Caracterización de polen apícola fresco recolectado en Cacute, en los Andes Venezolanos.
Characterization of fresh bee pollen collected in Cacute, in Venezuelan Andes.
Patricia Vit1, Patricia Herrera1, Duriana Rodríguez1, Juan Carmona2
1 Apiterapia y Bioactividad, Departamento Ciencia de los Alimentos, Venezuela.
2 Jardín de Plantas Medicinales, Facultad de Farmacia y Bioanálisis, Universidad de Los Andes, Mérida, Venezuela. Autor principal: Tlf. 0274-2403565 (of) Fax 0274-2711802 vit@ula.ve.
RESUMEN
El polen apícola es el segundo producto de la colmena más consumido, después de la miel de abejas; sin embargo, en Venezuela aún no se han elaborado las normas para su control de calidad. En el presente trabajo, se recolectó polen fresco en Cacute, Municipio Rangel, Estado Mérida de Venezuela, se separó manualmente en cuatro colores. Estos granos de polen fueron observados con el microscopio para su identificación botánica por comparación con la palinoteca de referencia. Cada tipo de polen se identificó utilizando una palinoteca de referencia: 1. Brassica napus (amarillo), 2. Fraxinus americana (anaranjado), 3. Zea mays (pardo), 4. Datura arborea (cremoso). La descripción sensorial permitió percibir diferencias de olor (resina, paja, miel), sabor (ácido, amargo, astringente, dulce) y textura (crujiente, pegajosa, polvorosa), además del color utilizado para separar las especies vegetales. La com posición físico- química varió así: 8,74 – 9,90 g agua/100 g polen, 2,15 – 33,9 g cenizas/100 g polen, 2,00 – 3,36 g extracto etéreo/ 100 g polen y 16,54 – 26,30 g proteína/100 g polen.
Palabras clave: Andes, polen apícola, Venezuela.
ABSTRACT
]]> Bee pollen is the second product of the comb most consumed, after honey; however, there are no regulations for its quality control in Venezuela. In this work, fresh bee pollen collected in Cacute, Rangel County, Mérida state from Venezuela, was separated manually into fours colors. These pollen grains were observed with the microscope for its botanical identification by comparison with the pollen reference collection. Each pollen type was identified with a pollen reference collection: 1. Brassica napus (yellow). 2. Fraxinus americana (orange). 3. Zea mays (brown). 4. Da tura ar borea (creamy). Sensory evaluation allowed perception of differences in odour (resin, straw, honey), flavour (sour, bitter, astringent, sweet) and texture (crispy, sticky, powdery). The physicochemical composition varied as fo llows: 8,74–9,90 g water/100 g pollen, 2,15 – 33,9 g ash/100 g pollen, 2,00- 3,36 g fat/100 g pollen y 16,54 – 26,30 g protein/ 100 g pollen.Key words: Andes, bee pollen, Venezuela.
Recibido: 13 de Julio de 2007 / Aceptado: 25 de noviembre de 2007
INTRODUCCIÓN
Los granos de polen contienen el elemento masculi no fecundante de las plantas (1). Sus características mor fo lógicas determinan el tipo de polinización, porque podrán ser recolectados por los insectos o no (2). Por ejemplo, los granos lisos son polinizados por el aire y los grabados con estrías, retículas o espinas, son transportados por insectos como las abejas (3), desde las anteras maduras hasta el estigma de la misma flor o de otra (1, 4).
Según su origen botánico el polen apícola varía de color (5), y puede estar compuesto por 7.0– 35.0% proteínas, 15.0 – 50.0% de azúcares, 7.0 – 10.0% de humedad, 5.0% de extracto etéreo y 3.0% de cenizas (4), y otros componentes minoritarios como flavonoides, carotenoides, vitaminas, minerales, terpenos, aminoácidos libres, ácidos nucleicos, enzimas y factores de crecimiento (6,7).
Venezuela sólo tiene normas de calidad para la miel de abejas (8,9); sin embargo, países como Brasil ya tienen normas para el control de calidad físico-químico del polen apícola (10), con los siguientes requisitos: 1. Acidez libre (max 300,0 mEq/kg polen). 2. Azúcares totales (min 14,5 – max 55,0 g azúcares/100 g polen). 3. Cenizas (max 4,0 g cenizas/ 100 g polen). 4. Fibra cruda (min 2,0 g fibra/100 g polen). 5. Humedad (max 4,0 g agua/100 g polen). 6. Lípidos (min 1,8 g lípidos/ 100 g polen). 7. pH (min 4,0 – max 6,0). 8. Proteínas (min 8,0 g proteína/ 100 g polen).
