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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Optimización de la técnica de PCR reversa para la detección del VIH en plasma de pacientes infectados]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Even though PCR is the conventional technique for HIV diagnosis in proviral DNA, the qualitative RT-PCR technique could constitute a support tool for HIV diagnosis in infected patients since one of its main advantages is the use of plasma samples instead of whole blood, which facilitates its transportation from the various regions of the country. The main objective of this study was the evaluation of the optimal conditions regarding use of primers and reverse transcriptase enzyme, for the synthesis of complementary DNA (RT-PCR) of the HIV sheath in plasma samples of HIV positive patients. The results obtained in this study suggest that the use of random primers, in a reactive mixture with the RT “SuperScript” enzyme TM (200 U/mL), allows maximizing the amplifying efficiency of the HIV-1 sheath gene, as compared with specific primers. This offers a methodological alternative using plasma samples for HIV detection in those persons who due to various reasons cannot travel to the reference institution.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Optimización de la técnica de PCR  reversa para la detección del VIH en plasma de pacientes infectados</font></b></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Gladys Inocencia Ameli  Marcozzi<sup>a</sup>,*, Cristina del Rosario Gutiérrez García<sup>a</sup>, Pierina D’Angelo<sup>b</sup>, Héctor  Rangel<sup>b</sup></font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">a Lab. de Programas Especiales,  Hepatitis y SIDA. Gerencia Sectorial de Diagnóstico y Vigilancia Epidemiológica,  Instituto Nacional de Higiene ”Rafael Rangel”, Caracas, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">b Laboratorio de Virología  Molecular. Centro de Microbiología y Biología Celular, IVIC, Altos de Pipe,  Caracas, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">* Correspondencia: E-mail: <a href="mailto:gladysameli@hotmail.com">gladysameli@hotmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Resumen</b>:</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aunque la técnica convencional  para el diagnóstico del VIH es la PCR a partir de ADN proviral, la técnica RT-PCR  cualitativa podría constituir una herramienta de apoyo en el diagnóstico del VIH  en pacientes infectados, ya que una de sus principales ventajas es el uso de  muestras de plasma, en lugar de sangre total, lo cual facilitaría su transporte  entre las distintas regiones del país. En este estudio se planteó como objetivo  evaluar las condiciones óptimas, en cuanto al uso de cebadores y enzima  transcriptasa reversa, para síntesis de ADN complementario (RT-PCR) de la región  de envoltura del VIH, a partir de muestras de plasma de pacientes VIH positivos.  Los resultados obtenidos en este trabajo sugieren que la utilización de  cebadores azarosos, en una mezcla de reacción con la enzima RT “SuperScript” TM  (200 U/mL), permite maximizar la eficiencia de amplificación del gen de la  envoltura de VIH-1, en comparación con cebadores específicos. Esto permite  ofrecer una alternativa metodológica a partir de muestras de plasma, para la  detección del VIH en aquellas personas que por diversas razones no pueden  trasladarse a la institución de referencia.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>:  transcripción reversa, reacción en cadena de la polimerasa, VIH, cebador  azaroso, plasma de pacientes.</font></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Optimization of the reverse  PCR technique for HIV detection in plasma of infected patients</font></b></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Abstract:</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Even though PCR is the  conventional technique for HIV diagnosis in proviral DNA, the qualitative RT-PCR  technique could constitute a support tool for HIV diagnosis in infected patients  since one of its main advantages is the use of plasma samples instead of whole  blood, which facilitates its transportation from the various regions of the  country. The main objective of this study was the evaluation of the optimal  conditions regarding use of primers and reverse transcriptase enzyme, for the  synthesis of complementary DNA (RT-PCR) of the HIV sheath in plasma samples of  HIV positive patients. The results obtained in this study suggest that the use  of random primers, in a reactive mixture with the RT “SuperScript” enzyme TM  (200 U/mL), allows maximizing the amplifying efficiency of the HIV-1 sheath  gene, as compared with specific primers. This offers a methodological  alternative using plasma samples for HIV detection in those persons who due to  various reasons cannot travel to the reference institution.