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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estudio fitoquímico preliminar y bioactividad de la planta Melochia Villosa preveniente del Estado Amazonas, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A preliminary phytochemical analysis was conducted of crude extracts of stem, leaves and flowers of Melochia villosa (Plantae: Sterculiaceae), collected in Puerto Ayacucho, Amazonas state, Venezuela, and antimicrobial activitytest and lethality test against Artemia salina were applied. Phytochemical tests showed the presence of unsaturated sterols and pentacyclic triterpenes in all extracts, with the exception of the alcoholic extract of the leaves (EALH), flavonoids only in the alcoholic extracts, and phenylpropanoids in the alcoholic extracts of the leaves and stem (EALT). The stem ether extract (EET) showed mild antibacterial activity (halo of 7 mm) against Staphylococcus aureus, whereas the ether extract of flowers (EEF) was active against the same strain (halo of 9 mm) besides of showing slight activity against Micrococcus luteus (halo of 8 mm), and moderate against Enterobacter cloacae and Bacillus subtilis (halo of 10 mm). The EALH was active against Escherichia coli, Acinetobacter calcoaceticus, Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa. Only EALT showed slightly antifungal activity against Fusarium poae strain. The EET exhibited excellent lethal activity showing a mean lethal concentration (LC50) of 2.06 &#956;g /mL, followed by the EEF and EALT with a LC50 of 10.00 &#956;g /mL for both; the EALH had a LC50 of 74.68 &#956;g/mL and the leaves ether extract a LC50 of 169.10 &#956;g/mL. These results allows to infer that this plant is a promising source of bioactive secondary metabolites.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Estudio fitoquímico preliminar y  bioactividad de la planta Melochia Villosa preveniente del Estado Amazonas,  Venezuela</font></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana">Preliminary phytichemical study and  bioactivity of the plant Melochia Villosa from Amazonas State, Venezuela</font></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Haydelba Trinidad D’Armas<sup>1</sup>,  Fátima Rodríguez<sup>2</sup>, José Salazar<sup>1</sup></font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1 Universidad de Oriente,  Núcleo de Sucre, Escuela de Ciencias, Departamento de Química, Laboratorio de  Productos Naturales, Cumana, Venezuela,</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2 Universidad de Oriente,  Núcleo de Monagas, Unidad de Estudios Básicos, Departamento de Ciencias, Sección  de Química, Maturín, Venezuela E-mail: <a href="mailto:htrinidad86@hotmail.comRESUMEN">htrinidad86@hotmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se realizó un análisis  fitoquímico preliminar para los extractos crudos de tallo, hojas y flores de  Melochia villosa (Plantae: Sterculiaceae), recolectada en los alrededores de  Puerto Ayacucho, estado Amazonas, Venezuela, así como también se aplicaron  pruebas de actividad antimicrobiana y de letalidad contra Artemia salina. Las  pruebas fitoquímicas evidenciaron la presencia de esteroles insaturados y  triterpenos pentacíclicos en todos los extractos, con excepción del extracto  alcohólico de las hojas (EALH); flavonoides solo en los extractos alcohólicos y  fenilpropanoides en los extractos alcohólicos de las hojas y tallo (EALT). El  extracto etéreo del tallo (EET) mostró actividad antibacteriana leve (halo de 7  mm) contra Staphylococcus aureus, mientras que el extracto etéreo de las flores  (EEF) fue activo contra la misma cepa (halo de 9 mm), además de mostrar  actividad leve contra Micrococcus luteus (halo de 8 mm) y moderada contra  Enterobacter cloacae y Bacillus subtilis (halo de 10 mm). El EALH fue activo  contra Escherichia coli, Acinetobacter calcoaceticus, Bacillus subtilis,  Staphylococcus aureus y Pseudomonas aeruginosa. En las pruebas de actividad  antifúngica, solo el EALT mostró actividad inhibiendo levemente la cepa de  Fusarium poae. El EET exhibió una excelente actividad letal con una  concentración letal media (CL50) de 2,06 &#956;g/mL, seguido del EEF y el EALT con  una CL50 de 10,00 &#956;g/mL para ambos; el EALH tuvo una CL50 de 74,68 &#956;g/mL y el  extracto etéreo de las hojas con una CL50 de 169,10 &#956;g/mL. Estos resultados  permiten inferir, que esta planta es una fuente promisoria de metabolitos  secundarios bioactivos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>:  Sterculiaceae, actividad antimicrobiana, letalidad, metabolitos secundarios.