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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de hongos micorrízicos arbusculares y del estiércol de ovino en el desarrollo inicial de la lechosa (Carica papaya L.) var. Maradol roja]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) and the use of manure are sustainable practices with minim impact on the ecosystem that can improve the growth and nutrition of plants. The objective of this work was to evaluate the effect of AMF and ovine manure on the initial growth of papaya plants (Carica papaya L.) var. Maradol Roja. Five treatments were evaluated: plants cultivated in sand inoculated with Scutellospora fulgida (SF), Funneliformis mosseae (FM) and Glomus manihotis (GM), and two controls, a commercial substrate (sand with ovine manure, E), and sand alone. The AMF or the manure were mixed with the sand in a 1:2 volumetric proportion. A completely randomized experimental design was used with twenty repetitions. At day 60 after the inoculation the following variables were measured: percentage of colonization by AMF (PCA), plant height (PH), number of leaves and nodes, radical system length, stem diameter, dry biomass of aerial part, leaf area (LA), LA index (LAI), and contents of chlorophyll a (Ca), b (Cb), both chlorophylls (Cab), and carotenoids (Cc). The analysis detected significant differences (P&#8804;0.05) for PCA, LA, LAI, PH, Ca, Cb, Cab y Cc by effect of the applied treatments. It was concluded that the AMF (SF, MF and GM) and E influenced the initial growth and contents of chlorophylls and carotenoids in the papaya plants, and obtained the highest Ca. The plants on substrates with ovine manure reached the maximum Cab, Cb and Cc.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p style="text-autospace: none" align="center"><font face="Verdana"><b>Efecto de  hongos micorrízicos arbusculares y del estiércol de ovino en el desarrollo  inicial de la lechosa (<i>Carica papaya </i>L.) var. Maradol roja</b></font></p>     <p style="text-autospace: none" align="center"><font face="Verdana" size="2"> Ángel Y. Pírela-Almarza<sup>1</sup>, Oscar E. Aguirre-Serpa<sup>1</sup>, Maribel  del C. Ramírez-Villalobos<sup>1</sup>, Belkis Petit<sup>2</sup>, Belkys Bracho<sup>3</sup>  e Irán Parra<sup>4</sup></font></p>     <p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <sup>1</sup> Dpto. de Botánica, <sup>2</sup> Depto. Fitosanitario, <sup>3</sup>  Depto. de Estadística. <sup>4</sup> Depto. de Química. Facultad de Agronomía.  Universidad del Zulia (LUZ). Maracaibo, Venezuela. e-mail: <a href="mailto:mcramire@fa.luz.edu.ve">mcramire@fa.luz.edu.ve</a></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span lang="ES-MX">RESUMEN</span></b></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana"><span lang="ES-VE"> <font size="2">La inoculación de hongos micorrízicos arbusculares (HMA) y el uso  de estiércol son prácticas sostenibles con mínimo impacto al ecosistema que  favorecen el crecimiento y la nutrición de las plantas. </font></span> <font size="2">El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto de los HMA y  del estiércol de ovino en el crecimiento inicial de la lechosa (<i>Carica papaya</i>  L.) var. </font><span lang="ES-VE"><font size="2">Maradol Roja. Se evaluaron los  cinco tratamientos siguientes: plantas cultivadas en arena inoculada con los HMA <i>Scutellospora fulgida</i> (SF), <i>Funneliformis mosseae</i> (FM) y <i>Glomus  manihotis</i> (GM), y dos testigos (el comercial de arena con estiércol de  ovino, E, y el absoluto de solo arena. Los sustratos estuvieron conformados por  dos partes de arena y una de HMA (SF, FM y GM) o de estiércol. El diseño  experimental fue totalmente al azar con veinte repeticiones. A los 60 días de la  inoculación se evaluaron porcentaje de colonización por hongos micorrízicos &nbsp;(PCH),  altura de planta (AP), número