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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aislamiento y susceptibilidad a fluconazol y voriconazol de especies de Candida provenientes de pacientes recluidos en la Unidad de Cuidados Intensivos, Hospital Universitario de Coro, estado Falcón, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The aim of this work was to determine the frequency of isolation of Candida spp. in patients hospitalized in an intensive care unit and evaluate their in vitro susceptibility to fluconazol and voriconazol. Sixty patients were evaluated through 194 samples, 98 hemocultures, 48 quantitative urocultures, 46 tracheal secretions, and 2 catheter tips inoculated in Candida chromogenic agar. The genus and species was confirmed by the macroscopic growth characteristics, clamydoconidia production, urea hydrolysis, and carbohydrate assimilation. The antifungal susceptibility was determined by the disk diffusion method M44-A of the Clinical and Laboratory Standard Institute. Thirty seven yeasts were isolated (73.0% from urocultures with significant counts, 24.3% from tracheal secretion, and 2.7% from catheter tips). The most frequent species was Candida tropicalis (43.2%), followed by C. glabrata (21.6%) and C. albicans (13.5%), showing a different distribution from that reported in the literature. Regarding sensitivity, 73% of isolates were fluconazol sensitive and 89.2% voriconazol sensitive. The frequency of Candida in the urine suggests that quantitative urocultures could be used as a routine study of patients hospitalized in an ICU so as to establish adequate therapeutic and prophylactic strategies.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Aislamiento y susceptibilidad a  fluconazol y voriconazol de especies de Candida provenientes de pacientes  recluidos en la Unidad de Cuidados Intensivos, Hospital Universitario de Coro,  estado Falcón, Venezuela</font></b></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Yotsabeth Saúl García*,  Rosaura Hernández Valles</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Laboratorio de Micología,  Centro de Investigaciones Biomédicas, Universidad Nacional Experimental  “Francisco de Miranda”, Coro, estado Falcón, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">* Correspondencia: E-mail: <a href="mailto:yotsabeth@gmail.com">yotsabeth@gmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Resumen</b>:</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El objetivo de este trabajo fue  determinar la frecuencia de aislamiento de Candida spp. en muestras clínicas de  pacientes ingresados en una unidad de cuidados intensivos y evaluar su perfil de  susceptibilidad in vitro a fluconazol y voriconazol. Se evaluaron 60 pacientes,  procesándose 194 muestras: 98 hemocultivos, 48 urocultivos cuantitativos, 46  secreciones traqueales y 2 puntas de catéter, mediante siembra en agar  cromogénico para Candida. El género y especie fue confirmado mediante las  características macroscópicas de crecimiento, producción de clamidoconidias,  hidrólisis de la urea y asimilación de carbohidratos. Para la evaluación de la  susceptibilidad antifúngica se utilizó el método de difusión en disco M44-A del  Clinical and Laboratory Standard Institute. Se aislaron 37 levaduras (73,0% de  urocultivo en recuento significativo, 24,3% de secreción traqueal y 2,7% de  punta de catéter). C. tropicalis fue la especie más frecuente (43,2%) seguida de  C. glabrata (21,6%) y C. albicans (13,5%), evidenciándose una distribución  diferente a la reportada en la literatura. El 73% de los aislados fue sensible a  fluconazol y el 89,2% al voriconazol. La frecuencia observada de candiduria,  sugiere que el urocultivo cuantitativo pudiera emplearse como estudio rutinario  en pacientes recluidos en UCI, a fin de establecer estrategias terapéuticas y  profilácticas adecuadas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave</b>: especies  de Candida, UCI, susceptibilidad, fluconazol, voriconazol.