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<journal-title><![CDATA[Anales Venezolanos de Nutrición]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Fundación Bengoa]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de dietas con aceites de palma, girasol o pescado sobre la susceptibilidad a la oxidación de las lipoproteínas LDL - HDL del plasma de la rata]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of diets with oil palm, sunflower or fish on the oxidation of LDL - HDL lipoproteins of the rat plasma]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Central de Venezuela Facultad de Medicina Instituto de Medicina Experimental]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Oxidative modifications of lipoproteins of the plasma play a causal and important role in the beginning and progression of the atherosclerosis. Studies in vitro indicate that the speed and extension of the oxidation of LDL and HDL are influenced by its fatty acid composition. In the present study the effect of the consumption for 60 days of a diet purified containing 10 % of either palm, sunflower or fish oil were evaluated on the susceptibility to in vitro oxidation of LDL + HDL lipoproteins from the plasma of male Sprague Dawley rats. For this evaluation we performed two methods: determination of reactive substances with tiobarbituric acid (SRTBA) proposed for Kosugi et al, and the peroxides as described by Al -Saadani. It was found, by both methods, that a statistically significant difference (p<0, 05) existed between the susceptibility to oxidation of LDL and HDL fractions for the three dietary groups. The greatest degree of oxidation was observed for the group supplemented with fish oil followed by groups of sunflower and palm. This suggests that the incorporation of monounsaturated fatty acids (oleic) in the diet instead of polyunsaturated protects the oxidative modification of LDL and HDL by reducing the concentration of PUFA available for peroxidation. An Venez Nutr 2008;21 (1): 20-24.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Ateroesclerosis - Oxidación de lipoproteínas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Efecto de dietas con aceites de  palma, girasol o pescado sobre la susceptibilidad a la oxidación de las lipoproteínas LDL - HDL del plasma de la rata</font></b></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">María Isabel Giacopini<sup>1</sup> y  Virgilio Bosch<sup>1</sup></font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. Sección de Lipidología,  Instituto de Medicina Experimental, Facultad de Medicina, Universidad Central de Venezuela. Caracas, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Instituciones: Sección de  Lipidología, Instituto de Medicina Experimental, Facultad de Medicina, Universidad Central de Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Solicitar copia a: María  Isabel Giacopini. Sección de Lipidología, Instituto de Medicina Experimental, Facultad de Medicina, Universidad Central de Venezuela. Teléfonos: 6053419/3423, 0212-7815128. Cel. 0424-1156483 e-mail  <a href="mailto:giacopim@gmail.com">giacopim@gmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Resumen</b>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las modificaciones  oxidativas de las lipoproteínas del plasma desempeñan un papel causal e  importante en el inicio y progresión de la aterosclerosis. Los estudios in vitro indican  que la velocidad y extensión de la oxidación de la LDL y HDL está influenciada por su composición de ácidos grasos.  En el presente estudio se evaluó el efecto del consumo por 60 días de una dieta purificada al 10% (p/p) en  los aceites de palma, girasol o pescado sobre la susceptibilidad de oxidación in vitro de las fracciones  conjuntas de las lipoproteínas LDL y HDL del plasma de ratas machos Sprague Dawley. Utilizamos dos métodos para la  evaluación: La determinación de sustancias reactivas con el ácido tíobarbitúrico (SRTBA) propuesto por Kosugi et  al y el de determinación de peróxidos descrito por El-Saadani Se encontró por ambos métodos que existe una  diferencia estadísticamente significativa (p&lt;0,05) entre la susceptibilidad de oxidación de las fracciones  LDL+ HDL de los tres grupos. El mayor grado de oxidación se observó para el grupo suplementado con aceite de  pescado seguido de los grupos de girasol y palma. Esto sugiere que la incorporación de ácidos grasos  monoinsaturados (oleico) en la dieta en lugar de poliinsaturados, protege las LDL+HDL de las modificaciones oxidativas al  reducirse la concentración de AGPI disponibles para la peroxidación. An Venez Nutr 2008;21 (1): 20-24.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave</b>: Ateroesclerosis  - Oxidación de lipoproteínas, aceite de palma- girasol- pescado, lípidos.