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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The proposed method was used to determine the concentration of aromatic hydrocarbons in samples of drinking water from a zone sensible to the contamination risk. 52 drinking water samples were selected by using a statistical design. A system of extraction - pre-concentration with a C18 minicolumn was used for samples treatment and then they were analyzed by a system of samples Screening. The calibration of the Screening system thus achieved is linear in the range 100 - 500 µg/L. The precision, expressed as relative standard deviation for 100 µg/L of total aromatic hydrocarbons mixture (n = 11; P = 0.05) was calculated as 8.3%. If the response is affirmative the sample is analyzed by HPLC with UV detection too. The calibration of the HPLC system thus achieved is linear in the range 80 - 120 µg/L The precision, expressed as relative standard deviation for 80.0 µg/L of benzene, 80.0 µg/L of toluene and 80.0 mg/L of ethylbenzene (n = 11; P = 0.05) was calculated for each one of the aromatic hydrocarbon compounds. The values obtained were 1.61%, 0.23%, and 0.20% respectively. The proposed methods play an important roll in the laboratories of water analysis since first they allow to reduce costs, time and solvent usage and second they allow gathering the information of the presence and concentration of the different aromatic species]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p style="text-autospace: none" align="center"><b> <span style="font-family: TimesNewRomanPS-BoldMT"><font face="Verdana"> Determinación de compuestos aromáticos en agua potable Mediante screening de  muestras y cromatografía líquida con detección UV</font></span></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><b><font size="2" face="Verdana"> Aleyda Montañez<sup>1</sup>, Lisbeth Manganiello<sup>1*</sup>, Nancy Mendoza<sup>1</sup>,  Cristóbal Vega<sup>2</sup>, Richard Mora<sup>3</sup></font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">1  Universidad de Carabobo, Facultad de Ingeniería, Centro de Investigaciones  Químicas. Valencia, Venezuela</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">2  Universidad de Carabobo, Facultad de Ingeniería, Instituto de Matemáticas y  Cálculo Aplicado, Venezuela</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">3  Universidad de Carabobo, Facultad de Ciencias de La Salud, Doctorado en Ciencias  Médicas, Venezuela e-mail: <a href="mailto:lmanganiello@uc.edu.ve"> lmanganiello@uc.edu.ve</a></font></p>     <p align="justify"><b><font FACE="Verdana" LANG="KO" SIZE="2">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify" style="word-spacing: 0; line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2">La metodología  propuesta fue utilizada para determinar hidrocarburos aromáticos en muestras de  agua potable provenientes de una zona sensible al riesgo por contaminación de  estas especies. Se seleccionaron 52 muestras de agua de consumo humano mediante  un diseño estadístico. Las muestras fueron sometidas a un tratamiento de  extracción - preconcentración empleando mini columnas C18 y  posteriormente fueron analizadas mediante el sistema de Screening de muestras.  La calibración del sistema de Screening se llevó a cabo en el intervalo  comprendido entre</font><font FACE="Verdana" LANG="KO" SIZE="2"> 100 – 500 µg/L. La precisión expresada como la desviación  estándar relativa para 100 µg/L de una mezcla de hidrocarburos aromáticos (<i>n  = 11; P = 0.05</i>) fue de 8.3%. El sistema HPLC – UV también fue calibrado en  un intervalo comprendido entre 80 – 120 µg/L con la finalidad de analizar las  muestras donde se determinó la presencia de hidrocarburos aromáticos totales. La  precisión expresada como la desviación estándar relativa para 80 µg/L de benceno,  80 µg/L de tolueno y 80 µg/L de etilbenceno (<i>n = 11; P = 0.05</i>) fue de  1.61%, 0.23% y 0.20% para cada compuesto, respectivamente. La aplicación de las  metodologías desarrolladas juega un rol importante en los laboratorios de  análisis de agua ya que la primera permite reducir costos, tiempo de respuesta y  gasto de solventes; y la segunda permite ampliar la información, discriminando  que especies se encuentran presentes y su respectiva concentración.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>  Hidrocarburos aromáticos, Sistema de Screening, Aguas para consumo humano, HPLC,  Detección UV.