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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Composición lipídica de la membrana mitocondrial interna del músculo de Ascaris suum]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The lipids and proteins play an important role in cellular and subcellular membranes structure and function. Several researchers have studied mitochondrial membrane lipids from many organisms, observing mainly phospholipids (cardiolipin, phosphatidilethanolamine, phosphatidilserine) and cholesterol. The lipidic composition of inner mitochondrial membrane (mmi) of none helminthes has been determinate. Ascaris suum, one helminthe parasite that inhabits the small intestine of pig and metabolizes carbohydrates to short chain volatile fatty acids of in aerobic conditions, has been used as a model in comparative biochemistry studies. In this study, the mitochondrial fraction from Ascaris muscle was isolated by means of differential centrifugation in sucrose and the mmi was separated by centrifugation in 10mM Potassium Phosphate. The mmi lipidic fraction was extracted by Folch method and applied on plate for Thin Layer Chromatography (TLC). By mean of indirect enzymatic assays for cholesterol and triglycerides determination, and with TLC, cholesterol, phospholipid and other unknown lipid were found in parasite inner membrane. The fraction of phospholipids separated by TLC was extracted from silica gel with chlorophorm: methanol: H2O (30:50:20) and analyzed by Gas Chromatography (GC) to determine fatty acids composition. Oleic, palmitic, linoleic and stearic acid were present in 8.38; 7.98; 6.39 and 6.28%, respectively. Others acids as linolenic and miristic were found in minor proportion (1.65 and 0.50%), in concordance with reports of researches about mitochondrial lipidic composition in other organisms that suggests an important role of these fatty acids in mitochondrial function.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <BASEFONT SIZE="3">     <P ALIGN="CENTER"><font color="000000" face="Verdana" size="3"><b>COMPOSICIÓN LIPÍDICA DE LA MEMBRANA MITOCONDRIAL INTERNA DEL MÚSCULO DE <I>Ascaris suum</I></b></font></P>      <P ALIGN="CENTER"><font color="000000" face="Verdana" size="3"><b>Lipidic Composition of Inner Mitochondrial Membrane from </b></font><I><font color="000000" face="Verdana" size="3"><b>Ascaris suum</b></font><font face="Verdana" size="2"><B><FONT COLOR="000000">     <br> </FONT></B></font></I><font face="Verdana" size="2">    <BR>  <FONT COLOR="000000"> <B>Evelin Rojas Villarroel</B><SUP><B> 1</B></SUP><B>, Zadila Suárez de Mata</B><SUP><B>2</B></SUP><B>, Pedro Izquierdo Córser</B><SUP><B>  1</B></SUP><B>, Gabriel Torres Ferrari</B><SUP><B> 1</B></SUP><B> y Aiza García Urdaneta</B><SUP><B>1</B></SUP> </FONT></font></P>      <P ALIGN="CENTER"><font size="2"><SUP><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> 1</FONT></SUP><FONT COLOR="000000" face="Verdana">Laboratorio de Bioquímica, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad  del Zulia, Apartado 15252. Maracaibo, Venezuela.&nbsp;<SUP>    <br> 2</SUP>Departamento de Biología  Celular, Laboratorio de Bioquímica de Parásitos, Universidad Simón Bolívar.    <BR> Sartenejas,  Venezuela. E-mail: evelinro@yahoo.com; zsuarez@usb.ve; izquier@cantv.net</FONT></font></P>      <P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> RESUMEN </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Las proteínas y los lípidos juegan un rol importante en la estructura y  función de las membranas celulares y subcelulares. Diversos investigadores  han estudiado acerca de los lípidos que componen la membrana mitocondrial  de muchos organismos y han encontrado principalmente fosfolípidos (cardiolipina,  fosfatidiletanolamina, fosfatidilserina) y colesterol. La composición lipídica  de la membrana mitocondrial interna (mmi) de ningún helminto se ha determinado  hasta ahora. <I>Ascaris suum</I>, parásito helminto que habita el intestino delgado  del cerdo y metaboliza los carbohidratos hasta ácidos grasos de cadena  corta en condiciones anaeróbicas, ha sido utilizado como modelo en estudios  de bioquímica comparativa. En este estudio, se aisló mediante centrifugación  diferencial en sacarosa, la fracción mitocondrial del músculo de <I>Ascaris</I>  y luego se separó la mmi por centrifugación en presencia de fosfato de  potasio 10mM. La fracción de lípidos de la mmi fue extraída por el método  de Folch y aplicada en cromatoplacas para Cromatografía en Capa Fina (CCF).  Mediante ensayos enzimáticos para la determinación indirecta de colesterol  y triacilglicéridos, y con CCF se encontró que colesterol, fosfolípidos  y otro lípido no identificado, están presentes en la membrana interna de  la mitocondria del parásito. La fracción de fosfolípidos separada por CCF  fue extraída de la sílica gel con cloroformo: metanol: H<SUB>2</SUB>O (30:50:20) y  analizada en Cromatografía de Gases (CG) para determinar su composición  en ácidos grasos. Los ácidos oleico, palmítico, linoleico y esteárico se  encontraron en: 8,38; 7,98; 6,39 y 6,28%, respectivamente. Otros ácidos  como el linolénico y mirístico, estaban en menor proporción (1,65 y 0,50%,  respectivamente), similar a lo reportado en otras investigaciones referidas  a la composición lipídica mitocondrial de otros organismos, lo que sugiere  un papel importante de estos ácidos grasos para la función mitocondrial. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2"><B><FONT COLOR="000000"> Palabras clave:</FONT></B> <FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Arial"> Colesterol, fosfolípidos, lípidos, membrana mitocondrial interna, mitocondria.</FONT></font></P>      <P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> ABSTRACT </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> The lipids and proteins play an important role in cellular and subcellular  membranes structure and function. Several researchers have studied mitochondrial  membrane lipids from many organisms, observing mainly phospholipids (cardiolipin,  phosphatidilethanolamine, phosphatidilserine) and cholesterol. The lipidic  composition of inner mitochondrial membrane (mmi) of none helminthes has  been determinate. <I>Ascaris suum</I>, one helminthe parasite that inhabits the  small intestine of pig and metabolizes carbohydrates to short chain volatile  fatty acids of in aerobic conditions, has been used as a model in comparative  biochemistry studies. In this study, the mitochondrial fraction from<I> Ascaris</I>  muscle was isolated by means of differential centrifugation in sucrose  and the mmi was separated by centrifugation in 10mM Potassium Phosphate.  