITC (BD Biosciences Pharmingen) y asno-anti-rata-PE (BD Biosciences Pharmingen), a una dilución 1:100 en PBS, 2% SFB. La expresión de los marcadores de superficie se realizó en células positivas para MHC II, luego de establecer una ventana de adquisición en un sorteador de células por fluoresecencia de Becton Dickson.</font></p>     <p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Efecto de los quelantes de hierro sobre la producción de óxido nítrico</font></i></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">LC o DC, 3 x 10<sup>6</sup> por pozo se incubaron 24 h, a 37 °C, 5% CO<sub>2</sub> en platos de 12 pozos en ausencia de estimulantes, o en presencia de 100 ng ml<sup>-1</sup> LPS, o 50 µM DFO, PIH o SIH y se infectaron con 3 x 10<sup>7</sup> amastigotes de L. major. Al final del período de incubación el sobranadante de los cultivos se colectó y almacenó a –20ºC. El nivel de NO producido se evaluó al determinar la concentración de nitritos presente en el sobrenadante del medio de cultivo. Para ello se incubaron 100 µl del sobrenadante del medio de cultivo con 100 µl de reactivo de Griess (1% sulfanilamide, 0.1% naphtylethylene diamine dihydrochloride, 2.5% ácido fosfórico) (Sigma-Aldrich Chemikalien), 10 min a TA de acuerdo con la metodología de Granger y col. (1996). La absorbancia del producto de reacción se midió en un lector de ELISA a 540/630 nm. La concentración de NO<sub>2</sub>- se determinó utilizando nitrito de sodio como solución Standard. </font></p>     <p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Efecto de los quelantes de hierro sobre la expresión de la NO sintetaasa</font></i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los niveles de iNOS se cuantificaron mediante Western blot. Alícuotas de citosol de células dendríticas sembradas en platos de 12 pozos en ausencia de estimulantes, o en presencia de 100 ng ml<sup>-1</sup> LPS, o 50 µM PIH o SIH fueron sometidas a PAGE y transferidas a papel de nitrocelulosa. Los sitios de unión no específica se bloquearon con albúmina de suero bovino al 10 % en Tris 100 mM, pH 7.0, 0.05% Tween 20 (TBST), 24 h, a 4 °C. El papel de nitrocelulosa se incubó en presencia del anticuerpo policlonal contra iNOS (Sigma-Aldrich Chemikalien) (1:250 en TBST), 4 h, a TA, seguidamente se incubó 4 h, a TA en presencia del anticuerpo de detección, anti-rabbit IgG (Sigma-Aldrich Chemikalien) (1:500 en TBS) acoplado a fosfatasa alcalina. La detección de las bandas de proteína se logró al añadir el substrato de fosfatasa alcalina (Sigma-Aldrich Chemikalien) y obtener el desarrollo de color. </font></p>     <p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Efecto de los quelantes de hierro sobre la producción de IL-1&#946; e IL-12</font></i></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">LC o DC, 3 x 10<sup>6</sup> por pozo se incubaron 24 h, a 37 °C, 5% CO<sub>2</sub> en platos de 12 pozos en ausencia de estimulantes, o en presencia de 100 ng ml<sup>-1</sup> LPS, o 50 µM DFO, PIH o SIH y se infectaron con 3 x 107 amastigotes de L. major. Al final del período de incubación el sobranadante de los cultivos se colectó y almacenó a –20 ºC. Los niveles de IL-1&#946; e IL-12 en los sobrenadantes de cultivo se cuantificaron mediante un kit inmuno-absorbente “sandwich ELISA” de acuerdo a las instrucciones del fabricante (BD Biosciences Pharmingen y R&amp;D Systems, Wiesbaden, Germany). Platos para Elisa de base plana se incubaron toda la noche a 4 °C con anticuerpos monoclonales en contra de la respectiva citoquina disuelta en 0.1 M NaHCO<sub>3</sub>, pH 9.0, 50 µl por pozo. Los sitios de unión no específica se bloquearon con albúmina de suero bovino al 10% en TBS, 100 µl por pozo por dos horas a TA. Los platos se lavaron extensivamente con TBS. Las muestras y los blancos se añadieron (100 µl por pozo) y una curva Standard se construyó para cada plato utilizando diluciones seriadas de la citoquina recombinante. Los platos se incubaron 24 h, a 4 °C, se agregó el anticuerpo monoclonal contra la citoquina correspondiente (1:500 en TBS, 100 µl por pozo), se incubó una h, a TA, se añadió 100 µl de fosfatasa alcalina (1:100 en TBS) y los platos se incubaron 90 min, a TA. Para detectar la presencia de las citoquinas el substrato de fosfatasa alcalina se añadió a las muestras y se leyó la densidad óptica 405/490 nm usando un lector de ELISA.</font></p>     <p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Análisis estadístico</font></i></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los datos se expresan como la media ± el error tipo de la media. Para los datos de infección, expresión de marcadores de superficie, secreción de NO, e iNOS se realizaron de 3 a 7 experimentos independientes. Los datos de migración y secreción de IL-1&#946; IL-12 y NO de LC representan los valores obtenidos de 9 réplicas. Las diferencias entre los diferentes tratamientos experimentales fueron analizados para significancia estadística mediante el modelo de ANOVA de dos vías y post análisis de Bonferroni, utilizando el paquete estadístico GraphPad-4®. La intensidad de las bandas en el Western blot fueron analizadas mediante el programa Lab Image.