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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Prevalencia de enteroparásitos y anticuerpos IgG anti-Entamoeba histolytica en indígenas de la comunidad de Toromo, estado Zulia, Venezuela]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Prevalence of enteroparasites and IgG antibodies anti-Entamoeba histolytica in the indigenous community of Toromo, Zulia State, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In order to determine the seroprevalence of antibodies against Entamoeba histolytica and intestinal parasites in the indigenous community of Toromo, Zulia state, Venezuela, 69 individuals of both sexes, from 1 to 60 years of age were studied during the year 2012. Stool and serum samples were collected. Microscopic study of fecal specimens was carried out by saline solution dilution, Lugol staining, formol-ether concentration and Kinyoun’s stain. For determination of anti-Entamoeba histolytica IgG antibodies, a commercial ELISA technique in serum was used; 98.6% of the population were parasitized, predominating the polyparasitism (88.24%) and finding up to 10 different parasite species were associated. The main parasitic species found were: Ascaris lumbricoides (65%), followed by Blastocystis sp. (59%). Entamoeba histolytica/dispar/moshkovskii was detected by microscopy in 25 individuals (36% prevalence), which included a case of infection by Entamoeba histolytica as hematophagous trophozoites were observed. A seroprevalence of 83% for IgG anti-Entamoeba histolytica antibodies in the individuals studied was found. According to the results it is concluded, that there is a high seroprevalence of antibodies against E. histolytica, as well as a high prevalence of intestinal parasites in the indigenous population studied.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Prevalencia</font><font face="Verdana">  de enteroparásitos y anticuerpos IgG anti-Entamoeba histolytica en indígenas de  la comunidad de Toromo, estado Zulia, Venezuela</font></b></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Angela Bracho Moraa,*, Zulbey  Rivero de Rodrígueza, María Elena Corderob, Raúl Alejandro Chirinosb, Yulmary  del Carmen Gonzálezb, Ismael Uribeb, Ricardo José Atencioa, Rafael Villalobos  Perozoc</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">a Escuela de Bioanálisis.  Facultad de Medicina. Universidad del Zulia. Zulia, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">b Laboratorios Biomarienlab.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">c Escuela de Medicina, Facultad  de Medicina. Universidad del Zulia. Zulia, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">* Correspondencia: E-mail: <a href="mailto:angelitab60@gmail.com">angelitab60@gmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Resumen</b>:</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para determinar la  seroprevalencia de anticuerpos contra Entamoeba histolytica y la prevalencia de  los enteroparásitos en indígenas de la comunidad de Toromo, estado Zulia,  Venezuela, se estudiaron 69 individuos de ambos sexos, de 1 a 60 años de edad,  en el año 2012. Se recolectaron muestras de heces y suero; a todas las muestras  fecales se les realizó examen microscópico con solución fisiológica y lugol,  concentración con formol-éter y coloración de Kinyoun; para la detección de  anticuerpos IgG anti-Entamoeba histolytica en suero, se empleó una técnica de  ELISA comercial. El 98,6% de los individuos estudiados estaban parasitados,  predominando el poliparasitismo (88,2%), detectándose asociaciones de hasta 10  especies parasitarias. Entre las especies encontradas están, Ascaris  lumbricoides el principal helminto (65%), y Blastocystis sp. (59%) el  protozoario más frecuente. Entamoeba histolytica/dispar/moshkovskii se detectó  por microscopia en 25 individuos (36% de prevalencia), donde se incluyó un caso  de infección por Entamoeba histolytica, por haberse encontrado trofozoítos  hematófagos. Se observó una seroprevalencia de anticuerpos contra E. histolytica,  del 83%. De los resultados obtenidos, se concluye que existe una elevada  seroprevalencia de anticuerpos contra E. histolytica, así como una alta  prevalencia de enteroparásitos en la población indígena estudiada.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave</b>:  Entamoeba histolytica/dispar/moshkovskii, E. histolytica, población indígena,  parásitos intestinales, ELISA.