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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de Chlamydia trachomatis en muestras de hisopado endocervical por inmunofluorescencia directa y reacción en cadena de la polimerasa]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Chlamydia trachomatis is a pathogen of high prevalence in urogenital infections; according to data of the WHO, annually 89 millions of new cases are detected at world wide level. With the purpose of comparing the method sensibility of direct immunofluorescence (DIF) and amplification techniques by PCR to the Chlamydia trachomatis detection in clinical samples, and to investigate the Chlamydia trachomatis prevalence in symptomatic and asymptomatic women; 54 endocervical swabbing specimens of patient that solicited gynecological attention in a Ambulatory of Maracaibo were analyzed. To investigate Chlamydia trachomatis by DIF Chlamydia Direct IF kit (bioMerieux®) was used. The molecular detection was carried out by polymerase chain reaction (PCR-CTP), using the CTP1 and CTP2 oligonucleotide directed to sequences of endogenous plasmid of Chlamydia trachomatis that generated a 201 pb product. 5/54 samples were positive with PCR-CTP; while by DIF 3 cases was detected. 49 samples were negative for both tests The prevalence of Chlamydia trachomatis was of 5,55% for DIF and 9,26% for PCR-CTP Compared with PCR-CTP test, the sensibility of the DIF analysis was 60,00%. The molecular methods offer a diagnostic strategy that can contribute to the design of epidemiological control programs, directed to diminish the prevalence of this microorganism.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p class="MsoNormal" align="center"><span style="mso-bidi-font-style: italic"><font face="Verdana" size="3"><b>Detección de <i>Chlamydia trachomatis</i> en muestras de hisopado endocervical por inmunofluorescencia directa y reacción en cadena de la polimerasa</b></font></span></p>     <p class="MsoNormal" align="center"><font face="Verdana" size="2">Nailet Arráiz Rodríguez<sup>a,*</sup>, Messaria Ginestre Perez<sup>a</sup>, Maribel <span style="mso-bidi-font-weight: bold">Castellano González<sup>a</sup>,</span> <span lang="PT-BR" style="mso-ansi-language:PT-BR;mso-bidi-font-weight:bold">Armindo Perozo Mena<sup>b</sup>, Vladimiro Urdaneta<sup>a</sup></span></font></p>     <p class="MsoNormal" align="center"><font size="2" face="Verdana"><sup>a</sup>Escuela de Bioanálisis, Facultad de Medicina, Universidad del Zulia</font></p>     <p class="MsoNormal" align="center"><font size="2" face="Verdana"><sup>b</sup>Centro de Referencia Bacteriológica SAHUM</font></p>     <p class="MsoNormal" align="center"><font size="2" face="Verdana">Maracaibo – Venezuela</font></p>     <p class="MsoNormal" align="center"><font size="2"><span lang="PT-BR" style="mso-ansi-language: PT-BR"><font face="Verdana">* Correspondencia:</font></span><font face="Verdana"> <span lang="PT-BR" style="mso-fareast-font-family: Times New Roman; mso-ansi-language: PT-BR; mso-fareast-language: ES; mso-bidi-language: AR-SA; mso-bidi-font-weight: bold"><i style="mso-bidi-font-style:normal">E-mail</i>: <a href="mailto:narraiz@cantv.net"><span style="color: black; text-decoration: none; text-underline: none">narraiz@cantv.net</span></a></span></font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana"><b>Resumen</b><b style="mso-bidi-font-weight:normal">: </b><i>Chlamydia trachomatis</i> es un patógeno de alta prevalencia en infecciones urogenitales; según datos de la OMS, anualmente se detectan 89 millones de nuevos casos a nivel mundial. Con la finalidad de comparar la sensibilidad del método de inmunofluorescencia directa <span style="mso-bidi-font-weight:bold">(IFD) con técnicas de amplificación por PCR (Reacción en cadena de la polimerasa)</span>, e investigar la prevalencia de <i>Chlamydia trachomatis</i> en mujeres sintomáticas y asintomáticas, s<span style="mso-bidi-font-weight:bold">e analizaron 54 muestras de hisopado endocervical de pacientes quienes solicitaron atención ginecológica en un Ambulatorio de la ciudad de Maracaibo. Para investigar </span><i>Chlamydia trachomatis</i> <span style="mso-bidi-font-weight: bold">por IFD se utilizó el kit <i style="mso-bidi-font-style:normal">Chlamydia </i>Direct IF (bioMerieux<sup>®</sup>).