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Efecto de los quelantes de hierro sobre la función de las células de Langerhans</font></i></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El efecto de los quelantes de hierro sobre la función de las LC se determinó al evaluar la infección, expresión de marcadores de superficie, secreción de IL-1&#946; e IL-12 y secreción de NO en LC aisladas de oreja de ratón incubadas en presencia de los diferentes quelantes de hierro. El tratamiento de LC con LPS se utilizó como control positivo. Como parámetro adicional de la funcionalidad de LC se evaluó su capacidad de migración desde mitades de orejas incubadas bajo las diferentes condiciones experimentales.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La <a href="#f1"> fig. 1</a> muestra la infección de LC por <i>L. major</i> y su capacidad de migración (como células no infectadas). La incubación con LPS aumentó la infección de LC por <i>L. major</i>, mientras que la incubación con DFO y PIH la disminuyó. Por otra parte, la migración de LC desde mitades de orejas al medio de cultivo fue similar en todas las condiciones experimentales. Finalmente, la expresión del MHC-clase II y las moléculas co-estimulatorias CD80 y CD86, parámetros indicativos de la maduración de LC alcanzaron valores equivalentes en todas las condiciones experimentales (<a href="#T1">Tabla I</a>). Estos resultados sugieren que el tratamiento de LC con quelantes de hierro disminuye la infección de LC por <i>L. major</i> sin afectar las propiedades migratorias y de presentación antigénica de las LC. </font></p>     <p align="center"><a name="f1"><img border="0" src="/img/fbpe/avft/v25n1/art02img01.gif" width="539" height="485"></a></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="T1"><img border="0" src="/img/fbpe/avft/v25n1/art02tab1.gif" width="452" height="153"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los niveles de IL-1&#946; e IL-12 se evaluaron en sobrenadantes de cultivo de orejas de rat&#963;n (<a href="#f2">Fig. 2</a>) incubadas en presencia de DFO aumentaron (no significativamente) en comparación con los niveles detectados en LC no tratadas; la producción de oxido ntrico en todas las condiciones experimentales fue de unos 40 µM (datos no mostrados). Finalmente (<a href="#f3">Fig. 3</a>), el tratamiento con los quelantes de hierro afectó significativamente la expresión de los marcadores de superficie evaluados (p &lt;0.001). Así, en comparación con los niveles detectados en LC incubadas durante 24 horas sin tratamiento, la expresión del receptor de transferrina B71 disminuyó significativamente en LC incubadas en presencia de DFO (p &lt;0.001), mientras que la expresión del receptor IL-1&#946;R-II aument&#963; significativamente (p &lt;0.001); la expresión de este receptor disminuyó significativamente en LC incubadas en presencia de PIH (p&lt;0.001) en comparación con los niveles detectados en LC incubadas durante 24 horas sin tratamiento. Estos resultados sugieren que los quelantes de hierro disminuyen la infección de LC por <i>L. major</i> mediante mecanismos independientes del asa de regulación hierro libre-producción de NO.</font></p>     <p align="center"><a name="f2"><img border="0" src="/img/fbpe/avft/v25n1/art02img02.gif" width="544" height="374"></a></p>     
<p align="center"><a name="f3"><img border="0" src="/img/fbpe/avft/v25n1/art02img03.gif" width="546" height="357"></a></p>     
<p align="justify"><i><font face="Verdana" size="2">Efecto de los quelantes de hierro sobre la función de las células dendríticas de médula ósea</font></i></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Una de las principales desventajas metodológicas de las preparaciones de piel de oreja de ratón es el bajo rendimiento en LC puras. Debido a ello, y a fin de confirmar los datos aquí presentados para LC, estudiamos el efecto de los quelantes de hierro sobre la infección, la producción de IL-1&#946;, IL-12 y NO y la expresión de iNOS en células dendríticas aisladas de médula ósea de ratones BALB/c.