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Keywords</b>: reverse  transcription, polymerase chain reaction, HIV, random primer, patient plasma.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido 8 de noviembre de  2012; aceptado 8 de octubre de 2013</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Introducción</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las partículas virales  infecciosas del virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) encapsidan dos  cadenas simples de ARN como información genética y en su ciclo de vida ocurre  una conversión a ADN denominado provirus, el cual se integra dentro de la célula  huésped [1,2].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las técnicas de biología  molecular ofrecen la ventaja de permitir la amplificación de pocas moléculas de  material genético para así obtener niveles detectables de un blanco particular,  utilizando la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR por sus siglas  en inglés) [2], la cual fue descubierta por Kary Mullis en 1983.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En la infección por VIH la  técnica de PCR, ha demostrado diversas utilidades tanto en clínica como en  investigación [3], tales como:</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">• Detección directa del virus  integrado (ADN proviral), a partir del ADN de células mononucleares de sangre  periférica de personas infectadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">• Detección del virus durante  el período de ventana (antes de la generación de anticuerpos específicos para el  VIH).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">• Resolver el estatus de  infección de individuos con prueba de Western Blot indeterminado.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">• Prueba de seguimiento y  diagnóstico en hijos de madres seropositivas al VIH.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">• Diferenciación de la  infección entre VIH-1 y VIH-2.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">• Definir patrones de  transmisión y evolución del virus a nivel poblacional.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las aplicaciones de la PCR  pueden involucrar nuevos procedimientos, así como modificaciones de métodos  existentes, como lo es la síntesis de ADN complementario para la realización de  la transcripción reversa acoplada a la PCR (RT-PCR). La técnica RT-PCR se  utiliza debido a que el ARN no sirve de molde para la reacción de PCR, pues la  enzima utilizada durante la reacción es una polimerasa dependiente de ADN (ADN  polimerasa), por lo que la PCR debe ser precedida por una reacción de  transcripción reversa que convierte el ARN en una copia de ADN complementario o  ADNc [4].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El primer paso para la  obtención de ADNc consiste en la extracción del ARN total. El ARN es sometido  entonces a una reacción de transcripción reversa, que es catalizada por una  enzima llamada transcriptasa reversa. Las transcriptasas reversas (RT) son  polimerasas de ADN dependientes de ARN [4]. Fundamentalmente se conocen dos  tipos de RT disponibles en el comercio: la RT del virus de la mieloblastosis  aviar (AMV) y la RT del virus de la leucemia murina Moloney (MMLV) [5,6].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aunque en nuestro país la  técnica convencional para el diagnóstico del VIH es la PCR a partir de ADN  proviral [7,8], la técnica RT-PCR cualitativa podría constituir una herramienta  de apoyo en el diagnóstico del VIH en pacientes infectados, ya que una de sus  principales ventajas es el uso de muestras de plasma, en lugar de sangre total,  lo cual facilitaría el transporte de las muestras entre distintas regiones del  país. Según nuestra experiencia en el Instituto Nacional de Higiene “Rafael  Rangel” (INHRR), los pacientes que requieren estudios de PCR del VIH, son  principalmente niños menores de 18 meses y personas adultas con resultados de  pruebas serológicas indeterminadas (pacientes en la fase aguda de la infección,  con agammaglobulinemias o pacientes en periodo de ventana después de una  exposición viral). En algunos pacientes adultos que requieren la prueba  diagnóstica para el VIH y provienen de distintas regiones geográficas del país y  no disponen de recursos suficientes para trasladarse al instituto y/o se  encuentran hospitalizados, la prueba RT-PCR en plasma podría constituir un  método alternativo para la detección del VIH.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los anticuerpos contra el VIH  son detectables en aproximadamente el 95% de los pacientes dentro de los tres  meses después de la infección. Aunque una prueba serológica negativa para VIH  usualmente indica que la persona no está infectada, no excluye una infección  reciente. Las pruebas virológicas serían útiles en este caso para identificar  una infección aguda en personas que son negativas para las pruebas de detección  de anticuerpos contra el VIH y tienen un antecedente de riesgo [9].