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><b> <span lang="EN-GB" style="font-family: TimesNewRomanPS-BoldMT"> <font size="2" face="Verdana">Determination of aromatic hydrocarbons in drinking  water by using sreening samples system and liquid chromatography with UV  detection</font></span></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>ABSTRACT</b> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> The proposed method was used to determine the concentration of aromatic  hydrocarbons in samples of drinking water from a zone sensible to the  contamination risk. 52 drinking water samples were selected by using a  statistical design. A system of extraction – pre-concentration with a C18  minicolumn was used for samples treatment and then they were analyzed by a  system of samples Screening. The calibration of the Screening system thus  achieved is linear in the range 100 – 500 µg/L. The precision, expressed as  relative standard deviation for 100 µg/L of total aromatic hydrocarbons mixture  (<i>n = 11; P = 0.05</i>) was calculated as 8.3%. If the response is affirmative  the sample is analyzed by HPLC with UV detection too. The calibration of the  HPLC system thus achieved is linear in the range 80 – 120 µg/L The precision,  expressed as relative standard deviation for 80.0 µg/L of benzene, 80.0 µg/L of  toluene and 80.0 mg/L of ethylbenzene (<i>n = 11; P = 0.05</i>) was calculated  for each one of the aromatic hydrocarbon compounds. The values obtained were  1.61%, 0.23%, and 0.20% respectively. The proposed methods play an important  roll in the laboratories of water analysis since first they allow to reduce  costs, time and solvent usage and second they allow gathering the information of  the presence and concentration of the different aromatic species.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana"><b> <font size="2">Keywords</font></b><font size="2">: Aromatic hydrocarbons,  Screening System, Drinking water, HPLC, UV detection.</font></font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Recibido: junio de 2008 Recibido en forma final revisado: octubre de 2009</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">El  acceso al agua potable es una cuestión importante en materia de salud y  desarrollo en los ámbitos nacional, regional y local. En algunas regiones, se ha  comprobado que las inversiones en sistemas de abastecimiento de agua y  saneamiento pueden ser rentables desde un punto de vista económico, ya que la  disminución de los efectos adversos para la salud y la consiguiente reducción de  los costos de asistencia sanitaria son significativos (OMS, 2006). El agua es  esencial para la vida, por esta razón se debe insistir en la relación agua y  salud, donde la disponibilidad y la calidad del agua determinan el grado de  salud e higiene de cualquier sociedad. El agua y la salud son dos aliados  estratégicos que contribuyen al sostenimiento y a la calidad de la vida (Probea,  2005). La gran mayoría de los problemas de salud relacionados de forma evidente  con el agua se deben a contaminación por microorganismos. No obstante, existe un  número considerable de problemas graves de salud que pueden producirse como  consecuencia de la contaminación química del agua. Los riesgos de la salud  asociados a los componentes químicos del agua potable se deben principalmente a  la capacidad de los componentes químicos de producir efectos adversos sobre la  salud, tras periodos de exposición prolongados (OMS, 2006).</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los hidrocarburos aromáticos: benceno, tolueno y etilbenceno son contaminantes  prioritarios del agua potable (ATSDR, 1999):</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">El  benceno es un componente natural del petróleo, la gasolina y el humo de  cigarrillo. Se usa para fabricar cauchos, lubricantes, tinturas, detergentes,  medicamentos y plaguicidas. Los procesos industriales son la fuente principal de  benceno en el ambiente, éste se degrada más lentamente en el agua y en el suelo,  y puede pasar al agua subterránea a través del suelo. La Agencia Internacional  para la Investigación del Cáncer (IARC) y la EPA han determinado que el benceno  es carcinogénico en seres humanos.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">El  tolueno se usa en la fabricación de pinturas, diluyentes de pinturas, barniz  para las uñas, lacas, adhesivos y gomas, y en ciertos procesos de imprenta y  curtido de cuero. Éste puede entrar al agua superficial y al agua subterránea  mediante derrames de solventes y productos de petróleo, como también por escapes  de tanques subterráneos en gasolineras. El tolueno puede afectar al sistema  nervioso produciendo cansancio, confusión, debilidad, pérdida de la memoria,  náusea, pérdida del apetito y pérdida de la audición y la vista.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">El  etilbenceno se encuentra en numerosos productos entre los que se incluyen la  gasolina y la pintura. Puede movilizarse al agua subterránea a través del suelo.  La IARC ha determinado que el etilbenceno es posiblemente carcinogénico en seres  humanos (ATSDR, 2007).</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Dado que la presencia de estos compuestos en el ambiente es de carácter  antropogenico, se hace ineludible un control continuo en las diferentes matrices  ambientales, especialmente en agua potable, para determinar sus niveles (Moreno,  2003). Por lo tanto es necesario contar con métodos analíticos rápidos y  sensibles que permitan analizar un gran número de muestras por día (Faría,  2005). La técnica de HPLC ha sido utilizada en la detección de este tipo de  compuestos por su sensibilidad, fácil adaptación a las determinaciones  cuantitativas exactas y su idoneidad para la separación (Skoog, 2002). Los  sistemas de Screening son otra herramienta útil, son sistemas de automatización  de respuesta rápida que permiten la reducción de errores debidos a la  participación humana, caracterizados por presentar un mayor énfasis cualitativo  que cuantitativo con un tratamiento simple de la muestra (Valcárcel, 2000).