</font></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Isolation and fluconazol and  voriconazol sensitivity of Candida species from patients hospitalized at the  Intensive Care Unit, Coro University Hospital, Falcon State, Venezuela</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Abstract</b>:</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">The aim of this work was to  determine the frequency of isolation of Candida spp. in patients hospitalized in  an intensive care unit and evaluate their in vitro susceptibility to fluconazol  and voriconazol. Sixty patients were evaluated through 194 samples, 98  hemocultures, 48 quantitative urocultures, 46 tracheal secretions, and 2  catheter tips inoculated in Candida chromogenic agar. The genus and species was  confirmed by the macroscopic growth characteristics, clamydoconidia production,  urea hydrolysis, and carbohydrate assimilation. The antifungal susceptibility  was determined by the disk diffusion method M44-A of the Clinical and Laboratory  Standard Institute. Thirty seven yeasts were isolated (73.0% from urocultures  with significant counts, 24.3% from tracheal secretion, and 2.7% from catheter  tips). The most frequent species was Candida tropicalis (43.2%), followed by C.  glabrata (21.6%) and C. albicans (13.5%), showing a different distribution from  that reported in the literature. Regarding sensitivity, 73% of isolates were  fluconazol sensitive and 89.2% voriconazol sensitive. The frequency of Candida  in the urine suggests that quantitative urocultures could be used as a routine  study of patients hospitalized in an ICU so as to establish adequate therapeutic  and prophylactic strategies.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Keywords</b>: Candida spp.,  ICU, susceptibility, fluconazol, voriconazol.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Recibido 29 de enero de 2013;  aceptado 12 de junio de 2013 </font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Introducción</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La frecuencia de infecciones  causadas por levaduras del género Candida ha aumentado en los últimos años.  Afecta principalmente a individuos inmunocomprometidos y pacientes internados en  unidades de cuidados intensivos (UCI). Estos últimos, pueden ser susceptibles  debido a alteraciones intrínsecas del sistema inmunitario secundarias a  desnutrición, translocación bacteriana, neutropenia y traumas mayores, así como  también por factores extrínsecos relacionados con procedimientos invasores  (catéter central, ventilación mecánica, cateterismo vesical), hospitalización  prolongada y uso de nutrición parenteral, esteroides y antibióticos de amplio  espectro [1,2].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Estudios nacionales e  internacionales reflejan un incremento notable en el aislamiento de especies de  Candida diferentes a C. albicans en muestras clínicas. Sin embargo, la  distribución de las especies puede variar según el área geográfica, centro  hospitalario, tipo de pacientes, edad y la muestra clínica analizada [3-6].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Paralelamente al incremento de  las infecciones por Candida spp. se han introducido nuevos agentes antifúngicos  de mayor potencia y con un espectro más amplio, pero la elevada proporción de  fracasos terapéuticos, la aparición frecuente de efectos adversos y la  emergencia de especies fúngicas intrínsecas o secundariamente resistentes, son  problemas crecientes que aún no han logrado resolverse [7,8].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">A pesar de la relevancia de las  infecciones invasoras por Candida spp. en pacientes recluidos en UCI, es escasa  la información sobre el perfil de susceptibilidad y especies aisladas en nuestro  medio. El objetivo de este estudio fue determinar la frecuencia de estas  especies, en muestras clínicas de pacientes ingresados en una unidad de cuidados  intensivos y evaluar el perfil de susceptibilidad in vitro a fluconazol y  voriconazol.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Materiales y métodos</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se realizó una investigación de  tipo descriptiva y prospectiva, durante 6 meses (Abril–octubre de 2012), para  aislar especies de Candida a partir de muestras de sangre, orina (urocultivo  cuantitativo), secreción traqueal y puntas de catéter, de pacientes ingresados  en la UCI del Hospital Universitario de Coro “Dr. Alfredo Van Grieken” (HUCAVG),  estado Falcón, Venezuela, y evaluar el perfil de susceptibilidad a fluconazol y  voriconazol.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Esta investigación fue aprobada  por el Comité de Bioética del Área Ciencias de la Salud de la Universidad  Nacional Experimental “Francisco de Miranda” (Fecha 07/11/2011), manteniéndose  lo estipulado en la Declaración de Helsinki de 1975, revisada en 1983.