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En la actualidad existen  diversas técnicas para la cuantificación de la carga viral del VIH-1, basadas en  la amplificación de la señal (ADN-ramificado o “branched- DNA, en inglés) o en  la amplificación de la secuencia (RTPCR en tiempo real, NASBA y LCx) [10], sin  embargo estas pruebas no han sido desarrolladas con una especificidad suficiente  y pueden causar falsos positivos [11]. En estas situaciones es preferible  utilizar otras pruebas genéticas de tipo cualitativo con sensibilidad y  especificidad ampliamente demostrada, como el ADN proviral. Sin embargo, existen  situaciones especiales en que la determinación de la carga viral se puede usar  como diagnóstico de la infección por VIH, como es el caso de niños recién  nacidos de madres seropositivas, o en la primoinfección, cuando el diagnóstico  serológico está comprometido, debido al periodo de ventana inmunológica durante  la fase aguda de la infección. Se considerarán válidos sólo aquellos resultados  en lo que el nivel de viremia sea elevado, sino, es preferible descartar la  infección mediante el uso de otras pruebas [10].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En el presente estudio se  planteó como objetivo evaluar las condiciones óptimas, en cuanto al uso de  cebadores y enzima transcriptasa reversa, para la síntesis de ADN complementario  (RT-PCR) de la región de envoltura del VIH, a partir de muestras de plasma de  pacientes VIH positivos. </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Materiales y métodos</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Población estudiada: Para la  optimización de la RT-PCR se seleccionaron un total de 44 plasmas provenientes  de pacientes con serología positiva contra el VIH en edades comprendidas entre  18 y 50 años, referidos al INHRR, cuyos valores de carga viral en plasma  resultaron detectables (mayor a 1.000 copias/mL) por la técnica de b-DNA, para  el momento del estudio. Adicionalmente, se emplearon 11 muestras de pacientes  con serología negativa para VIH como controles negativos. De las muestras con  cargas virales detectables, se emplearon 20 muestras con valores bajos de carga  viral (1.000 a 10.000 copias/mL, 3-4 log10), 10 muestras con valores intermedios  (10.001-35.000 copias/ mL, 4-4,5 log10) y 14 muestras con valores elevados de  carga viral (&gt;35.000 copias/mL, 4,5 log10) [12].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Este estudio se realizó en el  marco de un proyecto titulado “Caracterización molecular del virus de  inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1) y su relación con otros virus de  hepatitis” y fue revisado por la Comisión de Bioética del Instituto Venezolano  de Investigaciones Científicas en informe del 23 de mayo de 2004 y evaluado por  la Comisión Científica del INHRR en reunión del 25 de junio de 2004.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Extracción del ARN del VIH y  amplificación por RT-PCR: De la población evaluada se obtuvieron un total de 44  muestras de sangre venosa usando EDTA al 10% en un volumen de 5 mL como  anticoagulante. Las muestras fueron procesadas en un periodo no mayor de 2 horas  después de su extracción para la obtención de plasma por centrifugación entre  800 y 1.600 g durante 20 minutos a temperatura ambiente, el cual fue transferido  a tubos de polipropileno estériles. Luego el plasma sanguíneo fue sometido a un  proceso de extracción de ARN viral mediante micro-columnas de sílica-gel (QIAGen  QIAmp Viral RNA Mini Kit), siguiendo las instrucciones del fabricante. El  material genómico extraído fue sometido a una transcripción reversa (RT) y  posteriormente se procedió a detectar la presencia o no de ADN viral mediante la  técnica de PCR a través de un ensayo a dos rondas (PCR-nested) en el que se  utilizaron cebadores altamente conservados de la región génica env del VIH-1 que  codifica un fragmento de 336 pares de bases (pb) [8]. En la etapa de  transcripción reversa (RT) se evaluaron cuatro condiciones diferentes en cuanto  al tipo y concentración de la enzima transcriptasa reversa (RT) y de los  cebadores utilizados: 1) cebador azaroso o “random primer”, en inglés (150 ng) y  enzima RT “SuperScript”TM (200 U/uL; 2) cebador específico E105: 3’GCTTTTCCT  ACTTCCTGCCAC5’(regiòn env) (10 pmol/uL y enzima RT del virus del mieloblastoma  múrino (M-MLVRT) (200 U/uL; 3) cebador específico E105 (2 pmol/uL) y enzima M-MLVRT  (200 U/uL); 4) cebador específico E105 (2 pmol/ uL) y enzima RT “SuperScript” TM  (200 U/uL). Una vez obtenido el ADNc se procedió a realizar la amplificación por  PCR con los siguientes cebadores externos: en la primera ronda, E80:  5’CCAATTCCCATACATTATTGTTG3’ y E105: 3’GCTTTTCCTACTTCCTGCCAC 5’ y en la segunda  ronda los cebadores internos: E110: 5’ CTGTTAAATGGCAGTCTAGCAGAAA 3’ y E125: 3’  CAATTTCTGGGTCCCCTCCTGAGGG 5’. En ambas rondas, la amplificación se llevó a cabo  bajo las siguientes condiciones: un ciclo de desnaturalización de 2 minutos a 95  °C seguido de 35 ciclos de 30 segundos a 95 °C de desnaturalización, 30 segundos  a 55 °C de alineamiento y 60 segundos a 72 °C de extensión. La amplificación se  completó con una extensión final de 72 °C, durante 7 minutos. La visualización  del producto amplificado, se obtuvo luego de realizar una electroforesis en gel  de agarosa al 2% por tinción con bromuro de etidio [8].