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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Concentraciones plasmáticas de las hormonas esteroides y de LH en respuesta a la administración de prostaglandinas en ovejas Bergamacia]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Plasmatics Concentrations of Steroidals Hormones and LH in Response to the Administration of Prostaglandins in Bergamacia Sheep]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Progesterone (P4), estradiol (E2) and luteinizing hormone (LH) concentrations during synchronized estrous cycle using prostaglandin (PGF2 ) in sheep were studied. Ewes were randomly divided in two groups (n=7/group): T1 synchronized with two injections of PG, given 7 days apart, and T2, female showing natural estrous. Blood samples were collected from one day before PG and during experiment for steroidal determination. For profile of luteinizing hormone (LH) pulses, blood samples were collected at 30-min intervals for a period of 8h on days one, six and 12. Hormonal concentrations were determined by radioimmunoassay. Mean concentrations of P4 (P<0.001) were different between groups, days (P<0.0001) and interaction treatment x day. In T1 and T2, the animals showed increases in P4 plasma concentrations on day 11 (3.01 ± 0.48 ng/mL) and day eight (4.49 ± 0.45 ng/mL), respectively. Mean plasma LH concentration was different on day 12 (P<0.05) among T1 (2.45 ± 0.70 ng/mL) and T2 (0.95 ± 0.17 ng/mL). The LH pulse amplitude on day six (P<0.01) differed between the two groups, for T1 was 2.29 ± 0.33 ng/mL and T2 was 1.49 ± 0.34. Differences in LH pulse frequency on day six (P<0.05) were observed. These data suggest that use of PGF2 alters plasma concentrations of P4 and it could reduce LH pulse frequency.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">CONCENTRACIONES PLASMÁTICAS DE LAS  HORMONAS ESTEROIDES Y DE LH EN RESPUESTA A LA ADMINISTRACIÓN DE PROSTAGLANDINAS  EN OVEJAS BERGAMACIA</font></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2">  Plasmatics Concentrations of Steroidals Hormones and LH in Response to the  Administration of Prostaglandins in Bergamacia Sheep</font></b></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Luis Fernando Uribe-Velásquez <sup>1*</sup>, Miryam Vélez-Marín <sup>2 </sup>y  Adriana Correa-Orozco <sup>2</sup></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  <sup>1</sup> Departamento de Salud Animal, Universidad de Caldas. AA 275,  Manizales, Caldas, Colombia</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  <sup>2</sup> Programa de Maestría en Ciencias Veterinarias, Facultad de Ciencias  Agropecuarias, Universidad de Caldas,  Manizales, Caldas, Colombia. *(6) 8781516, E-mail: <a href="mailto:lfuribe@ucaldas.edu.co">lfuribe@ucaldas.edu.co</a></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las concentraciones de progesterona (P4), estradiol (E2) y hormona  luteinizante (LH) fueron evaluadas durante el estro sincronizado  con prostaglandina-PGF2 (PG) en ovejas Bergamacia.  Las ovejas fueron distribuidas en dos grupos (n=7/grupo): grupo  1, sincronizado con dos inyecciones de PG a intervalo de 7  días, y grupo 2, las hembras presentando estro natural. Las  muestras de sangre fueron colectadas antes de la PG y durante  todo el experimento para determinar esteroides. Para LH, fueron  colectadas muestras de sangre en los días uno, seis y 12  del ciclo estral, durante 8 horas a intervalos de 30 minutos para  definir su amplitud y frecuencia. Las concentraciones hormonales  fueron determinadas por radioinmunoanálisis. Hubo diferencia  significativa en las concentraciones plasmáticas de P4 entre  los grupos (P&lt;0,001), entre los días (P&lt;0,0001) y en la interacción  grupo versus día (P&lt;0,05). Las concentraciones circulantes  de P4 alcanzaron su valor máximo en el día 11 (3,01 ± 0,48  ng/mL) para T1 y en el día octavo (4,49 ± 0,45 ng/mL) para T2.  Las concentraciones plasmáticas basales de LH en el día 12  fueron diferentes (P&lt;0,05) en T1 (2,45 ± 0,70 ng/mL) cuando  comparado con T2 (0,95 ± 0,17 ng/mL). La amplitud de los pulsos  de LH presentó una diferencia significativa entre grupos en  el sexto día (P&lt;0,01), siendo de 2,29 ± 0,33 ng/mL para T1 y de  1,49 ± 0,34 ng/mL para T2. La frecuencia de los pulsos de LH  fue diferente (P&lt;0,05) entre los dos grupos en el sexto día. Se  concluye que el uso de PGF2 puede modificar las concentraciones  plasmáticas de P4, las cuales pueden tener un efecto sobre  la frecuencia pulsátil de LH.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Palabras clave:</b> Ciclo estral, estradiol, LH, oveja, progesterona,  RIA, sincronización.