The mmi lipidic fraction was extracted by Folch method and applied on plate  for Thin Layer Chromatography (TLC). By mean of indirect enzymatic assays  for cholesterol and triglycerides determination, and with TLC, cholesterol,  phospholipid and other unknown lipid were found in parasite inner membrane.  The fraction of phospholipids separated by TLC was extracted from silica  gel with chlorophorm: methanol: H<SUB>2</SUB>O (30:50:20) and analyzed by Gas Chromatography  (GC) to determine fatty acids composition. Oleic, palmitic, linoleic and  stearic acid were present in 8.38; 7.98; 6.39 and 6.28%, respectively.  Others acids as linolenic and miristic were found in minor proportion (1.65  and 0.50%), in concordance with reports of researches about mitochondrial  lipidic composition in other organisms that suggests an important role  of these fatty acids in mitochondrial function. </FONT><font face="Verdana" size="2"><font color="#000000">    <br> </font>    <BR>  <B><FONT COLOR="000000"> Key words:</FONT></B> <FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Arial"> Cholesterol, phospholipids, lipids, inner mitochondrial membrane, mitochondria.    <br>     <br> </FONT></font><font face="Verdana" size="2"><font color="#000000"><b>Recibido:</b> 22 / 02 / 2005. <b>Aceptado:</b> 07 / 11 / 2005.</font></font></P>     <p ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> INTRODUCCIÓN </FONT></B>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Las membranas celulares constituyen un arreglo complejo no uniforme, de  lípidos y proteínas. Tradicionalmente se ha señalado a los fosfolípidos  como los principales constituyentes lipídicos de estas estructuras, sin  embargo dependiendo del tipo y la dinámica de membrana, existen dominios  formados por fosfolípidos y colesterol llamados balsas lipídicas que juegan  un papel fundamental en la regulación de proteínas de membrana, así como  en la secreción y transducción de señales [3, 5, 9, 16, 18, 25, 28, 31]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La composición lipídica de membranas celulares de diversos organismos ha  sido estudiada [2, 6, 9, 10-12], encontrándose que más del 50% de la membrana  celular de eucariotas está constituida por glicerofosfolípidos, esfingolípidos,  los cuales en asociación con el colesterol, forman interacciones fosfolípido/colesterol.  Gloster y col. [10] determinaron la composición lipídica de las fracciones  microsomales y mitocondriales de homogenados de miocardio humano; Gray  y col. [11] analizaron la composición lipídica de mitocondrias y núcleos  de epidermis de cerdo y humano; Tuckey y col. [30] purificaron los fosfolípidos  a partir de la fracción de membrana mitocondrial interna (mmi) de cuerpo  lúteo bovino. Así mismo, Holland y col. [12] determinaron la composición  de la mmi del cuerpo lúteo porcino; Hovius y col. [13] analizó la composición  de fosfolípidos de la mitocondria intacta y de todas las sub-fracciones;  Ardail y col. [2] estudiaron dos fracciones de membrana, de densidad intermedia  (sitios de contacto) entre las membranas mitocondriales interna y externa  de células hepáticas. Los resultados de estos estudios indican que colesterol,  fosfatidilcolina, fosfatidiletanolamina, cardiolipina, lisofosfatidiletanolamina  y fosfatidilinositol son los fosfolípidos predominantes en la mmi de diferentes  células, lo que hace sugerir que los lípidos presentes en este organelo  se han conservado a través de la evolución [9]. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El aislamiento, purificación y caracterización de los componentes de las  membranas biológicas, dependen en gran medida de la composición lipídica  de éstas, ya que para reproducir <I>in vitro</I> las actividades y funciones que  exhibe <I>in vivo, </I>el componente en estudio debe ser incorporado en liposomas  (vesículas artificiales de membrana) cuya composición lipídica sea lo más  parecida posible a la membrana en estudio. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Hasta la fecha la composición lipídica de la mitocondria de helmintos no  ha sido determinada. A partir de los años 80 el número de investigaciones  en bioquímica de parásitos ha ido en ascenso y <I>Ascaris</I> ha sido ampliamente  utilizado como el helminto modelo en estudios de bioquímica comparativa,  de diversa índole. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font size="2"> <I><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> Ascaris </FONT></I> <FONT COLOR="000000" face="Verdana">  es el gusano cilíndrico no segmentado más grande que parasita el  intestino delgado de humanos y cerdo. Se ha demostrado que este parásito  no metaboliza los carbohidratos hasta CO<SUB>2</SUB> y H<SUB>2</SUB>O como en el huésped mamífero,  sino que su mitocondria funciona anaeróbicamente y la glucosa es metabolizada  hasta ácidos grasos volátiles de cadena corta (butírico, valérico, metilbutírico,  metilvalérico, etc.) [1, 14, 17, 21, 23, 24]. </FONT></font></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> En 1992, Parra [19] y Rojas [22], aislaron respectivamente, los dominios  F1 y Fo de la F1Fo ATP sintetasa de <I>Ascaris</I>; enzima multisubunidad presente  en la mmi del parásito, que sintetiza ATP por fosforilación oxidativa.  Para la reconstitución de este complejo enzimático a partir de sus dominios  aislados por separados, se requiere conocer la composición lipídica de  la mmi del parásito. En virtud de ello se propuso determinar, por primera  vez en helmintos, la composición lipídica de la mitocondria de <I>Ascaris</I>. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El hallazgo de variaciones en la composición y/o funciones celulares entre  huésped y parásito, constituyen además una herramienta valiosa para el  diseño racional de drogas que permitan controlar la infección. </FONT></P>     <p ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> MATERIALES Y MÉTODOS </FONT></B>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Material biológico </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Se utilizó <I>Ascaris suum</I> como animal de experimentación. Los helmintos fueron  obtenidos del intestino delgado de cerdos procesados en los mataderos del  Tuy (Santa Teresa de Tuy, Edo. Miranda) y de Caracas (carretera vieja de  Los Teques, Edo. Miranda). Se mantuvieron en solución salina isotónica  durante su traslado al laboratorio y en un período no mayor de 24 horas  se les extrajo el tejido muscular mediante disección en frío. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Aislamiento de la fracción mitocondrial </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La fracción mitocondrial proveniente de 41,6 g de músculo de <I>Ascari</I>s se  obtuvo por el método de centrifugación diferencial en sacarosa, según describe  Saz y Lascure [23]. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Obtención de la membrana mitocondrial interna </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Para obtener la fracción de membrana mitocondrial interna se utilizó una  modificación del procedimiento descrito por Comte y Gantheron [7]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La fracción mitocondrial proveniente de 20 g de músculo del parásito se  resuspendió en Buffer fosfato de K<SUP>+</SUP> 10 mM, pH: 7,4 y se llevó a un volumen  final de 4 mL, ésta se dejó por 20 minutos a 0°C. Se homogenizó y centrifugó  a 105.000 × <I>g</I> durante 1 hora en una ultracentrífuga Beckman rotor Ty65,  para separar la membrana mitocondrial externa y el espacio intermembranal,  de la membrana mitocondrial interna contenida en el sedimento. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El sedimento se resuspendió en Buffer Tris/HCl 10 mM; sacarosa 0,25 M;  pH 7,4 y se centrifugó a 11.500 × <I>g</I> durante 15 minutos en una centrífuga  Sorvall rotor SS34 para precipitar los mitoplastos y mitocondrias que no  se rompieron. El sedimento de 11.500 × <I>g </I>fue resuspendido en Buffer Tris/HCl  10 mM; sacarosa 0,25 M; pH 7,4 (10 mg/mL de proteínas) y sonicado 2 veces  en frío a 30 watts durante 15 segundos en un sonicador de Microtip (P-1,  3, 2mm) marca Microson con intervalos de enfriamiento de 1 minuto. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El sonicado fue centrifugado a 48.000 × <I>g</I> por 30 minutos a 4°C para obtener  en el sedimento la fracción de membrana mitocondrial interna. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Extracción de lípidos </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los lípidos de la mmi fueron extraídos utilizando el procedimiento de Folch  [8] modificado por Shaikh [26]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Análisis químicos </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Se realizaron determinaciones químicas a las preparaciones de mmi y el  extracto de Folch. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2"> <B><FONT COLOR="000000"> Fosfatasa alcalina. </FONT></B> <FONT COLOR="000000">  Se determinó la actividad de la fosfatasa alcalina  por el método monoéster ortofosfórico fosfohidrolasa de HUMAN. Se agregaron  10 µL de muestra a 500 µL del buffer (Dietanolamina 1.000 mmol/L, cloruro  de magnesio 0,5 mmol/L), se mezcló e incubó por un minuto a 37°C y se agregó  125 µL del substrato. Se mezcló y midió el cambio de absorbancia por minuto  durante 4 minutos en un espectrofotómetro Microlab 2000 de MERCK. El </FONT></font><FONT COLOR="000000" size="2" face="Symbol"> D</FONT><font face="Verdana" size="2" COLOR="000000">A  405nm/min se multiplicó por el factor de conversión 2757 que provee la  casa comercial para expresar la concentración en U/L.</font></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><font size="2"> <B><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> Colesterol. </FONT> </B><FONT COLOR="000000" face="Verdana"> Se determinó la concentración de colesterol por el método CHOP-PAP  de HUMAN, Para el ensayo se agregaron 5 µL de muestra y estándar de colesterol  (200 mg/dL), a 500 µL del reactivo enzimático (Buffer fosfato pH 6,5 100  mmol/L, 4-aminoantipirina 0,3 mmol/L, Fenol 5 mmol/L, Peroxidasa 5 KU/L,  Colesterolesterasa&gt;150 U/L, Colesteroloxidasa&gt;100 U/L, Azida de sodio 0,05%),  se mezcló e incubó por 5 minutos a 37°C y se leyó la absorbancia a 546  nm contra blanco de reactivo enzimático en espectrofotómetro Microlab 2000  de MERCK. Se calculó la concentración de colesterol (mg/dL) multiplicando  la absorbancia de la muestra por el factor de calibración (obtenido al  dividir la concentración del estándar por la absorbancia del mismo). </FONT></font></P>      <P ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2"> <B><FONT COLOR="000000"> Triacilglicéridos. </FONT> </B><FONT COLOR="000000"> Para la prueba se agregaron 5 µL de muestra y estándar  de triacilglicéridos (200 mg/dL) a 500 µL del reactivo enzimático de HUMAN  (Buffer PIPES 40 mmol/L pH 7,5, 4-clorofenol 5 mmol/L, iones de magnesio  5 mmol/L, ATP 1 mmol/L, lipasa </FONT></font><FONT COLOR="000000" size="2" face="Symbol"> ³ </FONT><font face="Verdana" size="2" COLOR="000000"> 150 U/mL, peroxidas </font><font size="2" COLOR="000000" face="Symbol">³</font><font face="Verdana" size="2" COLOR="000000"> 0,5 U/mL, glicerolquinasa </font><FONT COLOR="000000" size="2" face="Symbol"> ³ </FONT><font face="Verdana" size="2" COLOR="000000"> 0,4 U/mL, sodium azide 0,05%). Se incubó la mezcla por 5 minutos a 37°C.  La absorbancia del estándar y de la muestra se leyeron frente al blanco  del reactivo enzimático a una longitud de onda de 546 nm en espectrofotómetro  Microlab 2000 de MERCK. Se calculó la concentración de triacilglicéridos  (mg/dL) multiplicando la absorbancia de la muestra por el factor de calibración  (obtenido al dividir la concentración del estándar por la absorbancia del  mismo).