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Análisis estadístico: Para el  análisis estadístico se calcularon los parámetros de sensibilidad (S),  especificidad (E), valor predictivo positivo (VPP) y valor predictivo negativo (VPN)  de cada una de las condiciones, utilizando un programa estadístico disponible  en: <a href="http://www.alemana.cl/Mbe/bioestadística.html"> http://www.alemana.cl/Mbe/bioestadística.html</a>.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Resultados</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se evaluaron diferentes  condiciones en el uso de cebadores y enzima transcriptasa reversa para la  síntesis óptima de ADN complementario (RT-PCR) de la región de envoltura del  VIH, a partir de muestras de plasma de pacientes VIH positivos. Los resultados  obtenidos en cada condición en cuanto a sensibilidad, especificidad y valor  predictivo, se expresan en la <a href="#tab1">tabla 1</a>. La sensibilidad de la  condición 1 fue mayor en comparación con el resto de las condiciones (93,5%),  mientras que la sensibilidad de las condiciones 2 y 3 fue muy semejante (82,4% y  83,3%, respectivamente), la condición 4 reflejó tener la menor sensibilidad  (69,2%). Igualmente se estimó la especificidad del ensayo (RTPCR) con las  diferentes condiciones, en donde el valor de la condición 1 (91,7%) fue muy  próximo a la condición 2 (92,3%). Las condiciones 3 y 4 fueron las menos  específicas (80,0% y 82 3%, respectivamente).</font></p>     <p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v33n2/art13tab1.gif" width="372" height="286"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Con respecto al valor  predictivo positivo (VPP), se obtuvo un 97,7% al realizar la transcripción  reversa con cebador azaroso y la enzima Super script, siendo éste el mayor  porcentaje obtenido con relación al resto de las otras condiciones. El valor  predictivo negativo (VPN) de las condiciones 1 y 2 fue idéntico (78,6%),  mientras que la condición 3 presentó el mayor VPN (80,0%) y la condición 4  presentó el menor VPN (75,0%).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Discusión</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En el presente estudio se pudo  demostrar que la condición óptima para la realización de la técnica RT-PCR para  la detección de la región de envoltura (env) del VIH a partir de muestras de  plasma, fue la condición 1, es decir, la utilización de la enzima RT  “SuperScript” TM (200 U/ uL), junto con el uso de cebadores azarosos (150 ng).  Es muy probable obtener un resultado verdadero positivo empleando esta condición  debido a su mayor sensibilidad en comparación con las otras condiciones.  Igualmente, la condición 1 presentó una alta especificidad, al igual que la  condición 2, lo que sugiere mayor capacidad para detectar un resultado verdadero  negativo. Además, la condición 1 presentó el mayor VPP, por lo que un resultado  positivo de la RT-PCR estaría asociado con una alta probabilidad de infección  por el VIH. Las condiciones 2 y 4 presentaron un VPP muy próximo, mientras que  la condición 3 presentó el menor valor. Aunque la condición 3 presentó el mayor  VPN, indicando que un resultado negativo tendría una alta probabilidad de que el  paciente no esté infectado, la condición 1 presentó un valor muy próximo al de  la condición 3 y una mayor especificidad.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La extensa variabilidad  genética observada en el VIH- 1 puede tener relevancia biológica para su  patogenicidad, transmisibilidad, desarrollo de pruebas diagnósticas, tratamiento  antirretroviral, diseño de vacunas eficaces, y finalmente, la selección de cepas  del virus resistente a drogas antirretrovirales [13].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En la actualidad, la presencia  de variantes genéticas y subtipos virales puede causar problemas en el  diagnóstico por PCR y en la cuantificación de las partículas de VIH- 1 en la  persona infectada. Estas técnicas están basadas en el uso de sondas o “primers”  que han sido diseñados tomando como referencia secuencias del subtipo B del  VIH-1. La variabilidad de las secuencias de los aislados de VIH-1 puede  ocasionar una unión inestable entre los cebadores y la secuencia blanco  correspondiente, lo cual podría originar resultados falsos negativos, o un  resultado de carga viral erróneo [14]. En este sentido, el empleo de cebadores  azarosos o “random primers” podría ser de gran utilidad, ya que genera un cDNA  que puede ser utilizado para la amplificación de cualquier región genómica del  VIH. Su uso durante la RT-PCR, tiene la ventaja de permitir la hibridación o  unión complementaria del cebador de manera simultánea en distintas regiones en  el templado de ARN, lo que a su vez permite la amplificación de múltiples  fragmentos diferentes del genoma viral en forma aleatoria, a diferencia del  cebador específico que es complementario a una única secuencia blanco [15,16].