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Progesterone (P4), estradiol (E2) and luteinizing hormone (LH)  concentrations during synchronized estrous cycle using prostaglandin  (PGF2 ) in sheep were studied. Ewes were randomly  divided in two groups (n=7/group): T1 synchronized with two  injections of PG, given 7 days apart, and T2, female showing  natural estrous. Blood samples were collected from one day  before PG and during experiment for steroidal determination.  For profile of luteinizing hormone (LH) pulses, blood samples  were collected at 30-min intervals for a period of 8h on days  one, six and 12. Hormonal concentrations were determined by  radioimmunoassay. Mean concentrations of P4 (P&lt;0.001) were  different between groups, days (P&lt;0.0001) and interaction  treatment x day. In T1 and T2, the animals showed increases  in P4 plasma concentrations on day 11 (3.01 ± 0.48 ng/mL) and  day eight (4.49 ± 0.45 ng/mL), respectively. Mean plasma LH  concentration was different on day 12 (P&lt;0.05) among T1  (2.45 ± 0.70 ng/mL) and T2 (0.95 ± 0.17 ng/mL). The LH pulse  amplitude on day six (P&lt;0.01) differed between the two  groups, for T1 was 2.29 ± 0.33 ng/mL and T2 was 1.49 ± 0.34.  Differences in LH pulse frequency on day six (P&lt;0.05) were  observed. These data suggest that use of PGF2 alters plasma  concentrations of P4 and it could reduce LH pulse frequency.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Key words:</b> Estrous cycle, estradiol, LH, sheep, progesterone,  RIA, synchronization.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Recibido: </b>10 / 09 /  2009. <b>Aceptado:</b> 16 / 04 / 2010.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La glándula hipófisis anterior secreta los pulsos de la hormona  luteinizante (LH) en respuesta a la hormona liberadora de  gonadotrofinas (GnRH) la cual es liberada al flujo porta-hipofisiario  por el hipotálamo [14]. Los mecanismos nerviosos que  modulan la liberación pulsátil de la secreción de GnRH, que a  su vez, inducen los pulsos secretorios de LH, presentan un papel  importante en el mantenimiento de la ciclicidad. La frecuencia  de los pulsos de GnRH/LH es más elevada en la fase  folicular que durante la fase luteal, aumento que contribuye  para el desarrollo folicular ovárico [35]. Los cambios en frecuencia  y amplitud de los pulsos son, principalmente, un reflejo  de la intensa acción de los esteroides sexuales [14]. Han  sido mostradas evidencias en la oveja (Ovis aries) referentes al  efecto de los esteroides en el control de LH, siendo que, la progesterona  (P4) tiene su principal acción en el hipotálamo disminuyendo  la frecuencia, a la vez que aumenta la amplitud de los  pulsos de LH; el estradiol (E2) actúa en la hipófisis, disminuyendo  la amplitud de los pulsos sin afectar su frecuencia [15].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las hembras ovinas exhiben dos modelos de secreción  de LH: un modelo tónico continuo a través del ciclo estral que  controla las actividades folicular y luteal; y un segundo modelo,  con el pico de LH pre-ovulatorio induciendo ovulación y luteinización  [23]. Asimismo, estudios desarrollados por Karsch y  col. [19] en animales ovariectomizados, reportaron que la P4  parece ejercer una potente inhibición de la secreción tónica de  LH en ovejas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los tratamientos hormonales para el control del estro y  de la ovulación permiten inducir y sincronizar el momento de la  aparición del estro en las hembras cíclicas [2]. Una alternativa  para la sincronización del estro es el uso de la prostaglandina  F2 (PGF2 ), factor luteolítico que provoca la regresión del  cuerpo lúteo e interrupción de la fase progestacional del ciclo  estral [3, 16], iniciando un nuevo ciclo en muchas especies, incluidas  la bovina (Bos taurus-indicus), caprina (capra hircus) y  ovina [11]. Gonzales-Bulnes y col. [13] proponen que la inducción  de la luteólisis durante el ciclo estral natural puede ser  usada como método para la sincronización del estro en técnicas  de asistencia reproductiva en ovejas.  El objetivo principal del presente trabajo fue determinar  el efecto de la sincronización con prostaglandina F2 sobre las  hormonas esteroides y LH en hembras ovinas Bergamacia,  comparadas con animales presentando estro natural.