</font></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Prevalence of enteroparasites  and IgG antibodies anti-Entamoeba histolytica in the indigenous community of  Toromo, Zulia State, Venezuela</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b></b><font size="2" face="Verdana"><b>Abstract</b>:</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">In order to determine the  seroprevalence of antibodies against Entamoeba histolytica and intestinal  parasites in the indigenous community of Toromo, Zulia state, Venezuela, 69  individuals of both sexes, from 1 to 60 years of age were studied during the  year 2012. Stool and serum samples were collected. Microscopic study of fecal  specimens was carried out by saline solution dilution, Lugol staining,  formol-ether concentration and Kinyoun’s stain. For determination of anti-Entamoeba  histolytica IgG antibodies, a commercial ELISA technique in serum was used;  98.6% of the population were parasitized, predominating the polyparasitism  (88.24%) and finding up to 10 different parasite species were associated. The  main parasitic species found were: Ascaris lumbricoides (65%), followed by  Blastocystis sp. (59%). Entamoeba histolytica/dispar/moshkovskii was detected by  microscopy in 25 individuals (36% prevalence), which included a case of  infection by Entamoeba histolytica as hematophagous trophozoites were observed.  A seroprevalence of 83% for IgG anti-Entamoeba histolytica antibodies in the  individuals studied was found. According to the results it is concluded, that  there is a high seroprevalence of antibodies against E. histolytica, as well as  a high prevalence of intestinal parasites in the indigenous population studied.</font></p>     <p align="justify"><b></b><font size="2" face="Verdana"><b>Keywords</b>:  Entamoeba histolytica/dispar/moshkovskii, E. histolytica, indigenous population,  intestinal parasites, ELISA.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Recibido 25 de enero de 2013;  aceptado 1 de octubre de 2013</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Introducción</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las poblaciones indígenas se  encuentran dentro de los grupos más vulnerables a sufrir infecciones  parasitarias, debido a que viven en condiciones deficientes y carecen de acceso  adecuado a la educación, el agua potable, la alimentación y los servicios de  atención de salud [1].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Una de las enteroparasitosis  más importantes en humanos es la amibiasis, infección producida por el parásito  Entamoeba histolytica; se origina por el contacto directo fecal oral o a través  de aguas y/o alimentos contaminados con los quistes, los cuales pueden vivir en  el intestino grueso e invadir la mucosa intestinal causando lesiones  intestinales, produciendo dolor abdominal, nauseas, fiebre, flatulencia y  diarrea mucosanguinolenta, pudiendo llegar a colonizar otros órganos, entre  ellos hígado, cerebro, piel y pulmón [2].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El diagnóstico rutinario se  realiza mediante examen coprológico, generalmente con la observación  microscópica de quistes y/o trofozoítos característicos en las heces o con menos  frecuencia en la biopsia de mucosa intestinal. Sin embargo, el examen  microscópico del material fecal tiene varias limitaciones, como es la de  distinguir entre E. histolytica, E. dispar y E. moshkovskii (complejo Entamoeba),  debido a que son morfológicamente idénticas, y sólo puede confirmarse la  presencia de E. histolytica cuando las muestras presentan trofozoítos  hematófagos [3]. Sin embargo, la detección de Gal/GalNAc-lectina en materia  fecal y la amplificación por PCR de fragmentos específicos de ADN genómico, sí  permiten identificar las especies del complejo, pero es la técnica de ELISA la  más utilizada en los laboratorios de diagnóstico para detectar anticuerpos  contra E. histolytica, por ser de fácil realización y considerada especialmente  útil, para el diagnóstico del absceso hepático amebiano y otros tipos de  amibiasis extraintestinal [4].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Entre los países  latinoamericanos, México ha resultado el de mayor endemia para la amibiasis con  cifras de infección de hasta un 75%, seguido de Colombia con un 45-60%, y Chile  con un 18-20% [5]. Estudios epidemiológicos realizados en Brasil, Colombia y  Argentina refieren tasas de prevalencias del 43,4% para el complejo E.  histolytica/E. dispar, de 0,6-1,4% para E. histolytica, de 15-17% para E. dispar  y 24,1% de E. histolytica/E. dispar en diferentes poblaciones indígenas mediante  técnicas convencionales y ELISA [6-8].