de hojas, número de nudos, longitud del sistema  radical, diámetro del tallo, biomasa seca de la parte aérea, área foliar (AF),  índice de AF (IAF) y contenidos de clorofila a (Ca), b (Cb), ambas clorofilas (Cab)  y de carotenoides (Cc). </font></span><font size="2">El análisis estadístico  determinó diferencias significativas (P&#8804;0,05) para PCH, AF, IAF, AP, Ca, Cb, Cab  y Cc por efecto de los tratamientos. </font><span lang="ES-VE"><font size="2">Se  concluye que SF, MF, GM y E influyeron en el desarrollo inicial, y en los </font> </span><span lang="ES-MX"><font size="2">contenidos de clorofilas y carotenoides</font></span><span lang="ES-VE"><font size="2">  en las plantas </font></span><span lang="ES-MX"><font size="2">de lechosa. El  tratamiento con estiércol de ovino alcanzó los máximos Cab, Cb y Cc.</font></span></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b><span lang="ES-VE">Palabras  clave adicionales:</span></b><span lang="ES-VE"> <i>Funneliformis mosseae</i>, <i>Glomus manihotis</i>, HMA, papaya, <i>Scutellospora fulgida</i></span></font></p>     <p style="text-align: center"><font face="Verdana" size="2"><b> <span lang="EN-GB" style="letter-spacing: -.1pt; background: white">Effect of  arbuscular mycorrhizal fungi and ovine manure on the initial growth of papaya </span><span lang="EN-GB" style="letter-spacing: -.1pt">(<i>Carica papaya</i>  L.) </span></b> <span lang="EN-GB" style="color: black; letter-spacing: -.1pt; font-weight: 700"> '</span><span lang="EN-GB" style="letter-spacing: -.1pt; font-weight: 700">Maradol  roja</span><span lang="EN-GB" style="color: black; letter-spacing: -.1pt; font-weight: 700">'</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><font face="Verdana" size="2"><b> <span lang="EN-US">ABSTRACT</span></b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><span lang="EN-US">The  inoculation of arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) and the use of manure are  sustainable practices with minim impact on the ecosystem that can improve the  growth and nutrition of plants. The objective of this work was to evaluate the  effect of AMF and ovine manure on the initial growth of papaya plants (<i>Carica  papaya</i> L.) var. Maradol Roja. Five treatments were evaluated: plants  cultivated in sand inoculated with <i>Scutellospora fulgida</i> (SF), <i> Funneliformis mosseae</i> (FM) and <i>Glomus</i> <i>manihotis</i> (GM), and two  controls, a commercial substrate (sand with ovine manure, E), and sand alone.  The AMF or the manure were mixed with the sand in a 1:2 volumetric proportion. A  completely randomized experimental design was used with twenty repetitions. At  day 60 after the inoculation the following variables were measured: percentage  of colonization by AMF (PCA), plant height (PH), number of leaves and nodes,  radical system length, stem diameter, dry biomass of aerial part, leaf area  (LA), LA index (LAI), and contents of chlorophyll a (Ca), b (Cb), both  chlorophylls (Cab), and carotenoids (Cc). The analysis detected significant  differences (</span><span lang="EN-GB">P&#8804;0.05</span><span lang="EN-US">) for PCA,  LA, LAI, PH, Ca, Cb, Cab y Cc by effect of the applied treatments. It was  concluded that the AMF (SF, MF and GM) and E influenced the initial growth and  contents of chlorophylls and carotenoids in the papaya plants, and obtained the  highest Ca. The plants on substrates with ovine manure reached the maximum Cab,  Cb and Cc.