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">ABSTRACT</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A preliminary phytochemical  analysis was conducted of crude extracts of stem, leaves and flowers of Melochia  villosa (Plantae: Sterculiaceae), collected in Puerto Ayacucho, Amazonas state,  Venezuela, and antimicrobial activitytest and lethality test against Artemia  salina were applied. Phytochemical tests showed the presence of unsaturated  sterols and pentacyclic triterpenes in all extracts, with the exception of the  alcoholic extract of the leaves (EALH), flavonoids only in the alcoholic  extracts, and phenylpropanoids in the alcoholic extracts of the leaves and stem  (EALT). The stem ether extract (EET) showed mild antibacterial activity (halo of  7 mm) against Staphylococcus aureus, whereas the ether extract of flowers (EEF)  was active against the same strain (halo of 9 mm) besides of showing slight  activity against Micrococcus luteus (halo of 8 mm), and moderate against  Enterobacter cloacae and Bacillus subtilis (halo of 10 mm). The EALH was active  against Escherichia coli, Acinetobacter calcoaceticus, Bacillus subtilis,  Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa. Only EALT showed slightly  antifungal activity against Fusarium poae strain. The EET exhibited excellent  lethal activity showing a mean lethal concentration (LC50) of 2.06 &#956;g /mL,  followed by the EEF and EALT with a LC50 of 10.00 &#956;g /mL for both; the EALH had  a LC50 of 74.68 &#956;g/mL and the leaves ether extract a LC50 of 169.10 &#956;g/mL. These  results allows to infer that this plant is a promising source of bioactive  secondary metabolites.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Key words</b>: Sterculiaceae,  antimicrobial activity, lethality, secondary metabolites.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: julio 2013. Aprobado:  septiembre 2013. Versión final: octubre 2013.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los productos naturales  originados de las plantas pueden ser considerados como una fuente incalculable  de nuevos compuestos químicos de uso potencial en la medicina (Compagnone et al.  1999).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se ha reportado que los  extractos de muchas plantas pertenecientes a la familia Sterculiaceae son usadas  en la medicina tradicional. La familia comprende aproximadamente 68 géneros y  1.000 especies (Reid et al. 2005). Entre los géneros se encuentran: Waltheria,  Melochia, Sterculia, Helicteres y Theobroma entre otros (Rondón y Cumana 2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las plantas de esta familia son  reconocidas por ser ricas en alcaloides y han sido usadas en la medicina  tradicional para aliviar la inflamación de la cavidad orofaríngea, como agentes  antitumorales, y para el tratamiento de la distensión abdominal, disentería y  mordedura de serpientes (Dias et al. 2007). Melochia es uno de los géneros de  esta familia, que está extendido en todo el trópico, entre éstos, Melochia  corchorifolia y Melochia tomentosa, han sido las más investigadas, reportándose  algunos flavonoides y alcaloides ciclopeptídicos para ambas especies (Tschesche  y Reutel 1968, Kapadia et al. 1977, 1980, Bhakuni et al. 1986). Además, en otra  investigación el extracto de la raíz de M. tomentosa, resultó ser cancerígeno,  donde fueron reportados un alcaloide quinolinolico y una cumarina (Shukla et al.  1976).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En otro estudio reciente  realizado a las hojas de M. tomentosa, proveniente de la localidad de Tocuchare,  estado Sucre, Venezuela, se detectó la posible presencia de flavonoides y  esteroles insaturados en los extractos metanólicos de las hojas y el tallo, así  como también se detectaron saponinas, polifenoles y taninos en el extracto del  tallo. El extracto de las hojas presentó actividad letal moderada y resultó  inactivo frente a hongos y bacterias, mientras que el extracto del tallo  presentó actividad contra varias cepas de bacterias y hongos, y una buena  actividad letal, caracterizándose por primera vez un derivado amino y otro  derivado acetilado de un esterol (Espinoza 2010).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Otra de las especies que ha  sido estudiada fitoquímicamente, es la Melochia chamaedrys, la cual es usada en  la medicina tradicional para el tratamiento de varias enfermedades como el  cáncer y como agente anti–hipertensivo, donde se reportó el aislamiento de  chamaedrina, un alcaloide ciclopeptídico de la raíz de esta especie (Dias et al.  2007). Melochia villosa es una hierba que se conoce comúnmente como “malva” o  “hierba de San Juan”, y la decocción de su raíz se usa como desinfectante, para  lavar la boca y recuperar el apetito luego de fiebres y resfriados (Rondón  2009). Dicha planta no ha sido estudiada químicamente, por tal motivo, se  decidió realizar el estudio fitoquímico de la misma y evaluar su posible  actividad biológica, aportándose así información valiosa al campo de los  productos naturales.