</font></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Effect of diets with oil palm,  sunflower or fish on the oxidation of LDL - HDL lipoproteins of the rat plasma</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Abstract</b>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Oxidative modifications of lipoproteins of the plasma play a causal  and important role in the beginning and progression of the atherosclerosis. Studies in vitro indicate that the speed  and extension of the oxidation of LDL and HDL are influenced by its fatty acid composition. In the present study the  effect of the consumption for 60 days of a diet purified containing 10 % of either palm, sunflower or fish oil were  evaluated on the susceptibility to in vitro oxidation of LDL + HDL lipoproteins from the plasma of male Sprague Dawley rats.  For this evaluation we performed two methods: determination of reactive substances with tiobarbituric acid (SRTBA)  proposed for Kosugi et al, and the peroxides as described by Al –Saadani. It was found, by both methods,  that a statistically significant difference (p&lt;0, 05) existed between the susceptibility to oxidation of LDL and  HDL fractions for the three dietary groups. The greatest degree of oxidation was observed for the group supplemented  with fish oil followed by groups of sunflower and palm. This suggests that the incorporation of monounsaturated  fatty acids (oleic) in the diet instead of polyunsaturated protects the oxidative modification of LDL and HDL by  reducing the concentration of PUFA available for peroxidation. An Venez Nutr 2008;21 (1): 20-24.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Key words</b>: Atherosclerosis  Oxidation of lipoproteins , palm oil, sunflower-oil, fish oil, lipids.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: 10-07-2007 Aceptado:  06-02-2008</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Introducción</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Existen numerosas evidencias  que indican que la génesis de la lesión ateromatosa de la pared arterial está relacionada con las modificaciones oxidativas de las lipoproteínas. Los resultados obtenidos en estudios bioquímicos y experimentales en modelos animales en las investigaciones clínicas y epidemiológicas apoyan la hipótesis de que las modificaciones oxidativas de las lipoproteínas de baja densidad (LDL) desempeñan un papel causal e importante en el inicio y progresión de la aterosclerosis (1-3).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Esta hipótesis oxidativa  propone esencialmente que el proceso de aterogénesis se desencadena cuando en la pared arterial, en el espacio subendotelial las LDL son oxidadas y captadas por macrófagos a través de receptores específicos, llamados receptores recolectores, los cuales no son controlados por el colesterol celular, conduciendo a la acumulación de éste y a la formación de células espumosas (4-7). La forma como las LDL oxidadas interaccionan con las células y su potencial efecto aterogénico depende de la intensidad de la oxidación (8). Bajo condiciones oxidativas similares a las empleadas para la oxidación de la LDL, la HDL también es oxidada, y reconocida por el receptor recolector de los macrófagos en forma similar a las LDL oxidadas, contribuyendo también a acumulación de colesterol intracelular (9).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La susceptibilidad de oxidación  de la LDL y HDL, presenta gran variabilidad como resultado en parte de  diferencias en las concentraciones de antioxidantes (10) asociadas a esas  estructuras y de su composición en ácidos grasos (11- 12), y son en parte la  causa de la diferencia en la aterogenesidad de las lipoproteínas LDL y HDL de  diferentes sujetos. Los resultados publicados por nosotros, sugieren que el  grado de oxidación de las lipoproteínas LDL y HDL depende de su composición en  ácidos grasos, y por consiguiente de la dieta (13).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El objetivo del presente  trabajo fue determinar el efecto de dietas al 10%(p/p) en los aceites de palma,  girasol o pescado como fuente de ácidos grasos sobre la susceptibilidad de  oxidación in vitro de la fracción conjunta de LDL y HDL de plasma de rata (Sprague  Dawley) por el método del ácido tiobarbitúrico, TBARS, propuesto por Kosugi et  al y el de peróxidos de El-Saadani. El modelo animal empleado en este estudio se  caracteriza por una concentración de LDL baja y HDL alta, por lo que se utilizan  las fracciones conjuntas de lipoproteínas LDL y HDL que llamaremos LDL+HDL,  ambas susceptibles a oxidarse, y contribuir en el desarrollo de la placa  ateromatosa.