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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del consumo de cultivo de levaduras Saccharomyces cerevisiae y/o selenio en pollos de engorde expuestos a bajos niveles de aflatoxina B1 en la dieta. 2:: Morfología hepática]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of Saccharomyces cerevisiae Culture and/or Selenium Intake on Broiler Exposed to Low Levels of Aflatoxin B1 in the Ration. 2:: Hepatic Morphology.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This trial was undertaken to determine the effects of 0.1% the yeast culture Saceharonyces cerevisiae1026 (Sc) and/or 2mg/kg of selenium (Se) added to contaminated foodstuff with 0,07mg/kg (70 ppb) of aflatoxin B1 (AFB1), on hepatic morphology of broiler chickens. 480 1-day-old male Hubbar x Hubbar chickens were chosen randomly to receive 8 sorts of diets for 42 days, each diet with 4 replicates of 15 chickens. Those diets corresponded to the fallowing treatments (T): T1: control group receiving commercial food (CF) without detectable aflatoxin levels; T2: CF + AFB1; T3: CF + Sc; T4: CF + AFB1 + Sc; T5: CF + Se; T6: CF +AFB1 + Se; T7: CF + Sc + Se; T8: CF + AFB1 + Sc + Se. Neither Sc or Se added to foodstuff alone or in combination with or without AFB1, caused macroscopic lesions in liver. A relative liver weight increase was observed in T4 compared with T1 and T3 (P<0.05) and in chickens from T5 and T6 (P<0.01) compared with T1. Treatments with Sc and/or Se were shown to have a significative higher frequency of hepatotoxic lesions compared with that of T1. However, Sc + Se added together to AFB1 contaminated food (T8) diminished the hepatotoxic lesions’ severity grading compared to the hepatotoxcity grade found in T4 and T6. This result indicates an apparent synergistic effect of both additives as for diminishing hepatotoxicity caused by AFB1-contaminated foodstuff Ingestion.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"> <b><font face="Verdana">Efecto del consumo de cultivo de levaduras Saccharomyces  cerevisiae y/o selenio en pollos de engorde expuestos a bajos niveles de  aflatoxina B1 en la dieta. 2: Morfología hepática.</font></b></p>     <p align="center"> <font face="Verdana" size="2"><b>Darwuin Arrieta </b><sup> 1*</sup><b>,  María L. Pérez </b><sup> 2</sup><b>, Juan Hernández </b><sup> 3</sup><b>, María G. Oviedo </b><sup> 2</sup><b>, Silvio Miranda </b><sup> 2</sup><b> y Amelia Luengo </b><sup> 2</sup></font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2"><sup>1</sup> Cátedra de  Farmacología y Toxicología, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad  Central de Venezuela.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2"><sup>2</sup> Facultad de Ciencias  Veterinarias, Universidad del Zulia. Venezuela.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2"><sup>3</sup> Instituto de  Investigaciones Biológicas, Universidad del Zulia. Venezuela.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">* Facultad de Ciencias  Veterinarias/UCV. Apartado postal 4563/2101-A/ Maracay, estado Aragua,  Venezuela. Móvil: 58-0414-9669918/Fax: 58-243-5506250. E-mail: darwuinarrieta@yahoo.es</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">El presente estudio fue conducido para determinar  el efecto de 0,1% de cultivo de levaduras <i>Saccharomyces cerevisiae</i><sup>1026</sup>  (Sc) y/o 2mg/kg de selenio (Se) en el alimento contaminado con 0,07mg/kg (70  ppb) de aflatoxina B<sub>1</sub> (AFB<sub>1</sub>), sobre la morfología hepática  de pollos de engorde. Un total de 480 pollos Hubbar x Hubbar, machos, de un día  de nacidos, fueron asignados al azar para recibir 8 tipos de dietas durante 42  días, cada una con 4 replicas de 15 pollos, estas correspondieron a los  siguientes tratamientos (T) T<sub>1</sub>: grupo control que consiste en  alimento comercial (AC) sin niveles detectables de aflatoxina; T<sub>2</sub>: AC  + AFB1; T<sub>3</sub>: AC + Sc; T<sub>4</sub>: AC + AFB<sub>1</sub> + Sc; T<sub>5</sub>:  AC + Se; T<sub>6</sub>: AC + AFB<sub>1</sub> + Se; T<sub>7</sub>: AC + Sc + Se;  T<sub>8</sub>: AC + AFB<sub>1 </sub>+ Sc + Se. La ingestión de Sc y/o Se en el  alimento sin o con AFB<sub>1</sub>, no causaron lesiones macroscópicas en los  hígados. Se observó un incremento (P&lt;0,05) del peso relativo del hígado en el T<sub>4</sub>  comparado con el T<sub>1</sub> y T<sub>3</sub> y en los pollos del T<sub>5</sub>  y T<sub>6</sub> (P&lt;0,01) con relación al T<sub>1</sub>. Los T con Sc y/o Se en  el alimento sin y con AFB1, presentaron una significativa frecuencia de lesiones  hepatotóxicas con respecto al T<sub>1</sub>, sin embargo la combinación de Sc +  Se en el alimento con AFB1 (T<sub>8</sub>), disminuyó el grado de severidad de  las lesiones hepatotóxicas, en comparación al grado de hepatotoxicidad de las  aves que recibieron estos aditivos por separado (T<sub>4</sub> y T<sub>6</sub>).  Estos resultados indican un aparente sinergismo de ambos aditivos para disminuir  la hepatotoxicidad causada por la ingestión de alimento con AFB<sub>1</sub>.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Aflatoxina, levadura,  selenio, hígado, pollo.</font></p>     <p align="center"> <b><font face="Verdana" size="2">Effect of Saccharomyces cerevisiae Culture  and/or Selenium Intake on Broiler Exposed to Low Levels of Aflatoxin B1 in the  Ration. 2: Hepatic Morphology.</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">ABSTRACT</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">This trial was undertaken to determine the effects  of 0.1% the yeast culture <i>Saceharonyces cerevisiae</i><sup>1026</sup> (Sc)  and/or 2mg/kg of selenium (Se) added to contaminated foodstuff with 0,07mg/kg  (70 ppb) of aflatoxin B<sub>1</sub> (AFB<sub>1</sub>), on hepatic morphology of  broiler chickens. 480 1-day-old male Hubbar x Hubbar chickens were chosen  randomly to receive 8 sorts of diets for 42 days, each diet with 4 replicates of  15 chickens. Those diets corresponded to the fallowing treatments (T): T<sub>1</sub>:  control group receiving commercial food (CF) without detectable aflatoxin  levels; T<sub>2</sub>: CF + AFB<sub>1</sub>; T<sub>3</sub>: CF + Sc; T<sub>4</sub>:  CF + AFB<sub>1</sub> + Sc; T<sub>5</sub>: CF + Se; T<sub>6</sub>: CF +AFB<sub>1</sub>  + Se; T<sub>7</sub>: CF + Sc + Se; T<sub>8</sub>: CF + AFB<sub>1</sub> + Sc +  Se. Neither Sc or Se added to foodstuff alone or in combination with or without  AFB1, caused macroscopic lesions in liver. A relative liver weight increase was  observed in T<sub>4</sub> compared with T<sub>1</sub> and T<sub>3 </sub>(P&lt;0.05)  and in chickens from T<sub>5</sub> and T<sub>6</sub> (P&lt;0.01) compared with T<sub>1</sub>.  