El polen apícola, además de ser consumido como alimento por el hombre, también es utilizado en preparados con acción farmacológica y cosmética (11). Su uso en apiterapia ha presentado controversias por la reac ción alérgica causada por diferentes tipos de polen anemófilo cuando entra por las vías aéreas, y las múltiples propiedades medicinales del polen ingerido gracias a su ac tividad biológica, tonificante y estimulante, actividad an tibacteriana, antiinflamatoria y actividad cardio-vascular (11,12).
En el presente trabajo se estudió la composición físico-química (humedad, cenizas, extracto etéreo, proteínas) y la caracterización sensorial (visual, olfativa, gustativa, táctil) de cuatro tipos de polen recolectados en Cacute, en los Andes venezolanos, estado Mérida.
MATERIALES Y MÉTODOS
]]> MuestreoEl polen apícola (500 g.) fue recolectado con una trampa de polen de piso, colocada durante 48 horas en la base de una colmena (Ver Figura 1).
Polen apícola
El polen corbicular recolectado en la trampa se separó manualmente según su color y se conservó congelado en envases plásticos herméticos hasta su análisis.
Análisis físico-químicos
El polen apícola se molió con un mortero de porcelana y se conservó congelado hasta su análisis por duplicado siguiendo los métodos oficiales para determinar humedad, cenizas, extracto etéreo y proteínas (13).
Humedad
La humedad se midió por métodos gravimétricos en una estufa; para ello se pesaron 2,0 ± 0,1 g de polen molido en un crisol previamente tarado, se secaron en la estufa a 100 ± 3°C durante 4 h, se enfrió en un desecador hasta temperatura ambiente y se pesó de nuevo para calcular por diferencia gravimétrica el agua evaporada durante el secado.
Cenizas
]]> Las cenizas se obtuvieron por incineración y se determinaron por métodos gravimétricos; para ello se utilizó el polen seco remanente de la determinación de humedad, se carbonizó con ayuda de un mechero y se colocó en la mufla a 550 °C durante 2 h, se enfrió en un de secador hasta temperatura ambiente y se pesó de nuevo para calcular por diferencia gravimétrica las cenizas remanentes de la incineración.Extracto etéreo
El extracto etéreo se obtuvo con un método gravimétrico utilizado para medir el contenido de material soluble en solventes orgánicos; para ello se pesaron 2,0 ± 0,1 g de polen molido en un dedal de extracción, se utilizaron 25 mL. de éter de petróleo (JT Baker, Xalos toc, México) para la extracción por reflujo durante 4 h y se recolectó en un balón de 125 mL. previamente tarado, el cual se secó con ayuda de una manta eléctrica y en la estufa a 100 ± 3 °C hasta peso constante, para determinar por diferencia gravimétrica el extracto etéreo.
Proteínas
Las proteínas se midieron con el método de microKjeldhal, el cual consta de digestión con ácido sulfúrico (Fluka, New Jersey, USA), destilación, recolección y titulación. Para ello se pesaron 100 ± 10 mg de polen mo lido, se transfirieron a un balón de digestión de microKjeldhal, junto con los catalizadores 1.9 ± 0.1 g de sulfato de sodio (JT Baker, Xalostoc, México) y 40 ± 10 mg de óxido de mercurio (Merck, Darmstadt, Alemania), se añadieron 2.0 ± 0.1 mL de ácido sulfúrico y tres perlas de vidrio, se calentó la muestra en el digestor hasta que se tornó transparente, se enfrió, se colocó vaselina en la boca de la botella, se disolvió con 5 mL de agua destilada en diluciones sucesivas de 1 mL que se vertieron en el destilador, luego de haber colocado la punta del refrigerante sumergida en un Erlenmeyer de 100 mL con 5 mL de ácido bórico al 4% y 2 gotas del indicador (rojo de metilo 0,2% + azul de metileno 0,2%, 2:1); se inició la destilación adicionando 8-10 mL de hidróxido de sodio (JT Baker, Xalostoc, México) y bisulfito de sodio pentahidratado (Merck, Darmstadt, Alemania) (60 g + 5 g/100 mL agua destilada) en el embudo, se cerró la llave y se encendió el generador de vapor, se recogieron 15 mL, se diluyó con agua destilada hasta 50 mL, se tituló con ácido clorhídrico (Merck, Darmstadt, Alemania) 0.02 N y se calculó el porcentaje de proteínas utilizando un factor de corrección de 6,25.