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En Venezuela, estudios  realizados en el estado Sucre utilizando examen directo y concentrado, refieren  prevalencia del 16% para el complejo E. histolytica/E. dispar [2]. Rivero [9],  en un área endémica de Maracaibo, obtuvo 27,2% de prevalencia del complejo E.  histolytica/E. dispar mediante examen microscópico y al realizar la detección de  coproantígenos mediante ELISA encontraron un 23,2% de prevalencia de E.  histolytica. Rivero y cols. [3], en una comunidad del estado Zulia, obtuvieron  20,6% (42/204) que presentaron formas evolutivas del complejo E. histolytica/E.  dispar mediante examen microscópico, mientras que por PCR evidenciaron un total  de 47 casos positivos, de los cuales 22 eran de E. histolytica (10,8%), 16  (7,8%) de E. dispar y 9 (4,4%) presentaron infección por ambos parásitos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Trabajos recientes realizados  en indígenas de la Sierra de Perijá por Rivero y cols. [1] señalan, que  generalmente prevalecen los protozoarios sobre los helmintos, detectándose  principalmente B. hominis, Entamoeba coli y el complejo E. histolytica/E. dispar  y dentro de los helmintos, los Ancylostomideos A. lumbricoides e Hymenolepis  nana. Díaz y cols. [10] al estudiar la misma comunidad de Toromo, encontraron un  elevado porcentaje de indígenas parasitados (83,5%) de los cuales, el 51,7%  albergaba B. hominis, seguido por Endolimax nana con 37,4% y el complejo E.  histolytica/E. dispar con 22%.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Existen pocas referencias sobre  la detección de anticuerpos contra E. histolytica en suero de indígenas, por  ello se decidió determinar la prevalencia de enteroparásitos y de anticuerpos  contra E. histolytica. en esta población.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Materiales y métodos</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Descripción de la población:  Toromo está conformada por indígenas de la etnia Yukpa y se encuentra en la  Sierra de Perijá ubicada al oeste del estado Zulia. Allí conviven  aproximadamente 1.400 individuos, según comunicación personal con Freddy  Tanatera (Director de la Escuela Técnica Agropecuaria de Toromo). La comunidad  no posee red de aguas blancas, ni lugares adecuados para el depósito de excretas  y basura. Las viviendas están constituidas por un solo ambiente, albergando un  elevado número de personas, lo que se traduce en hacinamiento. El agua  proveniente de caños y de ríos cercanos la utilizan para uso doméstico y aseo  personal; acostumbran defecar a cielo abierto y tienen malos hábitos higiénicos,  así como la costumbre de andar descalzos [10].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Recolección de las muestras: En  febrero de 2012 se realizó una jornada de salud donde se recolectaron muestras  fecales y sanguíneas de 69 individuos que espontáneamente asistieron a la  jornada. Se hizo entrega de recolectores plásticos, grandes y estériles,  indicando las instrucciones para la correcta toma de muestra fecal. Se obtuvo el  consentimiento informado de los individuos y sus representantes en el caso de  los menores de edad, antes de la inclusión en el estudio. El protocolo de  estudio fue aprobado por el Comité de Bioética para estudios de investigación  biomédica de la Facultad de Medicina de la Universidad del Zulia (LUZ).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Diagnóstico parasitológico: Las  muestras fecales fueron examinadas en el sitio de la recolección mediante  estudio coproparasitologico con solución fisiológica y lugol. El resto de la  muestra fue preservada en formol salino al 7%, material que fue llevado al  Laboratorio de Parasitología de la Escuela de Bioanálisis de LUZ donde se le  practicó el método de concentración con formol-éter y con el fin de investigar  coccidios intestinales se realizó un frotis del sedimento del concentrado, para  la coloración de Kinyoun [11].