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Aislamiento e identificación:  Los hemocultivos se recolectaron asépticamente tomando 10 mL de sangre venosa  periférica, arterial o de catéter venoso central (según las condiciones clínicas  del paciente), y fueron inoculados en frascos comerciales con 40 mL de caldo  soya (Bact/Alert, Biomerieux ®, dilución 1/5). Las muestras fueron recolectadas  al ingreso del paciente, a las 48 horas y luego una vez por semana. Posterior a  la inoculación de la sangre en caldo soya, se extrajeron asépticamente 5 mL que  fueron colocados en tubos de ensayo estériles y centrifugados a 3.000 rpm  durante 10 minutos; una parte del sedimento se sembró en placas de Petri con  agar cromogénico Candida (Oxoid brillance™ Candida agar) suplementado con  cloranfenicol, incubándose a 37 °C por 48 horas en aerobiosis; el resto se  utilizó para realizar exámenes microscópicos directos con coloración de Gram.  Los hemocultivos fueron incubados a 37 ºC en aerobiosis durante 10 días y fueron  evaluados diariamente para detectar signos macroscópicos de crecimiento  (enturbiamiento del medio, hemólisis, producción de gas o formación de colonias  en el fondo del frasco); en caso de positividad y al finalizar el tiempo de  incubación, se realizaron subcultivos en agar cromogénico, incubado bajo las  mismas condiciones descritas [9].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las muestras de orina se  obtuvieron semanalmente, en sonda vesical o por punción de la misma. Se realizó  siembra con asa calibrada en agar cromogénico suplementado con cloranfenicol e  incubación en las condiciones descritas anteriormente. Adicionalmente, se  realizó examen microscópico al fresco del sedimento urinario. La presencia  microscópica de leucocitos, piocitos, levaduras y seudohifas en el sedimento  urinario y el recuento de colonias superior a 10.000 UFC/mL se consideraron  criterios para candiduria. Las infecciones mixtas fueron tomadas en cuenta  debido a que estos pacientes permanecían con catéter vesical durante su  hospitalización en la UCI [10,11].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las muestras de secreción  traqueal se obtuvieron semanalmente, por aspiración a través del tubo  endotraqueal o del traqueotomo y se colectaron en tubos con tapa de rosca que  contenían 1 mL de solución salina estéril. Se realizó examen microscópico  directo al fresco y siembra en agar cromogénico suplementado con cloranfenicol e  incubado a 37 °C durante 48 horas en aerobiosis [12].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las puntas de catéter (segmento  intravascular, 3-4 cm del extremo distal) se obtuvieron asépticamente al momento  de su cambio. Fueron cultivadas dentro de las dos horas siguientes de haber sido  removidas, para prevenir la desecación. En la técnica de siembra e  interpretación de los resultados se siguió el método semicuantitativo de Maki  [13].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los aislamientos fueron  identificados mediante las características macroscópicas de crecimiento en agar  cromogénico y por métodos convencionales: hidrólisis de la urea, producción de  clamidoconidias y asimilación de carbohidratos [14].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Estudio de susceptibilidad a  fluconazol y voriconazol: Se realizó por el método de difusión en disco,  descrito por el Clinical and Laboratory Standard Institute (CLSI) en su  documento M44-A [15]. Se utilizó agar Müeller-Hinton (BBL, Cockeysville, EE.UU)  suplementado con glucosa al 2% y 0,5 &#956;g/mL de azul de metileno. La superficie  del agar se inoculó con hisopo estéril humedecido en una suspensión de  levaduras, ajustada a la turbidez del estándar 0,5 McFarland. Se utilizaron  discos de fluconazol (25&#956;g) y voriconazol (1&#956;g) (Bioanalyse®), los cuales fueron  colocados sobre la superficie de las placas inoculadas y estas se incubaron en  aerobiosis, a 37 °C; los resultados fueron evaluados a las 18-24 horas y la  lectura se realizó visualmente, midiendo el diámetro (mm) del área donde se  produjo una reducción del 80% del crecimiento fúngico.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los aislados se clasificaron  como sensible (S), intermedio (I), sensible dosis dependiente (SDD) o  resistentes (R). Los puntos de corte de referencia, expresados en milímetros (mm)  fueron: fluconazol S &#8805;17, SDD entre 14-16, R &#8804;13 para C. albicans, C.  parapsilosis, C. tropicalis y SDD &#8805;15 y R &#8804;14 para C. glabrata [16]. En el caso  del voriconazol: S &#8805;17, I entre 15-16, R &#8804;14 para C. albicans, C. parapsilosis,  C. tropicalis y S &#8805;15, I entre 13-14, R &#8804;12 para C. krusei [17].