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La <a href="#f4"> Fig. 4</a> muestra la infección por <i>L. major</i> y los niveles de NO en sobrenadantes de cultivos de BMDC sometidas a diferentes condiciones experimentales. El porcentaje de infección en BMDC tratadas con quelantes de hierro fue similar al encontrado en BMDC no tratadas y los niveles de NO fueron equivalentes en todas las condiciones; estos datos sugieren que en BMDC de ratones BALB/c, la infección por<i> L. major</i> y la producción de NO son independientes de los niveles intracelulares de hierro. Un análisis de Western blot (<a href="#f4">Fig. 4b</a>) confirmó la presencia de la enzima iNOS en células dendríticas de médula osea sujetas a los diferentes tratamientos. Los niveles de enzima en células no tratadas aumentaron en células incubadas en presencia de LPS y disminuyeron significativamente en células incubadas en presencia de PIH (p &lt; 0.005), mas no de SIH. Finalmente, en comparación con BMDC no tratadas, la producción IL-12 no cambió significativamente en DC tratadas con quelantes de hierro e infectadas con <i>L. major</i>, aunque la producción IL-1&#946; aument&#963; significativamente (p &lt; 0.005) (<a href="#f5">Fig. 5</a>). </font></p>     <p align="center"><a name="f4"><img border="0" src="/img/fbpe/avft/v25n1/art02img04.gif" width="487" height="691"></a></p>     
<p align="center"><a name="f5"><img border="0" src="/img/fbpe/avft/v25n1/art02img05.gif" width="557" height="392"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Discusión</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A diferencia de lo que ocurre en los macrófagos, la proliferación de Leishmania en las células dendríticas está restringida; el papel fundamental de estas células es la señalización de la infección desde la piel hasta los ganglios linfáticos. En el macrófago, los parásitos proliferan y el control de la infección depende directamente de los niveles de NO. La disponibilidad de hierro celular modula la funcionalidad celular del macrófago incluyendo actividad de la enzima NO sintetasa (Weiss y col., 1995, 1997, Harhaji y col., 2004). Para evaluar si un control similar ocurre en células dendríticas, en el presente trabajo evaluamos la influencia del hierro libre intracelular sobre la fisiología de células dendríticas de piel y médula ósea y la infección por Leishmania. Los resultados demuestran que la exposición de LC a quelantes de hierro disminuye la infección por L. major y la expresión del receptor de transferrina, no altera sus propiedades funcionales de migración y presentación antigénica, y no afecta la producción de NO. La incubación de BMDC con quelantes de hierro no afecta la infección por <i>L. major</i> ni la producción de NO, y aumenta la secreción de IL-1&#946; Estos resultados sugieren que el control de la infecci&#963;n de células dendríticas por <i>Leishmania</i> es independiente del asa de regulación iNOS-hierro libre.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Bisti y col. (2000) demostraron que los quelantes de hierro inhiben el crecimiento in vitro de Leishmania; el tratamiento de ratones BALB/c con DFO retarda la aparición de lesiones en ratones infectados y el tratamiento sistémico de ratones infectados con hierro disminuye significativamente el desarrollo de las lesiones. El presente trabajo confirma parcialmente estos resultados en LC y BMDC aisladas de ratones BALB/c, incubadas en presencia de DFO, PIH y SIH e infectadas con L. major. Adicionalmente demuestra que la expresión de iNOS disminuye significativamente en BMDC incubadas con quelantes de hierro. Estos resultados sugieren que un mecanismo alternativo al asa de regulación iNOS-hierro libre es responsable del control de la replicación del parásito en estas células. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al estudiar las funciones inherentes a su condición de células dendríticas encontramos que el tratamiento de LC con quelantes de hierro no altera su migración desde mitades de orejas de ratón BALB/c, la expresión de marcadores de superficie como MHC-II, CD80 y CD86 o niveles de citoquinas implicadas en la activación celular como IL-&#946; e IL-12. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Sólo cambian la expresión del receptor de transferrina y del receptor de IL-1&#946;. La relación entre la expresión del receptor de transferrina y la activación de células T ha sido previamente descrita (Chaudhri y col., 1988) en linfocitos tratados con quelantes de hierro y estimuladas con esteres de forbol e ionomicina. La expresión del receptor de transferrina CD71 aumenta en células incubadas en presencia de DFO (Kroos y col., 1996) pero en macrófagos estimulados con diversas citoquinas y tratados con LPS, la expresión de CD71 disminuye (Weiss y col., 1997) y, en células K562 transfectadas con un receptor de transferrina denominado TfR2, su expresión disminuye en condiciones de agotamiento de hierro o en presencia de quelantes de hierro (Kawabata y col., 2000). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Nuestros experimentos confirman estos resultados ya que la expresión de CD71 disminuye en presencia de LPS y de los quelantes de hierro. Por otra parte, el papel regulador del hierro en la producción de IL-1&#946; ha sido descrito en macrófagos alveolares (O’Brien y col., 1998) y tejido completo (O’Brien y col., 2000). En este trabajo se demuestra la correlación negativa que existe entre los niveles de hierro libre intracelular y la producción de IL-1&#946; y el aumento significativo (hasta de 20 veces) de la capacidad de secretar IL-1&#946; de macr&#963;fagos alveolares tratados con DFO. Nuestros resultados experimentales sugieren una correlación similar entre los niveles de hierro libre intracelulares y la secreción de IL-1&#946; en células dendríticas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">De los resultados presentados en este trabajo puede concluirse que la regulación del metabolismo de hierro en BMDC es extremadamente compleja y no parece estar vinculada a la producción de NO, adicionalmente los resultados sugieren que en BMDC de ratones BALB/c, las funciones celulares son independientes de los niveles de hierro inttracelular. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los autores agradecen en carecidamente a la Dra. Heidrun Moll la donación de los quelantes de hierro isonicotinoyl-hidrazona y salicylaldehido-isonicotinoylhidrazona y los rarones BALB/c. Este proyecto ha sido parcialmente financiado por el CDCH, PI-09.33.5520.2003. AI 09-00-5783-2005. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>1.</b> Bisti S, Konidou G, Papageorgiou F, Milon G, Boelaert JR, Soteriadou K. The outcome of Leishmania major experimental infection in BALB/c mice can be modulated by exogenously delivered iron. Eur. J. Immunol. 2000. 30: 3732-3740.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587222&pid=S0798-0264200600010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>2. </b> Blank C, Bogdan C, Bauer C, Erb K, Moll H. Murine epidermal Langerhans cells do not express inducible nitric oxide synthase. Eur. J. Immunol. 1996. 26: 792-796.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587223&pid=S0798-0264200600010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>3.</b> Channon J, Roberts M, Blackwell J. A study of the differential respiratory burst activity elicited by promastigotes and amastigotes of Leishmania donovani in murine resident peritoneal macrophages. Immunol. 1984. 53: 345-355.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587224&pid=S0798-0264200600010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>4.</b> Chaudhri G, Hunt NH, Clark IA, Ceredig R. Antioxidants inhibit proliferation and cell surface expression of receptors for interleukin-2 and transferrin in T lymphocytes stimulated with phorbol myristate acetate and ionomycin. Cell Immunol. 1988. 115: 204-213.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587225&pid=S0798-0264200600010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>5.</b> Ding AH, Nathan CF, Stuehr DJ. Release of reactive nitrogen intermediates and reactive oxygen intermediates from mouse peritoneal macrophages. J. Immunol. 1988. 141: 2407-2412.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587226&pid=S0798-0264200600010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>6.</b> Granger DL, Taintor RR, Boockvar KS, Hibbs Jr, JB. Measurement of nitrate and nitrite in biological samples using nitrate reductase and Griess reaction. Meth. Enzimol. 1996. 268: 142-151.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587227&pid=S0798-0264200600010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>7.</b> Green SJ, Meltzer MS, Hibbs JB, Nacy CA. Activated macrophages destroy intracellular Leishmania major amastigotes by an L-Arginine-dependent killing mechanism. J. Immunol. 1990. 144: 278-283.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587228&pid=S0798-0264200600010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>8.</b> Harhaji L, Vuckovic O, Miljkovic D, Stosic-Grujicic S, Trajkovic V. Iron down-regulates macrophage anti-tumour activity by blocking nitric oxide production. Clin. Exp. Immunol. 2004. 137: 109-116.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587229&pid=S0798-0264200600010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>9.</b> Kampgen E, Koch N, Koch F, Stoger P, Heufler C, Schuler G, Romani N. Class II major histocompatibility complex molecules of murine dendritic cells: synthesis, sialylation of invariant chain, and antigen processing capacity are down-regulated upon culture. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. 88:3014-3018. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587230&pid=S0798-0264200600010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>10.