Treatments with Sc and/or Se were shown to have a significative higher frequency  of hepatotoxic lesions compared with that of T<sub>1</sub>. However, Sc + Se  added together to AFB<sub>1</sub> contaminated food (T<sub>8</sub>) diminished  the hepatotoxic lesions’ severity grading compared to the hepatotoxcity grade  found in T<sub>4</sub> and T<sub>6</sub>. This result indicates an apparent  synergistic effect of both additives as for diminishing hepatotoxicity caused by  AFB<sub>1</sub>-contaminated foodstuff Ingestion.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2"><b>Key words: </b>Aflatoxin, yeasts, selenium,  liver, broiler.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Recibido: 02 / 10 / 2006. Aceptado: 15 / 05 /  2007.</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Las aflatoxinas son metabolitos secundarios  producidos principalmente por algunas cepas de hongos del género <i>Aspergillus,</i>  describiéndose generalmente la aflatoxina B<sub>1</sub> como un compuesto  altamente hepatóxico [24]  y carcinogénico [13].  Frecuentemente se detecta en semillas o materias primas vegetales [16,22], son muy termoestables y la peletización de alimentos para animales  elaborados con materias primas contaminadas no las destruyen [47],  por lo que su presencia en alimentos se considera un problema de seguridad  alimentaria [7,8].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">En pollos de engorde, las aflatoxicosis afectan el  sistema inmunitario [35]  alterando su salud e índices productivos provocando perdidas económicas  importantes [24].  Frecuentemente se reportan cambios macroscópicos y microscópicos en hígado,  tales como hepatomegalia, hemorragias petequiales, palidez, degeneración  hidrópica, aumento de lípidos hepáticos, proliferación y dilatación de conductos  biliares, fibrosis periportal [13, 15,23,40] y alteraciones funcionales [31].  Estos efectos hepatotóxicos dependen principalmente del tiempo de exposición y  la dosis [24].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">En pollos de engorde las investigaciones con bajas  concentraciones de aflatoxina por amplios períodos de exposición, generalmente  reportan efectos subclínicos o leves y no por ello menos nocivos, los cuales no  suelen causar cambios macroscópicos evidentes en órganos y frecuentemente  requieren ser demostrados por examen microscópico del hígado y otros tejidos [33]  o pruebas muy sensibles que permitan detectar la autentica severidad de la  aflatoxicosis por bajas concentraciones [12,27,31]. En la actualidad las investigaciones se han enfocado a inducir  aflatoxicosis crónicas por bajas concentraciones de toxina en la dieta, debido a  que estos casos se pueden presentar naturalmente en condiciones de campo [31,32,33].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">En respuesta a esta situación se ha utilizado el  cultivo de levaduras <i>Saccharomyces cerevisiae</i><sup>1026</sup>, cuya pared  celular al parecer tiene propiedades que contribuyen secuestrando la aflatoxina  en el alimento produciendo resultados productivos satisfactorios en pollos de  engorde [2, 10, 43]. Una situación semejante ocurre con el uso del selenio como protector de  los efectos hepatotóxicos de la aflatoxina B<sub>1</sub> en aves de corral [6].  En el país se han utilizado estos productos, pero aún existe escasa  documentación de tipo clínica y patológica en el sector avícola para distinguir  los verdaderos beneficios de ambos aditivos ante esta hepatotoxina.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Por dichos motivos y con el fin de contribuir en  la salud y economía avícola, el presente experimento tuvo el objetivo de  determinar el efecto del consumo de alimento contaminado con 0,07mg/kg de  aflatoxina B<sub>1</sub> (AFB<sub>1</sub>) durante 42 días y evaluar la eficacia  de la inclusión del cultivo de levadura S. cerevisiae1026 (Sc) y/o selenio (Se)  en la prevención de los posibles efectos de la AFB<sub>1</sub> sobre la  morfología hepática en pollos de engorde.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Ubicación Geográfica del Estudio y Manejo de  las Aves</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">El experimento se realizó en el Centro  Experimental de Producción Animal de la Facultad de Ciencias Veterinarias de la  Universidad del Zulia (L.U.Z), ubicado en el municipio La Cañada de Urdaneta,  estado Zulia, Venezuela; zona clasificada como bosque seco tropical con  temperatura promedio de 30°C. Se utilizaron 480 pollitos híbridos Hubbar x  Hubbar, machos, de un día de edad, seleccionados y vacunados según programa de  vacunación reportado en ensayos anteriores [3].  Las aves fueron separadas y pesadas en 32 lotes de 15 pollitos cada uno y fueron  distribuidos al azar en 32 corrales de tres metros cuadrados (2 x 1,5 mts) cada  uno, a razón de 5 aves/m<sup>2</sup> con divisiones de 0,70 mts de altura. Las  medidas de bioseguridad y condiciones de alojamiento para la permanencia durante  42 días de las aves son descritas en la primera fase de este ensayo [4].</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Experimento</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">El experimento se realizó con un diseño  completamente al azar, donde se emplearon 8 tipos de dietas cada una con un  total de 60 pollos distribuidos al azar en 4 replicas de 15 aves por corral.  Estas dietas correspondieron a los siguientes tratamientos (T) T1: grupo control  que consiste en alimento comercial (AC) sin aflatoxina; T<sub>2</sub>: AC + AFB<sub>1</sub>;  T<sub>3</sub>: AC + Sc; T<sub>4</sub>: AC + AFB<sub>1</sub> + Sc; T<sub>5</sub>:  AC + Se; T<sub>6</sub>: AC + AFB<sub>1</sub> + Se; T<sub>7</sub>: AC + Sc + Se;  T<sub>8</sub>: AC + AFB<sub>1</sub> + Sc + Se.