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  MATERIALES y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El trabajo experimental fue desarrollado en el Departamento  de Reproducción Animal y Radiología Veterinaria de la  Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia/UNESP-Botucatu,  São Paulo, Brasil. El municipio de Botucatu se localiza a  22° 31’ latitud Sur y 48° 15’ longitud Oeste, en altitud de 804 m  [8]. El clima es clasificado como tropical de altitud [28], con  temperatura media de 20,7°C y precipitación pluviométrica  anual de 1.358, 6 mm [8]. Fueron utilizadas 14 hembras ovinas  adultas pertenecientes a la raza Bergamacia, durante la estación  reproductiva, con peso corporal de 60,42 ± 8,16 kg; las  ovejas con edades comprendidas entre los dos a cinco años,  habían sido previamente examinadas en cuanto al estado clínico  general, sanitario y reproductivo. Los animales permanecieron  en boxes de 3x3 m, con luminosidad natural; mantenidas  con un macho vasectomizado, para observación del estro,  dos veces por día durante dos horas. Las hembras ovinas fueron  sometidas a un período pre-experimental de cuatro meses,  para adaptación a la alimentación, y a la estabulación. Después  de ese lapso fueron pesadas y distribuidas en dos grupos  experimentales.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La alimentación consistió de una ración concentrada  (13,28% de proteína bruta y 8,99% de fibra bruta) y heno de  Cynodon dactylon (L.) Pers. cv “Coast Cross” (4,98% de proteína  bruta y 35,88% de fibra bruta, en la materia seca). Los  animales recibieron 1 kg/cabeza/día de ración concentrada y 2  kg/cabeza/día de heno, con disponibilidad ad libitum de mezcla  mineral y agua.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los animales fueron distribuidos al azar en dos grupos:  grupo 1 (n=7), sincronizado con dos dosis de un análogo de  prostaglandina (125 µg; Ciosin®, Mallinckrodt Veterinary, São  Paulo, Brasil) con intervalo de 7 días, durante la mitad de la  fase luteal; grupo 2 control (n=7), presentando estro natural.  Desde el día anterior a la aplicación de la PGF2 hasta la siguiente  ovulación (período interovulatorio), las ovejas se monitorearon  por medio de un ecógrafo (SSD-500; Aloka Co. Ltda,  Japón) con un transductor lineal prostático humano de 7,5 Mhz  (Modelo UST-660-7,5; Aloka Co. Ltda, Japón). El día de la  ovulación fue definido como el momento de desaparición del  mayor folículo ( 5 mm) [5]. En todas las ovejas, por la mañana  (8h), se colectaron muestras de sangre por venopunción  yugular, antes de la aplicación de la prostaglandina y durante  todo el período experimental para la determinación de las hormonas  esteroides.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para la LH fueron colectadas muestras en los días uno,  seis y 12 del ciclo estral (inicio, mitad y final de la fase luteal),  durante 8 horas a intervalos de 30 minutos, para definir la amplitud  y la frecuencia de esta hormona [22]. Las muestras de  sangre se colectaron en tubos heparinizados; inmediatamente  después fueron centrifugadas a 1.000 x g durante 15 minutos  (Centrifuga de Bancada Baby®I Modelo 206 BL, Fanem®, Brasil),  y el plasma almacenado a -20°C (Freezer Vertical - modelo  349 FV, Fanem®, Brasil), para posterior determinación de  las hormonas esteroides (P4y E2) y de LH utilizando la técnica  de radioinmunoanálisis (RIA). La determinación de la concentración  de P4 fue realizada con la técnica definida por Lafrance  &amp; Goff [20] modificada en la extracción que fue intercambiada  por danazol [24] y en la separación del doble anticuerpo que  fue sustituida por charcol. La sensibilidad del ensayo fue de  0,01 ng/mL. Los coeficientes de variación intra e inter-ensayo,  fueron, respectivamente, de 9 y 12%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para establecer las concentraciones de E2 fueron utilizados  kits comerciales Coat-A-Count (Diagnostic Products Corporation,  Los Angeles, CA, EUA) en fase sólida, en contador  gama Cobra. La sensibilidad del ensayo fue de 8 pg/mL. Los  coeficientes de variación intra e inter-ensayo para el E2 fueron  de 19 y 22%, respectivamente. La concentración de LH fue determinada  mediante el uso del doble anticuerpo, siguiendo la  metodología de Price y col. [26]. La sensibilidad del ensayo fue  de 0,2 ng/mL, y los coeficientes de variación intra-ensayo para  valores bajos y altos de LH fue de 4 y 14%, respectivamente.  La significancia de los efectos de los grupos en las  concentraciones plasmáticas de P4 y E2 fueron determinados  por el análisis de medidas repetidas utilizando el programa  Statistical Analysis System [30]. Para las concentraciones  basales y amplitud de LH se utilizaron las medidas repetidas.  Para la variable pulsos de LH (8 horas), los datos se  transformaron y se utilizaron las pruebas no paramétricas [30].  Para los efectos fijos (grupo, día, grupo x día) se utilizó el test  F [30], y para las comparaciones múltiples de las medias el  test de Tukey-Kramer [21].