</span></font></p>     <p align="justify"><b><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana"> Additional key words</span></b><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">:  AMF, </span><i><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana"> Funneliformis mosseae</span></i><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">, <i>Glomus manihotis</i>, <i>Scutellospora fulgida</i>e</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: Agosto 26, 2016  Aceptado: Julio 3, 2017</font></p>      <p style="text-align: justify"><b><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">INTRODUCCIÓN</span></font></b></p>     <p align="justify"><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">El  deterioro ambiental y la disminución de la productividad de los suelos hace  prioritario la implementación de estrategias que disminuyan dichos problemas,  entre las que sobresale el uso de algunos microorganismos como los hongos  micorrízicos arbusculares (HMA), que se perfilan como una de las opciones  biotecnológicas con mayor futuro (López et al., 2005), así como, la aplicación  de estiércoles. Ambas prácticas son sostenibles con mínimo impacto a los  ecosistemas.</span></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">La lechosa (<i>Carica papaya </i>L.) pertenece a la familia  Caricaceae su fruto es muy apreciado tanto para el consumo en fresco como para  la industrialización (Hoyos, 1999). En el año 2014, Venezuela tenía unas 7562 ha  sembradas con una producción de 143.268 t (FEDEAGRO, 2016). </span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Entre las variedades cultivadas en el país, se encuentra la  Maradol por su capacidad de adaptación a diferentes tipos de suelo y tolerancia  a virosis y otras enfermedades. En el cultivo de la lechosa, una de las  principales limitantes siguen siendo las enfermedades y plagas. Herrera et al.  (2014) han señalado que los HMA son una alternativa para actuar como factores de  protección contra patógenos de raíces. </span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Los HMA también se han involucrado con un mejor crecimiento  de numerosas plantas de importancia económica, como los frutales (López et al.,  2005). Quiñones et al. (2014b) informaron que la micorrización previa al  trasplante de las plantas, que requieren de una etapa de vivero, puede  proporcionar beneficios económicos a los productores agrícolas al disminuir el  empleo de fertilizantes y plaguicidas.</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">En otros países, se ha reportado que la lechosa responde  positivamente a la inoculación con HMA (López et al., 2005; Khade y Rodrigues,  2009; Constantino et al., 2010; Quiñones et al., 2014a, 2014b) y su estudio se  ha abordado desde múltiples enfoques, destacándose trabajos que muestran la  importancia de inocular con HMA en vivero, antes de realizar el trasplante en  campo, porque mejoran la nutrición, el vigor y la calidad de las plantas  (Constantino et al., 2010). Desde hacen unas décadas países, como República  Dominica, han disminuido la cantidad de productos químicos en los cultivos e  incrementado el uso de las enmiendas orgánicas como alternativa de fertilización  para mejorar la fertilidad de los suelos (Pérez et al., 2008). El presente  trabajo de investigación tuvo como objetivo evaluar el efecto de los HMA y del  estiércol de ovino en el desarrollo inicial de la lechosa var. Maradol Roja.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><b><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">MATERIALES Y MÉTODOS</span></font></b></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">El experimento se realizó en el Unidad Técnica Fitosanitaria,  Facultad de Agronomía-LUZ, municipio Maracaibo, estado Zulia, ubicada en una  zona de vida “Bosque Muy Seco Tropical” a 10º41’N y 71º38’W, a una altitud de 25  m,&nbsp; con promedios anuales de 500 mm de precipitación, 29 ºC de temperatura, 79 %  de humedad relativa, 2500 mm de evapotranspiración (Huber y Oliveira, 2010)<span style="background: white">.