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Métodos</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Animales y dietas</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En este estudio se utilizaron  27 ratas machos de la cepa Sprague Dawley, con un peso promedio de 200 ± 20 g de  peso, Los animales fueron colocados en jaulas individuales y separados en tres  grupos de 9 ratas /grupo y alimentados ad libitum por un lapso de ocho semanas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La composición de la dieta  experimental se muestra en la <a href="#cua1">Cuadro 1</a>. La dieta de cada uno de los grupos  contiene 10% p/p de aceite siendo las fuentes de ácidos grasos los siguientes  aceites: Grupo I: aceite de palma refinado de uso no comercial suministrado por  CAI Productora de Grasas (Valencia, Venezuela); Grupo II: aceite de girasol  Dorada (Caracas, Venezuela); Grupo III: aceite de pescado de Schering Labs  (Caracas, Venezuela). Las dietas fueron preparadas semanalmente y conservadas  bajo refrigeración en atmósfera de nitrógeno. El consumo de la dieta y peso de  los animales fue controlado diariamente durante el periodo que duró el  experimento.</font></p>     <p align="center"> <a name="cua1"> <img border="0" src="/img/fbpe/avn/v21n1/art04cua1.gif" width="413" height="360"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Obtención del plasma</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Después de ocho semanas, los  animales, previo ayuno de 14 horas, fueron anestesiados con Neosdonal (Specia-París-  Francia) por vía intraperitoneal (5mg/100 g de peso corporal) y se exanguinaron  por punción cardíaca. La sangre fue colectada en tubos con 10 &#956;l/mL de EDTA al  10%, y centrifugada a 2000 g por 15 min., a 10ºC. El plasma obtenido se conservó  bajo refrigeración a 4ºC, hasta su procesamiento.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Aislamiento de las  lipoproteínas</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las fracciones de lipoproteínas  fueron aisladas por sucesivas ultra centrifugaciones y ajustes de la densidad  del medio con bromuro de potasio, según el método de Havel, (14). Primero se  separó la fracción correspondiente a la lipoproteína de muy baja densidad (VLDL),  ajustando la densidad del plasma a 1,006 g/ml con bromuro de potasio. Las  lipoproteínas de baja y alta densidad (LDL + HDL) fueron aisladas conjuntamente  ajustando la densidad del infranadante que queda después de separar la VLDL, a  la densidad de 1,21 g/ml y ultracentrifugando a 105000g por 24 horas y 15ºC.  Esta fracción, LDL+HDL fue desalinizada con una columna Pharmacia PD -10  empacada con Sephadex G-25M (Sigma Chemical Co.St. Louis) y como intercambiador  una disolución buffer (tris 10 mM – NaCl 0,14 M, pH 7,2). La concentración de  proteínas se determinó por el método de Lowry modificado por Shacterlec y  Pollack (15).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Oxidación de las LDL+HDL La  oxidación de las LDL+HDL se indujo por la adición de iones cobre según método de  Thomas et al (16). El grado de oxidación de las lipoproteínas se evaluó por los  métodos de determinación de sustancias reactivas con el ácido tiobarbitúrico (SRTBA)  propuesto por Kosugi et al (17) y el método de determinación de peróxidos  descrito por El- Saadani et al (18). La cuantificación de SRTBA, se realizó por  comparación con una curva patrón de equivalentes de malondialdehído generado por  hidrólisis ácida de soluciones de diferente concentración de 1, 1, 3,3 -tetrametoxipropano  y la de peróxidos utilizando una curva de calibración elaborada con peróxido de  hidrógeno. Los resultados son expresados como nmoles de SRTBA/mg de proteína o  nmoles de peróxido/mg de proteína de la LDL+HDL.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Composición de ácidos grasos</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se separaron los lípidos  totales de las lipoproteínas por el método propuesto por Folch et  al (19). Estos son metilados agregándoles una mezcla metanol/tolueno/ácido  sulfúrico en proporción 86:10:4 e incubación por 90 min a 80ºC. Los metil  ésteres de ácidos grasos fueron extraídos y analizados por cromatografía  gas/liquido. Los aceites, se metilaron directamente y se procedió como se  describió para las lipoproteínas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Análisis estadístico</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los resultados se  expresan como la medía aritmética de los valores individuales ± la desviación  estándar (DE). Las diferencias de los resultados obtenidos por los métodos de  detección de peroxidación TBARS y peróxidos de los diferentes grupos dietarios  fueron evaluados utilizando el análisis de varianza de una vía (ANOVA). El  criterio de significación estadística fue de 5% (p&lt;0,05) después de la  corrección de Bonferroni.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Resultados El peso promedio de las ratas alimentadas  con la dieta que contenía 10% p/p de los aceites de palma, girasol o pescado  después de las ocho semanas fue 427± 12, 414± 11, y 409±16 g. respectivamente,  no se observó diferencia significativa en el crecimiento de las ratas de los  diferentes grupos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La composición de AGs., tanto de los aceites constituyentes  de las dietas, como de la fracción LDL + HDL del plasma de rata de cada uno de  los grupos experimentales, se muestran en los <a href="#cua2">Cuadros 2</a> y  <a href="#cua3">3</a>. Los AGs más  abundantes en la fracción LDL + HDL del grupo I fue el oleico C18:1 n-9, y el  palmítico C18:0; en el grupo II fue el linoleico C18:2 n-6 y oleico C 18:1 n-9.,  y en el grupo III el AG predominante es el mirístico C14:0, Los AGs de la serie  n-3 el eicosapentanoico (C20:5 n-3) y el docosahexanoico (C22:6n-3) solamente  son detectados en la fracción LDL+HDL del grupo III.</font></p>     <p align="center"><a name="cua2"> <img border="0" src="/img/fbpe/avn/v21n1/art04cua2.gif" width="569" height="259"></a></p>     