</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Alimento</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">El alimento comercial (AC) de la dieta control fue  producido en una fábrica de alimento (a base de Maíz, Sorgo y Harina de soya)  sin niveles detectables de aflatoxinas. Se emplearon dos tipos de alimentos  balanceados: iniciador (Proteína: 23,2%; Grasa: 8,4%; Fibra: 2,8%; Energía  Metabolizable EM/kg MS: 3150 Kcal y selenio: 0,1726 mg/kg) que se ofreció a las  aves desde el día 1 hasta el día 21 y el alimento terminador (Proteína: 19%;  Grasa: 10,5%; Fibra: 2,9%; Energía Metabolizable EM/kg MS: 3000 Kcal y selenio:  0,3027 mg/kg) desde el día 22 al día 42 del experimento. Estos se elaboraron en  función a requerimientos de la línea genética de las aves y suplementados con  aminoácidos, vitaminas y minerales según National Research Council [30].  Se tomaron muestras de estos alimentos por duplicado para análisis  bromatológicos y nutricional según la metodología descrita en otros estudios [18].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">El cultivo de levaduras utilizado estuvo compuesto  por células de la cepa 1026 de levadura de S. cerevisiae, liofilizado y  microencapsulado en b-glucano para protegerlo y preservar su viabilidad, según  las especificaciones de los fabricante (Alltech® Corporate Headquarters, EUA.).  Su inclusión se hizo a la concentración de 0,1% del alimento balanceado  considerando estudios previos [9].  La fuente de selenio utilizada para suplementar fue selenito de sodio (Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>.5H2O)  adicionando 2mg/kg del mismo en las respectivas dietas experimentales, según las  concentraciones utilizadas en estudios anteriores [19].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">El alimento balanceado fue contaminado de manera  artificial con aflatoxina B<sub>1</sub> purificada (98 %) procedente de <i>A.  flavus</i> de Laboratorios Sigma (elaborado en Israel, catalogo Nº A6536/4). La  contaminación del alimento con AFB<sub>1</sub> y la adición de los dos aditivos  (Sc y Se) se realizó mediante la metodología descrita en estudios anteriores [4],  obteniendo una concentración final de 0,07mg/kg en los tratamientos  contaminados. Esta concentración se basó en los resultados de experimentos con  pollos de engorde sometidos a bajos niveles de aflatoxina en la dieta [3,11].</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Detección de Aflatoxina en Alimento y Prueba de  Recuperación de Aflatoxina</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Se tomaron 4 muestras de alimento por cada  tratamiento antes y después de la contaminación con AFB<sub>1</sub>. La  detección se efectuó utilizando metodología descrita en previos ensayos [4],  según AOAC [1].  La prueba de recuperación de AFB<sub>1</sub> se ejecutó con métodos descritos en  estudios anteriores [3].</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Toma y Procesamiento de Muestras</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">El cálculo del tamaño de la muestra se determinó  mediante la distribución no central de F según Martin [26].  Cuando se cumplieron 42 días en el ensayo, se tomaron 16 aves al azar por cada  dieta experimental (4 por cada réplica), las cuales fueron separadas, pesadas y  sacrificadas por dislocación cervical para hacer la necropsia y toma de muestra.  La evaluación macroscópica se ejecutó mediante la observación del órgano y el  cálculo del peso relativo del mismo [43].  Posteriormente se tomaron cortes de cada hígado, fijados y procesados con  tinciones de Hematoxilina/Eosina para identificar lesiones por estudios  histopatológicos [3].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Las lesiones se clasificaron de acuerdo al grado  de severidad en escala ordinal [3,33] de la siguiente manera: Grado 0= normal; Grado 1= Lesión hepatotóxica  muy leve (LHTML): escasos hepatocitos vacuolados con núcleos conservados,  presencia de agregados linfoides, con o sin fibrosis periportal/proliferación de  conductos biliares (FP/PCB); Grado 2= Lesión hepatotóxica leve (LHTL):  hepatocitos vacuolados con escasa necrosis (ausencia de núcleo), incremento de  agregados linfoides, sinusoides obliterados con o sin FP/PCB; Grado 3= Lesión  hepatotóxica moderado (LHTM): incremento de hepatocitos vacuolados con necrosis  moderada (ausencia de núcleo), incremento de agregados linfoides, sinusoides  obliterados con o sin FP/PCB.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Adicionalmente, se procedió a tomar al azar 3  pollos de cada tratamiento y se sacrificaron por dislocación cervical para  extraerles el hígado, los cuales se les realizó un corte (1x1 mm  aproximadamente) a cada órgano con hojilla estéril y se incluyeron de inmediato  en gluteraldehído a temperatura de refrigeración. Estas muestras se procesaron [28]  para observar la ultraestructura hepática mediante microscopía electrónica de  transmisión.</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Análisis Estadístico</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">La base de los datos se procesó y analizó en el  paquete estadístico S.A.S [37].  En los pesos hepáticos relativos se ejecutó la prueba de <i>t</i> para comparar  y detectar la diferencia entre los grupos. La diferencias entre tratamientos  (grupo control versus el resto de los grupos experimentales) en relación a  lesiones histopatológicas se realizó la prueba de Kruskal-Wallis y para detectar  la diferencia entre tratamientos individúales (comparando dietas contaminadas y  no contaminadas) se utilizó la prueba de la suma de los rangos de Wilcoxon.</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Lesiones Macroscópicas</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">En todos los tratamientos al hacer la necropsia  los hígados de los pollos se observaron sin lesiones macroscópicas y con su  vesícula biliar sin lesiones aparentes.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Pesos Relativos de los Hígados</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">En la <a href="#tab1">TABLA I</a> se presentan las medias de los pesos  hepáticos relativos del experimento. La ingestión de AFB1 (T2), no alteró  (P&gt;0,05) el peso hepático relativo con respecto al control (T1), estos  resultados coinciden con otros ensayos en pollos sometidos a dietas con bajos  niveles de aflatoxina [3,33]. La media de los pesos hepáticos del grupo con Sc + AFB1 (T4) incrementó  (P&lt;0,05) con respecto al control (T1) y al grupo que consumió alimento con Sc  (T3). Este incremento no se esperaba en razón de que otros autores [9,10,43], han obtenido una significativa disminución del peso hepático relativo,  en pollos de engorde que recibieron Sc en dietas con mayores concentraciones de  aflatoxina en comparación con las empleadas en el presente estudio.</font></p>     <p align="center"> <a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v18n1/art14tab1.gif" width="477" height="530"></a></p>     