</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Una oveja del grupo sincronizado fue excluida del trabajo  por presentar cuerpo lúteo (CL) de vida corta. En todas las  hembras ovinas sincronizadas fue observado mediante ecografía  al menos un cuerpo lúteo en la mitad de la fase luteal,  que sufrió regresión en respuesta a la dosis luteolítica del análogo  de prostaglandina (cloprostenol), lo cual fue constatado  por las bajas concentraciones plasmáticas de P4. El día de la  ovulación fue definido como el día cero.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las concentraciones plasmáticas de P4 (media ± DE) en  los grupos experimentales se muestran en la <a href="#F1">FIG 1</a>. Se observó  diferencias significativas (P&lt;0,001) en las concentraciones  plasmáticas de P4 entre los grupos. También se evidenciaron  diferencias significativas en los días (P&lt;0,0001) y en la interacción  grupo vs día (P&lt;0,05). Los valores de las concentraciones  plasmáticas de P4 antes de la ovulación en el presente experimento,  estuvieron de acuerdo con reportados por Scaramuzzi  y col. [31] y Amiridis y col. [3], quienes observaron valores menores  de 1 ng/mL durante la fase folicular.</font></p>     <p align="justify"><a name="F1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/rc/v20n5/art010f1.gif" width="519" height="446"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las hembras ovinas que presentaron ciclo estral natural  mostraron concentraciones circulantes de P4 bajas en el día de  la ovulación (0,27 ± 0,45 ng/mL), aumentando progresivamente  hasta el octavo día (4,49 ± 0,45 ng/mL). Después fueron observadas  algunas oscilaciones hasta alcanzar su más bajo nivel  en el día 16 (0,75 ± 0,45 ng/mL).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el grupo sincronizado con la PGF2 , los animales presentaron  concentraciones más bajas de P4 cuando fueron comparados  con el grupo del ciclo natural. Así, las concentraciones  se mantuvieron bajas desde el día de la ovulación (día cero) hasta  el tercer día (0,73 ± 0,48 ng/mL). Después fueron observados  aumentos significativos en los días cuatro (2,55 ± 0,48 ng/mL) y  11 (3,01 ± 0,48 ng/mL) similar a lo reportado por Uribe-Velásquez  y col. [36]. En este grupo experimental, el uso de PGF2   (cloprostenol) puede haber modificado las concentraciones plasmáticas  de P4. Al respecto, Cárdenas y col. [7] reportaron que en  ovejas la formación del cuerpo lúteo es más lenta en animales  sincronizados con la PGF2 en comparación con animales cíclicos  naturales. Posiblemente, el corto intervalo desde el inicio de  la luteólisis hasta la manifestación del estro en animales tratados  con la PGF2 , puede comprometer la dinámica de los folículos en  crecimiento y su respuesta al incremento de las gonadotrofinas y  al grado de maduración folicular.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Según Colazo y col. [9], las prostaglandinas provocan la  regresión luteal por actuar a través de los receptores de las  células luteales grandes y de las células endoteliales del cuerpo  lúteo. Por tanto, la administración de PGF2 resulta primero  en una disminución del tamaño de las células luteales grandes  y luego en una disminución en el número de las células pequeñas,  las cuales presentan receptores para LH, con la consecuente  disminución en la producción de P4. Juengel y col. [18],  demostraron que dosis relativamente bajas de PGF2 pueden  provocar la apoptosis de las células capilares luteales, reduciendo  las concentraciones de mRNAs y de P4 circulante nueve  horas después de su administración.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los perfiles de las concentraciones de E2 plasmático  (media ± DE) en los grupos experimentales son presentados  en la <a href="#F2">FIG 2</a>. Las concentraciones de E2 en el plasma no fueron  diferentes entre los grupos del ciclo sincronizado y del ciclo  natural antes de la ovulación, presentando un pico en el día –2  de 15,02 ± 1,19 y 13,74 ± 1,11 pg/mL, disminuyendo luego en  el día –1 a valores de 10,25 ± 1,19 y 9,92 ± 1,11 pg/mL, respectivamente.  Aumentos en las concentraciones plasmáticas  de E2 antes de la ovulación fueron encontrados también por  Ravindra y col. [27]. Por el contrario, en ovejas de la raza Manchega  tratadas con dos dosis de cloprostenol con 10 días de  intervalo, los niveles de estradiol durante la fase folicular aumentaron  de 1,4 ± 0,4 pg/mL en el día -2,5 a 2,5 ± 0,3 pg/mL  en el día de la detección del estro (día cero) [13].