<p align="center"><a name="cua3"> <img border="0" src="/img/fbpe/avn/v21n1/art04cua3.gif" width="561" height="286"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En el <a href="#cua4">Cuadro 4</a> se reporta  la media ± DE del grado de peroxidación in vitro de las fracciones de  lipoproteínas HDL + LDL a las 3 horas, determinado por los métodos del TBARS y  el de peróxido. Los análisis estadísticos de los resultados obtenidos por ambos  métodos, indican que hay una diferencia estadísticamente significativa (p&lt;0,05)  entre el grado de oxidación de las lipoproteínas LDL+HDL de los tres grupos. Se  observa que transcurrido el tiempo experimental de oxidación, las lipoproteínas  LDL+HDL de las ratas del Grupo III presentan la mayor concentración de TBARS y  de peróxidos, mientras que las fracciones LDL+HDL del Grupo I presentan el menor  grado de oxidación.</font></p>     <p align="center"><a name="cua4"> <img border="0" src="/img/fbpe/avn/v21n1/art04cua4.gif" width="466" height="338"></a></p>     
<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Discusión</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al comparar los  resultados obtenidos de la composición de AGs de las muestras de los aceites con  los de las lipoproteínas LDL+HDL del plasma de las ratas de los tres grupos  dietarios, se observa la influencia de la dieta en la composición de AGs de la  fracción LDL+HDL del plasma de rata, así como en la susceptibilidad de oxidación  de las mismas. Los resultados del grado de oxidación de la fracción LDL + HDL de  los tres grupos dietarios, por los métodos de peróxido El-Saadani y el TBARS,  muestran que por ambos métodos hay una diferencia estadísticamente significativa  entre el grado de oxidación de los grupos. Sin embargo, el grado de oxidación de  las fracciones LDL+HDL estimado por el método de detección de hidroperóxidos, da  valores mayores que los obtenidos por el método del ácido tiobarbitúrico. El  Saadani et al, atribuyen esto a que los peróxidos de lípidos son los productos  que se forman mayoritariamente al principio de la reacción de oxidación,  mientras que el malondialdehído y otras sustancias reactivas al ácido  tiobarbitúrico, son productos secundarios que provienen de la ruptura de los  hidroperóxidos (18).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las fracciones LDL+HDL de las ratas del grupo I presentaron  el grado de oxidación promedio más bajo, en comparación a las fracciones de LDL+  HDL de las ratas de los otros grupos. Esto posiblemente obedece a que el aceite  de palma tiene una alta concentración de ácido oleico, ácido graso  monoinsaturado (AGMI) y su consumo enriquece las lipoproteínas con este ácido  graso, como se observa en el Cuadro 3, resultando lipoproteínas más resistentes  a la oxidación. De hecho, Aviram et al; observaron que la LDL incubada con ácido  oleico era menos susceptible a oxidarse que otra incubada con ácido linoleico o  araquidónico (20).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Así mismo, estudios recientes realizados en pacientes hipercolesterolémicos indican que las LDL ricas en ácido oleico y pobres en AGPI,  tras ingerir una dieta rica en aceite de oliva, son más resistentes a la  oxidación (21). Igualmente se observó que las fracciones de lipoproteínas LDL+HDL  de ratas que consumieron la dieta con aceite de girasol, presentaron mayor  concentración de SRTBA y de peróxido en comparación con las lipoproteínas LDL +  HDL del grupo que consumió aceite de palma. Este aumento en el grado de  oxidación de la fracción LDL + HDL de las ratas del grupo II está posiblemente  relacionada con el enriquecimiento de sus lipoproteínas con el AGPI linoleico,  el cual presenta dos insaturaciones, lo que las hace más susceptibles a  oxidarse.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al comparar el grado de oxidación de las fracciones LDL+HDL de estos  dos grupos con respecto al grupo que consumió la dieta con aceite de pescado, se  observa una diferencia altamente significativa, lo cual se puede atribuir a la  presencia de los AGPI eicosapentanoico y docosahexanoico que poseen cinco y seis  insaturaciones respectivamente. De manera que el enriquecimiento de las LDL+HDL  con AGPI n-3 provoca una mayor susceptibilidad a la oxidación en las mismas, en  comparación a las lipoproteínas con alto porcentaje de ácidos grasos oleico o  linoleico.