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">En  concordancia con lo anteriormente expuesto la presente investigación ofrece el  desarrollo de dos metodologías aplicadas en forma secuencial: primero el sistema  de Screening, determina la presencia o no de hidrocarburos aromáticos totales y  posteriormente si la respuesta es afirmativa, pasan al sistema HPLC donde se  ampliará el nivel de información del análisis de las muestras mediante la  determinación de cada especie aromática.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">TÉCNICAS EXPERIMENTALES</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">Reactivos y equipos Reactivos.</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Todos los reactivos utilizados en este trabajo fueron de grado analítico de alta  pureza. Se usó agua ultra pura obtenida de MilliQ System (Millipore Co.). Los  solventes empleados fueron de grado HPLC. Los patrones de alta pureza fueron  suministrados por Sigma–Aldrich.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Sistema de Screening de Muestras. Ultra micro Celda de flujo: modelo SF 6505 -  Hewlett Packard. Detector: UV, arreglo de Diodos en fila modelo 8452 A Hewlett  Packard. Bomba peristáltica: modelo 89052 A - Hewlett Packard. Válvula de  inyección, Rheodyne modelo 5041, con un lazo de inyección de 20 &#956;L. Tubos para  Bombas peristálticas de 0,045 mm d.i. para el manejo se solventes orgánicos.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Sistema de cromatografía. Columna cromatográfica modelo Sunfire® C18, 5&#956;m,  dimensiones 150 mm x 3mm Waters. Sistema de bombeo, modelo 510 HPLC, Waters.  Sistema de inyección de muestras, modelo U6K, Waters. Jeringa de inyección de  capacidad 25 &#956;L, modelo Hamilton. Detector de UV modelo 2485, Waters.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">Muestreo</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Para la toma de la muestra se realizó un muestreo aleatorio simple, con un  número de distribución uniforme. El tamaño de la muestra se determinó en un 20%  de un total de 254 apartamentos, bajo la consideración de una población finita.  Se procedió a elaborar una plantilla de selección de los apartamentos a  muestrear. Para lo cual, la herramienta tomada fue un macro en el programa  Excel, cuya base de análisis es un sistema aleatorio de selección de muestras.  Donde una vez asignado una condición de distribución aleatoria entre 0-1, se  construyó la matriz de 21 columnas y 14 filas (correspondiente al número de  edificios). Generándose como resultado la selección de 52 apartamentos como base  estadística para la realización del muestreo respectivo, (<a href="#tab1">tabla  1</a>). La toma de la muestra se llevó a cabo según el protocolo establecido por  la Norma (COVENIN, 2002). La zona muestreada fue el Conjunto Residencial Bayona  Country, sector Tazajal del municipio Naguanagua, Valencia, Venezuela. La zona  fue seleccionada para su estudio por ser considerada una zona de riesgo, ya que  su sistema de abastecimiento es mediante un pozo subterráneo que se encuentra  aledaño a una serie de talleres mecánicos. Estos talleres arrojan residuos de  solventes industriales, cuya evacuación casual, fugas o derrames, pueden ser una  amenaza creciente para la salud de los pobladores de la zona.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfiucv/v24n4/art07tab1.gif" width="580" height="300"></a></p>     
<p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">Sistema de extracción y preconcentración</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Filtrado previo de las muestras. Cada muestra de agua potable, se filtró al  vació utilizando membranas de Durapore 0.45 um de diámetro de poro y 47 mm de  diámetro (Millipore Co.), con la finalidad de eliminar impurezas.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Preparación de las minicolumnas empacadas C<sub>18</sub>, Sep – Pak®. Las  minicolumnas fueron previamente acondicionadas utilizando el siguiente  procedimiento: se hicieron pasar 3 mL de metanol previamente filtrado, a través  de la minicolumna, a continuación se pasaron 4 mL de una solución compuesta por  50 % metanol y 50 % acetonitrilo y finalmente se pasaron 4 mL de una solución de  composición 50 % agua y 50 % acetonitrilo.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Extracción y preconcentración de los compuestos de interés. Posteriormente los  compuestos de interés fueron extraídos de la matriz acuosa mediante el diseño de  un sistema de extracción y preconcentración conformado por una bomba  peristáltica modelo Hp 89052A Hewlett Packard, tubos de bomba de silicón de  diámetro interno 0.110 mm y minicolumnas empacadas C<sub>18</sub>, Sep – Pak®,  Water (<a href="#fig1">figura 1</a>). El diseño para este procedimiento está  basado en una extracción de tipo sólido – líquido, el cual opera de la siguiente  manera: 500 mL de la muestra previamente filtrada es introducida al sistema  haciendo uso de una bomba peristáltica, con un flujo de operación de 28.3 mL/min.  Ésta es introducida en su totalidad en la minicolumna C<sub>18</sub>.  Posteriormente un 1 mL del extracto de los compuestos de interés es recuperado  invirtiendo la dirección de flujo (Manganiello, 2002), utilizando como solvente  de recuperación acetonitrilo.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfiucv/v24n4/art07fig1.gif" width="522" height="409"></a></p>     