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Recolección de la muestra</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los ejemplares de la planta  Melochia villosa se recolectaron en los alrededores de Puerto Ayacucho, estado  Amazonas a lo largo de la carretera, a una latitud de 5º40’0,01’’ N, longitud  67º30’28,71’’ O. Seguidamente, fueron trasladados en bolsas desde el sitio de  muestreo hasta el Departamento de Biología del Núcleo de Sucre de la Universidad  de Oriente en la ciudad de Cumaná, estado Sucre, en donde fueron identificados  para luego ser procesados.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Obtención de los extractos</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se dejó secar la planta a  temperatura ambiente, se separaron las partes de la planta (hojas, tallo, flores  y frutos), las cuales fueron molidas por separado en un molino eléctrico y  extraído en éter dietílico para obtener los componentes menos polares. El  filtrado fue concentrado a presión reducida (aprox. 11 mbar) en un  rotaevaporador marca Hidolph, obteniéndose el extracto crudo en éter. El residuo  se extrajo sucesivamente con etanol y metanol para extraer los componentes más  polares, los filtrados se concentraron a presión reducida en un rotaevaporador y  luego, se juntaron los extractos etanólicos y metanólicos obteniéndose de esta  manera el extracto crudo alcohólico. Se determinó la masa de cada uno de los  órganos de la planta M. villosa, y se realizó el proceso de extracción con éter  dietílico y metanol.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Pruebas químicas</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La presencia de las diferentes  familias de metabolitos secundarios (alcaloides, esteroles, saponinas,  triterpenos, polifenoles, entre otros) encontrados en los extractos obtenidos,  se determinó utilizando las metodologías de análisis fitoquímico reportadas (Marcano  y Hasegawa 2002, Murrillo y Méndez 2007), las cuales se basan en la  caracterización química de los diferentes grupos funcionales que integran las  estructuras de los metabolitos.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Pruebas biológicas</font></b></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Actividad letal con Artemia  salina</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Para evaluar el nivel de  toxicidad de los extractos crudos de la planta, se colocaron los quistes del  crustáceo con agua de mar bifiltrada en un envase, para obtener los nauplios de  Artemia. Se preparó 1 mL de una solución madre de 10.000 &#956;g/mL del extracto,  preparada disolviendo el extracto en la mínima cantidad posible de  dimetilsulfóxido (DMSO) y completando hasta 1 mL con agua de mar bifiltrada. A  partir de la solución madre, se prepararon soluciones diluidas de 1.000; 100;  10; 1; 0,1 y 0,01 &#956;g/mL mediante diluciones sucesivas. A cada disolución se le  agregaron 10 nauplios de A. salina eclosionados con anterioridad, y por cada  concentración se realizaron tres réplicas del bioensayo. Se realizó un blanco  con la misma mezcla de DMSO y agua de mar utilizada en la preparación de la  solución madre. Se determinó la mortalidad de los nauplios transcurridas las 48  horas de la realización del bioensayo, y se anotó el número de organismos  muertos en cada una de las concentraciones (Meyer et al. 1982). Se determinó la  concentración letal media (CL50) mediante un programa estadístico (métodos  Binomial, Logit y Probit) propuestos por Stephan (1977).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Actividad antibacteriana</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Este bioensayo se realizó por  medio de la técnica de difusión en agar, el cual consistió en impregnar discos  estériles de papel de filtro Whatman Nº 3 de 5 mm de diámetro con 10 &#956;L de una  solución del extracto (40 mg/ mL). Dichos discos fueron colocados en una placa  servida con agar Müller-Hilton, previamente sembrada con una suspensión  bacteriana de concentración conocida (1 x108 bacterias/mL) e inoculadas con una  suspensión bacteriana estandarizada por comparación con un patrón McFarland 0,5.  Posteriormente, las placas fueron preincubadas a 5ºC por 12 horas, para luego  ser incubadas a 37ºC por 24 horas. La acción antibacteriana se midió tomando el  diámetro (mm) del halo de inhibición alrededor del disco (Bauer et al. 1966). Se  utilizaron cepas de bacterias certificadas existentes en el Laboratorio de  Productos Naturales (412) del Departamento de Química de la Universidad de  Oriente, Núcleo de Sucre (<a href="#tab1">Tabla 1</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art06tab1.gif" width="353" height="252"></a></p>     