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Estos hallazgos concuerdan con resultados obtenidos por nosotros  sobre la susceptibilidad de oxidación de las lipoproteínas LDL y HDL humanas y  su composición de ácidos grasos, donde se encontró que no hay correlación  estadísticamente significativa entre la producción de SRTBA y el porcentajes de  ácido oleico, pero si existe una correlación estadísticamente negativa con  respecto el porcentaje de ácido linoleico y una correlación positiva  estadísticamente significativa con el porcentaje de ácido docosahexanoico y  eicosapentanoico de los fosfolípidos de las LDL y HDL humanas (22).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Esta notable  diferencia en el grado de oxidación de las fracciones LDL+HDL entre los grupos I  y II respecto al grupo III, puede atribuirse a la posible incorporación de  antioxidantes a las lipoproteínas, ya que el aceite de palma contiene  tocoferoles y tocotrienoles y el de girasol tocoferoles, los cuales se ha  demostrado inhiben la oxidación de las LDL (23-26).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Estos resultados sugieren  que los ácidos grasos de la dieta pueden influir de un modo directo en la  susceptibilidad de oxidación de las lipoproteínas, a través de la modificación  de su composición en ácidos grasos. La introducción de ácidos grasos monoinsaturados en lugar de poliinsaturados protege las LDL+HDL de las  modificaciones oxidativas simplemente reduciendo la concentración de AGPI  disponibles para la peroxidación.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Referencias</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Steimberg D, Witztum JL.  Lipoprotein and atherogenesis: current concepts. J Am Med Assoc 1990; 246:  3047-52.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322057&pid=S0798-0752200800010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Steimberg D, Parthasarathy S, Carew TE, Khoo JC, Witztum JL. Beyond  cholesterol: Modifications of low density lipoprotein that increase its  atherogenicity. N Engl J Med 1989; 320: 915 -24.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322058&pid=S0798-0752200800010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Streinbrecher U.P., Zhang  H., y Lougheed M. Role of oxidatively modified LDL in atherosclerosis. Free  Radical Biology y Medicine 1990; 9: 155 – 168.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322059&pid=S0798-0752200800010000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Brown, M.S., y Goldstein, J.L. A  receptor mediated pathway for cholesterol homeostasis. Science 1986; 232: 34 –  47.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322060&pid=S0798-0752200800010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Goldstein JL, Brown MS. The low density lipoprotein pathway and its  relation to atherosclerosis. Annu Rev Biochem 1977; 46: 897 – 930.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322061&pid=S0798-0752200800010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Aquel NM, Ball RY, Waldman H, Mitchinson MJ. Monocytic origin of foam cells in human  atheroesclerotic plaques. Atherosclerosis 1984; 53:265-271.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322062&pid=S0798-0752200800010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Morel D.W., DiCorleto P.E.,  y Chisholm G.M. Endothelial and smoosth muscle cells alter low density lipoprotein in vitro by free radical oxidation. Arterioesclerosis 1984; 4: 357.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322063&pid=S0798-0752200800010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <span lang="NL" style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">8. Parhami F,  Fang ZT., Fogelman AM., Andalibi A., Territo MC., Berlimer JA. </span> <span lang="EN-GB" style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">Minimally  modified low density lipoprotein - induced inflammatory responses endothelial  cells are mediated by cyclic adenosine monophosphate. J Clin Invest 1986; 77:  641-43.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322064&pid=S0798-0752200800010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. La Ville A.E., Sola R., Balanya J., Turner P.R., Masana L. In vitro oxidized HDL is recognised by the scavenger receptor of macrophages: implications for its protective role in vivo. Atherosclerosis 1994; 105: 179-189.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322065&pid=S0798-0752200800010000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Diplock AT. Antioxidant nutrients and disease prevention: an overview. Am J Clin Nutr 1991; 53: S189 - 193.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322066&pid=S0798-0752200800010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Esterbauer H, Jürgens G, Quehemberger O, Koller E. Autoxidation of human low density lipoprotein: loss of polyunsaturated fatty acids and vitamin E and generation of aldehydes. J Lipid Res 1987; 28: 495 -509.