<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Almacenamiento de la muestra tratada. Los extractos de las muestras fueron  conservados a temperatura de 4 &#730;C en envases de plásticos para posteriormente  ser analizados por el Sistema de Screening de muestras y el Sistema de  Cromatografía Líquida (SCL).</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">Diseño del sistema de Screening de muestras</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">En  la <a href="#fig2">figura 2</a> se muestra un esquema del diseño del sistema de  Screening. La solución portadora (90/10 acetonitrilo/ agua), se introdujo al  sistema por medio de una bomba peristáltica, con un flujo de 5.8 mL/min. Los  patrones de la mezcla de aromáticos (benceno, tolueno y etilbenceno), y las  muestras fueron inyectados al sistema mediante la válvula que se observa en el  diagrama, la cual está provista de un bucle de inyección de 20 &#956;L (posición de  carga de la muestra). Al girar la válvula a la posición de inyección, la  solución portadora arrastra la muestra hacia la ultramicro celda. Allí la  muestra es irradiada por un haz de luz correspondiente a la región ultravioleta  del espectro electromagnético en un rango comprendido entre 240 - 254 nm. Esta  señal es captada por un detector de arreglo de diodos, reportándose en unidades  de absorbancia. Una interfase electrónica conectada del detector a la  computadora permite el registro y manipulación de los datos. El programa  utilizado para manejar los datos es un software comercial Chem Station- UV  visible ® de la casa comercial Hewlett Packard.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><a name="fig2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfiucv/v24n4/art07fig2.gif" width="556" height="324"></a></p>     
<p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">Sistema de cromatografía líquida con detección UV</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">El  sistema operó en régimen isocrático con un flujo de 0,4 mL/min. Los patrones de  la mezcla de aromáticos (benceno, tolueno y etilbenceno), y los extractos de las  muestras fueron inyectados mediante una jeringa a una válvula de inyección de  volumen variable. Una vez separados los compuestos aromáticos fueron detectados  a una longitud de onda de 254 nm. Esta señal queda registrada en la pantalla del  detector y el registrador muestra el pico cromatografico correspondiente a cada  especie detectada. Las variables operacionales que se utilizaron para el  presente estudio se detallan a continuación:</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Fase móvil, régimen de separación y flujo. La fase móvil seleccionada fue  50/40/10 Acetonitrilo /agua/tetrahidrofurano v/v. El régimen de separación fue  del modo elución isocrática con un flujo de 0,4 mL/min. Estas condiciones  cromatográficas fueron previamente optimizadas (Manganiello, 2007).</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Columna cromatográfíca. Se utilizó la columna previamente estudiada en los  trabajos de Manganiello &amp; Mendoza, 2007, caracterizada por un relleno C18 con un  tamaño de partícula de 5 &#956;m, la cual arrojaba resultados óptimos para lograr la  separación de los componentes benceno, tolueno y etilbenceno.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Detector de UV. En el detector se procedió a fijar los parámetros de operación a  medida que se desarrollaba el proceso de separación, donde quedó establecido  para el análisis de los compuestos aromáticos una longitud de onda de 254 nm.  Para observar una buena definición de los picos, se utilizó una atenuación  instrumental de 0,01 AUFS. Para lograr este valor de atenuación se ensayaron  valores de 0,01; 0,05; 0,025; 0,050; 0,100 AUFS, notando que a menor atenuación  existe mayor sensibilidad para la detección de las tres especies de estudio.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Aplicación de los métodos propuestos Para chequear la aplicación de los dos  métodos propuestos se utilizó el programa estadístico Statgraphics® plus,  versión 3.1, el cual permite aplicar el t-test por parejas a fin de comparar los  valores de las concentraciones añadidas a las muestras con los valores de las  concentraciones que reporta el método, es decir las concentraciones encontradas.  La aplicación del t-test arrojará un resultado que permitirá concluir si existen  o no diferencias significativas entre ambos resultados.