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La selección del mejor  compartimiento sanguíneo para la detección por amplificación genómica del VIH ha  sido materia de debate. En algunos estudios, incluyendo un estudio realizado en  Venezuela recientemente, se ha encontrado buena correlación entre los resultados  obtenidos de la amplificación genómica del VIH, usando dos compartimientos  diferentes (células mononucleares de sangre periférica y plasma), no  encontrándose diferencia significativa entre los resultados obtenidos,  utilizando cebadores de dos regiones genéticas distintas (env y gag) [17-19].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El método RT-PCR a partir de  muestras de plasma podría emplearse como método alternativo para el diagnóstico  de la infección por VIH en pacientes que por distintos motivos no podrían acudir  al centro de referencia para la realización de la prueba convencional en sangre  total (PCR proviral). Sin embargo, un resultado positivo empleando el método RT-PCR  no es concluyente, ya que se debe confirmar con una segunda prueba virológica  como la determinación de carga viral del VIH en el plasma del paciente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El uso de cebadores azarosos en  la metodología RTPCR tendría la ventaja de permitir la obtención de ADN  complementario (ADNc) a partir del ARN viral, que a su vez podría ser utilizado  para la amplificación de cualquier región genómica del VIH. En nuestro estudio  se obtuvo una alta sensibilidad y especificidad en la detección del VIH por PCR  de la región de envoltura, cuando se empleó ADNc obtenido mediante cebadores  azarosos. Aunque los cebadores para la amplificación de la región de envoltura  están dirigidos a las regiones más conservadas del genoma que codifica para la  envoltura viral, se sugiere la realización del estudio usando cebadores  específicos para la amplificación de la región gag del VIH, ya que constituye  una región de muy baja variabilidad genética del VIH.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Conclusiones</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos en  este trabajo sugieren que la utilización de cebadores azarosos, en una mezcla de  reacción con la enzima RT “SuperScript” TM (200 UmL), permite maximizar la  eficiencia de la amplificación del gen de la envoltura de VIH-1, en comparación  con cebadores específicos, lo que permite optimizar y ofrecer una metodología  alternativa mediante pruebas de biología molecular a partir de muestras de  plasma en aquellas personas que por diversas razones no pueden trasladarse a la  institución de referencia y que se emplearía como herramienta de apoyo para el  diagnóstico de la infección por VIH </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Agradecimiento</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A la Lic. Dulce Morón y al  Prof. Leovigildo García por su valioso aporte. A FONACIT.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Referencias</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Kwok S, Sninsky J. PCR  detection of human immunodeficiency virus type 1 proviral DNA sequences. In:  Persing DH, Smith FC, Tenover TJ, White TJ, editors. Diagnostic Molecular  Biology: Principles and Applications. Washington DC: ASM Press; 1993. p. 645-70.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022656&pid=S1315-2556201300020001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Saiki R. The Design and  Optimization of the PCR. In: Erlich H, editor. PCR Technology: principles and  applications for DNA amplification. New York:W.H. Freeman and Company. 1992.  pp.7-17.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022657&pid=S1315-2556201300020001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Pacheco M, Monzón A.  Diagnóstico, pronóstico e interpretación de los resultados de laboratorio en la  infección por VIH. Act Cient Soc Venez Bioanal Esp. 2001; 7:24-36.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022658&pid=S1315-2556201300020001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Loureiro C, Devesa M, Pujol  F. Reacción en cadena de la polimerasa y aplicaciones en el diagnóstico clínico.  Act Cient Soc Venez Bioanal Esp. 2001; 7:17-35.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022659&pid=S1315-2556201300020001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Gerard G, Fox D, Nathan M,  D’Alessio J. Reverse transcriptase. The use of cloned Moloney murine leukemia  virus reverse transcriptase to synthesize DNA from RNA. Mol Biotechnol. 