2003 A LA ACTUALIDAD. UNA REVISIÓN

Entamoeba histolytica AND Entamoeba dispar IN VENEZUELA FROM YEAR 2003 TO PRESENT. A REVIEW

Dalmiro  Cazorla-Perfetti

Universidad Nacional Experimental “Francisco de Miranda” (UNEFM), Decanato de Investigaciones, Centro de Investigaciones Biomédicas (CIB), Laboratorio de Entomología, Parasitología y Medicina Tropical

(LEPAMET), Coro, Falcón. E-mail: lutzomyia@hotmail.com / cdalmiro@gmail.com

Recibido: mayo 2015. Aprobado: junio 2015.  Versión final: agosto 2015.

RESUMEN

Se presentan ]]> comentarios y se complementan las ideas de un artículo de ]]> revisión de reciente publicación en la revista Saber [27(1):17-24, 2015], ]]> acerca de los estudios hechos en Venezuela entre 2003 hasta ]]> l presente, de dos especies de protozoarios amebozoos (Amoebozoa) del complejo ]]> Entamoeba spp. (Archamoebae: Entamoebidae), incluyendo E. histolytica, principal agente etiológico ]]> de la amibiasis, y E.dispar.

Palabras  clave: Complejo Entamoeba spp., amibiasis.

ABSTRACT

 

]]> Comments are presented and ideas are complement from ]]> a recent review article published in the journal Saber [27(1):17-24, ]]> 2015], about the studies that have been made in Venezuela ]]> between 2003 and the present, of two amoebozoid protozoa species ]]> (Amoebozoa) of the Entamoeba spp. complex (Archamoebae: Entamoebidae), including E. ]]> histolytica, the main causative agent of amoebiasis, and E. dispar..

]]>

 

Key words: Entamoeba spp. complex, amoebiasis.

 

Sr. Editor

 

Hemos leído con especial atención el artículo de revisión de la Prof. Bracho Mora (2015) acerca de los estudios hechos en los últimos 12 años en Venezuela sobre los protozoarios ameboideos Entamoeba histolytica y E. dispar. Esto nos ha motivado a realizar comentarios y complementar los conocimientos y las ideas del tópico, especialmente sobre todos los taxones que actualmente integran el complejo Entamoeba spp.

 

]]> Los microorganismos eucariotas unicelulares denominados  comúnmente  como  amibas  o  amebas (del griego: “ἀμοιβή”, cambio), comprende un ]]> amplio grupo polifilético de protozoarios ameboideos que producen pseudópodos y que cambian su forma cuando se movilizan; en la actualidad, éstos se encuentran compuestos por tres grandes grupos evolutivos, siendo el ]]>  filo  Amoebozoa  donde  se  ubican  varios  taxones que poseen importancia sanitaria, e integrado por ]]> más de 2.400 especies y se le considera el mayor filo de protistas (Cavalier-Smith et al. 2015). Típicamente, los amebozoos poseen pseudópodos no eruptivos, ]]> romos y anchos (lobopodios), y alternan en sus ciclos vitales un estadio de trofozoíto unicelular con una fase de quiste  ]]> encuentran agrupados en dos subfilos: Lobosa y Conosa (Cavalier-Smith et al. 2015). En este último subfilo mencionado se ubican los amebozoos ]]> del género Entamoeba spp. (Archamoebae: Entamoebidae), varios de los cuales pueden habitar como comensales o en vida parasitaria dentro del tracto gastrointestinal del ]]> humano y los animales, incluyendo vertebrados e invertebrados (Weedall y Hall 2011).

 

Hasta el presente, en los humanos se ha detectado una especie del género Entamoeba spp. en la cavidad bucal (tejido gingival; E. gingivalis), y siete especies habitando, en ocasiones de manera simpátrica, en el lumen del intestino grueso, incluyendo E. histolytica, E. dispar, E. moshkovskii, E. bangladeshi, E. polecki, E. coli y  E. hartmannii (Ngui  et al. 2012,  Royer et al. 2012, Regan et al. 2014). De estas especies, E. histolytica, E. dispar, E. moshkovskii y E. bangladeshi integran el denominado complejo Entamoeba spp., siendo  las  mismas  indistinguibles  morfológicamente (i.e., son especies crípticas, isomórficas o gemelas), por lo que la microscopía de luz posee limitaciones para su diagnóstico microbiológico específico (Ali 2015); es significativo señalar que la especie E. nuttalli es también  indistinguible morfológicamente de los integrantes del Complejo Entamoeba spp., sin embargo, es propia del primate catarrino no homínido Macaco rhesus (Macaca mulatta; Cercopithecidae) (Regan et al. 2014).