</b> Kawabata H, Germain RS, Vuong PT, Nakamaki T, Said JW, Koeffler HP. Transferrin receptor 2-alpha supports cell growth both in iron-chelated cultured cells and in vivo. J. Biol. Chem. 2000. 275: 16618-25.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587231&pid=S0798-0264200600010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>11.</b> Kemp JD. The role of iron and iron binding proteins in lymphocyte physiology and pathology. J. Clin. Investig. 1993. 13: 81-91.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587232&pid=S0798-0264200600010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>12.</b> Koch F, Heufler C, Kampgen E, Schneeweiss D, Bock G, Schuler G. Tumor necrosis factor alpha maintains the viability of murine epidermal Langerhans cells in culture, but in contrast to granulocyte/macrophage colony-stimulating factor, without inducing their functional maturation. J. Exp. Med. 1990. 171: 1759-1771.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587233&pid=S0798-0264200600010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>13.</b> Kroos MJ, Starreveld JS, Verrijt CE, van Eijk HG, van Dijk JP. Regulation of transferrin receptor synthesis by human cytotrophoblast cells in culture. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1996. 65: 231-234.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587234&pid=S0798-0264200600010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>14.</b> Liew FY, O’Donnel CA. Immunology of leishmaniasis. Adv. in Parasitol. 1993. 32: 162-259. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587235&pid=S0798-0264200600010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>15.</b> Lutz MB, Kukutsch N, Ogilvie AL, Rossner S, Koch F, Romani N, Schuler G. An advanced culture method for generating large quantities of highly pure dendritic cells from mouse bone marrow. J. Immunol. Meth. 1999. 223: 77-92.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587236&pid=S0798-0264200600010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>16.</b> Miller R, Britigan B. Role of oxidants in micrbial pathohysiology. Clin. Microbiol. Rev. 1997. 1-18.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587237&pid=S0798-0264200600010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>17.</b> Moll H. Epidermal Langerhans cells are critical for immunoregulation of cutaneous leishmaniasis. Immunol. Today. 1993.14: 383-387.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587238&pid=S0798-0264200600010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>18.</b> Nathan CF, Hibbs Jr. JB. Role of nitric oxide synthesis in macrophage antimicrobial activity. Curr. Opin. Immuno. 1991. 3: 65-70.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587239&pid=S0798-0264200600010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>19.</b> O’Brien-Ladner AR, Blumer BM, Wesselius LJ. Differential regulation of human alveolar macrophage-derived interleukin-1beta and tumor necrosis factor-alpha by iron. J. Lab. Clin. Med. 1998. 132: 497-506.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587240&pid=S0798-0264200600010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>20.</b> O’Brien-Ladner AR, Nelson SR, Murphy WJ, Blumer BM, Wesselius LJ. Iron is a regulatory component of human IL-1beta production. Support for regional variability in the lung. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2000. 23: 112-119.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587241&pid=S0798-0264200600010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>21.</b> Scott P, James S, Sher A. The respiratory burst is not required for killing of intracellular and extracellular parasites by a lymphokine-activated macrophage cell line. Eur. J. Immunol. 1985. 15: 553-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587242&pid=S0798-0264200600010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>22.</b> Weiss G, Fuchs D, Hausen A, Reibnegger G, Werner ER, Werner-Felmayer G, Wachter H. Iron modulates interferon gamma effects in human myelomonocytic cell line THP-1. Experiment. Hematol. 1992. 20: 605-610.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587243&pid=S0798-0264200600010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>23.</b> Weiss G, Wachter H, Fuchs D, Linkage of cell mediated immunity to iron metabolism. Immunol. Today. 1995. 16: 495-499.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587244&pid=S0798-0264200600010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>24.</b> Weiss G, Bogdan C, Hentze MW. Pathways for the regulation of macrophage iron metabolism by the antiinflamatory cytokines IL-4 and IL-13. J Immunol. 1997. 158: 420-425.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=587245&pid=S0798-0264200600010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