<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Actividad antifúngica</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Esta actividad se evaluó  utilizando cepas de hongos patógenos y fitopatógenos proporcionados por los  Laboratorios de Fitopatología y Microbiología del Departamento de Biología de la  Universidad de Oriente, Núcleo de Sucre (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). El método  consistió en incubar las cepas de hongos seleccionadas en tubos por una semana a  temperatura ambiente. Se agregó aproximadamente 10 mL de agua destilada estéril  a cada tubo para remover las esporas, luego se filtró sobre gasa estéril, para  obtener la solución esporangial de cada cepa incubada. La solución obtenida se  sembró sobre cápsulas de Petri, previamente preparadas con agar Papa Dextrosa (PDA),  usando hisopos estériles. Seguidamente, se impregnaron los discos de papel de  filtro Whatman Nº 3 de 5 mm de diámetro con aproximadamente 10 &#956;L de la muestra  y se incubaron por 48 horas a temperatura ambiente. Dicha actividad se indicó  mediante la aparición de halos de inhibición alrededor del disco, midiéndose  tomando en cuenta su diámetro (mm) (Madubunyi 1995).</font></p>     <p align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art06tab2.gif" width="363" height="173"></a></p>     
<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Según la revisión  bibliográfica, Melochia villosa es una planta que no ha sido sometida  anteriormente a estudios de tipo fitoquímico ni biológico, por lo que a  continuación se presentan los resultados obtenidos en el análisis del extracto  alcohólico de las hojas, así como también en los extractos alcohólico y etéreo  del tallo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Rendimiento porcentual de los  extractos</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Una vez obtenidos los extractos  secos, se procedió a determinar las masas de los mismos y su respectivo  rendimiento, obteniéndose así 1,0486 g del EEH, 0,3816 g del EET y 0,4638 g de  EEF, con un rendimiento de 0,79%, 0,24% y 1,07% respectivamente. De igual  manera, se logró obtener 3,5551 g del EALH, 1,8703 g del EALT y 1,5831 g del  EALF, con un rendimiento de 2,69%, 1,16% y 3,65%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Estos resultados muestran  claramente, que la mayor parte de los compuestos presentes en la planta son de  naturaleza polar, puesto que se obtuvo un mayor rendimiento en la extracción  alcohólica; sin embargo, también hay presencia de compuestos poco polares con  una menor abundancia en dicha especie. Según la literatura, se observó el mismo  comportamiento en los extractos obtenidos de H. baruensis Jacq, H. guazumofolia  Kunth, M. tomentosa y M. chamaedrys; sin embargo, cabe destacar que para M.  tomentosa solo se realizaron extracciones metanólicas (Costa 2005, Tarache 2007,  Espinoza 2010, Vázquez 2010).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Análisis fitoquímico  preliminar</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al realizar las pruebas  químicas de identificación de algunos núcleos secundarios, se logró mostrar la  presencia de esteroles insaturados y triterpenos pentacíclicos en todos los  extractos, a excepción del extracto alcohólico de la hoja. También, se manifestó  la presencia de fenilpropanoides en los extractos alcohólicos de las hojas y el  tallo, al igual que fue detectado la presencia de flavonoides en todos los  extractos alcohólicos obtenidos, resultando negativa dicha prueba para los  extractos en éter dietílico (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art06tab3.gif" width="547" height="463"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los esteroles naturales por  tratamiento con ácidos fuertes en condiciones de deshidratación, dan reacciones  coloreadas que son útiles para su identificación preliminar (reacción de  Lieberman-Burchard), por lo cual al agregar las gotas de dicho reactivo, se  observó la aparición de una coloración verde intensa indicadora de la presencia  de esteroles en los extractos analizados (Murrillo y Méndez 2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los fenilpropanoides son  sustancias aromáticas que tienen funciones oxigenadas (hidroxilos, metoxilos,  metilendioxilos) en posiciones orto y/o para; están muy difundidos en el reino  vegetal (Murrillo y Méndez 2007). Su presencia fue evidenciada mediante la  aparición de la coloración naranja, característica del reactivo de Arnow frente  a los fenilpropanoides.