<p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">La media de los pesos hepáticos de los  tratamientos con Se en dietas sin y con AFB1 (T<sub>5 </sub>y T<sub>6</sub>), no  presentaron variación significativa, indicando similitud entre estos  tratamientos, pero con relación al control ambos incrementaron  significativamente el peso hepático relativo (TABLA I). Estudios en pavos que  recibieron dietas con aflatoxina y la misma fuente de Se (5 y 10 mg/kg de Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>)  utilizada en el presente ensayo, describen un significativo incremento del peso  hepático relativo [6].  En patos que recibieron dietas con aflatoxina y Se reportan que el significativo  incremento del peso hepático relativo causado por el consumo de aflatoxina,  disminuyó en la medida que aumentó la concentración de esta fuente de selenio  (0,5, 1 y 2mg/kg de Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>) en la dieta [48].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Al comparar los tratamientos que combinan Sc + Se  en una dieta sin y con AFB1 (T<sub>7</sub> y T<sub>8</sub>), no se detectó  diferencia significativa entre los pesos hepáticos relativos, pero con respecto  al grupo control (T1) en ambos tratamientos (T7 y T8) incrementó  significativamente el peso hepático (TABLA I). Existe poca documentación sobre  la acción combinada del Sc + Se en dietas con aflatoxina sobre el peso hepático  en aves, pero estos hallazgos indican que la levadura combinada con esta fuente  de Se en alimento contaminado con AFB<sub>1</sub> (T<sub>8</sub>), no provocaron  variación importante del peso hepático comparado con el grupo con ambos aditivos  (Sc + Se) sin AFB<sub>1</sub> (T<sub>7</sub>).</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">Lesiones Microscópicas</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">La <a href="#tab2">TABLA II</a> presenta la frecuencia de lesiones  hepatotóxicas observadas en el estudio histológico. En el grupo control (T<sub>1</sub>)  histológicamente las muestras se observaron normales con excepción de dos  muestras que presentaron LHTL, el resto de los grupos experimentales presentaron  lesiones hepatotóxicas variando su grado de severidad. En el grupo que recibió  AFB<sub>1</sub> en la dieta (T<sub>2</sub>) se observaron muestras con LHTL y  LHTM (<a href="#fig1">FIG. 1</a>), identificándose en este grupo 4 casos de FP/PCB (<a href="#fig2">FIG. 2</a>). En la ultraestructura del T<sub>1</sub> los hepatocitos presentaron núcleos con  aspecto normal de la cromatina y citoplasma sin alteraciones visibles. La  ultraestructura de la muestra del T<sub>2</sub>, reveló hepatocitos con vacuolas  intracitoplasmaticas, alguna célula endotelial con dilatación focal del  perinúcleo y células hepáticas en apoptosis (<a href="#fig3">FIG. 3B</a>).</font></p>     <p align="center"> <a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v18n1/art14tab2.gif" width="578" height="281"></a></p>     
<p align="center"> <a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v18n1/art14fig1.gif" width="492" height="558"></a></p>     
<p align="center"> <a name="fig2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v18n1/art14fig2.gif" width="484" height="508"></a></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"> <a name="fig3"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v18n1/art14fig3.gif" width="579" height="728"></a></p>     
<p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Comparando el grupo control (T<sub>1</sub>) con el  resto de los tratamientos se demostró diferencia significativa. No obstante, al  hacer comparaciones entre los tratamientos con Sc en dietas sin y con AFB1 (T<sub>3</sub>  y T<sub>4</sub>) se detectó diferencia (P&lt;0,05). La comparación entre grupos con  Se en dietas sin y con AFB1 (T<sub>5</sub> y T<sub>6</sub>) también presentaron  diferencia (P&lt;0,05). En estas comparaciones se evidenció mayor grado y  frecuencia de lesiones hepatotóxicas (TABLA II) en los grupos que recibieron  dietas con AFB<sub>1</sub> (T<sub>4</sub> y T<sub>6</sub>). Al comparar entre  los tratamientos que recibieron ambos aditivos (Sc + Se) combinados en dietas  sin y con AFB1 (T<sub>7</sub> y T<sub>8</sub>), no se observaron diferencias  (P&gt;0,05) indicando similitud en la frecuencia de lesiones histopatológicas de  ambos tratamientos.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">La frecuencia de lesiones histopatológicas del T<sub>4</sub>,  indica que la toxicidad sobre la morfología hepática producida por AFB<sub>1</sub>,  al parecer no fue contrarrestada totalmente por la inclusión de 0,1% de Sc en la  dieta contaminada. En la ultraestructura del tratamiento con Sc en el alimento  (T<sub>3</sub>), se observaron algunos hepatocitos con vacuolas lipídicas  intracitoplasmáticas, mientras que en la muestra del T<sub>4</sub> (<a href="#fig3">FIG. 3A</a>),  principalmente se observó hepatocitos con varias zonas de lisis intracitoplasmáticas. A pesar de la mayor severidad y frecuencia de lesiones  histopatológicas observadas en el T<sub>4</sub> (<a href="#tab2">TABLA II</a>), hay que hacer notar  que este grupo no presentó cambios histopatológicos de FP/PCB, que ocurren  frecuentemente en hígados afectados por aflatoxicosis (Fig. 2) los cuales si se  manifestaron en la dieta con AFB<sub>1</sub> (T<sub>2</sub>), lo que sugiere un  posible efecto protector de esta levadura contra AFB<sub>1</sub>. Se han  reportado efectos atenuantes del Sc sobre las lesiones anatomopatológicas  hepáticas en pollos de engorde y patos [9],  causadas por elevados niveles de aflatoxina en la dieta en comparación al nivel  utilizado en el presente estudio.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Sin embargo, los hígados del grupo con Sc + AFB<sub>1</sub>  (T<sub>4</sub>), presentaron un mayor grado de lesión histopatológica (<a href="#tab2">TABLA II</a>)  que no se observó en la aflatoxicosis experimental (T<sub>2</sub>), ni en aves  que sólo recibieron dietas con Sc (T<sub>3</sub>), al parecer esto indica un  posible efecto de Sc para inducir hepatopatía independientemente de la  hepatotoxicidad (FP/PCB) que provocó los bajos niveles de AFB1 en el alimento.  