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Diagnóstico serológico: Las  muestras de sangre fueron obtenidas por punción venosa, recogidas en tubos sin  anticoagulante y centrifugadas a 850 g por 5 min. Los sueros obtenidos fueron  congelados a -20 °C hasta el momento de ser procesados. La determinación  cualitativa de anticuerpos IgG anti-Entamoeba histolytica se realizó a través de  la técnica de ensayo inmunoenzimático (ELISA), según las especificaciones del  fabricante. Se utilizó el estuche RIDASCREEN E. histolytica IgG (R-Biopharm,  Alemania). La lectura de la intensidad del color de la reacción desarrollada en  cada pozo, se realizó con un lector de ELISA (Stat Fax 2100, Awareness  Technology Inc.) a una longitud de onda de 450 nm y se expresó en densidad  óptica (DO). Se determinó un punto de corte, valor calculado del promedio de las  absorbancias de los sueros de referencia y controles negativos. Los resultados  se calcularon mediante la comparación de las DO obtenidas en los sueros con el  punto de corte establecido. Los resultados dudosos, se sometieron de nuevo a  ELISA. Se consideraron como valores positivos: valores &#8805; 1,1 y como valores  negativos: valores &lt; 0,9. La sensibilidad y especificidad de la técnica según el  fabricante, son 97,6% y 100% respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Análisis estadístico: Para el  procesamiento estadístico y análisis de los datos, se utilizaron los programas  SPSS, versión 10 para Windows (SPSS Inc. Chicago, Estados Unidos) y el STATS.  Fue utilizado el test de Chi cuadrado para comparación de proporciones, siendo  adoptado un nivel de significancia de p&lt;0,05 para constatar la diferencia  estadística (confiabilidad del 95%). La prevalencia fue calculada para una base  de 100 habitantes y de acuerdo a sexo y edad. Los grupos etarios fueron  clasificados según Masalán y González [12].</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Resultados</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Participaron en el estudio 69  individuos de ambos sexos con edades comprendidas entre 1 y 60 años. Se encontró  una prevalencia del 98,6% de parasitados (68/69), donde el 65% (44/68) de los  individuos pertenecían al sexo femenino y 37% (24/68) al masculino. El 88,2%  (60/68) de las personas parasitadas, presentaron infecciones mixtas, con  asociaciones entre 2 y 10 especies.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Mediante examen microscópico se  detectaron 24 muestras positivas para el complejo E. histolytica/dispar/  moshkovskii y 1 muestra con trofozoítos hematófagos de E. histolytica, lo que  representó 36,2% de prevalencia. A través de la técnica de ELISA se encontró que  57 (83%) individuos presentaron anticuerpos IgG anti-E. histolytica. Al comparar  los resultados del examen microscópico con los anticuerpos en suero (<a href="#tab1">Tabla 1</a>),  se observó que de las 69 muestras estudiadas, 25 presentaron al complejo E.  histolytica/dispar/moshkovskii y/o E. histolytica y de éstas, 20 fueron  detectadas positivas también mediante la técnica de ELISA; las restantes 5  muestras resultaron negativas. Por otra parte, de las 44 (63,8%) muestras que  fueron negativas por microscopía, 37 fueron positivas por ELISA, mientras que  las 7 restantes resultaron negativas por esta técnica. Según estos resultados la  sensibilidad y especificidad de la microscopía fue de 35,1% y 58,3%  respectivamente.</font></p>     <p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v33n2/art12tab1.gif" width="374" height="246"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La <a href="#fig1">figura 1</a>  muestra la distribución de las absorbancias obtenidas de los sueros estudiados,  (n=69), donde 57 sueros presentaron valores positivos, con DO que variaron desde  1,1 hasta 6,8.</font></p>     <p align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v33n2/art12fig1.gif" width="452" height="444"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Al relacionar los casos  positivos para el complejo E. histolytica/dispar/moshkovskii y/o E. histolytica  con el grupo etario y sexo, como se puede observar en la <a href="#tab2">tabla 2</a>,  el sexo femenino fue el de mayor prevalencia en ambas determinaciones (heces y  suero) con un 20,9 y 50,7% respectivamente, mientras que el sexo masculino  obtuvo 15,9 y 31,9%. Con respecto a los grupos etarios se evidenció que en el  grupo adulto joven (20-39 años) en ambos sexos, se encontró el mayor porcentaje  de parasitados por el complejo E. histolytica/dispar/moshkovskii en heces, en  ambos sexos, correspondiendo 8,7% (6/14) para el sexo femenino y 5,8% (4/11) al  masculino. En contraste, para la determinación de anticuerpos en suero el mayor  porcentaje lo obtuvo el grupo preescolar (2 a 6 años) con un 18,8% (13/35) en el  sexo femenino y el masculino 11,6% (8/22). No se observó diferencia  significativa entre las variables parasitosis, edad y sexo.