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">En  el sistema de Screening de muestras y en el SCL con detección UV fueron en  primer lugar seleccionadas las condiciones óptimas de operación. Luego se  determinaron los compuestos aromáticos totales (benceno, tolueno y etilbenceno),  mediante el sistema de Screening. Posteriormente las muestras que arrojaron  resultados positivos fueron procesadas en el sistema de Cromatografía con la  finalidad de identificar y determinar los compuestos aromáticos presentes. El  procedimiento de preconcentración de la muestra se realizó con la finalidad de  detectar los límites máximos permisibles que establecen las Normas Sanitarias de  Calidad del Agua (Gaceta Oficial Venezolana, 1998). Adicionalmente las muestras  que arrojaron resultados negativos también fueron analizadas en el sistema HPLC  con la finalidad de corroborar los resultados obtenidos mediante el sistema de  Screening.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">Optimización del sistema de Screening de muestras</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Este sistema fue diseñado para la determinación de compuestos aromáticos totales  (benceno tolueno y etilbenceno).</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">La  metodología se basó en identificar y seleccionar aquellas muestras que contenían  el grupo de compuestos aromáticos mencionados dentro del total del grupo  muestreado. El sistema estudiado responde a los objetivos de este tipo de  metodología tales como simplificación y rapidez (Valcárcel, 2000).</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <b>Variables de operación</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <i>Velocidad de flujo</i>. Para optimizar este parámetro se probaron varios  tubos de bomba peristáltica de diferentes diámetros internos (0.015, 0.030,  0.045 mm). El tubo de bomba seleccionado fue de diámetro interno de 0.045 mm, el  cual da como resultado una velocidad de flujo de 5.8 mL/min. Este valor permitió  un tiempo de detección de los compuestos en la muestra muy rápido, para un  tiempo de análisis total de 3 minutos por muestra dando como resultado el  análisis de 20 muestras/hora.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <i>Volumen de inyección</i>. Para el estudio de esta variable se probaron tres  bucles de inyección de diferentes volúmenes (10, 20, 175) &#956;L. El bucle de  inyección de muestra seleccionado fue de 20 &#956;L, éste resultó adecuado para el  tamaño de muestra que puede colocarse dentro del espacio de la ultramicro celda  (lugar donde se lleva a cabo el proceso de absorción de la luz). Este volumen,  dio lugar a valores de respuesta reproducibles. Utilizando un bucle de inyección  de 10 &#956;L se observó una respuesta de detección poco reproducible y cuando se  utilizaron bucles con volúmenes superiores, como es el caso de 175 &#956;L, se  observaron valores de respuesta negativos. En ambos casos un bucle de inyección  muy pequeño y/o un bucle muy grande con respecto a la capacidad de la ultramicro  celda (60 &#956;L) dan lugar a valores de absorbancia poco reproducibles y/o  negativos.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <i>Solución portadora</i>. Esta disolución tuvo como función llevar la muestra a  través del sistema. Por tanto se debe asegurar que tenga la polaridad adecuada  para transportar los compuestos de interés, en este caso las especies de benceno  tolueno y etilbenceno. Se prepararon diferentes composiciones de la solución  portadora (10/90 v/v acetonitrilo/agua; 50/50 acetonitrilo/ agua, v/v y 90/10  acetonitrilo/ agua, v/v) a fin de seleccionar la más adecuada. La solución  portadora utilizada fue de 90/10 acetonitrilo/ agua,v/v. Al aumentar la  composición del acetonitrilo se garantizó mayor afinidad del medio de las  muestras con la solución portadora. Con proporciones menores en la solución  portadora se observa poca reproducibilidad de los resultados.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <i>Rango de longitud de onda</i>. El rango de longitud de onda, se seleccionó de  acuerdo a la banda donde se presenta el pico de absorción en la cual se observan  las especies (benceno, tolueno y etilbenceno). Se realizaron ensayos a  diferentes rangos de longitud de onda según datos bibliográficos reportados por  Skoog, (2002), para el estudio de compuestos aromáticos tales como: 190 a 500 nm,  200 a 350 nm, 230 a 260 nm, 240 a 254 nm. Se seleccionó el intervalo de longitud  de onda de 240 a 254 nm. En la <a href="#fig3">figura 3</a>, se muestra el  espectro de absorción obtenido para el intervalo antes mencionado. De esta  manera, se permitió captar la señal de los tres compuestos aromáticos  estudiados.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><a name="fig3"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfiucv/v24n4/art07fig3.gif" width="444" height="298"></a></p>     