 

Para la correcta identificación de los integrantes del complejo, y por lo tanto dar un diagnóstico preciso, se han desarrollado e implementado técnicas bioquímicas (electroforesis de isoenzimas; matriz asistida por láser de desorción/ionización tiempo de vuelo: MALDI-TOF), inmunológicas (anticuerpos, antígenos) y/o moleculares (reacción en cadena de la polimerasa: PCR; PCR a tiempo real; amplificación de la recombinasa polimerasa: ARP) (Parija et al. 2014, Calderaro et al. 2015, Nair et al. 2015); aunque actualmente a las técnicas moleculares ya se les considera las “pruebas estándar de oro” (gold standard) (Parija et al. 2014), no obstante, como bien lo señala Bracho Mora (2015), con mayor énfasis por sus elevados costos, estas nuevas herramientas difícilmente puedan implementarse en la rutina de la práctica médica asistencial del territorio nacional, y de muchos países en desarrollo, especialmente si se toma en cuenta que la mayor parte de la población endémicamente expuesta posee recursos limitados.

 

]]> Como bien lo señala la Prof. Bracho Mora (2015) en su revisión, de las cuatro especies del Complejo hasta el presente en Venezuela solo se ha reportado la presencia de  E.  histolytica  y  E.  dispar;  sin  embargo,  indica que se están realizando investigaciones con técnicas moleculares para determinar “la verdadera prevalencia de E. moshkovskii en nuestro país”.

 

Por otra parte, E. hartmannii se puede distinguir de las especies del complejo Entamoeba spp. principalmente mediante morfometría, por presentar sus quistes generalmente menores dimensiones; mientras que E. polecki y E. coli poseen caracteres morfológicos bien diferenciables; sin embargo, debe tenerse presente que si las coloraciones o montajes de los especímenes se encuentran defectuosos, algunas de estas características morfo-típicas pudieran solaparse y confundir al microscopista (Santos et al. 2012). Estos tres taxones se han reportado para el país, y por lo general se consideran comensales o no patógenos; sin embargo, existen reportes, incluyendo Venezuela, de casos sintomáticos debidos a E. polecki (Chacín-Bonilla et al. 1976, Salaki et al. 1979, Chacín-Bonilla 1980); esta especie también se ha aislado de porcinos (Jacob et al. 2015).

 

Desde un punto de vista patológico, comúnmente se ha ]]> a E. histolytica como la única especie del complejo capaz de causar invasión intestinal (colitis disentérica amibiana) y extra intestinal (abscesos hepáticos, pulmonares, cerebrales), tanto en ]]> humanos como animales, pudiendo provocar inclusive el deceso del individuo, por lo que se le considera uno de los protozoos   entéricos   que   ocasionan   mayores   tasas de  mortalidad  (Stanley  2003, ]]>  Oliveira  et  al.  2015); sin embargo, estudios recientes tanto clínicos como experimentales (in vivo e in vitro), ]]> en los demás taxones que integran al Complejo Entamoeba spp. existen evidencias que podrían estar cambiando este paradigma, o al menos a replanteárselo o ]]> En este sentido, se ha obtenido secuencias de ADN de E. dispar en pacientes con absceso hepático amibiano, además que se han descrito casos ]]> de enteritis debido a este taxón de amebozoo (Graffeo et al. 2014, Oliveira et al. 2015); por otra parte, experimentalmente se ha ]]> detectado que algunas cepas de E. dispar, obtenidas de casos sintomáticos o no, pueden ocasionar efectos patológicos, tanto intra como extraintestinal, similares a ]]>  los  ocasionados por E. histolytica, especialmente cuando son inoculadas en animales de laboratorio (hámsteres, ratas, ratones) y en presencia de algunas bacterias (Oliveira et al. ]]> 2015). Tomando en cuenta esto último discutido, es significativo acotar que E. dispar también posee la capacidad de eritrofagocitosis, aunque significativamente ]]> menor que su par E. histolytica (Talamás-Lara et al. 2014), lo cual se ha observado en heces líquidas con moco y sangre de pacientes de ]]> Venezuela infectados únicamente con E. dispar (Rodulfo et al. 2012); por lo tanto, la precisión del criterio de utilizar la presencia de ]]> eritrofagocitosis de los trofozoitos como “típico de E. histolytica” pareciera que debe revisarse, especialmente cuando no se cuenta con herramientas diagnósticas bioquímicas, inmunológicas y/o moleculares.