</font></p>     <p align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v33n2/art12tab2.gif" width="560" height="355"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Con respecto a las especies  parasitarias encontradas, se puede observar en la <a href="#tab3">tabla 3</a>  que la especie Ascaris lumbricoides fue el helminto de mayor prevalencia (44  casos) alcanzando un 65%, seguido por los Ancylostomideos (22 casos) con el 32%  y Trichuris trichiura (18 casos) con el 26%. Dentro de los microorganismos  unicelulares, Blastocystis sp. fue la especie de mayor prevalencia con 59% (40  casos), seguido por el protozoario Entamoeba coli (34 casos) con 50% y E. nana  con 41%. Es importante destacar que dentro de las especies de amibas, el  Complejo E. histolytica/dispar/ moshkovskii se encontró en 24 pacientes (35%),  al que se añade un solo individuo que presentó con toda seguridad Entamoeba  histolytica, diagnosticado mediante observación microscópica de trofozoítos  hematófagos. En relación a los coccidios intestinales, solo se encontró un caso  (1%) de Cryptosporidium spp. en un paciente masculino de 60 años.</font></p>     <p align="center"><a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v33n2/art12tab3.gif" width="378" height="703"></a></p>     
<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Discusión</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Venezuela, como otros países en  vías de desarrollo, mantiene cifras elevadas de las enfermedades  gastrointestinales de origen infeccioso. En el presente estudio se obtuvo una  prevalencia de enteroparásitos elevada (98,6%), mayor que la obtenida en otras  investigaciones realizadas en comunidades indígenas del estado Zulia, donde se  reportaron prevalencias del 83,9% en la población de Japrería y 85,2% para la  población Añú [13]. Similares resultados se obtuvieron hace 10 años en la misma  comunidad, donde se señala una prevalencia de 83,5% de individuos parasitados,  en un grupo de niños de 0 a 14 años [10].</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El complejo Entamoeba mediante  microscopía presentó 36% de prevalencia, situación que se explica por las  deplorables condiciones higiénico-sanitarias que poseen estos individuos  observadas durante la visita realizada a esta comunidad. Estudios previos  realizados en las comunidades indígenas Japrería y Añú (Edo. Zulia), reflejan  prevalencias de 34,5% y 26,9% respectivamente [13]. En la etnia Yukpa de Toromo,  se reportaron 28 casos (22%) detectados por microscopía óptica en el año 2002  [10]. En otros estados del país, las prevalencias pueden llegar a ser menores;  Devera y col. [14] al estudiar una comunidad warao en Delta Amacuro, refieren un  2,7% de E. histolytica/E. dispar.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En otros países las  prevalencias varían según la comunidad que se estudie. Un estudio realizado en  indígenas Surui de la amazonía brasileña mediante microscopía, reseña una  prevalencia de 12,3% de E. histolytica/E. dispar y 3,2% de E. histolytica,  detectada mediante ELISA para coproantígenos [15]. En otras comunidades  indígenas de Brasil, Assis y col. mediante microscopía encontraron un 48,9% de  E. histolytica/E. dispar [16]. El examen microscópico de las heces en una  población urbana marginal estudiada en Lima, Perú, reveló una prevalencia de  infección por el complejo E. histolytica/E. dispar del 10% y la detección del  antígeno en heces por el método de ELISA, indicó una prevalencia de E.  histolytica de 9% [17]. Estos últimos valores son más bajos que los nuestros,  pero estas diferencias pueden justificarse porque son comunidades con hábitos y  características diferentes.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Al relacionar las dos técnicas  utilizadas, se detectó la presencia del complejo Entamoeba en 25 individuos, de  éstos, 20 debían tener más de un mes de evolución de la infección, ya que  resultaron positivos en la técnica de ELISA para anticuerpos anti-E. histolytica.  Se identificaron 44 casos negativos por microscopía para el complejo Entamoeba;  sin embargo, 37 reflejaron positividad para anticuerpos IgG anti-E. histolytica,  indicando que estos individuos previamente tuvieron contacto con el protozoario  y todavía mantenían anticuerpos circulantes. Es necesario correlacionar la  presencia de anticuerpos con el cuadro clínico, dado que una reacción positiva  de ELISA IgG anti-E. histolytica, puede corresponder a una infección amebiana  pasada, razón por la cual algunos de ellos pudieran presentar persistencia de  anticuerpos específicos [18,19].