Los mecanismos de los componentes de la pared del Sc para contrarrestar la  toxicidad de la aflatoxina aún no están claros [2,9]. Otros estudios sugieren que está levadura esta asociada en la etiología  de enfermedades hepáticas autoinmunes en humanos [29,46]. Estos reportes podrían sugerir una posible explicación al incremento  (P&lt;0,05) del peso hepático relativo del grupo con Sc + AFB1 (T<sub>4</sub>), con  respecto al T<sub>1</sub>. Asimismo también explicaría el mayor grado y  frecuencia de lesiones hepatotóxicas de este grupo (T<sub>4</sub>), con respecto  al que sólo recibió AFB<sub>1</sub> en la dieta (T<sub>2</sub>).</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">La comparación de las frecuencias y grados de  lesiones histopatológicas entre las aves que reciben Se en dietas sin y con AFB<sub>1</sub>  (T<sub>5</sub> y T<sub>6</sub>), revelan diferencia (P&lt;0,05) entre los mismos y  permite ver en el ámbito microscópico, que la inclusión de esta fuente de  selenio (Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>) en la dieta con AFB<sub>1</sub> no  disminuyó el efecto hepatotóxico de la AFB<sub>1</sub>, evidenciándose 4 casos  con FP/PCB (TABLA II). La microscopia electrónica del T<sub>5</sub> y T<sub>6</sub>  reveló hepatocitos con lisis celular y células mononucleares con signos de  apoptosis, siendo mas frecuentes estos cambios en el T<sub>6</sub> (FIG. 3C).</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Estos resultados difieren de otros ensayos [48] en  patos, donde la suplementación con Se en forma de Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>  (0,5, 1 y 2 mg/kg) redujo el 75% de las lesiones pre-neoplásicas hepáticas,  causadas por consumo de alimento con aflatoxina. Igualmente en pavos que  recibieron dietas con Se (0,2, 2 y 4 mg/kg de Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>), se  evidenció que este promueve la destoxificación de la AFB1, sugiriendo que la  suplementación con esta fuente de selenio contribuye con la eliminación de  aflatoxina [19].  En ratas el Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub> inhibió uniones y aducciones  ADN-Aflatoxina B<sub>1</sub> [39].  Sin embargo, en otros reportes se discute que las aflatoxicosis experimentales  previamente descritas en aves y mamíferos, presentaron una respuesta positiva en  la mayoría de los casos cuando se suplementaron con esta fuente de Se (Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>),  pero se considera que sus concentraciones fueron altas excediendo los  requerimientos fisiológicos con limites tóxicos en algunos casos [44].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">En el estudio histopatológico los grupos con Sc +  Se en dietas sin y con AFB1 (T<sub>7</sub> y T<sub>8</sub>), no presentaron  diferencia entre ellos (P&gt;0,05). En la ultraestructura de T<sub>7</sub> y T<sub>8 </sub>se observó algunos hepatocitos con lisis celular y células mononucleares  apoptóticas en los sinusoides, con mayor grado de lisis citoplasmática en el T8  (FIG. 3D), probablemente causado por la inclusión de AFB<sub>1</sub> en esta  dieta. Sin embargo, a pesar de la frecuencia (P&lt;0,01) de lesiones del T8 con  respecto al control, hay que destacar que su grado de severidad histopatologico,  no fue mayor que en los grupos que incluyen ambos aditivos por separado en  dietas con AFB<sub>1</sub> (T<sub>4 </sub>y T<sub>6</sub>), asimismo este  tratamiento (T<sub>8</sub>) no presentó FP/PCB, lo cual se reporta  frecuentemente en aflatoxicosis [13,15]. Estos hallazgos indican menor grado de hepatotoxicidad cuando ambos  aditivos se incluyen en dietas con AFB<sub>1</sub>.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Los mecanismos de acción de los componentes de la  pared del Sc para disminuir los efectos tóxicos de las aflatoxinas, aún no están  claros [2, 9, 36] y existen escasas referencias sobre la interacción de estos dos aditivos  para contrarrestar la toxicidad de la AFB<sub>1</sub> sobre la morfología  hepática. Otros autores mencionan que las propiedades pro-oxidantes de fuentes  de Se como el selenito de sodio (Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>) [42],  también pueden tener actividad anticancerígena, antibacterial y antifungal [41].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Esta información permite sugerir que si la  levadura de S. cerevisiae es un microorganismo incluido en el grupo de los  hongos y considerando que el Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub> pudo tener algún  efecto antimicrobiano para la misma, es probable que las células liofilizadas de  esta levadura en el alimento pudieran haberse afectado por esta propiedad del Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>,  tomando en cuenta que este alimento tenía un bajo porcentaje de humedad (10 a  11%), lo cual favorece la rápida difusión y alta concentración de oxigeno en el  alimento [14]  y consecuentemente la actividad pro-oxidante del Na2SeO3 que contenía el mismo [42],  afectando probablemente la estructura de la levadura limitando su actividad y  viabilidad en el tracto gastrointestinal del ave.</font></p>     <p align="justify"> &nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">La hipótesis descrita anteriormente, sólo estaría  dejando la combinación experimental que se ejecutó en el ensayo con Se + AFB<sub>1</sub>  en la dieta sin la levadura (T<sub>6</sub>), la cual presentó un mayor grado de  lesión y se observó 4 casos con FP/PCB (<a href="#tab2">TABLA II</a>), pero considerando la  propiedad secuestrante o ligante de aflatoxina que algunos autores le atribuyen  a la pared celular del S. cerevisiae [2, 36, 49], es probable suponer que si la levadura fue afectada por el Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>,  las propiedades secuestrantes de su pared pudieran haberse conservado, aún  cuando no estuviese viable en el tracto gastrointestinal de las aves que  recibieron ambos aditivos (Sc + Se) en la dieta con AFB<sub>1</sub> (T<sub>8</sub>).  Estas inferencias podrían explicar el menor grado de severidad histopatológica  observado en los hígados del T<sub>8</sub>, con respecto a los tratamientos que  incluyen los 2 aditivos (Sc y Se) por separado en la dieta con AFB1 (T<sub>4</sub>  y T<sub>6</sub>).