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La acción farmacológica de los  flavonoides es extensa y variada, bien conocida por su actividad contra la  fragilidad capilar, su acción antiesclerótica y antiedematosa, dilatadora de las  coronarias, espasmolítica, antihepatotóxica, colerética, estrógena y diurética.  Se destaca su actividad antimicrobiana; además que limitan la acción de los  radicales libres (oxidantes), reduciendo el riesgo de cáncer y enfermedades  cardíacas, refuerzan los vasos sanguíneos y bloquea la degeneración macular (Murrillo  y Méndez 2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al exponer los extractos ante  los vapores de hidróxido de amonio y colocarlos bajo luz ultravioleta, se  observó una fluorescencia que indicó la presencia de flavonoides. Cabe destacar,  que es posible que los flavonoides detectados en los extractos de M. villosa,  puedan provenir de la biosíntesis de los fenilpropanoides propios de dicha  especie.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">De acuerdo al porcentaje de  extractos con metabolitos pertenecientes a la misma familia química (% emf), se  pudo observar que el grupo de los esteroles insaturados y triterpenos  pentacíclicos, fueron los más abundantes dentro del grupo de extractos  analizados (83,33%), seguido por los flavonoides (50%) y en último lugar los  fenilpropanoides (33,33%); lo que quiere decir, que son los esteroles y  triterpenos un tipo de metabolitos bastante abundante en la planta M. villosa.  De igual forma, según el porcentaje de metabolitos presentes por cada extracto  (% mpe), se observó que el extracto alcohólico del tallo (EALT) fue el que  mostró la presencia de la mayor cantidad de núcleos secundarios, seguido del  extracto alcohólico de las flores (EALF), presentando el resto de los extractos  una menor cantidad de los mismos (<a href="#tab4">Tabla 4</a>). Esto hace al  EALT un extracto bastante promisorio para ser estudiado.</font></p>     <p align="center"><a name="tab4"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art06tab4.gif" width="534" height="327"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El hecho de no haberse  detectado la presencia de algunas familias de metabolitos, no implica  necesariamente la ausencia de los mismos, ya que es posible que éstos se hayan  encontrado en concentraciones muy bajas para ser detectados, mediante las  pruebas húmedas de determinación de núcleos secundarios.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Este estudio fitoquímico  constituye un aporte importante a la quimiotaxonomía de M. villosa, ya que no  existe en la literatura reportes de este tipo para dicha especie; además, se  evidenció la presencia de esteroles insaturados, los cuales constituyen un grupo  de metabolitos muy característicos de las plantas de la familia Sterculiaceae,  puesto que según los reportes de la literatura, este tipo de metabolitos se  encuentra presente en otras especies tales como H. baruensis Jacq (Tarache  2007), H. guazumifolia Kunth (Vázquez 2010) y M. tomentosa (Espinoza 2010).  Adicionalmente, la presencia de flavonoides también fue detectada en M.  tomentosa y Waltheria americana (Osuna et al. 2005), evidenciándose la presencia  de este segundo grupo de metabolitos en algunas plantas de esta familia. El  hecho de detectar en M. villosa la presencia de los mismos grupos de metabolitos  secundarios reportados en varias plantas de la misma familia Sterculiaceae, es  evidencia de la relación quimiotaxonómica de las mismas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Actividad biológica</font></b></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Actividad antibacteriana</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al evaluar la actividad  antibacteriana de los extractos crudos de M. villosa, se detectó la intensidad  de la misma, según el criterio de Monks et al. (2002), de actividad leve (halos  entre 7 y 9 mm) en el extracto alcohólico de las hojas contra cinco de las cepas  bacterianas, el extracto etéreo del tallo lo hizo contra una de las cepas (halo  de 7 mm), mientras que el extracto etéreo de las flores inhibió el crecimiento  (halos de 8 a 10 mm) contra cuatro de las cepas