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En contraste, 5 individuos  fueron positivos microscópicamente y negativos por ELISA, esto pudiera deberse  al hecho de que algunas personas desarrollan tardíamente la producción de  anticuerpos, o que se tratara de una infección por E. dispar o E. moshkovskii,  las cuales no estimulan la producción de anticuerpos. Así mismo, 7 individuos  resultaron negativos por ambas técnicas asumiéndose que no habían tenido  contacto con el protozoario para el momento del estudio. Es importante destacar  el caso confirmado de infección por E. histolytica, donde se observaron  trofozoítos hematófagos, ya que este paciente presentó además una elevada DO  (6,0) mediante la técnica de ELISA, lo que sugiere que debía presentar un cuadro  de amibiasis invasiva intestinal, si consideramos que la invasión tisular está  asociada con respuesta de anticuerpos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La presencia de anticuerpos  anti-E. histolytica, junto con el hallazgo de quistes del complejo Entamoeba en  ausencia de sintomatología, pudiese resultar orientativo de una infección por E.  dispar o E. moshkovskii [20]. No obstante, antes de considerar este diagnóstico  como definitivo, se debe tener en cuenta que la persistencia de la IgG anti-E.  histolytica en suero, hace que la aplicación de este tipo de pruebas deba  limitarse a países desarrollados en los que la infección por E. histolytica sea  poco frecuente [21]. En áreas endémicas el contacto con E. histolytica es  habitual, de manera que se estima que entre el 5 y el 10% de la población  presenta anticuerpos [22]; a nuestro juicio, ésta es precisamente la situación  de la comunidad estudiada, donde la seroprevalencia fue del 83%. Las pruebas  serológicas son positivas en el momento de la presentación clínica de la  amibiasis en el 60-90% de los casos con serología positiva observada y en la  población general de las zonas endémicas alrededor de 5-10% [22,23].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Al evaluar sensibilidad y  especificidad de la microscopía, se obtuvo un 35,1% y 58,3% respectivamente,  tomando en cuenta a ELISA como la prueba de oro. A pesar de que en la literatura  son pocos los trabajos que hacen referencia a los valores en DO (ya que la  mayoría de los kits son cuantitativos y expresan títulos IgG o IgM), en la  presente investigación al utilizar técnicas cualitativas se detectaron  densidades ópticas bajas, intermedias y elevadas (Figura 1), por lo que se puede  inferir que las cifras de DO están directamente relacionadas a la concentración  de anticuerpos y éstos a su vez con el tiempo de haber adquirido la infección.  Una diferencia importante entre los tipos de anticuerpos (IgM e IgG) está  relacionada con el tiempo de exposición, debido a que la IgM se encuentra  generalmente circulante en las primeras etapas de la infección y la IgG es la  respuesta del organismo a una infección, que se mantiene a largo plazo,  anticuerpos que generalmente se detectan una semana después de la aparición de  los síntomas [24,25].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La prevalencia del complejo  Entamoeba según edad y sexo no mostró diferencia estadísticamente significativa,  aunque se evidenció un mayor porcentaje de infectados en el sexo femenino en  ambas determinaciones (heces y suero) con un 20,9 y 50,7% respectivamente,  afectando principalmente al grupo etario adulto joven (20-39 años). En un  estudio realizado en indígenas en Brasil, donde se relacionó la prevalencia de  E. histolytica/dispar/moshkovskii con la edad y sexo, se encontró un mayor  porcentaje de infección en el sexo femenino y el rango de edad de 10 a 19 años  (14,3%) [15]. Sin embargo, Cedeño y col. señalan que el sexo de los individuos  no fue un factor determinante en la amibiasis ya que no se registraron  diferencias significativas y concluyen que esta enfermedad puede afectar ambos  sexos, y en cuanto al grupo etario el estudio demostró mayor frecuencia en niños  mayores de 8 años, los cuales son más propensos a sufrir infecciones  parasitarias debido al contacto con agentes contaminantes y otros niños [18].