<back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Bisti]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Konidou]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Papageorgiou]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Milon]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Boelaert]]></surname>
<given-names><![CDATA[JR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Soteriadou]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The outcome of Leishmania major experimental infection in BALB/c mice can be modulated by exogenously delivered iron]]></article-title>
<source><![CDATA[Eur. J. Immunol.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>30</volume>
<page-range>3732-3740</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Blank]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bogdan]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bauer]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Erb]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Moll]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Murine epidermal Langerhans cells do not express inducible nitric oxide synthase]]></article-title>
<source><![CDATA[Eur. J. Immunol.]]></source>
<year>1996</year>
<volume>26</volume>
<page-range>792-796</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Channon]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Roberts]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Blackwell]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A study of the differential respiratory burst activity elicited by promastigotes and amastigotes of Leishmania donovani in murine resident peritoneal macrophages]]></article-title>
<source><![CDATA[Immunol.]]></source>
<year>1984</year>
<volume>53</volume>
<page-range>345-355</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chaudhri]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hunt]]></surname>
<given-names><![CDATA[NH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Clark]]></surname>
<given-names><![CDATA[IA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ceredig]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Antioxidants inhibit proliferation and cell surface expression of receptors for interleukin-2 and transferrin in T lymphocytes stimulated with phorbol myristate acetate and ionomycin]]></article-title>
<source><![CDATA[Cell Immunol.]]></source>
<year>1988</year>
<volume>115</volume>
<page-range>204-213</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ding]]></surname>
<given-names><![CDATA[AH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nathan]]></surname>
<given-names><![CDATA[CF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Stuehr]]></surname>
<given-names><![CDATA[DJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Release of reactive nitrogen intermediates and reactive oxygen intermediates from mouse peritoneal macrophages]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Immunol.]]></source>
<year>1988</year>
<volume>141</volume>
<page-range>2407-2412</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Granger]]></surname>
<given-names><![CDATA[DL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Taintor]]></surname>
<given-names><![CDATA[RR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Boockvar]]></surname>
<given-names><![CDATA[KS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hibbs Jr,]]></surname>
<given-names><![CDATA[JB]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Measurement of nitrate and nitrite in biological samples using nitrate reductase and Griess reaction]]></article-title>
<source><![CDATA[Meth. Enzimol.]]></source>
<year>1996</year>
<volume>268</volume>
<page-range>142-151</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Green]]></surname>
<given-names><![CDATA[SJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Meltzer]]></surname>
<given-names><![CDATA[MS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hibbs]]></surname>
<given-names><![CDATA[JB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nacy]]></surname>
<given-names><![CDATA[CA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Activated macrophages destroy intracellular Leishmania major amastigotes by an L-Arginine-dependent killing mechanism]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Immunol.]]></source>
<year>1990</year>
<volume>144</volume>
<page-range>278-283</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Harhaji]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vuckovic]]></surname>
<given-names><![CDATA[O]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Miljkovic]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Stosic-Grujicic]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Trajkovic]]></surname>