</span></span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Las plantas de lechosa var. Maradol Roja se obtuvieron de  semillas certificadas F1 de la empresa Semillas del Caribe. Las semillas se  almacenaron a 10 ºC durante una semana antes de la siembra, la cual se hizo en  bandejas </span><span lang="ES-MX" style="background: white">de polietileno </span><span lang="ES-MX">de 200 celdas (3 cm de alto x 2,5 cm de diámetro) que  contenían un sustrato de arena. Se colocó </span> <span lang="ES-MX" style="background: white">una semilla por celda </span> <span lang="ES-MX">a una </span><span lang="ES-MX" style="background: white"> profundidad de 0,5 cm y se regó de forma manual, diariamente.</span></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX" style="background: white">Transcurridos 20 días, se realizó  el trasplante de </span><span lang="ES-MX">una planta a un<span style="background: white">  vaso plástico blanco </span></span><span lang="ES-MX" style="color: #231F20"> (10,5 cm de alto x 9 cm de diámetro), que contenía A y el</span><span lang="ES-MX" style="background: white">  inoculo concentrado de los HMA </span><i><span lang="ES-MX">S. fulgida </span> </i><span lang="ES-MX">(SF) (<span style="background: white">281 esporas&#903;100 g<sup>-1</sup>)</span>, <i>F. mosseae </i>(FM) (<span style="background: white">1633 esporas&#903;100 g<sup>-1</sup>)  y </span><i>G. manihotis </i>(GM) (<span style="background: white">496  esporas&#903;100 g<sup>-1</sup></span>)<span style="background: white">, en  proporción volumétrica dos partes de arena y una del inoculo.</span> El inóculo  poseía <span style="background: white">100 % de pureza y </span>fue adquirido  por la Unidad Técnica Fitosanitaria a través de la <span style="background: white">empresa Micoven, IVIC. </span></span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX" style="background: white">Adicionalmente, se usaron dos  testigos, el comercial que correspondió al sustrato de dos partes de A y una de  estiércol de ovino lavado (E) (materia orgánica) y el otro que consistió de solo  A </span><span lang="ES-MX" style="color: #231F20">para un total de cinco </span> <span lang="ES-MX" style="background: white">tratamientos: </span> <span lang="ES-MX">SF, FM, GM,<span style="background: white"> E y A</span>. </span><span lang="ES-MX" style="color: #231F20">La A y el E se esterilizaron en  autoclave a 121 ºC y 1 atm</span><span lang="ES-MX"> de presión por </span> <span lang="ES-MX" style="color: #231F20">una hora. </span> <span lang="ES-MX" style="background: white">Las plantas se mantuvieron dentro  de una estructura metálica de 2 m de largo x 1 m de ancho x 1,5 m de alto,  cubierta con una malla antiafidos que ofrecía un 80% de sombra. Durante esta  fase se aplicó un riego cada dos días. </span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">El experimento<b> s</b>e realizó bajo un diseño totalmente al  azar con veinte repeticiones y una planta como unidad experimental. A l</span><span lang="ES-VE">os  60 días después del trasplante,</span><span lang="ES-MX"> se evaluaron:  porcentaje de colonización por HMA (PCH), altura de la planta (AP), número de  hojas (NH), número de nudos (NN), longitud del sistema radical (LSR), diámetro  del tallo (DT), área foliar por planta (AF), índice de AF (IAF) y contenidos de  clorofila a (Ca), </span>clorofila <span lang="ES-MX">b (Cb), ambas clorofilas (Cab)  y de carotenoides (Cc). </span></font></p>     <p align="justify"><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">El PCH  se calculó mediante la relación del número de segmentos de raíz colonizados por  HMA -con presencia de micelio, arbúsculos y </span> <font face="Verdana" size="2"><span lang="ES-MX">vesículas- entre el número de  segmentos de raíz observados, multiplicada por 100. Para teñir las estructuras  fúngicas se siguió el método de clareo y tinción azul de Tripano de Phillips y  Hayman (1970).