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para la evaluación de la  susceptibilidad a fluconazol y voriconazol de otras especies de Candida, así  como levaduras de otros géneros, se emplearon los puntos de corte descritos por  el CLSI en su documento M44-S2: fluconazol S &#8805;19, SDD entre 15-18, R &#8804;14 y  voriconazol S &#8805;17, I entre 14-16 y R &#8804;13 [18].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Control de calidad del estudio  de susceptibilidad: Se realizó para cada ensayo, utilizando las cepas C.  parapsilosis ATCC 22019 y C. krusei ATCC 6258, suministradas por el Departamento  de Micología, del Instituto Nacional de Higiene, Caracas, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Análisis de los resultados: Se  calculó la frecuencia absoluta y porcentual de los aislados obtenidos por  especie de Candida, tipo de muestra y los porcentajes de sensibilidad a los  antifúngicos, de forma global y por especie aislada.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Resultados</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se evaluaron 60 pacientes,  procesándose 194 muestras: 98 hemocultivos (50,5%), 48 urocultivos cuantitativos  (24,7%), 46 secreciones traqueales (23,7%) y 2 puntas de catéter (1%). En la  tabla 1 se muestran las especies de Candida aisladas según el tipo de muestra  clínica. Se aislaron en total 37 levaduras, de las cuales, el 73% (n=27) se  obtuvo de urocultivos en recuento significativo; el resto fue aislado de  secreción traqueal (24,3%) y punta de catéter (2,7%). Todos los hemocultivos  resultaron negativos. De los urocultivos positivos, en el 76,2% (n=16) se aisló  un solo tipo de levadura y en el 23,8% hubo aislamiento mixto (hasta 2  levaduras). Las especies aisladas en orina fueron: C. tropicalis (48,2%), C.  glabrata (18,5%), C. albicans, C. parapsilosis y C. guilliermondii (7,4% c/u) y  3 aislados no Candida, correspondientes al Complejo Trichosporon (11,1%). De las  muestras de secreción traqueal, en la mitad de los casos (n= 3), se aisló un  solo tipo de levaduras y en el resto se obtuvieron hasta 2 aislados,  identificándose las siguientes especies: C. albicans y C. glabrata (33,3% c/u),  C. tropicalis (22,2%) y C. kefyr (11,1%). En punta de catéter se aisló, de una  muestra, C. tropicalis.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">C. tropicalis fue la especie  más aislada (43,2%), seguida de C. glabrata (21,6%), C. albicans (13,5%), C.  parapsilosis (5,4%), C. guilliermondii (5,4%) y C. kefyr (2,7%) (<a href="#tab1">Tabla  1</a>). Se consideró que esta investigación debería extenderse a pacientes de  otros centros de salud regionales, con la finalidad de determinar si esta  distribución es autóctona o existen variaciones locales en la frecuencia de las  especies de Candida señaladas.</font></p>     <p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v33n2/art10tab1.gif" width="462" height="408"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las infecciones mixtas solo se  observaron en muestras de orina y secreción traqueal (<a href="#tab2">Tabla 2</a>);  no se observó el predominio significativo de alguna combinación de especies en  particular y el Complejo Trichosporon solo se aisló en muestras de orina,  acompañado de otras especies de Candida.</font></p>     <p align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v33n2/art10tab2.gif" width="466" height="448"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El estudio de susceptibilidad a  fluconazol evidenció que, de todas las especies de Candida evaluadas, el 73% fue  sensible, 21,6% sensible dosis dependiente y 5,4% resistente. Para el  voriconazol, el 89,2% de los aislados fue sensible, el 8,1% mostró sensibilidad  intermedia, mientras que el 2,7% presentó resistencia al antimicótico (<a href="#tab3">Tabla  3</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v33n2/art10tab3.gif" width="561" height="264"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El 93,7% de los aislados de C.  tropicalis fue sensible a fluconazol, observándose resistencia en el 6,2%; todos  los aislados de C. glabrata fueron SDD, mientras que el 50% de la especie C.  guilliermondii fue sensible. El resto de los aislados, C. albicans, C.  parapsilosis, C. kefyr y otras levaduras diferentes a Candida (Complejo  Trichosporon) fueron totalmente sensibles a fluconazol (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El patrón de susceptibilidad a  voriconazol fue diferente: el 81,2% de los aislados de C. tropicalis fueron  sensibles y 18,7% mostraron sensibilidad intermedia; en C. glabrata el 87,5% se  mostró sensible y 12,5% resistente, mientras que C. albicans, C parapsilosis, C.  guilliermondii, C. kefyr y otras levaduras diferentes a Candida (Complejo  Trichosporon) fueron todas sensibles (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Discusión</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los resultados de este estudio  mostraron un mayor aislamiento de especies de Candida diferentes a C. albicans  en muestras clínicas, similar a la tendencia reportada por otros autores [3-6].  