Evaluación sensorial
Una cantidad de 5,0 ± 0,5 g de polen de cada color, previamente separado, se colocó en un recipiente plástico con tapa. Un panel de siete personas, entrenado para tal fin, realizó la evaluación sensorial de las características dominantes de olor (resina, paja, miel), sabor (ácido, amargo, astringente, dulce) y textura (crujiente, pegajosa, polvorosa).
Análisis microscópico
ada color de polen se montó con gelatina glicerinada (14) y se observó con el microscopio a 400X. La identificación botánica se realizó por comparación de la palinoteca de referencia de la Colección Flora Apícola de Venezuela del Herbario MERF.
RESULTADOS
]]> El polen apícola recolectado se separó en cuatro colores: 1. Amarillo. 2. Anaranjado. 3. Pardo. 4. Cremoso. La observación microscópica de este polen permitió su identificación botánica al compararlo con la palinoteca de referencia de la Colección Flora Apícola Vene zo lana, la cual correspondió respectivamente a las siguientes especies: 1. Brassica napus. 2. Fraxinus americana. 3. Zea mays. 4. Datura arborea. En la Figura 2 se ilustran los granos de polen y las flores de B. napus y Z. mays.
En la Tabla 1 se presentan los resultados obtenidos al realizar la evaluación sensorial y la caracterización físico-química según el contenido de humedad, cenizas, extracto etéreo y proteínas de los cuatro colores de polen, pertenecientes a cuatro especies vegetales. Pueden observarse variaciones según la especie botánica que originó este producto de la colmena. El olor fue de paja, resina y miel. Tres tipos de polen presentaron sa borácido y otro fue dulce. Dos presentaron textura pe gajosa, otro fue crujiente y otro polvoroso. El polen más húmedo fue el de Z. mays, el contenido de extracto etéreo fue mayor en el polen de B. napus, el polen con mayor contenido de cenizas y de proteína fue el de D. arborea. El polen de F. americana presentó valores de humedad, cenizas, extracto etéreo y proteínas cercanos al polen de B. napus.
DISCUSIÓN
El polen tiene diferentes colores según la especie botánica; sin embargo, el polen de diferentes especies puede tener el mismo color, o la misma especie puede presentar distintos colores (5). Estas relaciones no han sido explicadas completamente, pero en muestras pequeñas como la del presente trabajo el color del polen apícola fue característico para cada especie.
En un trabajo previo con polen apícola de Z. mays recolectado en los llanos de Barinas (15) se reportaron los siguientes valores porcentuales: 9,77 ± 0,59 de humedad, 2,36 ± 0,07 de cenizas, 15,96 ± 0,09 de proteínas y 2,47 ± 0,11 de extracto etéreo; los cuales fueron similares a los aquí reportados. Sin embargo, el conte - nido de humedad del polen fresco venezolano aquí estudiado, con variaciones entre 8,74 y 9,90 g agua/100 g polen ha resultado menor que el reportado para otras especies en Nueva Zelanda, con variaciones entre 18,5 y 25,9 g agua/100 g polen (16). En un estudio con mezclas de polen apícola español de Extremadura y Salamanca, se reportaron valores de humedad entre 4,68 y 5,87 g agua/100 g polen (17). Según controles sanitarios españoles, se reconoce que el polen recién cosechado debería contener humedades entre 12 y 20; mientras que el polen desecado podría contener entre 4
y 8 g agua/100 g polen (18). Posiblemente dependiendo de las regiones geográficas de origen, el polen apícola fresco presenta diferentes rangos de humedad, porque el polen venezolano estuvo por debajo de los valores de humedad para polen fresco y el polen de Nueva Zelanda estuvo a veces por encima de los valores indicados por los españoles. Para el polen desecado, el procesamiento tecnológico podría disminuir estas diferencias.