</font></p>     <p align="justify"><a name="F2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/rc/v20n5/art010f2.jpg" width="518" height="451"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las hembras ovinas del ciclo natural mostraron un patrón  de secreción promedio de 8,75 ± 1,11 pg/mL en el día de  la ovulación, con dos aumentos en los días cuatro (11,12 ±  1,11 pg/mL) y 15 (10,80 ± 1,11 pg/mL) del ciclo estral (dia cero  = ovulación); indicando una diferencia estadística (P&lt;0,0001)  entre los días, durante la fase luteal del ciclo estudiado, lo que  refleja posiblemente un incremento en la actividad folicular. En  el grupo sincronizado con la PGF2, fueron verificados dos aumentos  significativos en los días cuatro y 12, con valores de  14,56 ± 1,19 y 11,78 ± 1,19 pg/mL, respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las concentraciones de E2 aumentaron después de la  regresión luteal en asociación con el crecimiento del folículo  dominante. También fue reportado por Schrick y col. [32], una  primera elevación de la concentración de E2 plasmático en los  días tres al ocho; al igual que Baird y col. [4] que describieron  aumentos significativos en los días seis al nueve del ciclo estral,  los cuales estarían ligados estrechamente al desarrollo de  las ondas de crecimiento folicular. Por otro lado, Schrick y col.  [32] demostraron otros dos elevaciones significativos en los  días seis al nueve, y 11 al 15, sugiriendo que pueden ser  constatados tres aumentos significativos en las concentraciones  plasmáticas de E2 durante la fase luteal del ciclo estral ovino.  Este mecanismo también fue observado por Campbell y  col. [6], los cuales indicaron que el incremento de E2 en la sangre  después de la luteólisis puede ser atribuido en parte, a los  efectos directos de LH en su secreción durante la fase luteal,  sumado la emergencia de folículos grandes estrogénicos en  las 10 horas siguientes a la inducción de la luteólisis.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las concentraciones sanguíneas de E2 luego de la liberación  espontánea de prostaglandinas o de su administración  pueden afectar la luteólisis. Según Colazo y col. [9], las concentraciones  circulantes de E2, que están relacionadas con el  desarrollo folicular, pueden no solo afectar la disminución en  las concentraciones plasmáticas de P4, sino también las respuestas  del cuerpo lúteo a la administración de las diferentes  dosis de PGF2 . Los estudios de Hixon y col. [17] habían señalado  que las concentraciones de E2 pueden afectar la luteólisis,  lo que fue evidenciado cuando los folículos ováricos en hembras  ovinas fueron eliminados por irradiación directa.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La fase de crecimiento folicular está directamente interrelacionada  con las concentraciones de las hormonas esteroides,  lo que fue resaltado por Evans y col. [10] en novillas. Estos  autores observaron que las hembras con un folículo grande  presente (13-16 mm) en el momento del tratamiento con  cloprostenol, presentaron una leve declinación en las concentraciones  de P4 en las 24 horas siguientes del tratamiento, sugiriendo  que el folículo dominante de estas hembras fue menos  estrógeno-activo. Novillas mostrando un número elevado  de folículos pequeños (5-8 mm) o medios (9-12 mm) en el momento  de la administración del cloprostenol, es posible que secreten  una mayor cantidad de E2, lo que resulta en una disminución  significativa de las concentraciones de P4, en el mismo  período de tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Según Sangha y col. [29], la PGF2 posiblemente reduce  la habilidad potencial del CL para producir P4, ya sea actuando  directamente en las células luteales o indirectamente por sus  efectos en la irrigación vascular ovárica. Los patrones de comportamiento  de las concentraciones plasmáticas de E2 observados  en la presente investigación, están estrechamente ligados  a los cambios de la población folicular durante el ciclo estral,  lo que también pudiera estar relacionado con la variación  de los niveles de la estimulación gonadotrófica.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las medias ± desviación estándar de las concentraciones  basales (ng/mL), la amplitud de los pulsos (ng/mL) y la frecuencia  de los pulsos (pulsos/8 horas) de LH son presentadas  en la <a href="#T1">TABLA I</a>. Las concentraciones plasmáticas basales de  LH en el primer día del ciclo estral (día cero = ovulación) no  fueron diferentes entre los grupos control y sincronizado, siendo  respectivamente, de 1,42 ± 0,35 y 2,21 ± 0,59 ng/mL. Igualmente,  no se verificaron diferencias en el sexto día del ciclo  estral entre los grupos estudiados, con valores de 2,96 ± 0,91  y 2,29 ± 0,50 ng/mL, para el ciclo natural y sincronizado, respectivamente.  En el día 12 del ciclo estral fueron observadas  diferencias significativas (P&lt;0,05) entre el grupo control (0,95  ± 0,17 ng/mL) y el grupo sincronizado (2,45 ± 0,70 ng/mL).