La distribución de las especies de Candida puede variar según el área  geográfica, el centro hospitalario, el tipo de muestra clínica analizada,  incluso hasta el año del reporte, lo que hace difícil comparar los resultados de  esta investigación con las frecuencias reportadas en otros países. Estudios  multicéntricos realizados en Canadá, Europa, Estados Unidos y Latinoamérica  reportan mayor aislamiento de C. albicans, sin embargo, la frecuencia en la  distribución de las especies diferentes a C. albicans varía: en Canadá, Europa y  Estados Unidos, C. glabrata y C. parapsilosis son la segunda y tercera especie  más aislada, mientras que en Latinoamérica lo son C. tropicalis y C.  parapsilosis [6].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Estas variaciones geográficas  también se pueden evidenciar a nivel nacional. Estudios realizados en Venezuela  señalan que C. albicans ocupa el primer lugar (46,7%), seguida de C. tropicalis  (19%), C. glabrata y C. parapsilosis (9,2% y 6%, respectivamente) [19]; en esta  investigación, C. albicans fue la tercera especie más frecuentemente aislada.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Según el tipo de muestras  clínicas, la frecuencia de especies de Candida aisladas puede variar. En este  estudio, C. tropicalis fue la más frecuente en muestras de orina, coincidiendo  con lo reportado por De Oliveira et al [20]. Sin embargo, en investigaciones  nacionales y algunas internacionales, se señala que C. albicans es la especie  más frecuente, seguida de C. tropicalis [19,21,22]. En muestras de secreción  traqueal hay coincidencia parcial con los resultados de otros investigadores,  siendo C. albicans y C. glabrata las especies más frecuentemente aisladas  [19,23].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">C. tropicalis posee la mayor  capacidad invasora y se considera que entre el 50-60% de quienes la adquieren  desarrollan candidiasis diseminada [24]. Los pacientes más afectados son  aquellos con enfermedades hematológicas o receptores de médula ósea y la  adquisición es endógena, durante los primeros días de hospitalización en  ausencia de profilaxis antifúngica [25,26]. C. glabrata, se aísla con mayor  frecuencia de pacientes con antecedentes de profilaxis antifúngica con  fluconazol y sin terapia antibiótica previa [25].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se ha estimado que la  candiduria afecta hasta al 25% de los pacientes críticos con estancia superior a  una semana en UCI y se asocia con mayor mortalidad. El riesgo de candiduria en  estos pacientes se relaciona con el sexo femenino, edad superior a 65 años, el  tiempo de estancia hospitalaria antes del ingreso en la UCI, diabetes mellitus,  ventilación mecánica y el tratamiento antibiótico previo [23,27]. El aislamiento  de especies de Candida en orina de estos pacientes se considera factor de riesgo  para candidiasis invasiva y si a esto se le suma la presencia de C. tropicalis,  el riesgo pudiera ser mayor. A pesar de que en este estudio no se observó  candidiasis diseminada en los pacientes evaluados, la mayoría de los aislados se  obtuvieron principalmente de muestras de orina, por lo que se considera que el  urocultivo cuantitativo para especies de Candida, pudiera ser implementado como  prueba de rutina en pacientes recluidos en UCI, con la finalidad de establecer  estrategias terapéuticas y profilácticas adecuadas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En el 28,6% de las muestras  positivas para Candida (orina y secreción traqueal) se aislaron dos tipos de  levaduras. Los pacientes afectados tenían más de 15 días hospitalizados en UCI,  recibían ventilación mecánica y tenían sonda vesical, factores de riesgo para  esta condición. La utilización de agar cromogénico permitió detectar las  infecciones mixtas, debido a que facilita la visualización de las  características macroscópicas de las diferentes especies de Candida, situación  que se dificulta al realizar el aislamiento en agar Sabouraud u otros medios de  cultivo. Es escasa la información en la literatura acerca de la frecuencia de  infecciones mixtas por especies de Candida, del aislamiento del Complejo  Trichosporon en orina y sus implicaciones en el pronóstico y tratamiento del  paciente.