<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <i>Calibración del sistema de Screening de muestras</i>. El criterio para la  selección del rango de determinación fue acorde con los valores máximos  aceptables establecidos por las Normas Sanitarias de Calidad del Agua (Gaceta  oficial, 1998). El coeficiente de correlación fue de 0,9929 lo cual indica que  la respuesta del detector guarda proporcionalidad con las diferentes  concentraciones de la mezcla de los compuestos estudiados. El límite de  detección reportado fue 50 &#956;L.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">Es  importante resaltar que este valor se encuentra por encima del valor máximo  permisible para la especie benceno (10 &#956;L). Para compensar esta limitación  instrumental la muestra es previamente preconcentrada en un factor de quinientas  veces, lo cual garantiza que el valor máximo permisible para el compuesto de  benceno pueda ser detectado por el método de Screening de muestras propuesto. La  precisión del método también fue estudiada. Un valor de desviación estándar  relativa (RSD) por debajo del 10% indica una precisión aceptable para sistemas  de Screening de muestras. Otra característica importante es el número de  muestras que pueden procesarse por hora. La velocidad del método queda expresada  por este parámetro (Skoog, 2002). El método desarrollado permitió procesar 20  muestras/hora, lo cual es equivalente a tres minutos por muestra, este resultado  es una herramienta a tomar en cuenta para la implementación de un método  analítico confiable, seguro y rápido.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">Sistema de cromatografía líquida con detección UV</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Este sistema consistió en la separación y cuantificación de las especies  aromáticas estudiadas (benceno, tolueno y etilbenceno), en las muestras que  reportaron resultados positivos previamente fueron analizadas por el sistema de  Screening. La <a href="#fig4">figura 4</a> muestra el cromatograma de las tres  especies aromáticas estudiadas.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><a name="fig4"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfiucv/v24n4/art07fig4.gif" width="500" height="650"></a></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">La  variable de operación optimizada fue el Volumen de Inyección. Se estudiaron  diferentes volúmenes de inyección de la mezcla de los compuestos aromáticos.  Estos volúmenes oscilaron entre (5, 10, 15 y 20) &#956;L siendo el volumen de 15&#956;l el  más ventajoso, ya que cuando se inyectaron cantidades de 5 &#956;L y 10 &#956;L se observó  poca definición en la separación de las tres especies y cuando se utilizaron  volúmenes de inyección 20 &#956;L los picos de las diferentes especies de estudio se  solapaban entre sí. Por tanto el valor de 15 &#956;L seleccionado permite una óptima  separación de los picos correspondientes a los compuestos de benceno, tolueno y  etilbenceno.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <i>Calibración del sistema de cromatografía líquida</i>. Se prepararon curvas de  calibración para cada una de las especies de estudio (benceno, tolueno y  etilbenceno). El criterio para la selección del rango de determinación fue  acorde con los valores máximos aceptables establecidos por las Normas Sanitarias  de Calidad del Agua, NSCA (Gaceta Oficial Venezolana, 1998). Los coeficientes de  correlación para cada uno de los compuestos estudiados benceno, tolueno y  etilbenceno fueron: 0,9987, 0,9912, 0,9991. Los límites de de tección reportados  para las especies fueron para el benceno 50 &#956;L, tolueno 20 &#956;L y etilbenceno 40  &#956;L. Es importante resaltar que el valor para el compuesto de benceno se  encuentra por encima del valor máximo permisible (10 &#956;L). Para compensar esta  limitación instrumental la muestra es previamente preconcentrada en un factor de  500 veces, tal como se señaló para el sistema de Screening de muestras. Los  valores de desviación estándar relativa (RSD), los cuales son una medida de la  precisión del método, se encontraron en el intervalo de 0.20 a 1.61 % para cada  especie aromática estudiada. El número de muestras procesadas por hora fueron  cinco, es importante destacar que aunque hay una inversión mayor de tiempo por  muestra esto se traduce a una mayor información por muestra evaluada. La  metodología diseñada permite determinar la concentración de benceno, tolueno y  etilbenceno que están presentes en cada una de las muestras estudiadas, lo cual  constituye una ventaja desde el punto de vista ambiental.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">Aplicación de las metodologías diseñadas</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">La  aplicabilidad del método de Screening fue inicialmente chequeada utilizando  muestras sintéticas que contenían una mezcla de los tres compuestos de  aromáticos, las concentraciones de las mezclas de aromáticos fueron  seleccionadas en un rango de 100 a 500 ug/L, por tratarse de un sistema de  Screening (Valcárcel, 2000); el análisis de las muestras sintéticas no se  realizó de manera rigurosa en comparación a un sistema convencional como es el  caso de la Cromatografía Líquida. Estos resultados se muestran en la <a href="#tab2">tabla 2</a>.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfiucv/v24n4/art07tab2.gif" width="579" height="240"></a></p>     