&nbsp; La medición de la AP se realizó desde la base del tallo hasta el  ápice terminal de la planta y la LSR desde el ápice de la raíz más larga hasta  la base del tallo. El AF se obtuvo mediante un planímetro óptico Delta T-Devices  Mkm2. El IAF se determinó mediante la relación del área foliar por planta entre  el área del suelo. La biomasa seca se obtuvo después del secado de la parte  aérea de cada planta, a 74 ºC durante 72 h en una estufa Gemmy. </span></font> </p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">En las plantas, la luz destinada a impulsar el proceso  fotosintético es absorbida por dos tipos de pigmentos las clorofilas (a y b,  verdes) y los carotenoides (amarillo-anaranjados) que son moléculas cromóforas  sensibles a la radiación luminosa y extraordinariamente eficaces en la absorción  de luz (Rivas, 2013). La determinación de Ca, Cb, Cab y Cc se hizo mediante el  método colorimétrico de extracción y pigmentación de elementos vegetales (Wellburn,  1994), para lo cual se usaron&nbsp; cinco plantas por tratamiento y se recolectaron  las hojas sanas totalmente expandidas y sin daños mecánicos. A continuación, se  maceró 0,5 g de hojas en 6 mL de una solución de acetona y metanol en proporción  2:1, luego de 24 h de estabilización, se centrifugó por 10 min a 4293,12 g y se  realizó inmediatamente la lectura de absorbancia (Ab) a través de  espectrofotometría UV visible. Los contenidos de Ca, Cb, Cab y Cc, en µg&#903;mL<sup>-</sup>¹,  se calcularon mediante las siguientes ecuaciones, donde el volumen del extracto  y sobrenadante se expresó en mililitros.</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Ca = (12,21*Ab<sub>647</sub>) - (2,81*Ab<sub>664</sub>) *  volumen del extracto/volumen del sobrenadante </span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Cb = (20,13*Ab<sub>647</sub>) - (5,03*Ab<sub>664</sub>) *  volumen del extracto/volumen del sobrenadante</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Cc = (Ab<sub>480</sub>*4) * volumen del extracto/volumen del  sobrenadante * 2</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">El análisis estadístico se hizo a través de un análisis de la  varianza utilizando el procedimiento GLM del programa SAS<sup> </sup>V.9.1.3  Cary, NC. Cuando hubo diferencias significativas entre los tratamientos se  utilizó el método de Tukey para la separación de medias.</span></font></p>     <p style="text-align: justify"><span style="text-transform: uppercase"><b> <font face="Verdana" size="2"><span lang="ES-MX">Resultados Y DISCUSIÓN</span></font></b></span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; letter-spacing: -.1pt">El  análisis de varianza determinó efecto significativo (P&#8804;0,001) en PCH, AF, IAF y  AP por efecto de los tratamientos aplicados (<a href="#cua1">Cuadro 1</a>). El mayor PCH fue  alcanzado cuando las plantas se cultivaron en sustrato inoculado con FM, el cual  presentó diferencias significativas con el de GM y SF, que fueron  estadísticamente iguales.</span></p>     <p align="center"> <a name="cua1"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v30n1/art08cua1.gif" width="575" height="193"></a></p>     
<p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Los PCH obtenidos en la presente investigación demostraron  que <i>F. mosseae</i> tuvo una mayor asociación simbiótica con la plántula de  lechosa var. Maradol Roja, la respuesta fue positiva y alcanzó un 47 %, valor  que se ubicó dentro del rango obtenido por Khade y Rodrigues (2009) en seis  variedades de lechosa micorrizadas, </span><span lang="ES-VE">de 26 a 77 %, </span><span lang="ES-MX">y superó la señalada para Maradol con </span><i> <span lang="ES-VE">F. mosseae </span></i><span lang="ES-VE">- C4 (39 %)</span><span lang="ES-MX">, </span><i><span lang="ES-VE">F. mosseae </span></i><span lang="ES-VE">- C23 (11  %)</span><span lang="ES-MX"> (Herrera et al., 2014), </span><i> <span lang="ES-VE">G. intraradices</span></i><span lang="ES-VE"> (18,5 %)  (Constantino et al., 2010) </span><span lang="ES-MX">y </span><i> <span lang="ES-VE">Glomus </span></i><span lang="ES-VE">spp. Zac-19</span><span lang="ES-MX">  (17 %) (López et al., 2005).