<given-names><![CDATA[V]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Iron down-regulates macrophage anti-tumour activity by blocking nitric oxide production]]></article-title>
<source><![CDATA[Clin. Exp. Immunol.]]></source>
<year>2004</year>
<volume>137</volume>
<page-range>109-116</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kampgen]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Koch]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Koch]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Stoger]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Heufler]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schuler]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Romani]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Class II major histocompatibility complex molecules of murine dendritic cells: synthesis, sialylation of invariant chain, and antigen processing capacity are down-regulated upon culture]]></article-title>
<source><![CDATA[Proc. Natl. Acad. Sci. USA.]]></source>
<year>1991</year>
<volume>88</volume>
<page-range>3014-3018</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kawabata]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Germain]]></surname>
<given-names><![CDATA[RS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vuong]]></surname>
<given-names><![CDATA[PT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nakamaki]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Said]]></surname>
<given-names><![CDATA[JW]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Koeffler]]></surname>
<given-names><![CDATA[HP]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Transferrin receptor 2-alpha supports cell growth both in iron-chelated cultured cells and in vivo]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Biol. Chem.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>275</volume>
<page-range>16618-25</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kemp]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The role of iron and iron binding proteins in lymphocyte physiology and pathology]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Clin. Investig.]]></source>
<year>1993</year>
<volume>13</volume>
<page-range>81-91</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Koch]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Heufler]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kampgen]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schneeweiss]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bock]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schuler]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Tumor necrosis factor alpha maintains the viability of murine epidermal Langerhans cells in culture, but in contrast to granulocyte/macrophage colony-stimulating factor, without inducing their functional maturation]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Exp. Med.]]></source>
<year>1990</year>
<volume>171</volume>
<page-range>1759-1771</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kroos]]></surname>
<given-names><![CDATA[MJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Starreveld]]></surname>
<given-names><![CDATA[JS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Verrijt]]></surname>
<given-names><![CDATA[CE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[van Eijk]]></surname>
<given-names><![CDATA[HG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[van Dijk]]></surname>
<given-names><![CDATA[JP]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Regulation of transferrin receptor synthesis by human cytotrophoblast cells in culture]]></article-title>
<source><![CDATA[Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol.]]></source>
<year>1996</year>
<volume>65</volume>
<page-range>231-234</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Liew]]></surname>
<given-names><![CDATA[FY]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[O’Donnel]]></surname>
<given-names><![CDATA[CA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Immunology of leishmaniasis]]></article-title>
<source><![CDATA[Adv. in Parasitol.]]></source>
<year>1993</year>
<volume>32</volume>
<page-range>162-259</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Lutz]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kukutsch]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ogilvie]]></surname>
<given-names><![CDATA[AL]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rossner]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Koch]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Romani]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schuler]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[An advanced culture method for generating large quantities of highly pure dendritic cells from mouse bone marrow]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Immunol. Meth.]]></source>