<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Las diferencias entre las concentraciones encontradas y añadidas presentaron un  error promedio de 5,4%. Se aplicó el <i>t</i>-test por Parejas, observándose que  no hay diferencias significativas entre la concentración añadida y la  concentración encontrada. El valor del t estadístico calculado fue 0,4193 para  la mezcla de aromáticos. Este valor resultó menor que el valor tabulado, 2,015  para 5 grados de libertad y un límite de confianza de 95%, (Farrant, 1997). De  acuerdo con el resultado obtenido del análisis estadístico, el método de  Screening de muestras desarrollado puede ser aplicado a las muestras reales de  aguas destinadas al consumo humano.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">La  aplicabilidad del método de Cromatografía Líquida fue inicialmente evaluada  utilizando muestras sintéticas que contenían las tres especies de aromáticos.  Estos resultados se muestran en la <a href="#tab3">tabla 3</a>. Los resultados  obtenidos muestran las diferencias entre las concentraciones encontradas y  añadidas presentando un error promedio para el benceno de 0,4%, el tolueno 1,5%  y el etilbenceno 0,4%. Se aplicó el ttest por Parejas, observándose que no hay  diferencias significativas entre la concentración añadida y la concentración  encontrada. Los valores de la t estadística calculados fueron de 1,218; 0,031 y  1,33 para el benceno, tolueno y etilbenceno, respectivamente. Estos valores son  menores que el valor tabulado, 1,833 para 9 grados de libertad y un límite de  confianza de 95%, (Farrant, 1997). De acuerdo con los resultados obtenidos del  análisis estadístico, el método de Cromatografía Líquida con detección UV,  propuesto en el presente trabajo, para la identificación y determinación de  benceno, tolueno y etilbenceno puede ser aplicado a muestras reales de aguas  destinadas al consumo humano.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfiucv/v24n4/art07tab3.gif" width="444" height="582"></a></p>     
<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Aplicación a muestras reales De las 52 muestras de agua potable analizadas  mediante el método de Screening, 47 de éstas no evidencian la presencia de  hidrocarburos aromáticos (mezcla de benceno, tolueno y etilbenceno), Sólo cinco  de las muestras analizadas mediante el Sistema de Screening requirieron ampliar  el nivel de información mediante el método de Cromatografía Líquida con  detección UV. Es importante agregar que las posibles interferencias por parte de  otros compuestos que pudieran estar presentes en las aguas destinadas a consumo  humano, fueron estudiadas previamente en los trabajos de Manganiello &amp; Mendoza,  (2007). El uso de las minicolumnas C<sub>18</sub> además de extraer, permiten  separar los compuestos de interés de posibles interferencias presentes en las  aguas analizadas (Waters, 2005). Las muestras reales fueron preconcentradas en  las minicolumnas C<sub>18</sub> de acuerdo con el procedimiento desarrollado en  el apartado de sistemas de extracción y preconcentración de la sección de  Técnicas Experimentales.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Una vez evaluadas las muestras en el sistema de Screening, las muestras que  arrojaron una respuesta positiva se hicieron pasar a una segunda evaluación  mediante el SCL con detección UV, de manera de verificar que los compuestos  benceno, tolueno y etilbenceno se encuentran dentro de los límites permisibles  según la Gaceta Oficial Venezolana (1998). A continuación en la <a href="#tab4"> tabla 4</a> se muestran los resultados de las cinco muestras reales analizadas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none" align="center"><a name="tab4"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfiucv/v24n4/art07tab4.gif" width="571" height="322"></a></p>     
<p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los resultados obtenidos mediante este método confirman que las concentraciones  de tolueno y etilbenceno presentes en estas muestras se encuentran por debajo  del valor máximo permisible que establecen las Normas Sanitarias de Calidad del  Agua (Gaceta Oficial Venezolana 1998). Los aportes de este trabajo demuestran el  importante rol que representan los dos sistemas de detección desarrollados. El  sistema de Screening es simple y rápido para la determinación de compuestos  aromáticos (benceno, tolueno y etilbenceno) en muestras de aguas de consumo  humano. Este sistema presenta buena sensibilidad y precisión y constituye una  herramienta muy útil cuando se considera un número importante de muestras. El  sistema de Screening da información de la “presencia” o “no presencia” de las  especies aromáticas antes mencionadas. Si la respuesta es afirmativa, es decir,  que hay presencia de aromáticos, entonces se pasa al SCL con detección UV, el  cual permite ampliar el nivel de información, discriminando que especies  aromáticas se encuentran presentes y sus respectivas concentraciones.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">CONCLUSIONES</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">La  precisión del sistema de Screening expresada como la desviación estándar  relativa para 100 µg/L de una mezcla de hidrocarburos aromáticos (<i>n = 11; P =  0.05</i>) fue 8.3% y la precisión del sistema HPLC – UV expresada como la  desviación estándar relativa para 80 µg/L de benceno, 80 µg/L de tolueno y 80  mg/L de etilbenceno (<i>n = 11; P = 0.05</i>) fue de 1.61%, 0.23% y 0.20% para  cada compuesto, respectivamente.