</span><b style="mso-bidi-font-weight:normal"><span style="mso-ansi-language: ES-VE"> </span></b><span lang="ES-VE" style="mso-ansi-language: ES-VE">La detección molecular se realizó mediante reacción en cadena de la polimerasa (PCR-CTP), utilizando los oligonucleótidos </span>CTP1 y CTP2 dirigidos a secuencias de un plásmido endógeno de <i>Chlamydia trachomatis</i> que genera un producto de 201 pb. 5/54 muestras resultaron positivas con PCR-CTP; mientras que mediante IFD se detectaron 3 casos. 49 muestras fueron negativas por ambos ensayos. La prevalencia de <i>Chlamydia trachomatis</i> fue de 5,55% para IFD y 9,26% para PCR-CTP. Comparada con el ensayo PCR-CTP, la sensibilidad del análisis por IFD fue de 60,00%. Los métodos moleculares ofrecen una estrategia diag-nóstica que puede contribuir al diseño de programas de control epidemiológico, dirigidos a disminuir la prevalencia de este microorganismo.</font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana"><b>Palabras clave:</b> <i style="mso-bidi-font-style:normal">Chlamydia trachomatis</i>, IFD, PCR-CTP, Detección molecular, infección urogenital</font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="center"><font size="2"><b><span lang="EN-US" style="mso-ansi-language: EN-US; mso-bidi-font-style: italic"><font face="Verdana">Detection of <i>Chlamydia trachomatis</i> in endocervical swabs samples by</font></span><font face="Verdana"> <span lang="EN-US" style="mso-ansi-language: EN-US; mso-bidi-font-style: italic">direct immunofluorescence and polymerase chain reaction</span></font></b></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Abstract</b><span lang="EN-US" style="mso-ansi-language: EN-US"><b style="mso-bidi-font-weight:normal">: </b></span><i style="mso-bidi-font-style:normal"><span lang="EN-US" style="mso-ansi-language: EN-US">Chlamydia trachomatis</span></i><span lang="EN-US" style="mso-ansi-language: EN-US"> is a pathogen of high prevalence in urogenital infections; according to data of the WHO, annually 89 millions of new cases are detected at world wide level. With the purpose of comparing the method sensibility of direct immunofluorescence (DIF) and amplification techniques by PCR to the <i style="mso-bidi-font-style:normal">Chlamydia trachomatis </i>detection in clinical samples, and to investigate the <i style="mso-bidi-font-style:normal">Chlamydia trachomatis</i> prevalence in symptomatic and asymptomatic women; 54 endocervical swabbing specimens of patient that solicited gynecological attention in a Ambulatory of Maracaibo were analyzed. To investigate <i style="mso-bidi-font-style:normal">Chlamydia trachomatis</i> by DIF Chlamydia Direct IF kit (bioMerieux</span><span style="mso-bidi-font-weight: bold"><sup>®</sup></span><span lang="EN-US" style="mso-ansi-language: EN-US">) was used. The molecular detection was carried out by polymerase chain reaction (PCR-CTP), using the CTP1 and CTP2 oligonucleotide directed to sequences of endogenous plasmid of <i style="mso-bidi-font-style: normal">Chlamydia trachomatis</i> that generated a 201 pb product. 5/54 samples were positive with PCR-CTP; while by DIF 3 cases was detected. 49 samples were negative for both tests The prevalence of <i style="mso-bidi-font-style:normal">Chlamydia trachomatis</i> was of 5,55% for DIF and 9,26% for PCR-CTP Compared with PCR-CTP test, the sensibility of the DIF analysis was 60,00%. The molecular methods offer a diagnostic strategy that can contribute to the design of epidemiological control programs, directed to diminish the prevalence of this microorganism.</span></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" align="justify"><span lang="EN-GB" style="mso-ansi-language: EN-GB"><font face="Verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i style="mso-bidi-font-style: normal">Chlamydia trachomatis</i>, DIF, PCR-CTP, molecular detection, urogenital infection</font></span></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><span style="mso-fareast-font-family: Times New Roman; mso-ansi-language: ES; mso-fareast-language: ES; mso-bidi-language: AR-SA"><font face="Verdana" size="2">Recibido 18 de enero de 2006; aceptado 11 de mayo de 2006</font></span></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><b style="mso-bidi-font-weight: normal"><span lang="PT-BR" style="mso-ansi-language: PT-BR"><font face="Verdana" size="2">Introducción</font></span></b></p>     <p class="MsoBodyText2" align="justify"><font size="2"><i><font face="Verdana">Chlamydia trachomatis</font></i><font face="Verdana"> (<i>C. trachomatis)</i> es uno de los patógenos de mas alta prevalencia en infecciones del tracto urogenital. Según datos de la Organización Mundial de la Salud, anualmente