</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Adicionalmente, la peroxidación lipídica,  genotoxicidad [38]  y alteraciones en el balance antioxidante/pro-oxidante por aumento o disminución  de la actividad de enzimas antioxidantes [45],  son importantes efectos de la aflatoxina en el hígado, igualmente al Se sé le  atribuyen efectos protectores contra AFB<sub>1</sub> al contribuir con el  balance antioxidante/pro-oxidante como cofactor de la glutatión peroxidasa [5,19,34] y por actuar en conjunto con la vitamina E [25].  Estas propiedades del Se han sido motivo para utilizarlo en la disminución del  estrés oxidativo inducido por la aflatoxicosis [17],  pero otros ensayos indican que algunas fuentes de Se poseen efecto pro-oxidante  en altos niveles en presencia de O<sub>2</sub> incrementando la producción de  formas reactivas de oxígeno, excediendo las defensas antioxidantes hepáticas  pudiendo provocar citotoxicidad en aves, tanto con Se en forma de Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>  [42],  como en forma de selenio-levaduras [20,21]</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Esta información podría explicar la diferencia  (P&lt;0,05) histopatológica (TABLA II), entre los pollos que recibieron Se  (Na2SeO3) en dietas sin/con AFB<sub>1</sub> (T<sub>5</sub> y T<sub>6</sub>) y  también explicaría el significativo incremento del peso hepático relativo con  respecto al control (TABLA I), en los pollos de todos aquellos tratamientos que  recibieron esta fuente de Se (T5, T6, T7, T8) en la dieta. Asimismo, podría ser  una de las posibles causas del significativo descenso en la actividad enzimática  sérica (aspartatoaminotransferasa) con respecto al grupo control, en aves que  recibieron la combinación Sc + Se en dietas sin y con AFB<sub>1</sub> (T<sub>7</sub>  y T<sub>8</sub>), cuyos valores fueron previamente reportados [4].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">La evaluación de la morfología hepática en este  ensayo, reveló un significativo incremento en el peso relativo hepático en los  tratamientos que incluyeron Se (T<sub>5</sub>, T<sub>6</sub>, T<sub>7</sub> y T<sub>8</sub>)  y Sc + AFB<sub>1</sub> (T<sub>4</sub>), con frecuentes (P&lt;0,05) lesiones  microscópicas que variaron su grado de severidad en los grupos experimentales.  Sin embargo, a pesar de la significancía estadística de estos resultados, hay  que destacar que ensayos ejecutados simultáneamente con este estudio demostraron  que las aves de estos tratamientos no presentaron diferencia significativas  sobre índices productivos (peso, conversión de alimento, ganancia de peso  corporal) [18],  actividad enzimática sérica (alanitoaminotransferasa) y concentración de  proteínas séricas a los 42 días [4].</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Estos hallazgos indican que las lesiones hepáticas  observadas en estas aves, al parecer tuvieron un efecto muy sutil en este  órgano, lo que aparentemente no causó variación importante en el desempeño  zootécnico de los pollos de engorde. Sin embargo, estos resultados también  confirman que no es conveniente considerar este nivel de AFB<sub>1 </sub>(0,07  mg/kg) como inocuo para pollos de engorde, debido a que estas alteraciones  hepáticas aumentarían la susceptibilidad de las aves, en presencia de factores  negativos de origen alimentario y/o ambiental que contribuirían a incrementar la  toxicidad de la AFB<sub>1</sub> ingerida en la dieta, incidiendo con mayores  consecuencias sobre la salud de las aves y su parámetros productivos.</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">La hepatotoxicidad causada por bajos niveles (0,07  mg/kg) de AFB<sub>1</sub>, en las aves que recibieron cultivo de levaduras<i> S.  cerevisiae</i><sup>1026</sup> + Se (Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>) en la dieta  contaminada, fue menos severa en comparación con las aves de aquellos  tratamientos que incluyen ambos aditivos por separado en la dieta contaminada.  Estos resultados indican un aparente sinergismo de ambos aditivos para disminuir  la hepatotoxicidad (lesiones histopatológicas) causada por la ingestión de  alimento con AFB<sub>1</sub>.</font></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">Es recomendable comparar los efectos entre la  inclusión dietética del cultivo de levaduras <i>S. cerevisiae</i><sup>1026</sup>  y los derivados de su pared celular, así como, entre el selenito de sodio (Na<sub>2</sub>SeO<sub>3</sub>)  y otras fuentes de selenio utilizadas en la nutrición avícola, evaluando la  morfología de varios órganos de pollos de engorde que consuman dietas con bajos  niveles de AFB<sub>1</sub> y determinado los niveles de residuos de dicha toxina  en los tejidos de estas aves.</font></p>     <p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">AGRADECIMIENTO</font></b></p>     <p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">A los Institutos de Investigaciones Biológicas  “Dres. Orlando Castejon y Haydee V. Castejon” / Investigaciones Clínicas “Dr.  Americo Negrette” ambos de la Facultad de Medicina de LUZ, al laboratorio de  Farmacología y Toxicología de la Facultad de Ciencias Veterinarias de la  Universidad Central de Venezuela y al CONDES-LUZ, por su apoyo en esta  investigación. Igualmente los autores queremos agradecer a la entidad  “Laboratorio de Diagnóstico Veterinario” en Maracaibo, estado Zulia, por  realizar la descripción histopatológica en este ensayo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> <b><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">1. ASSOCIATION OF OFFICIAL  ANALYTICAL CHEMISTS (AOAC). Official methods of analysis. food and drug  administration. In: <b>Natural Toxins.</b> M. W. Trucksess, Ed. Chapter 49.  38-40pp. 2000.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593830&pid=S0798-2259200800010001400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">2. ARAVIND, K.L.; PATIL, V.S.;  DEVEGOWDA, G.; UMAKANTHA, B.; GANPULE, S.P. Efficacy of esterified glucomannan  to counteract mycotoxicosis in naturally contaminated feed on performance and  serum biochemical and hematological parameters in broilers. <b>Poult Sci.</b>  82(4):571-6. 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593831&pid=S0798-2259200800010001400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">3. ARRIETA, D.M.; PÉREZ, A.M.;  GÓMEZ, C.; MOLERO, G.; NOVOA, E.; RINCÓN, H.; ASCANIO, E. Efecto del alimento  contaminado con aflatoxina B1 (0,07 mg/kg) sobre la morfología hepática y  actividad enzimática sérica (AST y ALT) en pollos de engorde. <b>Rev Científ  FCV-LUZ.