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana"> Los sistemas diseñados, aplicados en forma secuencial, aportan a los  laboratorios de rutina, donde se procesan gran cantidad de muestras de agua,  rapidez, ahorro del gasto de reactivo, disminución de mano de obra y  simplificación del análisis. En base a lo expuesto anteriormente, se recomienda  la implementación de los sistemas propuestos en la presente investigación, por  parte de los organismos que se encargan de la vigilancia de la calidad del agua  de consumo.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">Al  Dr. Pablo Baricelli Ochoa por su valiosa colaboración en suministrar los equipos  e insumos utilizados para el diseño del sistema de Screening de muestras. A la  Lic. Mariángel Paulini de los Laboratorios CienVar, por suministrarnos la  columna cromatográfica Sunfire® C<sub>18</sub>.</font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><b> <font size="2" face="Verdana">REFERENCIAS</font></b></p>     <!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font size="2" face="Verdana">1.  Agencia para Sustancias Tóxicas y Registro de Enfermedades (ATSDR) (2007).  Departamento de Salud y Servicios Humanos de EE. UU., p.10.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864460&pid=S0798-4065200900040000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">2.  Agencia para Substancias Tóxicas y Registro de Enfermedades (ATSDR) (1999).  División de toxicología ToxFAQsTM Etilbenceno. España, p. 12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864461&pid=S0798-4065200900040000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">3.  Faría, R. (2005). Alternativas de extracción de hidrocarburos aromáticos en  sedimento y su análisis por Cromatografía de gas. Revista Ciencia, 8(2); pp.  240-249.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864462&pid=S0798-4065200900040000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">4.  Farrant, T. (1997). Práctica estadística para el análisis científico. Revista  Royal Society of Chemical. (Canadá), 25(2); pp. 63-68.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864463&pid=S0798-4065200900040000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">5.  Manganiello, L. &amp; Mendoza, N. (2007). Determinación de hidrocarburos aromáticos  en muestras de agua destinadas al consumo humano empleando previamente un  sistema de Screening y Cromatografía Líquida con detección UV. Resumen en  extenso en Memorias del III Simposio de Ambiente y Desarrollo, Universidad  Central de Venezuela. pp. 40-45.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864464&pid=S0798-4065200900040000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">6.  Manganiello, L., Arce, L., Ríos, A., Valcárcel, M. (2002). Piezoelectric  Screening coupled on line to capillary electrophoresis for detection and  separation of Mercury. J. Sep. Sci. 25, pp. 319-327.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864465&pid=S0798-4065200900040000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">7.  Moreno, M. (2003). Toxicología ambiental. Evaluación de riesgos para la salud  humana. MG – Graw Hill. España, p. 345.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864466&pid=S0798-4065200900040000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">8.  Norma Sanitaria de Calidad del Agua Potable (1998). Gaceta Oficial de la  República de Venezuela. Número 36.395.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864467&pid=S0798-4065200900040000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">9.  Covenin 2709:2002, (2002). Norma Venezolana: Aguas naturales, industriales, guía  para las técnicas de muestreo, (1a revisión) FONDONORMA.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864468&pid=S0798-4065200900040000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 10. Organización Mundial de la Salud – OMS (2006). Guías para la calidad del  agua potable, tercera edición, recuperado el 01 de junio de 2009, de <a href="http://www.who.int/water_sanitation_health/dwq/gdwq3_es_fulll_lowsres.pdf"> http://www.who.int/water_sanitation_health/dwq/gdwq3_es_fulll_lowsres.pdf</a>.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864469&pid=S0798-4065200900040000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 11. Probea, (2005). Importancia del agua para la vida. Revista Educación  Proyecto Bio – Regional de Educación Ambiental. 15 (8); pp. 38-45.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864470&pid=S0798-4065200900040000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 12. Skoog, H. (2002). Principios de análisis instrumental. Mc Graw Hill. España.  360.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864471&pid=S0798-4065200900040000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 13. Valcárcel, M. (2000). Automatización y miniaturización en química analítica.  Springer Verlag Iberica S.A. Barcelona. España. pp. 30-249.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864472&pid=S0798-4065200900040000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 14. Waters (2005). Catálogo de Cromatografía Líquida. (Columnas y suministros)  Waters Company. España, p. 135.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1864473&pid=S0798-4065200900040000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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