</font></p>     <p align="justify"><a name="T1"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/rc/v20n5/art010t1.gif" width="599" height="255"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las concentraciones plasmáticas de LH se mantuvieron  bajas después de la ovulación y durante la fase luteal del ciclo  estral, concordando con los valores descritos por Smith y col.  [33] y muy aproximados a los obtenidos por Martin y col. [23].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la literatura consultada se encontraron evidencias del  control de LH en la oveja, mostrando que la P4 tiene su principal  acción sobre el hipotálamo, disminuyendo la secreción tónica  y la frecuencia de los pulsos de LH. En ese sentido, la diferencia  significativa observada en la descarga de LH en el día  12 del ciclo y entre los días en los animales del ciclo estral natural  (control), puede ser explicada por las mayores concentraciones  de P4 observadas en ese grupo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La secreción tónica de LH representa un papel importante  en el control reproductivo en las hembras ovinas. Durante el   anestro, los patrones de desarrollo folicular son semejantes a  los encontrados durante la estación reproductiva, por lo cual la  principal causa de anovulación durante el anestro puede ser  atribuida a deficiencias en la secreción tónica de LH y a una  menor respuesta ovárica [1].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La amplitud de los pulsos de LH (ng/mL) no fue diferente  entre los grupos natural y sincronizado en el primer día del ciclo  estral, siendo respectivamente, 1,16 ± 0,33 y 1,06 ± 0,34  ng/mL. De la misma forma, en el día 12 del ciclo estral la amplitud  de los pulsos no difirió entre el grupo control (1,30 ± 0,33  ng/mL) y el grupo sincronizado con la PGF2 (1,73 ± 0,34  ng/mL). Sin embargo, los grupos presentaron una diferencia  (P&lt;0,01) en el sexto día del ciclo estral que varió entre 1,49 ±  0,34 ng/mL para el grupo control y 2,29 ± 0,33 ng/mL para el  grupo sincronizado.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los cambios observados en la amplitud de los pulsos  son, principalmente, un reflejo de la intensidad de los esteroides  sexuales [14]. En el presente trabajo se observó la disminución  de la amplitud de los pulsos en el sexto día del ciclo estral  en animales en estro natural, efecto que puede ser el resultado  del sinergismo existente entre la P4 y el E2, provocando  cambios significativos en la amplitud de la hormona. La amplitud  de la secreción de los pulsos de LH depende también de  la estación, ya que los efectos inhibitorios de una dosis de  prostaglandina son más bajos durante la estación reproductiva  que en la época anestral. Esa respuesta del E2 durante la estación  reproductiva es restaurada en ovejas ovariectomizadas  cuando fueron tratadas con P4, explicando así, la acción sinérgica  de estas dos hormonas esteroidales.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Entre los factores que afectan la frecuencia de los pulsos,  además del feedback positivo y negativo de los esteroides  gonadales, podemos citar la fase del ciclo reproductivo y el  ambiente, la nutrición, los feromonas y el fotoperiodo [34]. En  este trabajo, la frecuencia de los pulsos de LH (pulsos/8 horas)  fue estadísticamente diferente (P&lt;0,05) entre los dos grupos  de animales en el sexto día del ciclo estral, siendo para el control  de 0,14 ± 0,14 pulsos/8 horas y para el sincronizado de  0,71 ± 0,18 pulsos/8 horas. Esta variación pudiera estar relacionada  con las concentraciones plasmáticas de P4 en la frecuencia  pulsátil de LH y asociada también a las concentraciones  plasmáticas de E2. Según Girmus y Wise [12] las hormonas  esteroides ováricas pueden suprimir la secreción de LH,  ya sea por la disminución de la secreción de GnRH del hipotálamo  o indirectamente al reducir a respuesta de las gonadotrofinas  al GnRH. En ese sentido, existe una clara evidencia en  los rumiantes, en donde la P4 inhibe la frecuencia de los pulsos  de LH y el E2 actúa principalmente inhibiendo la amplitud  de los pulsos de LH, a pesar de que pueda ocurrir una cierta  sinergia entre esas dos hormonas [25].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los datos obtenidos en este estudio sugieren que la sincronización  con PGF2 puede modificar las concentraciones  plasmáticas de P4, las cuales pueden tener un efecto sobre la  frecuencia pulsátil de LH.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS  &nbsp;</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. ABDENNEBI, L.; LESPORT, A.S.;  REMY, J.J.; GREBERT,  D.; PISSELET, C.; MONNIAUX, D.; SALESSE, R.  Differences in splicing of mRNA encoding LH receptor in  theca cells according to breeding season in ewes. Reprod.  