</b> XVI(1):39-47. 2006.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593832&pid=S0798-2259200800010001400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">4. ARRIETA-MENDOZA, D.; PÉREZ, M.L.; GÓMEZ, C.; ASCANIO, E.; IRAUSQUIN, B.; MOLERO, G. Efecto del consumo de  cultivo de levadura Saccharomyces cerevisiae1026 y/o selenio en pollos de  engorde expuestos a bajos niveles de aflatoxina B1 en la dieta. 1: Valores de  proteínas séricas y actividad enzimática en suero. <b>Rev Científ FCV-LUZ.</b>  XVI(6):613-621. 2006.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593833&pid=S0798-2259200800010001400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">5. BARTHOLOMEW, A.; LATSHAW, D.;  SWAYNE, D.E. Changes in blood chemistry, hematology, and histology caused by a  selenium/vitamin E deficiency and recovery in chicks. <b>Biolog Trace Elem Res.</b>  62:7-16. 1998.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593834&pid=S0798-2259200800010001400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">6. BURGUERA, J.A.; EDDS, G.T.;  OSUNA, O. Influence of selenium on aflatoxin B1 or crotalaria toxicity in turkey  poults. <b>Am J of Vet Res.</b> 44(9):1714 -1717. 1983.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593835&pid=S0798-2259200800010001400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">7. CALVALHEIRO, A.C.L.  Aflatoxinas y Aflatoxicosis: Revisión. <b>Rev. Avic.</b> 27:77-81. 1983.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593836&pid=S0798-2259200800010001400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">8. COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS  INDUSTRIALES (COVENIN). Normas Venezolana Alimento Completo para Aves.  Ministerio de Fomento. Método de Ensayo para Determinar Aflatoxina (1603).  Caracas, Venezuela 1181-83pp. 1980.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593837&pid=S0798-2259200800010001400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">9. DEVEGOWDA, G.; ARAVIND,  B.I.R.; RAJENDRA, K.; MORTON, M.G.; BABURATHNA, A.; SUDARSHAN, C.A. biological  approach to counteract aflatoxicosis in broiler chickens and ducklings by the  use of Saccharomyces cerevisiae cultures added to feed. In: <b>Proc. Alltech’s  10th Annual Symposium on Biotechnology in the Feed Industry</b> (Eds: T.P. Lyons  y K. A. Jacques). Nottingham University Press, Loughborough, Leic Uk. 235-245pp.  1994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593838&pid=S0798-2259200800010001400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">10. DEVEGOWDA, G.; ARAVIND,  B.I.R.; MORTON, M.G. Inmunosupression in poultry caused by aflatoxins and its  alleviation by Saccharomyces cerevisiae (Yea-Sacc1026), and  mannanoligosaccharides (Micosorb). <b>Biotechnology in the Feed Industry</b>.  Nottingham University Press. Nottingham, United Kingdom: 205-215pp. 1997.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593839&pid=S0798-2259200800010001400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">11. DOERR, J.A.; HUFF, W.E.;  WABECK, C.J.; CHALOUPKA, G.W.; MAY, J.D.; MERKLEY, J.W. Effects of low level  chronic aflatoxicosis in broiler chickens. <b>Poult Sci</b> 62(10):1971-7.  1983.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593840&pid=S0798-2259200800010001400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">12. ESPADA, Y.; DOMINGO, M.;  GÓMEZ, J.; CALVO, M.A. Pathological lesions following an experimental  intoxication with aflatoxin B1 in broiler chickens. <b>Res Vet Sci.</b>  53:275-279. 1992.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593841&pid=S0798-2259200800010001400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">13. FAO/OMS. Contaminantes: aflatoxinas. En: <b>El 49<sup>vo</sup> Informe Técnico del Comité Mixto  (FAO/OMS) de Expertos en Aditivos Alimentarios.</b> OMS-Ginebra. 73-87pp. 1999.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593842&pid=S0798-2259200800010001400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">14. FENNEMA, O.R. Relative vapor  pressure and food stability. En: <b>Food Chemistry.</b> 3ra Ed. Marcel Dekker  Inc, New York. 52-54pp. 1996.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593843&pid=S0798-2259200800010001400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">15. FERNÁNDEZ, A.T.; VERDE, T.;  GASCÓN, M.; RAMOS, J.; GÓMEZ, J.; LUCO, D.; CHAVEZ, G. Variations of clinical  biochemical parameters of laying hens and broiler chicken fed  aflatoxin-containing feed. <b>Avian Pathol.</b> 23:37-47. 1994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593844&pid=S0798-2259200800010001400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">16. FERNÁNDEZ, G.; NEGRÓN, G.;  ISEA, G.; SÁNCHEZ, E. Reporte de análisis cuantitativo de aflatoxinas por el  método de ELISA en muestras de materias primas de alimento balanceado para aves  provenientes de una planta ubicada en el municipio Mara del estado Zulia,  Venezuela. <b>Rev Científ FCV-LUZ.</b> X (1):63-68. 2000.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593845&pid=S0798-2259200800010001400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">17. GALVANO, F.; PIVA, A.;  RITIENI, A.; GALVANO, G. Dietary strategies to counteract the effects of  mycotoxins: a review. <b>J. of Food Prot</b>. 64: 120-131. 2001.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593846&pid=S0798-2259200800010001400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">18.&nbsp; GÓMEZ, C.C. Influencia del  cultivo de levaduras Saccharomyces cerevisiae1026 y selenio sobre la toxicidad  de la aflatoxina B1 en pollos de engorde. La Universidad del Zulia, Facultad de  Ciencias Veterinarias, División de Postgrado. (Trabajo de Grado). 25-59pp. 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593847&pid=S0798-2259200800010001400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">19. GREGORY, J.F. 3RD; EDDS,  G.T. Effect of dietary selenium on the metabolism of aflatoxin B1 in turkeys. <b> Food Chem Toxicol.</b> 22(8):637-42. 1984.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593848&pid=S0798-2259200800010001400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">20.&nbsp; HOFFMAN, D.J. Role of  selenium toxicity and oxidative stress in aquatic birds. <b>Aquat Toxicol.</b>  57(1-2):11-26. 2002.