se detectan 89 millones de nuevos casos de infecciones por <i>C. trachomatis</i> a nivel mundial [1,2,3,4]. Las infecciones por <i>C. trachomatis</i> se asocian con cervicitis y uretritis, pudiendo alcanzar las trompas de Falopio con consecuencias graves de infertilidad y embarazo ectópico [5-7]. Sin embargo, es preocupante la observación de una alta tasa de infecciones asintomáticas en mujeres (aproximadamente 70-90%) [3,5,8,9]; las cuales, por no presentar síntomas, no acuden a consultas médicas y por lo tanto, no son investigadas ni sometidas a tratamiento antimicrobiano. En consecuencia, estas mujeres asintomáticas son candidatas potenciales a padecer las complicaciones anteriormente mencionadas y paralelamente, se complica la situación epidemiológica debido a que los pacientes asintomáticos son portadores silentes del microorganismo.</font></font></p>     <p class="MsoBodyText2" align="justify"><font face="Verdana" size="2">El diagnóstico convencional de infecciones por <i>C. trachomatis</i><span style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </span>resulta difícil debido a que este organismo es un patógeno intracelular obligatorio, por lo cual no crece en medios de cultivo bacteriológico de uso común. <i>Chlamydia</i> requiere cultivos de líneas celulares, siendo éstos de alto costo y de difícil mantenimiento en un laboratorio de rutina, por lo cual muchos laboratorios han abandonado la práctica de investigación de <i>C. trachomatis</i> en muestras clínicas. Debido a esta problemática, resulta predecible un sub-registro importante de infecciones urogenitales causadas por <i>Chlamydia </i>en nuestra población, por lo cual se hace imperativo la estandarización y aplicación de pruebas diagnósticas que reúnan criterios de sensibilidad, especificidad y reproducibilidad para ser aplicables en poblaciones de mujeres con riesgo de infección, a fin de conocer la prevalencia real de este patógeno en nuestra comunidad.</font></p>     <p class="MsoBodyText2" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recientemente se han desarrollado técnicas comerciales para la detección directa de <i>C. trachomatis</i> en muestras clínicas por inmunofluorescencia o inmunoensayo enzimático [10-12] y se han introducido nuevas estrategias de diagnóstico basadas en técnicas de amplificación de ácidos nucleicos, con altos porcentajes de especificidad y sensibilidad [8-10,13-16].</font></p>     <p class="MsoBodyText2" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana">El objetivo de este trabajo fue comparar la sensibilidad del método de inmunofluorescencia directa con <span style="mso-bidi-font-weight:bold">técnicas de amplificación por reacción en cadena de la polimerasa (PCR por sus siglas en inglés: polymerase chain reaction)</span> basada en secuencias del plásmido críptico de <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i>, e investigar la prevalencia de infecciones genitales por <i>C. trachomatis</i> en una población de mujeres sintomáticas y asintomáticas.</font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><b style="mso-bidi-font-weight:normal"><font face="Verdana" size="2">Materiales y Métodos</font></b></p>     <p class="MsoNormal" style="mso-layout-grid-align: none; text-autospace: none" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana">Se realizó un estudio de tipo transversal, descriptivo y analítico.</font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><i style="mso-bidi-font-style: normal"><font face="Verdana" size="2">Población y muestra</font></i></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se analizaron 54 muestras de hisopado endocervical proveniente de pacientes quienes asistieron a consulta de Ginecología en el Ambulatorio “María de la Candelaria” ubicado en la ciudad de Maracaibo. La población incluye 21 pacientes sintomáticas y 33 asintomáticas en edades comprendidas entre 18 y 45 años. La población sintomática se refiere al grupo de pacientes que acuden a consulta ginecológica con alguna manifestación clínica genitourinaria (descarga o flujo vaginal anormal, sangramiento post-coital, disuria, dolor abdominal, dismenorrea). La población asintomática fue definida como el grupo de pacientes que acuden a la consulta como rutinas de control ginecológico sin manifestaciones clínicas.