123:819-826. 2002.  &nbsp;</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643512&pid=S0798-2259201000050001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. AISEN, E.G. Reproducción  ovina y caprina. En: Figuerêdo,  V., Rubianes, E. (Eds). Preparación de las  hembras. Detección y control del estro y la ovulación,  1ª Ed. Inter-Médica S.A.I.C.I., Buenos Aires, Pp.  87-98. 2004.  &nbsp;</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. AMIRIDIS, G.S.; VALASI, I.;  MENEGATOS, I. Luteal  stage dependence of pituitary response to  gonadonotrophin-releasing hormone in cyclic dairy ewes  subjected to synchronization of ovulation. Reprod. Fert.  Develop. 17:769-774. 2005.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643514&pid=S0798-2259201000050001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. BAIRD, D.T.; LAND, R.B.; SCARAMUZZI, R.J.;  WHEELER, A.G. Endocrine changes associated with luteal  regression in the ewe: the secretion of ovarian oestradiol,  progesterone and androstenedione and uterine  prostaglandin F2 through the oestrus cycle. J. Endocrinol.  69:275-286. 1976.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643515&pid=S0798-2259201000050001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. BARRETT, D.M.W.; BARTLEWSKI, P.M.; BATISTAARTEAGA,  M.; SYMINGTON, A.; RAWLINGS, N.C. Ultrasound  and endocrine evaluation of the ovarian response  to a single dose of 500 IU of eCG following a  12-day treatment with progestogen-releasing intravaginal  sponges in the breeding an nonbreeding seasons in  ewes. Theriogenol. 61:311-327. 2004.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643516&pid=S0798-2259201000050001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. CAMPBELL, B.K.; MANN, G.E.; McNEILLY, A.S.;  BAIRD, D.T. Pulsatile secretion of inhibin, oestradiol and  androstenedione by the ovary of the sheep during the  oestrus cycle. J. Endocrinol. 126:385-393. 1990.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643517&pid=S0798-2259201000050001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. CÁRDENAS, H.; McCLURE, K.E.; POPE, W.F. Luteal  function and blatocyst development in ewes following  treatment with PGF2 and GnRH. Theriogenol. 40:  856-872. 1993.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643518&pid=S0798-2259201000050001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. CEPAGRI - Centro de Pesquisas Meteorológicas e Climáticas  Aplicadas à Agricultura. Clima dos Municípios  Paulistas. 2010. En línea:  <a href="http://www.cpa.unicamp.br/outras-informacoes/clima_muni_086.html">http://www.cpa.unicamp.br/outras-informacoes/clima_muni_086.html</a> . 15-03-10.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643519&pid=S0798-2259201000050001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. COLAZO, M.G.; MARTÍNEZ, M.F.; KASTELIC, J.P.;  MAPLETOFT, R.J. Effects of dose and route of administration  of cloprostenol on luteolysis, estrus and ovulation  in beef heifers. Anim. Reprod. Sci. 72:47-62. 2002.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643520&pid=S0798-2259201000050001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. EVANS, A.C.O.; KOMAR, C.M.; WANDJI, S.A.; FORTUNE.  J.E. Changes in androgen secretion and luteinizing  hormone pulse amplitude are associated with the recruitment  and growth of ovarian follicle during the luteal  phase of the bovine estrous cycle. Biol. Reprod.  57:394-401. 1997.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643521&pid=S0798-2259201000050001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. GINTHER, O.J.; ARAUJO, R.R.; PALHÃO, M.P.;  RODRIGUES, B.L.; BEG, M.A. Necessity of sequential  pulses of prostaglandin F2alpha for complete physiologic  luteolysis in cattle. Biol. Reprod. 80:641-648. 2009.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643522&pid=S0798-2259201000050001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. GIRMUS, R.L.; WISE, M.E. Progesterone directly inhibits  pituitary luteinizing hormone secretion in an estradioldependent  manner. Biol. Reprod. 46:710-714. 1992.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643523&pid=S0798-2259201000050001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. GONZÁLEZ-BULNES, A.; VEIGA-LÓPEZ, A.; GARCÍA,  P.; GARCÍA-GARCÍA, R.M.; ARIZNAVARRETA, C.;  SÁNCHEZ, M.A.; TRESGUERRES, J.A.F.; COCERO,  M.J.; FLORES, J.M. Effects of progestagens and prostaglandin  analogues on ovarian function and embryo viability  in sheep. Theriogenol. 63:2523-2534. 2005.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643524&pid=S0798-2259201000050001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. GOODMAN, R.L.; KARSCH, F.J. Pulsatile secretion of  luteinizing hormone: Differential suppression by ovarian  steroids. Endocrinol. 