</span></font></p>     <p align="justify"><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">En la  India t</span><span lang="ES-VE" style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">rece  especies de HMA, algunas pertenecientes al género <i>Glomus</i>, presentaron  asociación simbiótica con seis variedades de lechosa (</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">Khade  y Rodrigues, 2009). Bergamo </span><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">(2013) concluyó que <i>F. mosseae</i> fue el HMA que mostró  alta compatibilidad con plantas de parchita, porque permitió alcanzar el mayor  crecimiento y desarrollo de la planta. En <i>Capsicum frutescens</i>, <i>F</i>. <i>mosseae</i> también presentó mayor afinidad con la planta hospedera, 58,47 %  de colonización por HMA (Jiménez, 2015).</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">La mayor AF</span><span lang="ES-VE"> e IAF se obtuvo con las  condiciones de </span><span lang="ES-MX">GM, E y FM que fueron estadísticamente  iguales (<a href="#cua1">Cuadro 1</a>). Estos resultados concuerdan con lo informado por López et  al. (2005), quienes obtuvieron mayor AF cuando la lechosa se asoció con </span> <i><span lang="ES-VE">Glomus </span></i><span lang="ES-VE">spp. Zac-19. Sin  embargo, </span><span lang="ES-MX">en una investigación de aguacate no se  encontraron efectos positivos de los HMA sobre el IAF, cuando las plantas se  inocularon con <i>G. hoi-like</i> y <i>F. mosseae</i>, no hubo especificidad o  afinidad con la planta hospedera (Rivera et al., 2011).</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Las plantas de los tratamientos GM, E y FM aumentaron su  inversión en la producción de AF, lo que permitiría mayor &nbsp;actividad  fotosintética o producción de fotoasimilados que fueron necesarios para el  establecimiento de la simbiosis entre los HMA y las plantas de lechosa, así  como, para el desarrollo de ésta. La respuesta observada en GM y FM se asoció al  grado de compatibilidad de éstas con la planta hospedera, y en E se relacionó  con las propiedades físico-químicas del sustrato y al aporte nutricional del  estiércol de ovino. </span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Con respecto al comportamiento de este último tratamiento  (E), tiene similitud con lo obtenido por </span><span lang="ES-VE">Quiñones et  al. (2014b) en lechosa, las plantas cultivadas en la mezcla cachaza (suelo,  composta de cachaza de caña de azúcar y arena, 2:2:1 v/v/v) con y sin HMA  presentaron un crecimiento similar. Los autores explicaron que ello puede  deberse a que algunas fuentes de materia orgánica son ricas en nutrientes  disponibles y pueden promover el buen crecimiento de las plantas sin necesidad  de estar micorrizadas. </span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">En relación al estiércol, favorece el crecimiento de las  plantas por su contribución en la nutrición (Vázquez et al., 2011). Los  estiércoles, materia orgánica o fertilizantes orgánicos aportan cantidades  notables de nutrientes esenciales, principalmente nitrógeno, fósforo y potasio,  al suelo y a las plantas, el de nitrógeno es de descomposición relativamente  lenta y su acción favorece la multiplicación rápida de la microflora del suelo.  La composición del estiércol de ovino es de 38,5 % agua y 45,6 % de materia  orgánica, pH de 8,51, proporción carbono a nitrógeno (C/N) de 14,3 (Barrer,  2009) y de 1,72 a 2,3 % de nitrógeno (Pérez et al., 2008).