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La susceptibilidad de C.  tropicalis y C. glabrata a fluconazol y voriconazol fue superior a lo reportado  por otros autores. Todos los aislados de C. albicans y C. parapsilosis fueron  sensibles a ambos antifúngicos, lo cual está por encima de lo reportado para  fluconazol y similar a lo encontrado en la literatura para voriconazol  [19,28,29]. El perfil de susceptibilidad observado en las diferentes especies de  Candida para ambos compuestos, indica que pudieran ser una alternativa  terapéutica si las circunstancias del paciente lo permiten.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Es interesante resaltar que C.  glabrata fue la segunda especie más frecuentemente aislada en este estudio.  Probablemente se deba al uso de fluconazol como terapia profiláctica o empírica,  lo que trae como consecuencia la selección observada en las especies de Candida,  coincidiendo con lo reportado por Trick et al. [30]. Los constantes informes  acerca de la resistencia que desarrolla esta levadura frente a los azoles  justifican la evaluación rutinaria de su susceptibilidad a los antifúngicos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El perfil epidemiológico de las  especies de Candida</font> <font size="2" face="Verdana">aisladas en este  estudio se caracterizó por una mayor frecuencia de especies no albicans,  mostrando un buen patrón de susceptibilidad a fluconazol y voriconazol. Sin  embargo, el aislamiento de especies con resistencia intrínseca o secundaria a  los antifúngicos y las variaciones en la distribución de la frecuencia de los  aislados, hacen necesario extender los estudios de identificación y  susceptibilidad de especies de Candida a cada centro hospitalario, con la  finalidad de conocer su realidad epidemiológica y de esta manera obtener una  guía para la instauración del tratamiento antifúngico adecuado y oportuno.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Agradecimientos</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los autores expresan su  agradecimiento al personal que labora en la Unidad de Cuidados Intensivos “Dr.  David Isea Trompiz” del Hospital Universitario de Coro “Dr. Alfredo Van Grieken”,  por su apoyo y cooperación en la recolección de las muestras evaluadas, así como  también a la Sras. Zaida Bracho y Margot Colina, personal del Laboratorio de  Micología, CIB/UNEFM, por su incondicional ayuda en la ejecución de esta  investigación.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Referencias</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. Fridkin SK. The changing  face of fungal infections in health care setting. Clin Infect Dis. 2005;  41:1455-60.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021187&pid=S1315-2556201300020001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2. Del Palacio A, Alhambra A,  Cuétara MS. Factores de riesgo de la candidiasis invasora: estratificación. Rev  Iberoam Micol. 2006; 23:29-31.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021188&pid=S1315-2556201300020001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3. Cantón E, Viudes A, Pemán J.  Infección sistémica nosocomial por levaduras. Rev Iberoam Micol. 2001; 18:51-5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021189&pid=S1315-2556201300020001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">4. Mujica MT, Finquelievich JL,  Jewtuchowicz V, Iovannitti CA. Prevalencia de Candida albicans y Candida no-albicans  en diferentes muestras clínicas. Período 1999-2001. Rev Arg Microbiol. 2004;  36:107-12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021190&pid=S1315-2556201300020001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">5. Messer SA, Jones RN,  Fritsche TR. International surveillance of Candida spp. and Aspergillus spp.:  report from SENTRY antimicrobial surveillance program (2003). J Clin Microbiol.  2006; 44:1782-7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021191&pid=S1315-2556201300020001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">6. Pfaller MA, Diekema DJ. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health problem. Clin  Microbiol Rev. 2007; 20:133-63.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021192&pid=S1315-2556201300020001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">7. Reboli A, Rotstein C, Pappas  P, Chapman S, Kett D, Kumar D, et al. Anidulafungin versus fluconazole for  invasive candidiasis. N Engl J Med. 2007; 356:2472-82.