Si se comparan los valores físico-químicos obtenidos para polen fresco, con los valores recomendados por la norma brasilera para polen deshidratado (10), se puede apreciar que todas las especies cumplen con el máximo de 4,0 g cenizas/100 g polen, el mínimo de extracto etéreo de 1,8 g lípidos/100 g polen y el mínimo de 8,0 g proteínas/100 g polen. Obviamente, el polen fresco no cumple con el máximo de 4,0 g agua/100 g polen deshidratado.
En este trabajo fue identificado el origen botánico de cuatro especies de polen. Si bien las abejas son muy activas para recolectar polen, es difícil asignar la flora silvestre del páramo recolectada para el herbario, al polen apícola recolectado por las abejas, y requiere estudios de campo más largos. Esta contribución podría ser utilizada por el CT10 (Comité Técnico de Alimentos) de Fondonorma, para iniciar la elaboración de la norma de control de calidad de polen apícola.
]]> AGRADECIMIENTO Al CDCHTpor financiar el proyecto FA-337-04-01- B. Al licenciado Juan Carlos Schwartzenberg, apicultor de La Casita de la Miel, por suministrar el polen apícola recolectado de Cacute, estado Mérida.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1. del Baño Breis F. Atlas del Polen. Murcia, España: Consejería de Cultura, Educación y Turismo de la Comunidad Autónoma de la Región de Murcia; 1990. [ Links ]
2. Vaissiére B, Vinson S. Pollen morphology and its effect on pollen collection by honey bees, Apis mellifera L. (Hyme noptera: Apidae), with special reference to upland cotton, Gossypium hirsutum L. (Malvaceae). Grana 1994; 33(3):128-138. [ Links ]
3. Font Quer P. Diccionario de Botánica. 7ª ed. Barcelona, España: Editorial Labor SA; 1979. [ Links ]
4. Crane E. Bees and Beekeeping. Science, Practice and World Resources. Bath, UK: Heinemann Newnes; 1990. [ Links ]
5. Kirk W. A colour guide to pollen loads of the honey bee. Cardiff, UK: International Bee Research Association; 1994. [ Links ]
6. Krell R. Value-Added products from beekeeping. Rome, Italy: Food and Agriculture Organization of the United Nations; 1996. [ Links ]
7. Percie P. Ces pollens qui nous soignent. Paris, Francia: Guy Trenadiel Éditeur; 2004. [ Links ]
8. Comisión Venezolana de Normas Industriales. Miel de abejas. Métodos de ensayo. COVENIN 2136-84. Caracas: Fondonorma; 1984. [ Links ]
9. Comisión Venezolana de Normas Industriales. Miel de Abejas. COVENIN 2194-84. Caracas: Fondonorma; 1984. [ Links ]
10. Instrução Normativa nº 3, de 19 de Janeiro de 2001. Anexos V-VI. Regulamento Técnico para Fixação e Qualidade de Pólen Apícola, Própolis. Brasil: Ministerio de Agricultura, Cría y Abastecimiento en Brasil, Secretário de Defesa Agropecuária; 2001. [ Links ]
11. Proserpio G. L’Ape Cosmetica. Milano; Italia: Erboristeria Domani-Libri; 1981. [ Links ]
12. Comisión de Apiterapia APIMONDIA. La medicina por las abejas. Tratado de Apiterapia. CD. Bruselas, Bélgica: ApiAr International SA. 32 MB. [ Links ]
13. AOAC. Official Methods of Analysis. 14th ed. Arlington, USA: Association of Official and Analytical Chemists, INC; 1984. [ Links ]
14. Louveaux J, Maurizio A, Vorwohl G. Methods of melissopalynology. Bee World 1978; 59(4):139-157. [ Links ]
15. Torín H, Vit P. Caracterización química de polen apícola de Zea mays y Oyedea verbesinoides. IL Convención Anual de AsoVAC, Maracay; 1999. [ Links ]
16. Day S, Beyer R, Mercer A, Ogden S. The nutrient composition of honeybee-collected pollen in Otago, New Zealand. J. Apicult. Res. 1990; 29(3):138-146. [ Links ]
17. Serra Bonvehí J, Escolá Jordá R. Nutrient composition and microbiological quality of honeybee-collected pollen in Spain. J. Agric. Food Chem. 1997; 45:725-732. [ Links ]
18. Aranda Escribano M, Cardenal Galván J, Álvarez Gómez J, Pozo Vera J. El polen: Controles sanitarios, normas legales. Vida Apícola, 1999; 94: 56-58. [ Links ] ]]>