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Son múltiples las publicaciones  realizadas [1,3,6,10,13], tanto en poblaciones indígenas como en urbanas, donde  Blastocystis sp. fue el principal parásito encontrado. Sin embargo, nuestros  resultados guardan similitud a los obtenidos por Díaz y col. [10], donde se  observó: A. lumbricoides, T. trichiura, B. hominis y E. nana, pero difieren de  otro realizado en la comunidad indígena Japrería, donde los Ancylostomideos  ocuparon el primer lugar, seguidos por A. lumbricoides [13]. Al comparar  nuestros resultados con estudios realizados en Argentina y Brasil [8,16],  notamos que ellos encontraron Ancylostomideos, seguidos de H. nana y no  detectaron A. lumbricoides y/o Trichuris trichiura. En relación a los coccidios,  solo se observó un caso de Cryptosporidium spp. (1%), en un adulto de 60 años;  así mismo Devera y col. [26] refieren un solo caso de criptosporidiosis, en  poblaciones indígenas del estado Bolívar. En contraste, Díaz y col. [10], no  detectaron coccidios intestinales en esta comunidad para el año 2002.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En base a los resultados  obtenidos, se demuestra una elevada seroprevalencia de anticuerpos anti-E.  histolytica; así como una alta prevalencia de enteroparásitos en la población  indígena estudiada.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Agradecimientos</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Al CONDES, quien financió la  presente investigación, aprobada bajo el número CC-0596-10.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Referencias</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. Rivero Z, Maldonado A,  Bracho A, Gotera J, Atencio R, Leal M y col. Enteroparasitosis en indígenas de  la comunidad Japrería estado Zulia, Venezuela. INCI. 2007; 32:270-3.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023438&pid=S1315-2556201300020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2. Mora L, García A, De Donato  M. Prevalencia del Complejo Entamoeba histolytica/Entamoeba dispar en pacientes  con síntomas gastrointestinales de diarrea procedentes de Cumaná, estado Sucre.  Kasmera. 2005; 33:33-45.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023439&pid=S1315-2556201300020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3. Rivero Z, Bracho A, Calchi  M, Díaz I, Acurero E, Maldonado A, y col. Detección y diferenciación de  Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar mediante reacción en cadena de la  polimerasa en individuos de una comunidad del estado Zulia, Venezuela. Cad Saúde  Pública. 2009; 25:151-9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023440&pid=S1315-2556201300020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">4. Chacín L. Amibiasis:  implicaciones del reconocimiento de Entamoeba dispar e identificación de  Entamoeba moshkovskii en humanos. Inv Clin. 2010; 51:239-56.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023441&pid=S1315-2556201300020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">5. Araujo J, García M, Díaz O,  Urdaneta H. Amibiasis: importancia de su diagnóstico y tratamiento.  Mini-revisión. Inv Clin. 2008; 49:265-71.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023442&pid=S1315-2556201300020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">6. Dias J, Rodríguez R, Amato  V, Gakiya E. Parasitoses intestinais de indígenas da comunidade Mapuera (Oriximiná,  Estado do Pará, Brasil): elevada prevalência de Blastocystis hominis e encontro  de Cryptosporidium sp e Cyclospora cayetanensis. Rev Soc Bra Med Trop. 2009;  42:348-50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023443&pid=S1315-2556201300020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">7. López O, López M, Corredor  V, Echeverri M, Pinilla A. Diferenciación del Complejo Entamoeba histolytica/  Entamoeba dispar mediante Gal/Nac-lectina y PCR en aislamientos colombianos. Rev  Med Chile. 2012; 140:476- 83.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023444&pid=S1315-2556201300020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">8. Menghi C, Iuvaro F,  Dellacasa M, Gatta C. Investigación de parásitos intestinales en una comunidad  aborigen de la Provincia de Salta. Medicina (B. Aires). 2007; 67:705-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023445&pid=S1315-2556201300020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">9. Rivero Z. Detección y  diferenciación de Entamoeba histolytica y dispar en niños de una área endémica.  Trabajo presentado para optar al ascenso a la categoría de profesor titular de  LUZ. p. 45. Maracaibo 2003.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023446&pid=S1315-2556201300020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">10. Díaz I, Rivero Z, Bracho A,  Acurero E, Marinella C, Atencio R y col. Prevalencia de enteroparásitos en niños  de la etnia Yukpa de Toromo, estado Zulia, Venezuela. Rev Med Chile. 