</font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana">La muestra fue tomada por personal médico entrenado y consistió en un hisopado endocervical obtenido mediante rotación del hisopo en la zona de transición escamo-columnar del endocervix, previa eliminación de la secreción endocervical. Se tomaron dos hisopos, el primero se utilizó para realizar un extendido sobre una lámina portaobjeto para análisis por inmunofluorescencia directa (IFD) y el segundo se colocó en buffer fosfato salino como medio de transporte para ser analizado por PCR.</font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><i style="mso-bidi-font-style: normal"><font face="Verdana" size="2">Ensayo por inmunofluorescencia directa</font></i></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana">Para la investigación de <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i> por la técnica de IFD se utilizó el kit comercial <i style="mso-bidi-font-style:normal">Chlamydia </i>Direct IF (bioMerieux<span style="mso-bidi-font-weight: bold"><sup>®</sup></span>). Este método se basa en la asociación de dos anticuerpos monoclonales conjugados con fluoresceína dirigidos cada uno de ellos a estructuras antigénicas diferentes. El primer anticuerpo monoclonal reconoce un epítope situado sobre el antígeno de especie, proteína mayor de la membrana externa (MOMP); el segundo anticuerpo monoclonal está dirigido contra un antígeno de género y reconoce estructuras específicas de<span style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </span>lipopolisacáridos (LPS). Estos dos anticuerpos tienen una actividad complementaria y permiten identificar los 15 serotipos de <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis </i>en sus diferentes estadios de evolución: cuerpos elementales, cuerpos reticulados e inclusiones. </font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><i style="mso-bidi-font-style: normal"><font face="Verdana" size="2">Extracción de ADN</font></i></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana">La extracción de ADN de <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i> a partir de las muestras clínicas se llevó a cabo utilizando procedimientos de lisis enzimática reportados previamente (8-10), con algunas modificaciones. Se descartó el hisopo y el contenido de los tubos fue transferido a tubos de 1,5 ml. Esta suspensión se centrifugó a 14000 rpm por 10 minutos, se descartó el sobrenadante y el sedimento se resuspendió en 400 <span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman">m</span>l de buffer TE (10 mM Tris-HCl, pH 8, 1mM EDTA, pH 8). Se agregó 70 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de SDS 10% y 10 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de proteinasa K 10 mg/ml, se incubó a 65°C por 3 horas. Se realizaron dos extracciones con 500 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de cloroformo, se aplicó vortex y se centrifugó a 14000 rpm por 5 minutos. La fase acuosa se transfirió a otro tubo y el ADN se precipitó con 500 </font> <span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de isopropanol. El sedimento se resuspendió en 30 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de buffer TE. Se utilizó 3 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de la muestra para ensayos de amplificación.</font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><i style="mso-bidi-font-style: normal"><font face="Verdana" size="2">Ensayos de amplificación por PCR</font></i></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2"><span lang="ES-VE" style="mso-ansi-language: ES-VE"><font face="Verdana">Para la detección de <i style="mso-bidi-font-style: normal">C. trachomatis</i> se llevaron a cabo reacciones de amplificación utilizando los oligonucleótidos </font></span><font face="Verdana">CTP1 y CTP2 dirigidos a secuencias de un plásmido endógeno de <i style="mso-bidi-font-style:normal"><span lang="ES-VE" style="mso-ansi-language: ES-VE">C. trachomatis</span></i><span lang="ES-VE" style="mso-ansi-language: ES-VE"> </span>(8-11) que genera un producto de 201 pb. Se preparó un volumen final de mezcla de reacción, consistiendo en 5 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de buffer taq DNA polimerasa 10X (Promega), 1,5 mM MgCl<sub>2</sub>, 200</font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">M de cada desoxirribonucleótido (dATP, dCTP, dGTP y dTTP), 2 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de cada oligonucleótido 10 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">M (20 pmoles cada oligonucleótido). Se utilizó 0,5</font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de Taq DNA polimerasa 1U/</font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l (PROMEGA) y 3 </font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">m</font></span><font face="Verdana">l de muestra de ADN para cada reacción. El programa de amplificación consistió en 4 minutos a 94°C y 40 ciclos de amplificación de 1 minuto a 94°C, 1 minuto a 55°C, 1 minuto a 72°C y un paso final de amplificación a 72°C por 10 minutos. Las reacciones se llevaron a cabo en un termociclador MJ Research PTC-100<span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"></span></font><span style="mso-char-type: symbol; mso-symbol-font-family: Symbol; mso-ascii-font-family: Times New Roman; mso-hansi-font-family: Times New Roman"><font face="Symbol">Ô</font></span><font face="Verdana">. Una muestra fue considerada positiva cuando se obtuvo amplificación del fragmento de 201 pb en dos reacciones de PCR llevadas a cabo en dos momentos diferentes.</font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana">Los productos de PCR se analizaron en geles de agarosa al 2,5% y se utilizó buffer TBE para la corrida electroforética (Tris-Borato 89mM, EDTA 2mM pH 8). La corrida se llevó a cabo a 60v/cm por 3 horas. Los geles fueron teñidos con bromuro de etidio, visualizados en transiluminador ultravioleta y fotografiados con sistema de fotodocumentación DigiDoc UVP.</font></font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><b style="mso-bidi-font-weight: normal"><font face="Verdana" size="2">Resultados</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><span style="mso-fareast-font-family: Times New Roman; mso-ansi-language: ES; mso-fareast-language: ES; mso-bidi-language: AR-SA"><font face="Verdana" size="2">En la <a href="#fig1"> Figura 1</a> se muestra el resultado de uno de los análisis donde se puede visualizar un producto de PCR de 201 pares de bases en cuatro muestras. Esta banda generada en ensayos PCR-CTP utilizando oligonucleótidos CTP1 y CTP2 fue detectada en<span style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </span>5 de las 54 muestras ensayadas, revelando la presencia de <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i>, mientras que el ensayo de IFD detectó solo 3 casos positivos.</font></span>     <p align="center"><a name="fig1"><img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v26n1/art04img01.jpg" width="570" height="170"></a></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-indent:.55pt" align="center"><span lang="ES-VE" style="mso-ansi-language: ES-VE"><font face="Verdana" size="2">Figura 1. Análisis por PCR con oligonucleótidos CTP1 y CTP2. Se evaluaron 54 muestras endocervicales. Las muestras con el<span style="mso-tab-count:6"> </span>amplicón de 201 pb revelan la presencia de <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i>. Se identifican muestras positivas por IFD.</font></span></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Todas las muestras positivas por IFD también resultaron positivas por PCR-CTP,<b style="mso-bidi-font-weight:normal"> </b>49 muestras fueron negativas por ambos ensayos. La prevalencia estimada de infección por <i style="mso-bidi-font-style: normal">C. trachomatis</i> en la población evaluada fue de 5,55% para IFD y 9,26% para PCR-CTP (<a href="#Tabla1">Tabla 1</a>). Comparada con el ensayo PCR-CTP, la sensibilidad del análisis por IFD resultó en un 60%.</font></p>     <p class="MsoNormal" align="center"><span style="mso-fareast-font-family: Times New Roman; mso-ansi-language: ES; mso-fareast-language: ES; mso-bidi-language: AR-SA"><font face="Verdana" size="2"><a name="Tabla1">Tabla1</a>. Comparación de ensayos IFD y PCR (CTP) para la detección de <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis </i>en muestras endocervicales.</font></span></p>     <div align="center">       <center>   <table border="1" cellspacing="0" width="500" cellpadding="0">     <tr>       <td rowspan="3" width="74"><font face="Verdana" size="2">Muestras</font></td>       <td colspan="4" width="410">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">Tipo         de ensayo</font></td>     </tr>     <tr>       <td colspan="2" width="198">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">IFD</font></td>       <td colspan="2" width="206">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">PCR</font></td>     </tr>     <tr>       <td width="121">             ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="Verdana" size="2">Número de muestras</font></td>       <td width="71">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">Porcentaje</font></td>       <td width="129">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">Número de muestras</font></td>       <td width="71">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">Porcentaje</font></td>     </tr>     <tr>       <td width="74"><font face="Verdana" size="2">Positivas</font></td>       <td width="121">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">3</font></td>       <td width="71">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">5,55</font></td>       <td width="129">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">5</font></td>       <td width="71">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">9,26</font></td>     </tr>     <tr>       <td width="74"><font face="Verdana" size="2">Negativas</font></td>       <td width="121">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">51</font></td>       <td width="71">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">94,45</font></td>       <td width="129">             ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="Verdana" size="2">49</font></td>       <td width="71">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">90,74</font></td>     </tr>     <tr>       <td width="74"><font face="Verdana" size="2">Total         </font></td>       <td width="121">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">54</font></td>       <td width="71">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">100,00</font></td>       <td width="129">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">54</font></td>       <td width="71">             <p align="center"><font face="Verdana" size="2">100,00</font></td>     </tr>   </table>   </center> </div>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Todos los casos positivos de infección por <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i> fueron detectados en pacientes en edades comprendidas entre 20 y 25 años.</font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los tres casos detectados tanto por IFD como PCR-CTP correspondieron a pacientes que presentaban secreción mucopurulenta y sangramiento post-coital (sintomáticas), mientras que las 2 muestras adicionales que resultaron positivas sólo por el ensayo PCR-CTP provenían de pacientes asintomáticas.</font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><b style="mso-bidi-font-weight: normal"><font face="Verdana" size="2">Discusión</font></b></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">La mayoría de infecciones por <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i> son asintomáticas, pero pueden causar graves complicaciones a largo y mediano plazo, por lo cual se requieren técnicas sensibles y específicas de laboratorio para garantizar el diagnóstico y tratamiento oportuno de estas infecciones.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Hasta el momento la técnica estándar de laboratorio para el diagnóstico de infecciones por <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i><span style="mso-spacerun: yes">&nbsp; </span>ha sido el cultivo; sin embargo, esto ha sido cuestionado intensamente a través de diversos estudios que reportan baja sensibilidad en el orden de 50-80%, al ser comparado simultáneamente con varias técnicas de amplificación de ácidos nucleicos, cuya sensibilidad alcanza valores de 94% a 98% [12, 15-19]. Además de la baja sensibilidad del cultivo aún en laboratorios de gran experiencia (18), el aislamiento del microorganismo puede requerir 7 días y el almacenamiento, transporte y procesamiento de la muestra requieren de cuidados especiales, de manera que se han introducido estrategias alternativas de diagnóstico tales como ensayos basados en inmunofluorescencia y técnicas de análisis de ácidos nucleicos.</font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">La prevalencia de infección por <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i> en la población evaluada fue de 9,26% por PCR-CTP, comparada con un 5,55% estimado por IF. Estos resultados permiten inferir que utilizando el ensayo IFD, potencialmente se podría errar en el diagnóstico en un 3,71% de pacientes, negando la posibilidad de brindarles un tratamiento adecuado e incrementando el riesgo de desarrollar complicaciones y favoreciendo por otra parte, la propagación de la bacteria.</font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Estos resultados y otros reportes que resaltan una baja sensibilidad para los inmunoensayos [12,17,20], deben ser tomados en cuenta por aquellos laboratorios que utilizan exclusivamente ensayos inmunoenzimáticos para la detección de <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i>, particularmente algunos diseñados para ser aplicados en los consultorios médicos.