]]>  

En relación con E. moshkovskii, se han aportado fuertes evidencias tanto clínicas como experimentales, especialmente en países asiáticos (Malasia, Bangladesh), de que esta especie de amebozoo también ocasiona eventos entéricos patológicos al humano y animales (diarrea, colitis) (Ngui et al. 2012, Shimokawa et al. 2012); de interés resulta los hallazgos de esta especie, que usualmente se ha detectado en vida libre, en ganado bovino, elefantes y tortugas acuáticas, por lo que pudiera considerarse como un parásito facultativo (Jacob et al. 2015). Por otra parte, E. bangladeshi, una especie del complejo reconocida recientemente en Bangladesh mediante la implementación de métodos moleculares (genes ribosomales de la subunidad pequeña 18 S) en heces diarreicas de niños, también posee el potencial patogénico para los humanos (Royer et al. 2012).

 

Estas evidencias plantean la necesidad de realizar estudios más profundos y detallados, especialmente en el territorio nacional, para verificar la posibilidad de que otras cepas y/o especies del Complejo Entamoeba spp. pudieran ser patógenas.

 

En artículos previos (Cazorla-Perfetti 2014a,b), hemos comenzado a llamar la atención acerca de la necesidad de homogenizar la nomenclatura taxonómica y sistemática de  los  taxones  enteroparasitarios  en  las  revistas  del país, especialmente en las de interés Biomédico. Particularmente en ambas publicaciones se analizó los casos de Blastocystis spp. y Cystoisospora spp. (Cazorla- Perfetti 2014a,b). Por ello, es sorprendente que todavía en algunas revistas de nuestro medio e inclusive de otros países, en estudios donde se utilizó la microscopía de luz convencional como único método de diagnóstico, se haya hecho la descripción de quistes y trofozoítos como pertenecientes a “Entamoeba histolytica”.

 

A  la  luz  de  todo  lo  discutido,  ante  la  dificultad de distinguir las especies integrantes del Complejo Entamoeba  spp.  mediante  morfo-taxonomía,  cuando se    detecten    quistes    y/o    trofozoitos    compatibles con “Entamoeba histolytica” mediante técnicas microscópicas convencionales, lo más recomendable, conveniente y científico es realizar el reporte como “Complejo Entamoeba spp.” o “Entamoeba histolytica/ dispar/moshkovskii/bangladeshi”.

 

]]> REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

 

1. Ali  I. 2015. Intestinal amebae. Clin Lab Med  35 ( 2): 393- 422.         [ Links ]

 

2. Bracho Mora  A. 2015. Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar en Venezuela, desde el año 2003 a la actualidad. Una revisión. Saber 27 ( 1): 17-24.         [ Links ]

 

3. Calderaro A, Piergianni M, Buttrini M, Montecchini S, Piccolo G, Gorrini C, Rossi S, Chezzi C, Arcangeletti M, Medici M, De Conto F. 2015. MALDI-TOF mass spectrometry for the detection and differentiation of Entamoeba histolytica and Entamoeba dispar. PLoS One 10 ( 4): e0122448.         [ Links ]

 

4. Cavalier-Smith T, Fiore-Donno A, Chao E, Kudryavtsev A, Berney C, Snell E, Lewis R. 2015. Multigene phylogeny resolves deep branching of Amoebozoa. Mol. Phylog. Evol. 83: 293-304.         [ Links ]

 

]]>

5. Cazorla-Perfetti D. 2014a.. ¿Blastocystis sp o B hominis? ¿protozoario o chromista?.. Saber 26 ( 3): 343-346.         [ Links ]

 

6. Cazorla-Perfetti D. 2014b.¿Cystoisospora belli o Isospora belli? ¿Cystoisosporiosis o isosporiosis?. Rev Vezlana Sal Púb 2 ( 2): 57-58.         [ Links ]

 

 

7. Chacín-Bonilla L. 1980. Successful treatment of human Entamoeba polecki infection with metronidazole. Am J Trop Med Hyg 29 ( 4): 521-523.         [ Links ]

 

8. Chacín-Bonilla L, Guanipa N, Arapé R. 1976. Prevalencia de Entamoeba histolytica, Entamoeba hartmanni y otros parásitos intestinales, en niños hospitalizados. Inv Clin 17 ( 1): 25-41.         [ Links ]

 

9. Graffeo R, Archibusacci C, Soldini S, Romano L, Masucci L. 2014. Entamoeba dispar: a rare case of enteritis in a patient living in a non-endemic area. Case Rep Gastrointest Med 2014: 498058.         [ Links ]

 

9. Jacob  A, Busby  E, Levy  A, Komm  N, Clark  C. 2015. Expanding the Entamoeba universe: new hosts yield novel ribosomal lineages. J. Eukaryot. Microbiol. doi: 10.1111/jeu.12249. [Epub ahead of print].