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593849&pid=S0798-2259200800010001400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">21. HOFFMAN, D.J.; HEINZ, G.H.;  LECAPTAIN, L.J.; EISEMANN, J.D.; PENDLETON, G.W. Toxicity and oxidative stress  of different forms of organic selenium and dietary protein in mallard ducklings. <b>Arch Environ Contam Toxicol</b>. 31(1):120-7. 1996.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593850&pid=S0798-2259200800010001400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">22. HUA, SS.; BAKER, JL.;  ESPIRITU, MF. Interactions of saprophytic yeasts with a nor mutant Aspergillus  flavus. <b>Appl Environ Microbiol.</b> 65(6):2738-3740. 1999.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593851&pid=S0798-2259200800010001400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">23. LEDOUX, D.R.; ROTTIMGHAUS,  G.E.; BERMUDEZ, A.J.; ALONSO-DEOLT, M. Efficacy of a hydrated sodium calcium  aluminosilicate to ameliorate the toxic effects of aflatoxin in broiler  chickens. <b>Poult Sci. </b>78:204-210. 1999.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593852&pid=S0798-2259200800010001400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">24. LEESON, S.; DIAZ, G.J.;  SUMMERS, J.D. Aflatoxins. In: <b>Poultry Metabolic Disorders and Mycotoxins.</b>  University Books. Guelph, Ontario, Canada. 249-298pp. 1995. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593853&pid=S0798-2259200800010001400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">25. LEESON, S.; SUMMERS, J.D.  Minerals. In: <b>Nutrition of the Chicken</b>. University Book. Guelph, Ontario,  Canada. 399-408pp. 2001.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593854&pid=S0798-2259200800010001400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">26. MARTIN, F.G. <b>Statistical  Design and Analysis</b>. University of Florida, Copy Center. UF. 2-4 a 2-7pp.  1995.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593855&pid=S0798-2259200800010001400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">27. MAURICE, D.V.; BODINE, A.B.;  REHRER, N.J. Metabolic effects of low aflatoxin B1 levels on broiler chicks. <b> Appl Environ Microbiol </b>45(3):980-4. 1983.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593856&pid=S0798-2259200800010001400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">28. MOSQUERA, J. A.; HERNANDEZ,  J. P.; VALERO, N.; ESPINA, L. M.; AÑEZ, G. Ultrastructural studies on dengue  virus type 2 infection of cultured human monocytes. <i><b>Virol J.</b></i> 2:26.  2005.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593857&pid=S0798-2259200800010001400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">29. MURATORI, P.; MURATORI, L.;  GUIDI, M.; MACCARIELLO, S.; PAPPAS, G.; FERRARI, R.; GIONCHETTI, P.; CAMPIERI,  M.; BIANCHI, F.B. Anti- Saccharomyces cerevisiae antibodies (ASCA) and  autoimmune liver diseases. <b>Clin Exp Immunol.</b> 132:473-476. 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593858&pid=S0798-2259200800010001400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">30. NATIONAL RESEARCH COUNCIL  (NRC). Nutrient Requirements of Poultry. 9th Ed. National Academy Press,  Washington D.C. 11-15pp.1994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593859&pid=S0798-2259200800010001400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">31. OGUZ, H.; KURTOGLU, F.;  KURTOGLU, V.; BIRDANE, Y.O. Evaluation of biochemical characters of broiler  chickens during dietary aflatoxin (50 and 100 ppb) and clinoptilolite exposure. <b>Res Vet Sci.</b> 73(1):101-3. 2002.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593860&pid=S0798-2259200800010001400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">32. OGUZ, H.; HADIMLI, H.H.;  KURTOGLU, V.; ERGANIS, O. Evaluation of humoral immunity of broilers during  chronic aflatoxin (50 and 100 ppb) and clinoptilolite exposure. <b>Rev Med Vet</b>  154:483–486. 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593861&pid=S0798-2259200800010001400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">33. ORTATATLI, M.; OGUZ, H.;  HATIPOGLU, F.; KARAMAN, M. Evaluation of pathological changes in broilers during  chronic aflatoxin (50 and 100 ppb) and clinoptilolite exposure. <b>Res Vet Sci.</b>  78(1):61-8. 2005.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593862&pid=S0798-2259200800010001400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">34. PATON, D.N.; CANTOR, H.A.;  PESCATORE, J.A.; FORD, J.M.; SMITH, A.C. Absorption of selenium by developing  chick embryos during incubation. In: <b>Proc. Alltech’s 18th Annual Symposium on  Nutritional Biotechnology in the Feed and Food Industries </b>(Eds: T.P. Lyons y  K. A. Jacques). Nottingham University Press. Nottingham, United Kingdom.  Inglaterra.108-120pp. 2002.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593863&pid=S0798-2259200800010001400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">35. QURESHI, M.A.; BRAKE, J.;  HAMILTON, P.B.; HAGLER, W.M.; NESHEIM, S. Dietary exposure of broiler breeders  to aflatoxin results in immune dysfunction in progeny chicken.<b> Poult Sci </b> 77(6):812-9. 1998.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593864&pid=S0798-2259200800010001400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">36. RAJU, M.V.L.N.; DEVEGOWDA,  G. Influence of esterified-glucomannan on performance and organ morphology serum  biochemistry and Hematology in broilers exposed to individual and combined  mycotoxicosis (Aflatoxin, Ochratoxin and T-2 toxin). <b>Br Poult Sci.</b>  4:640-650. 2000.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593865&pid=S0798-2259200800010001400036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">37. STATISTICAL ANÁLISIS SYSTEM  ISTITUTE (<b>SAS</b>). User’s Guide. Version 6,12. Cary, NC. 1994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593866&pid=S0798-2259200800010001400037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">38. SHEN, H.M.; SHI, C.Y.; LEE,  H.P.; ONG, C.N. Aflatoxin B1-induced lipid peroxidation in rat liver. <b>Toxicol  Appl Pharmacol.</b> 127: 145-150. 1994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1593867&pid=S0798-2259200800010001400038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"> <font face="Verdana" size="2">39. SHI, C.Y.; CHUA, S.C.; LEE,  H.P.; ONG, C.N. 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