<year>1999</year>
<volume>223</volume>
<page-range>77-92</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Miller]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Britigan]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Role of oxidants in micrbial pathohysiology]]></article-title>
<source><![CDATA[Clin. Microbiol. Rev.]]></source>
<year>1997</year>
<page-range>1-18</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Moll]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Epidermal Langerhans cells are critical for immunoregulation of cutaneous leishmaniasis]]></article-title>
<source><![CDATA[Immunol. Today.]]></source>
<year>1993</year>
<volume>14</volume>
<page-range>383-387</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Nathan]]></surname>
<given-names><![CDATA[CF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hibbs Jr.]]></surname>
<given-names><![CDATA[JB]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Role of nitric oxide synthesis in macrophage antimicrobial activity]]></article-title>
<source><![CDATA[Curr. Opin. Immuno.]]></source>
<year>1991</year>
<volume>3</volume>
<page-range>65-70</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[O’Brien-Ladner]]></surname>
<given-names><![CDATA[AR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Blumer]]></surname>
<given-names><![CDATA[BM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wesselius]]></surname>
<given-names><![CDATA[LJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Differential regulation of human alveolar macrophage-derived interleukin-1beta and tumor necrosis factor-alpha by iron]]></article-title>
<source><![CDATA[J. Lab. Clin. Med.]]></source>
<year>1998</year>
<volume>132</volume>
<page-range>497-506</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[O’Brien-Ladner]]></surname>
<given-names><![CDATA[AR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nelson]]></surname>
<given-names><![CDATA[SR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Murphy]]></surname>
<given-names><![CDATA[WJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Blumer]]></surname>
<given-names><![CDATA[BM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wesselius]]></surname>
<given-names><![CDATA[LJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Iron is a regulatory component of human IL-1beta production: Support for regional variability in the lung]]></article-title>
<source><![CDATA[Am. J. Respir. Cell Mol. Biol.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>23</volume>
<page-range>112-119</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Scott]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[James]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sher]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[The respiratory burst is not required for killing of intracellular and extracellular parasites by a lymphokine-activated macrophage cell line]]></article-title>
<source><![CDATA[Eur. J. Immunol.]]></source>
<year>1985</year>
<volume>15</volume>
<page-range>553-8</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Weiss]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fuchs]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hausen]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Reibnegger]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Werner]]></surname>
<given-names><![CDATA[ER]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Werner-Felmayer]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wachter]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Iron modulates interferon gamma effects in human myelomonocytic cell line THP-1]]></article-title>
<source><![CDATA[Experiment. Hematol.]]></source>
<year>1992</year>
<volume>20</volume>
<page-range>605-610</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Weiss]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wachter]]></surname>
<given-names><![CDATA[H]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fuchs]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Linkage of cell mediated immunity to iron metabolism]]></article-title>
<source><![CDATA[Immunol. Today.]]></source>
<year>1995</year>
<volume>16</volume>
<page-range>495-499</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Weiss]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bogdan]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hentze]]></surname>
<given-names><![CDATA[MW]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Pathways for the regulation of macrophage iron metabolism by the antiinflamatory cytokines IL-4 and IL-13]]></article-title>
<source><![CDATA[J Immunol.]]></source>
<year>1997</year>
<volume>158</volume>
<page-range>420-425</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