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021193&pid=S1315-2556201300020001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">8. Kett D, Shorr A, Reboli A,  Reisman A, Biswas P, Schlamm H. Anidulafungin compared with fluconazole in  severely ill patients with candidemia and other forms of invasive candidiasis:  support for the 2009 IDSA treatment guidelines for candidiasis. Crit Care. 2011;  15:R253.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021194&pid=S1315-2556201300020001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">9. Pemán J, Ramos P, Iglesias  I. Capítulo 6. Procesamiento de las muestras de sangre, líquidos estériles y  tejidos. En: Pemán J, Martin-Mazuelos E, Rubio M, editores. Guía Práctica de  Identificación y Diagnóstico en Micología Clínica. 1era ed. España: Revista  Iberoamericana de Micología; 2001. pp 1-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021195&pid=S1315-2556201300020001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">10. Sobel JD, Kauffman CA,  McKinsey D, Zervos M, Vázquez JA, Karchmer AW, et al. Candiduria: a randomized,  doubleblind study of treatment with fluconazole and placebo. The National  Institute of Allergy and Infectious Diseases (NIAID) Mycoses Study Group. Clin  Infect Dis. 2000; 30:19-24.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021196&pid=S1315-2556201300020001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">11. García P, Hernández J.  Capítulo 7. Procesamiento de las muestras genitourinarias. En: Pemán J, Martin-Mazuelos  E, Rubio M, editores. Guía Práctica de Identificación y Diagnóstico en Micología  Clínica. 1era ed. España: Revista Iberoamericana de Micología; 2001. pp 1-9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021197&pid=S1315-2556201300020001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">12. Sánchez F. Capítulo 5.  Procesamiento de las muestras del tracto respiratorio inferior. En: Pemán J,  Martín-Mazuelos E, Rubio M, editores. Guía Práctica de Identificación y  Diagnóstico en Micología Clínica. 1era ed. España: Revista Iberoamericana de  Micología; 2001. pp 1-12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021198&pid=S1315-2556201300020001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">13. Maki D, Weise E, Sarafin H.  A semiquantitative method for identifying intravenous catheter related infection.  N Engl J Med. 1977; 23:1305-9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021199&pid=S1315-2556201300020001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">14. Linares M, Solís F.  Capítulo 11. Identificación de levaduras. En: Pemán J, Martín-Mazuelos E, Rubio  M, editores. Guía Práctica de Identificación y Diagnóstico en Micología Clínica.  1era ed. España: Revista Iberoamericana de Micología; 2001. pp 1-18.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021200&pid=S1315-2556201300020001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">15. National Committee for  Clinical Laboratory Standards. Method for antifungal disk diffusion  susceptibility testing of yeast. Approved guideline M44-A. National Committee  for Clinical Laboratory Standards, Wayne, Pa. 2004; 24:1-23.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021201&pid=S1315-2556201300020001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">16. Pfaller MA, Andes D,  Diekema DJ, Espinel-Ingroff A, Sheehan D. Wild-type MIC distributions,  epidemiological cutoff values and species-specific clinical breakpoints for  fluconazole and Candida: time for harmonization of CLSI and EUCAST broth  microdilution methods. Drug Resist Update. 2010; 13:180-95.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021202&pid=S1315-2556201300020001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">17. Pfaller MA, Andes D,  Arendrup M, Diekema D, Espinel-Ingroff A, Alexander B, et al. Clinical  breakpoints for voriconazole and Candida spp. revisited: review of microbiologic,  molecular, pharmacodynamic, and clinical data as they pertain to the development  of species-specific interpretive criteria. Diagn Microbiol Infec Dis. 2011;  70:330-43.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021203&pid=S1315-2556201300020001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">18. Clinical and Laboratory  Standards Institute. Zone diameter interpretive standards, corresponding minimal  inhibitory concentration (MIC) interpretive breakpoints, and quality control  limits for antifungal disk diffusion susceptibility testing of yeasts;  Informational supplement M44-S2. Clinical and Laboratory Standards Institute,  Wayne, Pa. 2007.