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322067&pid=S0798-0752200800010000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <span lang="EN-GB" style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">12. Lapointe  A, Couillard C, Lemieux S. Effects of dietary factors on oxidation of  low-density lipoprotein particles. </span> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">J Nutr Biochem 2006; 17:  645- 658.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322068&pid=S0798-0752200800010000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Giacopini M.I. Peroxidación de ácidos grasos. Arch Latinoamer Nutr 1995; 45:307-308.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322069&pid=S0798-0752200800010000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Havel RJ, Eder HA, Bragdon JH. The distribution and chemical composition of ultracentrifugally separated lipoproteins in human serum. J Clin Invest 1955; 4: 1345-1353.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322070&pid=S0798-0752200800010000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Schacterle G., y Pollack R. A simplified method for the quantitative assay of small amounts of protein in biological material. Anal Biochem1973; 51: 654 - 655.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322071&pid=S0798-0752200800010000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Thomas CE, Jackson RL. Lipid hydroperoxide involvement in copper – dependent and independent oxidation of low density lipoproteins. J. Pharmacol – Exp- ther 1991; 256: 1182- 1188.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322072&pid=S0798-0752200800010000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Kosugi H, Kojima T, Kikugawa K. Characteristics of the thiobarbituric acids reactivity of oxidized fats and oils. JAOCS 1991; 68:51-55.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322073&pid=S0798-0752200800010000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. El-Saadani M, Esterbauer H, El-Sayed  M, Goher M, Nassar AY, Jurgens G. Espectrophotometric assay for peroxides in serum lipoproteins using a comercially available reagent. J Lipid Res 1989; 30: 627-630.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322074&pid=S0798-0752200800010000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Folch J, Lees M, Sloane GH. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissue. J Biol Chem 1957; 228: 497.-509.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322075&pid=S0798-0752200800010000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. Aviran M, Elias K. Dietary olive oil reduces low density lipoprotein uptake by macrophages and decrece the susceptibility of the lipoprotein to undergo lipid peroxidation. Ann Nutr Metab 1999; 37: 75-84.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322076&pid=S0798-0752200800010000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Baroni SS, Amelio M, Sangiorfi Z, Gaddi A, Baffino M. Solid monoinsaturated diet lowers LDL unsaturation traid and oxidisability in hipercholesterolemic patients. Free Radic Res 1999; 30:275-285.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322077&pid=S0798-0752200800010000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">22. Giacopini MI, Bosch V. Oxidación de las lipoproteínas de alta y baja densidad del plasma humano y su correlación con la composición de ácidos grasos de los fosfolípidos. Rev Facultad Medicina 2002; 25: 10-12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322078&pid=S0798-0752200800010000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">23. Babiy AV, Gebick JM, Sullivan DR. Vitamin E content and low density lipoprotein oxidizability induced by free radicals. Artheroesclerosis 1990; 81: 175-182.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322079&pid=S0798-0752200800010000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">24. Rifici VA, Khachadurian AK. Effects of dietary vitamin C and E supplementation on the copper mediated oxidation of LDL and on HDL mediated cholesterol efflux. Atherosclerosis 1996; 127:19-26.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322080&pid=S0798-0752200800010000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. Baracaldo CM, Poveda E, Ordoñez E, Rodríguez M, Ayala P, Delgado W, Guerra M. Concentraciones de tocoferoles y tocotrienoles en ratas, como respuesta a la suplementacion con aceites vegetales de diferentes fuentes. Lect Nutr 2004; 11(1):36-43.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322081&pid=S0798-0752200800010000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">26. Aguilera CM, Mesa MD, Ramirez-Tortosa MC, Nestares MT, Ros E, Gil A. Sunflower oil does not protect against LDL oxidation as virgin olive oil does in patients with peripheral vascular disease. Clin Nutr 2004; 23:673-81.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=322082&pid=S0798-0752200800010000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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