</font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">La prevalencia de infecciones en la población analizada puede considerarse relativamente baja, si se compara con resultados publicados por otros autores que reportan tasas de prevalencia en el rango de 1%-10% para poblaciones de baja a mediana prevalencia (12,18-20), hasta 11%-20% para poblaciones de alta prevalencia [5,10,12,20].</font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados de este estudio son consistentes con los datos reportados en la literatura [8,9,14-17], al encontrarse que la infección por <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i> fue mas frecuente en mujeres jóvenes y no estuvo asociada a la presencia de manifestaciones clínicas en la población evaluada, si se toma en cuenta que sólo 3 casos de los 5 detectados presentaban alguna manifestación clínica. Un hallazgo importante que se debe resaltar en este estudio es que las infecciones asintomáticas por <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i> fueron detectadas sólo con el ensayo de PCR-CTP, de manera que la aplicación de técnicas sensibles brinda la posibilidad de ofrecer un tratamiento adecuado y oportuno a estas pacientes.</font></p>     <p class="MsoNormal" align="justify"><font size="2"><font face="Verdana">Los métodos moleculares ofrecen una estrategia de diagnóstico sensible y podrían ser utilizados para investigación a gran escala de infecciones causadas por <i style="mso-bidi-font-style:normal">C. trachomatis</i> en la población, pudiendo brindar información epidemiológica para el diseño de programas de control y disminuir la prevalencia de este agente infeccioso. Uno de los argumentos utilizados para restringir el uso de técnicas moleculares es su alto costo, sin embargo, esta limitación puede ser superada si se obvia la adquisición de “kits” comerciales, los cuales además de costosos, no brindan resultados reproducibles [21]. Como alternativa, se pueden adquirir reactivos separadamente y estandarizar protocolos de extracción y de amplificación de ácidos nucleicos en los laboratorios locales, lo cual disminuye significativamente el costo por ensayo.</font></font></p>     <p align="justify"><b style="mso-bidi-font-weight:normal"><span style="mso-fareast-font-family: Times New Roman; mso-ansi-language: ES; mso-fareast-language: ES; mso-bidi-language: AR-SA"><font face="Verdana" size="2">Referencias</font></span></b>     <!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Krul KG. Closing in on <i>Chlamydia</i>. CAP Today 1995; 9:1-20.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991372&pid=S1315-2556200600010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Adler MW. Sexually transmitted diseases control in developing countries. Genitourin Med 1996; 72:83-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991373&pid=S1315-2556200600010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Martínez MA, Diagnóstico microbiológico de <i>Chlamydia</i> <i>trachomatis: </i>Estado actual de un problema. Rev Chil Infectol. 2001; 18(4):1-14.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991374&pid=S1315-2556200600010000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Frontela M, Amores I, Yepe S Kourí V, Fereira R, Mallea L. Detección de <i>Chlamydia trachomatis </i>en muestras de exudado endocervical por la reacción en cadena de la polimerasa. Rev Cubana Endocrinol 2002; 13(2):135-43.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991375&pid=S1315-2556200600010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Hay PE, Ghaem-Maghami S. <i>Chlamydia </i>and nongonococcal urethritis. Curr Opin Infect Dis 1997; 10:44-9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991376&pid=S1315-2556200600010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Cates W, Rolfs RT, Aral SO. Sexually transmitted diseases, pelvic inflamation diseases and infertility an epidemiologic update. Epidemiol Rev 1990; 19:199-220.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991377&pid=S1315-2556200600010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Henry-Suchet J, Catalan F, Loffredo V, Sanson MJ, Debache C, Pigeau F, et al. <i>Chlamydia trachomatis </i>associated with chronic inflammation in abdominal especimen from women selected for tuboplasty. Fertil Steril 1981; 36:599- 605.