</font></P>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Separación de los lípidos por Cromatografía     <BR> en Capa Fina (CCF) </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La CCF se realizó siguiendo la técnica descrita por Tuckey y Stevenson  [30]. La fracción de lípidos obtenida en la extracción descrita en la sección  anterior, se aplicó 4 veces en placas cubiertas con sílica gel H. de 0,25  mm. La CCF se desarrolló en hexano: éter dietílico: ácido acético (80:20:1,  V/V). Las placas se nebulizaron con 50% H<SUB>2</SUB>SO<SUB>4 </SUB>y secaron en estufa a 100°C  durante 10 minutos. Los componentes presentes se identificaron mediante  comparación de sus Rf con los de soluciones estándares de colesterol, triacilglicéridos  y fosfolípidos (HUMAN) aplicados en la misma placa. Se corrieron 4 cromatoplacas  para cada muestra y se incluyó además un control (extracto lipídico de  yema de huevo) por cada placa. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Extracción de fosfolípidos </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El componente identificado en CCF como fosfolípidos fue separado raspando  el área de la sílica que los contiene. Esta fracción fue extraída con 3  volúmenes de 5 mL cada uno, de CHCl<SUB>3</SUB>:CH<SUB>3</SUB>OH:H<SUB>2</SUB>O (30:50:20), se juntaron  los tres extractos y se agregó 10,5 mL de CHCl<SUB>3</SUB> y 2,7 mL de KCl 0,88%.  Se agitó y dejó reposar hasta la separación en dos fases, la fase acuosa  se descartó, y la fase orgánica, que contiene los fosfolípidos, se evaporó  a sequedad bajo corriente de N<SUB>2</SUB> a 40°C y se le agregó 0,3 mL de CHCl<SUB>3</SUB>.  A los viales se les aplicó una corriente de nitrógeno, se sellaron y se  guardaron en refrigeración a –20°C hasta su uso. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Perfil de ácidos grasos. Cromatografía de Gases (CG) </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Se determinó la composición de ácidos grasos mediante CG, de las fracciones  de mmi, extracto de Folch y fosfolípidos extraídos de CCF. Para esto, las  muestras fueron metiladas como sigue: </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Las preparaciones se evaporaron a sequedad y se agregaron 2 mL de KOH 0,5N  y 10 mL de metanol. Posteriormente se calentó a 70°C en baño María por  15 minutos, se agregó 4 mL de trifluoruro de boro en metanol (BF<SUB>3</SUB>CH<SUB>3</SUB>OH)  al 20% y se taparon los tubos. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Cada tubo cerrado se calentó a 70°C por 30 minutos, se dejó enfriar para  después añadir 4 mL de agua deionizada. Luego se agregaron 8 mL de hexano,  y se agitó por 10 minutos. De la capa orgánica se midieron 10 mL y a esto  se agregó 8 mL de hexano, se agitó por 10 minutos. Posteriormente se le  agregó a la mezcla 0,8 g de Na<SUB>2</SUB>SO<SUB>4</SUB> y se agitó. Luego se filtró y el sulfato  de sodio remanente se reextrajo con 2 mL de hexano. Los dos filtrados se  juntaron, se evaporó a sequedad y se reconstituyó con 1 mL de hexano. De  cada preparación se inyectaron 4 µL (por triplicado) en un cromatógrafo  marca Shimadzu GC-14B, equipado con un inyector, Splitt-Splittess, una  columna capilar de sílica fundida Omega Wax Supelco 320 (30&nbsp;m, 0,25 m) y  un detector de ionización a la llama. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Las condiciones cromatográficas fueron: temperatura del inyector: 250°C,  temperatura del detector: 260°C, temperatura de la columna: temperatura  inicial: 200°C; a los 15 minutos se aumentó 4°C por minuto hasta alcanzar  240°C, el tiempo final de corrida fue de 35 min. Los tiempos de retención  y áreas de los picos, fueron registrados utilizando Software Shimadzu Class-vp. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los ácidos grasos se identificaron y cuantificaron usando como referencia  los tiempos de retención y área de los picos de los estándares: RM-3 (Nº  catálogo 1086 marca Matreya) y PUFA Nº 1 (Nº catálogo 4-7033 marca Supelco).  La concentración de los ácidos grasos se expresó de manera porcentual. </FONT></P>     <p ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> RESULTADOS Y DISCUSIÓN </FONT></B>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Análisis químicos </FONT></B></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> En la <a href="#t1"> TABLA I</a> se muestran las concentraciones de fosfatasa alcalina, colesterol  y triacilglicéridos del preparado de mmi y extracto de Folch. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La actividad de la fosfatasa alcalina ha sido utilizada previamente como  marcador de la membrana mitocondrial externa (mme) en diferentes tejidos  [27]. No se detectó actividad de la fosfatasa alcalina en la preparación  de mmi ni en el extracto de Folch lo que indica que la metodología utilizada  fue adecuada para obtener una preparación libre de mme, resultados que  se asemejan a los reportados en investigación realizada por Tuckey [30]  al purificar la mmi de cuerpo lúteo de bovino. Sin embargo, no se descarta  que dichas preparaciones pudieran contener cantidades mínimas de proteínas  unidas covalentemente a lípidos, ya que la pureza de las preparaciones  no fue completamente evaluada a razón de las cantidades de extracto obtenido. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La concentración de colesterol en la preparación de mmi cruda fue 58 mg%  (40%) mientras que en el extracto de Folch de dicha membrana, se encontró  solo 9 mg% (100%). Los resultados obtenidos se corresponden con los reportados  en diversos estudios donde han demostrado la presencia de colesterol en  membranas biológicas, como la mmi. En tal sentido, Gloster y Harris [10]  encontraron 8 mg% de colesterol en la fracción mitocondrial de homogenados  de miocardio humano, mientras que Gray y Yardley [11] encontraron 60% colesterol  en mitocondria de epidermis humana; 47% de colesterol en mitocondria de  epidermis de cerdo. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Por otro lado, en mmi de corteza adrenal de bovino, Cheng y Kimura [6]  reportaron entre 2,2 a 3,4 mol% de colesterol, mientras que Holland y Stevenson  [12] reportaron 28,4&nbsp;nmol de colesterol por mg de proteína, en mmi del cuerpo  lúteo porcino. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Estos resultados hacen sugerir que el colesterol está presente en la mmi  de diversos organismos pero que probablemente su concentración varíe dependiendo  de cada especie y/o tipo celular. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Aunque los triacilglicéridos no son considerados lípidos importantes en  la composición de las membranas biológicas, el hallazgo de este lípido  en las preparaciones crudas de mmi de <I>Ascaris</I> (87mg%) y no en el extracto  de Folch parecen contradictorias, si embargo esto posiblemente represente  una reacción con glicerol endógeno o fosfoglicéridos ya que el ensayo utilizado  para su determinación se basa en una reacción colorimétrica del glicerol  3-P después de la hidrólisis enzimática de los enlaces ésteres de los ácidos  grasos y el glicerol. Otros autores también han reportado presencia de  triacilglicéridos en preparaciones mitocondriales [10, 11]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Lee y col. [15] en un estudio acerca de los lípidos de huevos de <I>A. suum</I>,  han reportado cantidades considerables de triacilglicéridos que aumentan  proporcionalmente con el desarrollo embrionario de los huevos. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Cromatografía en capa fina </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Cuando el extracto de Folch obtenido de mmi fue aplicado a cromatoplacas  de silica gel, se observaron tres componentes: uno de color marrón en el  borde inferior de la placa (componente 1) con un Rf de 0,04; un segundo  componente de color morado con un Rf de 0,35 (componente 2) y un tercer  componente de color amarillo pálido con un Rf de 0,44 (componente 3) (<a href="#t2">TABLA II</a>). </FONT></P>  <basefont>     <p ALIGN="center"><font face="Verdana" size="2"><b><font color="#000000"><a name="t1"></a>TABLA I</font></b><font color="#000000">    <br> <b>VALORES PROMEDIO</b><sup><b>*</b></sup><b> DE FOSFATASA ALCALINA, COLESTEROL Y TRIACILGLICÉRIDOS EN LA MEMBRANA MITOCONDRIAL INTERNA DE </b><i><b>Ascaris suum </b></i><b>/ MEAN VALUES OF ALCALINE PHOSPHATASE CHOLESTEROL AND TRIACILGLICERYDES FROM INNER MITOCHONDRIAL MEMBRANE OF </b><i><b>Ascaris suum</b></i></font></font></p>     <div align="center">       <center>   <table border="1">     <tbody>       <tr>         <td vAlign="top" rowSpan="3">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Preparación</font></p>         </td>         <td vAlign="top" colSpan="5">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Ensayo           Químico</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" rowSpan="2">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Fosfatasa           Alcalina    <br>           (U/L)</font></p>         </td>         <td vAlign="top" colSpan="2">               <p ALIGN="center"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Colesterol</font></p>         </td>         <td vAlign="top" colSpan="2">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Triacilglicérido</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">(mg%)</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">%</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">(mg%)</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">%</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">mmi           cruda</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">0 ±           0,00</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">58 ±           0,02</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">40</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">87 ±           0,01</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">60</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Extracto           de lípidos</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">0 ±           0,00</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">9 ±           0,01</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">100</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">0 ±           0,00</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">0</font></p>         </td>       </tr>     </tbody>   </table>   </center> </div>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><font size="2"><sup><b><font color="#000000" face="Verdana">* </font></b></sup><font color="#000000" face="Verdana">Promedio de 2 determinaciones ± 1DE.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; DE: desviación estándar.</font></font></p>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los Rf de los estándares de colesterol, triglicéridos y fosfolípidos fueron  0,32; 0,90 y 0,04, respectivamente. Se observaron asimismo los tres lípidos  constituyentes de la yema de huevo (control): fosfolípidos, colesterol  y triacilglicéridos con Rf de 0,03; 0,30 y 0,92, respectivamente. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los componentes 1 y 2 presentes en la mmi se identificaron respectivamente  como fosfolípidos y colesterol ya que sus Rf se corresponden completamente  con el Rf de los estándares. Además las características físicas (color  y forma de migración) de los componentes observados fueron idénticos a  la de los estándares. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Por otro lado, el Rf del componente 3 no se corresponde con ninguno de  los estándares, por lo que no fue identificado; sin embargo, se supone  que puedan constituir ácidos grasos libres ya que hay reportes en la literatura  que señalan que en CCF, éstos migran entre el colesterol y los triacilglicéridos  [30]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Estos hallazgos se correlacionan con los resultados de los análisis químicos:  presencia de colesterol, fosfolípidos y ausencia de triacilglicéridos en  el extracto de Folch obtenido de mmi. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El área ocupada por cada uno de los componentes separados en CCF, sugiere  que en la mmi de <I>Ascaris</I> los lípidos están presentes en la siguiente proporción:  fosfolípidos &gt;componente 3 &gt; colesterol. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Mediante CCF, Gloster y Harris [10] encontraron en la fracción mitocondrial  de homogenados de miocardio humano ésteres de colesterol, colesterol libre,  triacilglicéridos y fosfolípidos, así mismo, Gray y Yardley [11] separaron  a través de este método, colesterol, triacilglicéridos y ácidos grasos  libres de la mitocondria de epidermis de cerdo y humano; mientras que Holland  y Stevenson [12] aislaron a través de CCF colesterol y fosfolípidos de  la mmi de cuerpo lúteo porcino. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Es notorio que colesterol y fosfolípidos constituyen un denominador común  en la determinación de la composición lipídica de la membrana mitocondrial  en diversos organismos, además que la mmi de <I>Ascaris</I> se asemeja en cuanto  a sus lípidos constituyentes, a la de mitocondrias aisladas de diferentes  tejidos del hospedador. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Cromatografía de gases </FONT></B> </P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La composición en ácidos grasos de las fracciones de mmi, extracto de Folch  y extracto de fosfolípidos, se muestran en la <a href="#t3"> TABLA III</a> y <a href="#f1"> FIG. 1</a>. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> En la fracción de fosfolípidos de <I>Ascaris</I> los ácidos oléico y palmítico  mostraron los más altos porcentajes (8,38% y 7,98%, respectivamente). Diversos  estudios han reportado la presencia de estos ácidos grasos en extracciones  de fosfolípidos de mitocondria y/o mmi. En tal sentido, Gloster y Harris  [10] reportan 14,45% de ácido oleico y 17,7% de ácido palmítico en fosfolípidos  extraídos de la mitocondria de homogenados de miocardio humano, mientras  que Tuckey y Stevenson [30] encontraron 17,08% y 12,38% de ácidos oléico  y palmítico respectivamente, en fosfolípidos de mmi de cuerpo lúteo bovino. </FONT></P>  <basefont>     <p ALIGN="center"><font face="Verdana" size="2"><b><font color="#000000"><a name="t2"></a>TABLA II</font></b><font color="#000000">    <br> <b>VALORES DE Rf</b><sup><b>*</b></sup><b> DE LOS LÍPIDOS EXTRAÍDOS DE LA MEMBRANA MITOCONDRIAL INTERNA DE </b><i><b>Ascaris suum </b></i><b>SEPARADOS POR CROMATOGRAFIA EN CAPA FINA /    <br> RF* VALUES OF EXTRACTED LIPIDS FROM INNER MITOCHONDRIAL MEMBRANE OF </b><i><b>Ascaris suum</b></i><b> SEPARATED BY THIN LAYER CHROMATOGRAPHY</b></font></font></p>     <div align="center">       <center>   <table width="242" border="1">     <tbody>       <tr>         <td vAlign="top" width="132">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Preparaciones</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">CCF</font></p>               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Valores           de Rf</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="132">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Estándares</font></p>               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Colesterol    <br>           Triacilglicéridos    <br>           Fosfolípidos</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font>               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">0,32           ± 0,001    <br>           0,90           ± 0,001    <br>           0,04           ± 0,001</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="132">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Control           yema de huevo    <br>               <br>           Componente           1    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>           Componente           2    <br>           Componente           3</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="justify">    <br>           <font color="#000000" face="Verdana" size="2">    <br>               <br>           0,03           ± 0,001    <br>           0,30           ± 0,002    <br>           0,92           ± 0,001</font>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top" width="132">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">mmi</font></p>               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Componente           1    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>           Componente           2    <br>           Componente           3</font></p>         </td>         <td vAlign="top" width="96">               <p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">&nbsp;</font>               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">0,04           ± 0,001    <br>           0,35           ± 0,002    <br>           0,44           ± 0,003</font></p>         </td>       </tr>     </tbody>   </table>   </center> </div>     <p ALIGN="justify"><font size="2"><sup><b><font color="#000000" face="Verdana">* </font></b></sup><font color="#000000" face="Verdana">Promedio de cuatro (4) cromatografías.</font></font></p>     <p ALIGN="center"><font face="Verdana" size="2"><b><font color="#000000"><a name="t3"></a>TABLA III</font></b><font color="#000000">    <br> <b>PORCENTAJE </b><sup><b>*</b></sup><b> DE ACIDOS GRASOS EN FOSFOLÍPIDOS DE LA MEMBRANA MITOCONDRIAL INTERNA DE </b><i><b>Ascaris suum / </b></i><b>PERCENTAGE OF FATTY ACIDS IN PHOSPHOLIPIDS FROM INNER MITOCHONDRIAL MEMBRANE OF </b><i><b>Ascaris suum</b></i></font></font></p>     <div align="center">       ]]></body>
<body><![CDATA[<center>   <table border="1">     <tbody>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Ácidos           Grasos</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Número           de pico</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">mmi           cruda</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Extracto           de Folch</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Extracto           de Fosfolípidos</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Mirístico           (14:0)</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">ND ±           0,00</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">ND ±           0,00</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">0,50           ± 0,58</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Palmítico           (16:0)</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">2</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">10,74           ± 