 

10. Parija S, Mandal J, Ponnambath D. 2014. Laboratory methods of identification of Entamoeba histolytica and its differentiation from look-alike Entamoeba spp. Trop Parasitol 4 ( 2): 90-95.         [ Links ]

 

11. Nair  G, Rebolledo  M, White  AJr, Crannell  Z, Richards-Kortum  R, Pinilla  A, Ramírez  J, López  M, Castellanos-Gonzalez  A. 2015. Detection of Entamoeba histolytica by Recombinase Polymerase Amplification. Am. J. Trop. Med. Hyg. pii: 15-0276. [Epub ahead of print]. doi:10.4269/ajtmh.15-0276.

 

12. Ngui R, Angal L, Fakhrurrazi S, Lian Y, Ling L, Ibrahim J, MahmudR. 2012. Differentiating Entamoeba histolytica, Entamoeba dispar and Entamoeba moshkovskii using nested polymerase chain reaction (PCR) in rural communities in Malaysia. Parasit Vectors 5: 187.         [ Links ]

 

1 3. Oliveira F, Neumann E, Gomes M, Caliari M. 2015. Entamoeba dispar: could it be pathogenic. Trop Parasitol 5 ( 1): 9-14.        [ Links ]

 

14. Regan C, Yon L, Hossain M, Elsheikha H. 2014. Prevalence of Entamoeba species in captive primates in zoological gardens in the UK. PeerJ 2: e492.         [ Links ]

 

15. Rodulfo H, Ahmar B, Rodríguez M, Mora L, De Donato M. 2012. Nested PCR reveals elevated over-diagnosis of E histolytica in Barcelona, Venezuela.. Invest Clin 53 ( 4): 365-377.         [ Links ]

 

16. Royer T, Gilchrist C, Kabir M, Arju T, Ralston K, Haque R, ClarkG, Petri W. 2012. Entamoeba bangladeshi nov sp., Bangladesh.. Emerg Infect Dis 18 ( 9): 1543-1545.         [ Links ]

 

17. Salaki J, Shirey J, Strickland G. 1979. Successful treatment of symptomatic Entamoeba polecki infection. Am J Trop Med Hyg 28 ( 2): 190-193.         [ Links ]

 

18. Santos H, Bandyopadhyay K, Bandea R, Peralta R, Peralta J, Da Silva A. 2012. LUMINEX®: a new technology for the simultaneous identification of five Entamoeba spp. commonly found in human stools. Parasit Vectors 6: 69.         [ Links ]

 

19. Shimokawa C, Kabir M, Taniuchi M, Mondal D, Kobayashi S, Ali I, Sobuz S, Senba M, Houpt E, Haque R, Petri WJr, Hamano S. 2012. Entamoeba moshkovskii is associated with diarrhea in infants and causes diarrhea and colitis in mice. J Infect Dis 206 ( 5): 744-751.         [ Links ]

 

20. Stanley S Jr. 2003. Amoebiasis. Lancet 361 ( 9362): 1025- 1034.         [ Links ]

 

21. Talamás-Lara D, Chávez-Munguía B, González- RoblesA, Talamás-Rohana P, Salazar- Villatoro L, Durán-Díaz A, Martínez-Palomo A. 2014. Erythrophagocytosis in Entamoeba histolytica and Entamoeba dispar: a comparative study. Biomed Res Int 2014 ( i): 626259.         [ Links ]

22. Weedall G, Hall N. 2011. Evolutionary genomics of Entamoeba. Res Microbiol 162 ( 6): 637-645.         [ Links ] ]]> 1 2015 35 2 2 393- 422 2 2015 27 1 1 17-24 3 2015 10 4 4 e0122448 4 2015 83 293-304 5 2014 a. 26 3 3 343-346 6 2014 b 2 2 2 57-58 7 1980 29 4 4 521-523 8 1976 17 1 1 25-41 9 2014 2014 498058 9 2015 10 2014 4 2 2 90-95 11 2015 12 2012 5 187 3 2015 5 1 1 9-14 14 2014 2 e492 15 2012 53 4 4 365-377 16 2012 18 9 9 1543-1545 17 1979 28 2 2 190-193 18 2012 6 69 19 2012 206 5 5 744-751 20 2003 361 9362 9362 1025- 1034 21 2014 2014 i i 626259 22 2011 162 6 6 637-645