</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Entre los beneficios de los HMA se encuentra que &nbsp;éstos  &nbsp;desarrollan &nbsp;un &nbsp;micelio &nbsp;interno &nbsp;dentro de la corteza de la raíz, que se  extienden a través del suelo mediante una red de hifas que constituyen el  micelio externo, ambos micelios conforman un sistema altamente especializado (Barea  et al., 1991) y eficaz en la toma de minerales de lenta absorción, como los  fosfatos (Barea et al., 1991; </span><span lang="ES-VE">Bonilla, 2013; Quiñones  et al., 2014a</span><span lang="ES-MX">), el </span><span lang="ES-VE">cobre y  el zinc,</span><span lang="ES-MX"> y otros nutrientes minerales del suelo para  ser transportados a la planta (Herrera et al., 2014). Khade y Rodrigues (2009) </span><span lang="ES-VE">encontraron que el fósforo y el potasio disponibles,  así como, el nitrógeno total estuvieron positivamente correlacionados con la  colonización de la raíz. </span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-VE">La respuesta observada en las plantas micorrizadas de la  variedad Maradol Roja se relacionó con la asociación simbiótica que facilita la  absorción de nutrientes. Fernández et al. (2013) explicaron que los hongos  micorrízicos del tipo arbuscular expresan un transportador de fosfato de alta  afinidad en la parte externa de las hifas del hongo. Luego, el fosfato  incorporado por el hongo se transporta hacia los arbúsculos probablemente en  forma de polifosfato. </span></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Los HMA también contribuyen en la mejora de la &nbsp;estructura y  fertilidad del suelo o sustrato y en el almacenamiento de carbono mediante  glomalina (proteína sintetizada por estos hongos), entre otros. Por su parte, la  planta le suministra al hongo fuentes de carbono procedentes de la fotosíntesis,  proceso que el hongo no puede realizar por sí mismo, y le brinda protección. La  simbiosis HMA-planta o asociación es prácticamente universal, mutualista y ambos  componentes, el hongo y la planta, resultan beneficiados (Barea et al., 1991). </span></font></p>     <p align="justify"><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">Para la  AP, los tratamientos GM, FM, SF y A&nbsp; fueron semejantes estadísticamente y  mostraron los mayores alturas. El E presentó el menor valor pero tuvo igual  respuesta que SF y GM. En </span> <span lang="ES-VE" style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">lechosa tipo  Cera, las cepas <i>Glomus </i>sp<i>. </i>Zac-2 y<i> G. aggregatum </i>FS-39  incrementaron la AP (Quiñones et al., 2014b), lo cual tiene similitud con lo  observado en la variedad Maradol Roja en donde los HMA permitieron mejorar la  AP.</span></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">En AP, se encontró que la A tuvo igual respuesta que la  aplicación de HMA en el sustrato (<a href="#cua1">Cuadro 1</a>), posiblemente por cubrir los  requerimientos de las plantas durante esta fase inicial de la lechosa. Este  comportamiento no se corresponde con lo indicado por López et al. (2005), que la  asociación de lechosa con </span><i><span lang="ES-VE">Glomus </span></i> <span lang="ES-VE">spp. Zac-19 aumentó la AP. </span><span lang="ES-MX"> Salamanca y Cano (2005) obtuvieron mayor crecimiento expresado en AP, DT y  biomasa de la raíz en mandarina Cleopatra cuando se cultivó con <i>G. manihotis</i>. </span></font></p>     <p align="justify"><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">Con  respecto a BSA, NH, NN, LR y DT, estas variables no presentaron diferencias  significativas por efecto de los tratamientos (<a href="#cua2">Cuadro 2</a>). </span> <span lang="ES-VE" style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">En México,  Zulueta et al. (2015) encontraron que los HMA si favorecieron el  crecimiento-expresado en AP, DT y NH- y la supervivencia de la Caricacea&nbsp; <i> Jacaratia mexicana </i>trasplantadas dentro de un área fragmentada del bosque  tropical seco ubicado en la parte central del estado de Veracruz. Por su parte,  Herrera et al. (2014) registraron los valores más altos de AP y DT en plantas de  Maradol micorrizadas con cepas nativas de México, entre ellas <i>F. mosseae</i>.  Adicionalmente, Quiñones et al. (2014a) concluyeron que la AP, el DT y la  biomasa seca incrementaron notablemente cuando las plantas de lechosa var. Cera  se inocularon con <i>Glomus</i> sp. Zac-2.</span></p>     <p align="center"><a name="cua2"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v30n1/art08cua2.gif" width="578" height="199"></a></p>     