ensayadas (<a href="#tab4">Tabla  4</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Según el análisis realizado,  para la mayoría de los casos el efecto fue bactericida, es decir, no hubo  proliferación de la bacteria en la región inhibida; sin embargo, en el extracto  etéreo de las flores (EEF) se observó acción bacteriostática, es decir, hubo  cierto crecimiento bacteriano dentro del halo de inhibición para las cepas de M.  luteus (halo de 8 mm) y S. aureus subspaureus (halo de 9 mm). De igual manera,  se observó este comportamiento al ensayar el extracto etéreo del tallo (EET)  contra la segunda cepa antes mencionada, y al probar la acción del extracto  alcohólico de las hojas contra E. coli, por lo que el efecto antibacteriano del  extracto se considera menos potente para estos casos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">De acuerdo al porcentaje de  extractos activos contra un mismo microorganismo (%eam), S. aureus (IBE (DOC-19))  fue el microorganismo sensible a la mayor cantidad de extractos, exhibiendo un  60,00% de inhibición de los mismos, a pesar que en alguno de ellos la acción  antibacteriana fue bacteriostática. Esto quiere decir, que la mayor parte de los  extractos provenientes de M. villosa están compuestos por metabolitos activos  contra esta cepa de bacterias. Por su parte, la cepa de B. subtilis (ICTA-07)  fue inhibida en 40,00% de los extractos ensayados, seguido de las P. aeruginosa  (ATCC 27853), A. calcoaceticus (ATCC 23055) y E. coli (ATCC 25922), con 20,00%,  lo cual significa que en comparación con S. aureus, estas cepas son más  resistentes ante la acción de los metabolitos presentes en M. villosa.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Según el porcentaje de  microorganismos sensibles a un mismo extracto (%mse), se observó que el extracto  alcohólico de las hojas (EALH) presentó mayor actividad con 62,50%, seguido del  extracto etéreo de las flores con 50,00% y finalizando con el extracto etéreo  del tallo con 12,5%, siendo inactivo el resto de los extractos. Esto significa  que el extracto alcohólico de las hojas, posee ciertos metabolitos que le  confieren una mayor propiedad antibacteriana, este hecho lo convierte en un  extracto bastante promisorio para ser estudiado. Cabe destacar, que para el EALH,  la mayor parte de las cepas inhibidas fueron Gram-positivas mientras que para el  EEF las cepas inhibidas fueron en su mayoría Gram-negativas, a excepción de E.  cloacae; por su parte, para el EET la única cepa inhibida fue Gram-positiva. Se  puede inferir que M. villosa ejerce un mayor efecto antibacteriano ante las  cepas Gram-positiva.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Según los reportes de la  literatura, los extractos metanólicos crudos de las hojas de H. guazumifolia  Kunth (Vázquez 2010), presentaron actividad antibacteriana contra las bacterias  M. luteus, E. cloacae, A. calcoaceticus y B. subtilis. Por su parte, la fracción  etérea de las hojas de H. baruensis Jacq (Tarache 2007), presentó actividad  bacteriostática leve a la bacteria Salmonella enteritidis, y la fracción  clorofórmica mostró un efecto bactericida contra la misma, así como también  mostró actividad leve contra Bacillus cereus. De igual manera, las hojas de W.  americana (Osuna et al. 2005) evidenciaron actividad contra B. subtilis, S.  aureus y P. aeruginosa, mientras que el extracto metanólico de la planta en  general, fue también activo contra E. coli. Para M. tomentosa (Espinoza 2010),  el extracto metanólico del tallo exhibió una actividad antimicrobiana  considerable contra E. coli, M. luteus, S. aureus y P. aeruginosa. En  concordancia con este hecho, se dice que M. villosa, al igual que otras plantas  de la familia Sterculiaceae, presenta propiedades antibacterianas.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Actividad antifúngica</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al ensayar los distintos  extractos de M. villosa contra cuatro cepas de hongos, solo se observó una  actividad muy leve ejercida por el EALT frente a la cepa de Fusarium poae (<a href="#tab5">Tabla  5</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="tab5"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art06tab5.gif" width="315" height="229"></a></p>     