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991378&pid=S1315-2556200600010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Lan J, Melgers I, Meijer CJ, Walboomers JM, Roosendaal R, Burger C, et al. Prevalence and serovar distribution of asymptomatic cervical <i>Chlamydia trachomatis </i>infections as determined by the highly sensitive PCR. J Clin Microbiol 1995; 33:3194-7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991379&pid=S1315-2556200600010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Morré SA, Rozendal L, Van Vankelgoed IG, Boeke AJ, Van Voorst Vader P, C. Schirm, et al. Urogenital <i>Chlamydia trachomatis</i> serovars in men and women with a symptomatic or asyimptomatic infection: an association with clinical manifestations. J Clin Microbiol 2000; 38:2292-6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991380&pid=S1315-2556200600010000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Morré SA, Ossewaarde JM, Lan J, Van Doornum JM, Walboomers JM, Maclaren DM, et al. Serotyping and genotyping of genital <i>Chlamydia trachomatis </i>isolates reveals variants and serovars Ba, G y J as confirmed by <i>omp1 </i>nucleotide sequence analysis. J Clin Microbiol 1998; 36:345-51.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991381&pid=S1315-2556200600010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Quinn TC. Recent advances in the diagnosis of sexually transmitted diseases. Sex Trans Dis 1994; 21(Suppl 2):S19- S27.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991382&pid=S1315-2556200600010000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Black CM. Current Methods of Laboratory Diagnosis of <i>Chlamydia trachomatis </i>infections. Clin Microbiol Rev 1997; 10:160-84.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991383&pid=S1315-2556200600010000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Morré S.A, Moes R, Van Valkengoed I, Boeke JP, Van Eijk JT, Meijer CJ, et al. Genotyping of <i>Chlamydia trachomatis</i> in urine specimens will facilitate large epidemiological studies. J Clin Microbiol 1998; 36:3077-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991384&pid=S1315-2556200600010000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Yamazaki T, Hagiwara T, Kishimoto T, Sasaki N, Takahashi S, Ishihara O, et al. Distribution of <i>Chlamydia trachomatis</i> among female prostitutes and non prostitutes in Thailand, and non prostitutes in Japan during the mid-90s. Jpn J Infect Dis 2005; 58:211-3.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991385&pid=S1315-2556200600010000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Tan HH, Chan R. Use of polimerase chain reaction on pooled cervical swabs to detect <i>Chlamydia trachomatis </i>infections in female sex workers in Singapore. Singapore Med J 2005; 46:215-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991386&pid=S1315-2556200600010000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Marrazzo JM, Johnson R, Green TA, Stamm WE, Schachter J, Bolan G, et al. Impact of patient characteristics on performance of nucleic acid amplification test and DNA probe for detection of <i>Chlamydia trachomatis </i>in women with genital infections. J Clin Microbiol 2005; 43: 577-84.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991387&pid=S1315-2556200600010000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">17. George JA, Panchatcharam TS, Paramasivam R, Balasubramanian S, Chakrapani V, Murugan G. Evaluation of diagnosis efficacy of PCR methods for <i>Chlamydia trachomatis</i> infection in genital and urine specimen of symptomatic men and women India. Jpn J Infect Dis 2003; 56:88-92.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991388&pid=S1315-2556200600010000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Puolakkainen M, Hiltunen-Back E, Reunala T, Suhonen S, Lahteenmaki P, Lehtinen M, et al. Comparison of performance of two commercially available test, a PCR Assay and a Ligase Chain reaction test, in detection of urogenital <i>Chlamydia</i> <i>trachomatis </i>infection. J Clin Microbiol 1998; 36:1489-93.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1991389&pid=S1315-2556200600010000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Schepetiuk S, Tuckweng K, Martin L, Waddell R, Higgins G. Detection of <i>Chlamydia trachomatis </i>in urine samples by nucleic acid test: Comparison with culture and enzyme Immunoassay of genital swabs specimens. 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