107:1286-1290. 1980.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643525&pid=S0798-2259201000050001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. GOODMAN, R.L.; BITTMAN, E.L.; FOSTER, D.L.;  KARSCH, F.J. Alterations in the control of luteinizing hormone  pulse frequency underlie the seasonal variation in  estradiol negative feedback in the ewe. Biol. Reprod.  27:580-589. 1982.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643526&pid=S0798-2259201000050001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. HERRERA, H.L.; FELDMAN, S.D.; ZARCO, Q.L. Evaluación  del efecto luteolítico de la prostaglandina F2 alfa en  diferentes días del ciclo estral de la borrega. Vet. Mex.  21:143-147. 1990.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643527&pid=S0798-2259201000050001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. HIXON, J.E.; GENGENBACH, D.R.; HANSEL, D.R. Failure  of prostaglandin F2 to cause luteal regression in  ewes after destruction of ovarian follicles by X-irradiation.  Biol. Reprod. 13:126-135. 1975.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643528&pid=S0798-2259201000050001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. JUENGUEL, J.L.; HAWORTH, J.D.; ROLLYSON, M.K.;  SILVA, P.J.; NISWENDER, G.D. Effect of dose of protaglandin  F2 on steroidogenic components and oligonucleosomes  in ovine luteal tissue. Biol. Reprod.  62:1047-1051. 2000.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643529&pid=S0798-2259201000050001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. KARSCH, F.J.; LEGAN, S.J.; HAUGER, R.L.; FOSTER,  D.L. Negative feedback action of progesterone on tonic  luteinizing hormone secretion in the ewe: Dependence  on the ovaries. Endocrinol. 101:800-806. 1977.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643530&pid=S0798-2259201000050001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. LAFRANCE, M.; GOFF, A.K. Effect of pregnancy on  oxytocin-induced release of prostaglandin F2a in heifers.  Biol. Reprod. 3:1113-1119. 1985.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643531&pid=S0798-2259201000050001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. LATOUR, D.; LITTELL, R. Advanced general linear models  with an emphasis on mixed models. Version 6.12  Cary: Statistical Analysis System Institute. 268 pp. 1996.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643532&pid=S0798-2259201000050001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">22. LEYVA, V.; BUCKRELL, B.C.; WALTON, J.S. Regulation  of follicular activity and ovulation in ewes by exogenous  progestagen. 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McGINLEY, R.; CASEY, J.H. Analysis of progesterone in  unextrated serum; a method using danazol (17 a-preg-  4-en-20-yno (2,3) isoxasol-17-ol) a bloker of steroid binding  to proteins. Steroids. 33:127-138. 1979.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643535&pid=S0798-2259201000050001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. PRICE, C.A. Secreçao pulsátil de LH alterada durante a  superovulação em bovinos. Arq. Fac. 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RAVINDRA, J.P.; RAWLINGS, N.C.; EVANS, A.C.O. Ultrasonographic  study of ovarian follicular dynamics in  ewes during the estrous cycle. J. Reprod. Fertil.  101:501-509. 1994.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643538&pid=S0798-2259201000050001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">28. ROSS, J.L.S. Geografia do Brasil. Capitulo 2. En: Conti,  J.B., Furlan, S.A. (Eds) Geoecologia: O Clima, os Solos  e a Biota, 5ª Ed. 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User’s Guide: Statistics version 5. Cary, NC, USA. 1985.  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643541&pid=S0798-2259201000050001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">31. SCARAMUZZI, R.J.; ADAMS, N.R.; BAIRD, D.T.;  CAMPBELL, B.K.; DOWNING, J.A.; FINDLAY, J.K.;  HENDERSON, K.M.; MARTIN, G.B.; McNATTY, K.P.;  McNEILLY, A.S.; TSONIS, C.G. A model for follicle selection  and the determination of ovulation rate in the  ewe. Reprod. Fert. 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URIBE-VELÁSQUEZ, L.F.; OBA, E.; SOUZA, M.I.L. Población  folicular y concentraciones plasmáticas de progesterona  (P4) en ovejas sometidas a diferentes  protocolos de sincronización. Arch. Med. Vet. 40:83-88.  2008.  &nbsp;</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1643547&pid=S0798-2259201000050001000035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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