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<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Según la literatura, el  extracto metanólico del tallo de M. tomentosa (Espinoza 2010), ejerció un efecto  inhibitorio contra el crecimiento fúngico de las cepas de Curvularia lunata,  Mucor sp. y Penicillium sp. Igualmente, los extractos en éter de petróleo y  metanol de las hojas de H. guazumifolia Kunth (Vázquez 2010), exhibieron  actividad antifúngica contra las dos primeras cepas mencionadas, así como  también inhibió el crecimiento de Aspergillus oryzae. Los extractos acuoso y  metanólico de las hojas, tallo y flores de W. americana ejercieron actividad  antifúngica contra Candida albicans (Osuna et al. 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Hay evidencia que las plantas  de la familia Sterculiaceae poseen cierta actividad antifúngica; sin embargo, la  actividad mostrada por M. villosa fue menos marcada que en los casos citados  anteriormente.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Actividad letal</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El efecto letal de los  materiales en larvas de A. salina permite estimar la potencia para producir la  muerte de células cancerígenas en cultivo de tejidos, matar insectos y/o ejercer  efectos farmacológicos, puesto que existe una correlación directamente  proporcional entre la mortalidad de las larvas de Artemia y la citotoxicidad  frente a las células 9KB (carcinoma nasofaríngeo humano) y la línea celular 3PS  (P388) (leucemia in vivo), medida en términos de concentración letal media CL<sub>50</sub>  (a mayor mortalidad de larvas, menor CL<sub>50</sub> y viceversa) (Pino y Jorge  2010).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al determinar el promedio de  nauplios muertos a las 48 horas de haber sido expuestos a los diferentes  extractos (<a href="#tab6">Tabla 6</a>), se utilizaron estos datos para calcular  la concentración letal media (CL<sub>50</sub>). El EET presentó una potente  actividad letal con una CL<sub>50</sub> de 2,06 &#956;g/mL, siguiendo en letalidad el  EALT y el EEF con una CL<sub>50</sub> de 10,00 &#956;g/mL, el EALH con 74,68 &#956;g/mL;  siendo el EEH el menos letal, con una CL<sub>50</sub> de 169,10 &#956;g/mL (<a href="#tab7">Tabla  7</a>). Estos resultados muestran que M. villosa es una fuente potente de  compuestos letales, encontrándose una letalidad moderada en las hojas, y fuerte  en las flores y tallo, siendo éste último el órgano más letal de la especie,  especialmente en sus compuestos menos polares.</font></p>     <p align="center"><a name="tab6"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art06tab6.gif" width="315" height="270"></a></p>     
<p align="center"><a name="tab7"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art06tab7.gif" width="317" height="219"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La mayoría de los extractos  ensayados con el crustáceo A. salina mostraron una muy buena actividad letal,  por lo que posiblemente M. villosa sea una planta con propiedades promisorias  para la inhibición del crecimiento de células cancerígenas. Este hecho concuerda  con la literatura, la cual expone excelente actividad letal en otras especies  pertenecientes a la familia Sterculiaceae, como por ejemplo, el tallo de M.  tomentosa (Espinoza 2010), la raíz de M. chamaedrys (Costa 2005), las flores y  los frutos de H. guazumifolia Kunth (Vázquez 2010) y las flores de H. baruensis  Jacq (Tarache 2007).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">CONCLUSIONES</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El análisis fitoquímico  preliminar, reveló en la mayoría de los extractos de M. villosa, la presencia de  esteroles insaturados y triterpenos pentacíclicos; flavonoides en los extractos  alcohólicos de flores, hojas y tallos, además de fenilpropanoides en los dos  últimos. M. villosa presenta propiedades antibacterianas, ejerciendo un mayor  efecto ante las cepas de bacterias Grampositivas; además de presentar una  letalidad moderada en las hojas, y fuerte en las flores y tallo, pudiéndose  inferir de esta manera que dicha planta es una fuente promisoria de metabolitos  secundarios bioactivos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Bauer A, Kirby A, Sherris J,  Turk M. 1966. Antibiotic susceptibility testing by standardized single disk  method. Am. J. Clin. Pathol. 45(4):493-496.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3238897&pid=S1315-0162201300040000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Bhakuni R, Shukla N, Thakur  R. 1986. Ciclopeptide alkaloids from Melochia corchorifolia. Phytochemistry.  26(1):324-325.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3238899&pid=S1315-0162201300040000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Compagnone R, Suárez A,  Castillo A, Delle-Morache F, Ferrari F. 1999. Estudio fitoquímico de algunas  plantas de posible uso en la medicina tradicional venezolana. Mem. Inst. Biol.  