2006;  134:72-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023447&pid=S1315-2556201300020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">11. Melvin D, Brooke M. Métodos  de laboratorio para diagnóstico de parasitosis intestinales. 1ª ed. México:  Editorial Latinoamericana; 1971.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023448&pid=S1315-2556201300020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">12. Masalán M, González R.  Autocuidado del ciclo vital. Disponible en: <a href="http://www7.uc.cl/sw_educ/enferm/ciclo/"> http://www7.uc.cl/sw_educ/enferm/ciclo/</a> Acceso: 18 de febrero de 2012.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023449&pid=S1315-2556201300020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">13. Maldonado A, Rivero Z,  Chourio G, Díaz I, Calchi M, Bracho A y col. Prevalencia de enteroparásitos y  factores ambientales asociados en dos comunidades indígenas del estado Zulia.  Kasmera. 2008; 36:53-66.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023450&pid=S1315-2556201300020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">14. Devera R, Finali M,  Franceschi G, Gil S, Quintero O. Elevada prevalencia de parasitosis intestinales  en indígenas del estado Delta Amacuro, Venezuela. Rev Biomed. 2005; 16:289-91.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">15. Palhano-Silva C, Araújo A,  Lourenço A, Bastos O, Santos R, Coimbra C. Intestinal parasitic infection in the  Suruí Indians, Brazilian Amazon. INCI. 2009; 34:259-64.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023452&pid=S1315-2556201300020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">16. Assis EM, Oliveira RC,  Moreira LE, Pena JL, Rodrigues LC, Machado-Coello GLL. Prevalência de parasitos  intestinais na comunidade indígena Maxakali, Minas Gerais, Brasil, 2009. Cad.  Saúde Pública. 2013; 29:681-90.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023453&pid=S1315-2556201300020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">17. Cornejo W, Espinoza Y,  Huiza A, Pilar A, Suárez R, Sevilla C y col. Prevalencia de E. histolytica y E.  dispar por microscopia y ELISA en muestras fecales de una población urbano  marginal de Lima. An Fac Med. 1999; 60:124-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023454&pid=S1315-2556201300020001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">18. Cedeño B, García A, Alfonzo  N, Urdaneta H. Seroprevalencia de Entamoeba histolytica y diagnóstico de  amebiasis en Cumaná, estado Sucre, Venezuela. Saber. 2008; 20:318-28.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023455&pid=S1315-2556201300020001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">19. Haque R, Ali IKM, Sack RB,  Farr BM, Ramakrishnan G, Petri WA Jr. Amebiasis and mucosal IgA antibody against  the Entamoeba histolytica adherence lectin in Bangladeshi children. J Infect Dis.  2001; 183:1787-93.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023456&pid=S1315-2556201300020001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">20. Pinilla A, López M, Viasus  D. Inmunoglobulina G en pacientes con absceso hepático amebiano. Rev Fac Med  Univ Nac Col. 2006; 54:117-23.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023457&pid=S1315-2556201300020001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">21. Haque R, Petri Jr.  Diagnosis of amebiasis in Bangladesh. Arch Med Res. 2006; 37:273-6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023458&pid=S1315-2556201300020001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">22. Ohnishi K, Murata M.  Present characteristics of symptomatic amebiasis due to Entamoeba histolytica in  three east-southeast area of Tokyo. Epidemiol Infect. 1997; 119:363-7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023459&pid=S1315-2556201300020001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">23. Pillai D, Keystone J,  Sheppard D, MacLean J, MacPherson D, Kain K. Entamoeba histolytica and Entamoeba  dispar: epidemiology and comparison of diagnostic methods in a setting of  nonendemicity. Clin Infect Dis. 1999; 29:1315-8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023460&pid=S1315-2556201300020001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">24. Abbas A, Lichtman A, Pillai  S. Inmunología celular y molecular. 6a ed. España: Elsevier Saunders; 2008.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023461&pid=S1315-2556201300020001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">25. Riquelme F, Uribe R.  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