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021204&pid=S1315-2556201300020001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">19. Dolande M, Reviákina V,  Panizo M, Macero C, Moreno X, Calvo A, y col. Distribución y sensibilidad a los  antifúngicos de aislamientos clínicos de Candida en seis centros de salud del  área metropolitana de Caracas, Venezuela (años 2003- 2005). Rev Iberoam Micol.  2008; 25:17-21.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021205&pid=S1315-2556201300020001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">20. De Oliveira R, Maffei C,  Martínez R. Infecção urinária hospitalar por leveduras do gênero Candida. Rev  Ass Med Brasil. 2001; 47:231-5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021206&pid=S1315-2556201300020001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">21. Voss A, Meis J, HoogKamp-Korstanje  J. Fluconazole in the management of fungal urinary tract infections. Infection.  1994; 22:247-51.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021207&pid=S1315-2556201300020001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">22. Febré N, Silva V, Medeiros  E, Wey SB, Colombo AL, Fischman O. Microbiological characteristics of yeasts  isolated from urinary tracts of intensive care units patients undergoing urinary  catheterization. J Clin Microbiol. 1999; 37:1584-6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021208&pid=S1315-2556201300020001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">23. Passos X, Souza W, Maciel  P, Rodrigues C, Carvalho K, De Aquino J, et al. Candida colonization in  intensive care unit patients’ urine. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2005; 100:925-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021209&pid=S1315-2556201300020001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">24. Abi-Said D, Anaissie E,  Uzun O, Raad I, Pinzcowski H, Vartivarian S. The epidemiology of hematogenous  candidiasis caused by different Candida species. Clin Infect Dis. 1997;  24:1122-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021210&pid=S1315-2556201300020001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">25. Mendoza M. Importancia de  la identificación de levaduras. Rev Soc Ven Microbiol. 2005; 25:13-21.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021211&pid=S1315-2556201300020001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">26. Sánchez M. Espectro clínico  de la candidiasis invasora en el paciente crítico no neutropénico. Rev Iberoam  Micol. 2006; 23:8-11.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021212&pid=S1315-2556201300020001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">27. Álvarez-Lerma F, Nolla-Salas  J, León C, Palomar M, Jordá R, Carrasco N, et al. Candiduria in critically ill  patients admitted to intensive care medical units. Intensive Care Med. 2003;  29:1069-76.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021213&pid=S1315-2556201300020001000027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">28. Arcaya N, Mesa L, Pineda M,  Beltrán-Luengo H, Calvo M. Perfil de sensibilidad antifúngica de especies de  Candida aisladas de hemocultivos en un Hospital Universitario, Maracaibo,  Venezuela. Rev Iberoam Micol. 2006; 23:97- 100.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021214&pid=S1315-2556201300020001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">29. Zuluaga A, Bedout C,  Agudelo C, Hurtado H, Arango M, Restrepo A, Gonzalez A. Sensibilidad a  fluconazol y voriconazol de especies de Candida aisladas de pacientes  provenientes de unidades de cuidados intensivos en Medellín, Colombia  (2001–2007). Rev Iberoam Micol. 2010; 27:125- 9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021215&pid=S1315-2556201300020001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">30. Trick WE, Fridkin K,  Edwards JR, Hajjeh RA, Gaynes RP, and the National Nosocomial Infections  Surveillance System Hospitals. Secular trend of hospital-acquired candidemia  among intensive care unit patients in the United States during 1989-1999. Clin  Infect Dis. 2002; 35:627-30.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2021216&pid=S1315-2556201300020001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
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<surname><![CDATA[Fridkin]]></surname>
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