1,23</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">9,41           ± 0,07</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">7,98           ± 4,92</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Esteárico           (18:0)</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">3</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">14,14           ± 0,10</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">5,66           ± 0,30</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">6,28           ± 2,91</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Oleico           (18:1)</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">4</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">26,30           ± 0,39</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">10,65           ± 0,90</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">8,38           ± 6,09</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Linoleico           (18:2)</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">5</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">11,47           ± 0,31</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">ND ±           0,00</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">6,39           ± 3,78</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Linolénico           (18:3)</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">6</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">15,77           ± 0,01</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">ND ±           0,00</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">1,65           ± 1,91</font></p>         </td>       </tr>       <tr>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">Otros           no identificados</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">NI</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">31,58           ± 0,01</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">74,28           ± 0,01</font></p>         </td>         <td vAlign="top">               ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">68,82           ± 0,01</font></p>         </td>       </tr>     </tbody>   </table>   </center> </div>     <p ALIGN="justify"><font color="#000000" face="Verdana" size="2">*Promedio de tres determinaciones ± 1 D.E.&nbsp;&nbsp; ND: No detectado.&nbsp;&nbsp; DE: desviación estándar.</font></p>      <P ALIGN="center"><font face="Verdana" size="2"><a name="f1"><img border="0" src="/img/fbpe/rc/v16n2/art02f1.gif" width="574" height="755"></a></font></P>  <b>     
<p ALIGN="center"><font color="#231f20" face="Verdana" size="2">FIGURA 1. PERFIL DE ÁCIDOS GRASOS POR CROMATOGRAFÍA DE GASES EN EL EXTRACTO</font></p>     <p ALIGN="center"><font face="Verdana" size="2" color="#231f20">DE FOSFOLÍPIDOS DE LA MMI DE <i>Ascaris suum. </i>A. ESTÁNDAR DE ÁCIDOS GRASOS PUFA Nº 1 SUPELCO; B. ESTÁNDAR</font></p>     <p ALIGN="center"><font color="#231f20" face="Verdana" size="2">DE ÁCIDOS GRASOS RM-3 MATREYA; C. MMI; D. EXTRACTO DE FOLCH; E. EXTRACTO DE FOSFOLÍPIDOS. LOS</font></p>     <p ALIGN="center"><font color="#231f20" face="Verdana" size="2">NÚMEROS CORRESPONDEN A LOS ÁCIDOS GRASOS IDENTIFICADOS. NI: ÁCIDOS GRASOS NO IDENTIFICADOS /</font></p> </b>     <p ALIGN="center"><font color="#231f20" face="Verdana" size="2"><b>CUANTITATION OF FATTY ACIDS BY GAS CHROMATOGRAPHY IN PHOSPHOLIPIDS EXTRACT FROM INNER MITOCHONDRIAL MEMBRANE OF <i>Ascaris suum </i>A. FATTY ACIDS STANDARD PUFA Nº 1 SUPELCO; B. FATTY ACIDS STANDARD RM-3 MATREYA; C. MMI; D. FOLCH EXTRACT; E. PHOSPHOLIPIDS EXTRACT. NUMBERS CORRESPOND TO IDENTIFIED FATTY ACIDS. NI= NOT IDENTIFIED FATTY ACIDS.</b></font></p>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Por otro lado, Holland y Stevenson [12] encontraron porcentajes de 12,70;  15,54 y 10,11 de ácido oleico y 17,15; 11,19 y 10,39 de ácido palmítico  en fosfolípidos de mmi de cuerpo lúteo, corazón e hígado de cerdo, respectivamente. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> El porcentaje de ácido linoleico en mitocondria de <I>Ascaris</I> fue de 6,39%,  a diferencia de otras investigaciones donde reportan 15,8% [10] y 14,98%  [30] para este ácido en fosfolípidos de mitocondria. El porcentaje de ácido  esteárico fue de 6,28 % diferente también a lo reportado de este ácido  en mitocondria de otros organismos; 23,61% [10]; 27,9% [30] y 17,91; 10,40;  30,59 [12]. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Los ácidos linolénico y mirístico mostraron los porcentajes más bajos (1,65%  y 0,50% respectivamente) esto se corresponde con estudios realizados anteriormente  los cuales reportan cantidades bajas o trazas de estos ácidos grasos en  mitocondrias [10, 12]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> Es importante señalar que en los cromatogramas de mmi, extracto de Folch  y extracto de fosfolípidos, se observaron otros picos de ácidos grasos  que no fueron identificados con los estándares incluidos en este ensayo.  En este trabajo, solo el 31,18% de los ácidos grasos del extracto de fosfolípidos  fueron identificados. Sin embargo, a pesar de haber utilizado métodos de  extracción diferentes a los descritos en los trabajos citados en la discusión,  se observa cierta correlación en los resultados, lo que supone que los  ácidos oleico, palmítico, linoleico y esteárico constituyen componentes  importantes para la función de las membranas de las mitocondrias. Piccotti  y col. [20]; Brand, y col. [4]; Tillman y Cascio [29] han observado una  correlación entre el tipo de ácido graso que compone la mmi con la conductancia  de protones y la alteración en el potencial de membrana. </FONT></P>     <p ALIGN="justify"> <B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> CONCLUSIONES </FONT></B>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La metodología utilizada resultó adecuada en la obtención de una preparación  libre de mme. Esto se evidenció con la ausencia de actividad de fosfatasa  alcalina en estas preparaciones. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La mmi de <I>Ascaris suum </I>contiene<I> </I>colesterol y fosfolípidos, componentes  que están presentes en la membrana mitocondrial de otros organismos, lo  que indica que dicha composición se ha mantenido a través de la evolución. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La composición lípidica encontrada en la mmi de <I>Ascaris</I> se asemeja a los  lípidos reportados por otros investigadores, en la mmi de diversas células  del cerdo, hospedador mamífero de este parásito. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> La fracción fosfolipídica de la mmi de <I>Ascaris</I> contiene en mayor proporción  los ácidos grasos oleico, palmítico, linoleico y esteárico lo que sugiere  una función importante de estos ácidos en la dinámica de membrana de la  mitocondria del parásito. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><B><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS </FONT></B> </P>      <!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">1.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> ANDERSON, T.<B> </B>Ascaris infections in humans from North America: molecule  evidence for cross-infection.<B>  Parasitol. </B>110: 215-219. 1995.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552957&pid=S0798-2259200600020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">2.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> ARDAIL, D.; PRIVAT, J.P.; EGRET-CHARLIER, M.; LEVRAT, C.; LERME, F.; LOISOT,  P. Mitochondrial contact sites. Lipid composition and dynamics. <B>J Biol  Chem. </B>265: 18797-18802. 1990.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552958&pid=S0798-2259200600020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">3.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> ARLENE, D.A.; KATHLEEN, B.B. The role of cholesterol in rod outer segment  membranes. <B>Progress in Lipid Res. </B>44 (2-3):99-124.2005.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552959&pid=S0798-2259200600020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">4.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> BRAND, M.D.; TURNER, N.; OCLOO, A.; ELSE, P.I.; HULBERT, A.J. Proton conductance  and acid fatty acyl composition of liver mitochondria correlate with body  mass in birds. <B>Biochem. J</B>. 15:376(Pt3):741-8. 2003.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552960&pid=S0798-2259200600020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">5.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> BROWN, D. Structure and function of membrane rafts. <B>Int. J. Med. Microbial</B>.  291(6-7): 433-437. 2002.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552961&pid=S0798-2259200600020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">6.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> CHENG, B.; KIMURA, T. The distribution of cholesterol and phospholipids  composition in submitochondrial membranes from bovine adrenal cortex: fundamental  studies of steroidogenic mitochondria. <B>Lipids. </B>18: 577-84. 1983.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552962&pid=S0798-2259200600020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">7.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> COMTE; J.; GANTHERON, D.C. Preparation of outer membrane from pig heart  mitochondria. <B>Methods Enzynol</B>. 55:98-104. 1979.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552963&pid=S0798-2259200600020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">8.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> FOLCH, J.; LEES, M.; STANLEY, G.H. A simple method for isolation and purification  of total lipids from animal tissues. <B>J. Biol. Chem</B>. 226: 497-509. 1957.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552964&pid=S0798-2259200600020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">9.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> GALLET, P.F.; ZACHOWSKI, A.; JULIEN, R.; FELLMANN, P.; DEVAUX, P. F.; MAFTAH,  A. Transbilayer movement and distribution of spin-labelled phospholipids  in the inner mitochondrial membrane. <B>Biochim. Biophys. Acta.</B> 1418: 61-70.  1999.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552965&pid=S0798-2259200600020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">10.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> GLOSTER, J.; HARRIS, P. The lipid composition of mitochondrial and microsomal  fractions of human myocardial homogenates. <B>Cardiovasc. Res.</B> 3: 45-51.<B> </B>1969.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552966&pid=S0798-2259200600020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">11.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> GRAY, G.M.; YARDLEY, H.J. Mitochondria and nuclei of pig and human epidermis:  isolation and lipid composition. <B>J. Invest. Dermatol</B>. 64: 423-430. 1975.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552967&pid=S0798-2259200600020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">12.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> HOLLAND, J.W.; STEVENSON, P. M. Composition of the inner mitochondrial  membrane of porcine corpus luteum. <B>Bioch. Bioph. Acta. </B>1022: 401-407. 1990.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552968&pid=S0798-2259200600020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">13.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> HOVIUS, R.; LAMBRESCHTS, H.; NICOLAY, K.; DE KRUIJFF, B. Improved methods  to isolate subfractionate rat liver mitochondria. Lipid composition of  the inner and outer membrane. <B>Biochim. Biophys Acta.</B> 1021: 217-26. 1990.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552969&pid=S0798-2259200600020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">14.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> KIGHTLINGER, L.; SEED, J.; KIGHTLINGER, M. The epidemiology of <I>Ascaris  lumbricoides, Trichuris trichiura</I> and hookworm in the children in the Ranomafana  rainforest. Madagascar. <B>J. Parasitol.</B> 81: 159-169. 1995.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1552970&pid=S0798-2259200600020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana">15.</FONT> <FONT COLOR="000000" size="2" face="Verdana"> LEE, S.H.; SONG, C.; LEE K.B.; LEE, H.S. 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