1997;  8:61-77.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022660&pid=S1315-2556201300020001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Fuchs B, Zhang K, Rock M,  Balander M, Sarkar G. High temperature cDNA synthesis by AMV reverse  transcriptase improves the specificity of PCR. Mol Biotechnol.1999; 12:237-40.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022661&pid=S1315-2556201300020001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Programa Nacional de SIDA/ITS.  Guía para el manejo del tratamiento antirretroviral de las personas que viven  con el VIH/SIDA en Venezuela. 3a ed. 2008-2009. Disponible en: <a href="http://www.svinfectologia.com/sida/Guia%20TARV-08.pdf"> www.svinfectologia.com/sida/Guia%20TARV-08.pdf</a>. Acceso 14 de abril 2010.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022662&pid=S1315-2556201300020001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. D’Angelo P, Ameli G,  Gutiérrez C. Detección del virus de inmunodeficiencia humana tipo 1 mediante la  PCR, en neonatos de madres seropositivas. Rev Soc Ven Microbiol. 2007; 27:79-84.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022663&pid=S1315-2556201300020001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Centers for Disease Control  and Prevention.Sexually Transmitted Diseases.Treatment Guidelines, 2010. MMWR  2010; 59:1-116.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022664&pid=S1315-2556201300020001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. García F, Álvarez M, Bernal  C, Chueca N, Guillot V. Diagnóstico de laboratorio de la infección por el VIH,  del tropismo viral y de las resistencias a los antirretrovirales. Enferm Infecc  Microbiol Clin. 2011. Disponible en Doi:10.1016/j.eimc.2010.12.006. Acceso 15 de  mayo 2013.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022665&pid=S1315-2556201300020001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. De Mendoza C, Holguín A,  Soriano V. False positives for HIV using commercial viral load quantification  assays. AIDS. 1998; 12:2076-7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022666&pid=S1315-2556201300020001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Mellors J, Muñoz A, Giorgi  J, Margolick J, Tassoni C, Gupta P et al. Plasma viral load and CD4+ lymphocytes  as prognostic markers of HIV-1 infection. Ann Intern Med. 1997;126:946- 54.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022667&pid=S1315-2556201300020001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Gutiérrez. C. Biología  molecular del virus de inmunodeficiencia humana (VIH). Act Cient Soc Venez  Bioanal Esp. 2001; 7:9- 17.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022668&pid=S1315-2556201300020001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Holgín A, Soriano V.  Epidemiología molecular del VIH. En Soriano V, González-Lahoz J, editores.  Manual del SIDA. 5ta. ed. Madrid: Permanier; 2003.p.137-149.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022669&pid=S1315-2556201300020001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Feinberg A, Vogelstein B. A  technique for radiolabeling DNA restriction endonuclease fragments to high  specific activity. Anal Biochem.1983; 132:6-13.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022670&pid=S1315-2556201300020001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Davidson College,  Department of Biology, 2002. Disponible en: www.bio.davidson.edu/.../randompriming.htlm.  Acceso 13 de marzo 2010.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022671&pid=S1315-2556201300020001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Rangel H, Garzaro D, Fabro  R, Fernández D, Gutiérrez C, Martinez N et al. Comparative analysis of  polymorphisms in the HIV type 1 pol gene in the proviral DNA and viral RNA in  the peripheral compartment. AIDS Res and Hum Retroviruses. 2009; 25:837-41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022672&pid=S1315-2556201300020001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Chew C, Potter S, Wang Y,  Shaw C, Dwyer D, Saksena N. Assessment of drug resistance mutations in plasma  and peripheral blood mononuclear cells at different plasma viral loads in  patients receiving HAART. J Clin Virol. 2005; 33:206-16.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022673&pid=S1315-2556201300020001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Gutiérrez C, D’Angelo P,  Ameli G, Ariza H. Evaluación de dos compartimientos sanguíneos en la  determinación genómica del VIH por PCR en Pacientes Venezolanos. En: Libro de  Resúmenes: XX Congreso Latinoamericano de Microbiología. Montevideo. 2010.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2022674&pid=S1315-2556201300020001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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