Exp. 2:187-190.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Costa G. 2005. Estudo  fitoquímico da raíz da espécie elochia chamaedrys St. Hil. Tesis de Doctorado en  Química, Universidad Federal de Santa María, Santa María, Brasil, pp. 24.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Dias G, Gressler V, Hoenzel  S, Silva U, Dalcol I, Morel A. 2007. Constituents of the roots of Melochia  chamaedrys. Phytochemistry. 68(5):668–672.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Espinoza B. 2010. Análisis  fitoquímico y bioactividad de la planta Melochia tomentosa (Sterculiaceae).  Trabajo de pregrado, Universidad de Oriente, Cumaná,Venezuela, pp. 33-41.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Kapadia G, Shukla Y, Morton  J, Lloyd H. 1977. New ciclopeptide alkaloids from Melochia tomentosa.  Phytochemistry. 16(9):1431-1433.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Kapadia G, Shukla Y, Basak  S. 1980. The melosatins- a novel class of alkaloids from Melochia tomentosa.  Tetrahedron. 36(17):2441-2447.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Madubunyi I. 1995.  Antimicrobial activities of the constituents of Garcinia kola seeds. Int. J.  Pharmacog. 33(3):232-237.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Marcano D, Hasegawa M.  2002. Fitoquímica Orgánica. Editorial Litopar, Caracas, Venezuela, pp. 21-22.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Meyer B, Ferrigni N, Putman  J, Jacobsen L, Nichols D, Mclaughling J. 1982. Brine Shrimp: A convenient  general bioassay for active plant constituents. Planta Med. 45(1):31-34.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Monks N, Lerner C,  Henriques A, Farias F, Schapoval E, Suyenaga E, Da Rocha A, Schwartsmann G,  Mothes B. 2002. Anticancer, antichemotactic and antimicrobial activities of  marine sponges collected off the coast of Santa Catarina, southern Brazil. J.  Exp. Mar. Biol. Ecol. 281(1-2):1-12.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Murrillo E, Méndez J. 2007.  Guía metodológica para la detección rápida de algunos núcleos secundarios.  Universidad de Tolima, Ibagué, Colombia, pp. 8-25.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Osuna L, Tapia M, Aguilar  A. 2005. Plantas tradicionales de la medicina tradicional mexicana para tratar  afecciones gastrointestinales. Estudio etnobotánico, fitoquímico y  farmacológico. Primera edición. Universitat de Barcelona. España. pp. 134-138.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Pino O, Jorge F. 2010.  Ensayo de Artemia: útil herramienta de trabajo para ecotoxicólogos y químicos de  productos naturales. Rev. Protección Veg. 25(1):34-43.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Reid K, Jáger A, Light M,  Muiholland D, Van Staden J. 2005. Phytochemical and pharmacological screening of  Sterculiaceae species and isolation of antibacterial compounds. J.  Ethnopharmacol. 97(2):285-291.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Rondón J. 2009. Revisión  taxonómica del género de Melochia L. (Sterculiaceae) en Venezuela. Acta Bot.  Venez. 32(1):34-38.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Rondón J, Cumana L. 2006.  Clave preliminar para identificar especies de la familia Sterculiaceae en  Venezuela. Saber. 18(2):142-152.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Shukla Y, Sokoloski A,  Fales H. 1976. 6-methoxy- 7,8-methylenedioxycoumarin from Melochia tomentosa.  Phytochemistry. 15(11):1788-1788.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. Stephan C. 1977. Methods  for calculating in LC50. En: American Society for Testing and Material (ASTM)  Aquatic Toxicology and Hazard Evaluation. F.L. Mayer y J. Hamelink (eds),  Philadhelphia, Pensylvania, pp. 65.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Tarache A. 2007. Separación  e identificación de algunos compuestos constituyentes de la planta Helicteres  baruensis Jacq. (Sterculiaceae) y su actividad biológica. Trabajo de pregrado,  Universidad de Oriente, Cumaná, Venezuela, pp. 29-34.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">22. Tschesche R, Reutel I.  1968. Alkaloide aus Sterculiaceae, über peptidalkaloide aus Melochia  corchorifolia. Tetrahedron Lett. 9(35):3817-3818.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">23. Vásquez V. 2010.  Aislamiento e identificación de algunos constituyentes de la hoja de la planta  Helicteres guazumifolia Kunth (Sterculiaceae) y su posible actividad biológica.  Trabajo de pregrado, Universidad de Oriente, Cumaná, Venezuela, pp. 25-32.</font></p>       ]]></body>
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