<p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-VE">Contrariamente, en el presente trabajo se obtuvo que la AP</span><span lang="ES-MX">  no incrementó en las plantas micorrizadas, y el NH y el DT no mostraron  diferencias por efecto de los tratamientos aplicados. Algunos autores han  indicado que l</span><span lang="ES-VE">a diversidad de respuesta de la papaya  hacia los</span><span lang="ES-MX"> HMA </span><span lang="ES-VE">sugiere que la  capacidad</span><span lang="ES-MX"> de acumulación de materia seca (entre otras  variables), </span><span lang="ES-VE">producto de la asociación planta-hongo,  depende de la variedad, la especie vegetal y la especie de </span> <span lang="ES-MX">HMA (Quiñones et al</span><span lang="ES-VE">.</span><span lang="ES-MX">,  2014a).</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">En otras especies como el pimentón, se obtuvo mayor biomasa  seca cuando se inoculó con <i>G. manihotis</i> (Rojas, 2010); en mandarina  Cleopatra, la BSA fue superior cuando creció en sustratos tratados con varios  HMA introducidos, entre ellos <i>G. manihotis</i> (Salamanca y Cano, 2005). En  parchita, las plantas micorrizadas presentaron mayor biomasa fresca de la raíz (Bergamo,  2013).</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">El análisis de varianza determinó efecto significativo  (P&#8804;0,001) en Cab, Ca, Cb y Cc por efecto de los tratamientos aplicados (<a href="#cua3">Cuadro  3</a>). Los tratamientos con E y SF presentaron los mayores Cab y Cc, y fueron  estadísticamente iguales. En el Ca, todos los sustratos, exceptuando la A,  obtuvieron el mismo comportamiento; la A registró el menor valor que fue  significativamente similar al de E y GM.</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="center"><a name="cua3"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v30n1/art08cua3.gif" width="577" height="203"></a></p>     
<p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Para Cb, el mejor tratamiento fue el de E que mostró igual  respuesta que SR. Los menores Cab, Ca, Cb y Cc los reportó la A. El E se ubicó  entre los mejores valores de Cab, Ca, Cb y Cc (<a href="#cua3">Cuadro 3</a>), lo cual se podría  atribuir a la cantidad de materia orgánica o estiércol de ovino presente en el  sustrato, lo cual también ha sido indicado por Salamanca y Cano (2005). Las  plantas de lechosa cultivadas en A presentaron los menores Cab, Ca, Cb y Cc, lo  que demostró que en la etapa inicial de desarrollo de la variedad Maradol Roja  fue importante que el sustrato contenga materia orgánica o sea inoculado con HMA.</span></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">A mayor  contenido de clorofila a y b en las hojas, mayor es la absorción de luz de  longitudes de ondas diferentes, y por ende, se incrementa la fotosíntesis y el  crecimiento de la planta (Rivas, 2013). La investigación de Díaz et al. (2013)  señala que las plantas de pimentón asociadas con <i>G. intraradices </i>y <i> Rhizofagus intraradices</i> mostraron incrementos en el índice de clorofila.</span></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">La AP, el AF, el IAF, Ca, Cb, Cab y Cc aumentaron  directamente con el crecimiento y el desarrollo de las plantas de lechosa  Maradol Roja, las cuales habrían convertido </span><span lang="ES-VE">el dióxido  de carbono en biomasa a través de la fotosíntesis</span><span lang="ES-MX">  (Revilla y Zarra, 2013). El crecimiento y el desarrollo se vieron favorecidos  con la asociación HMA-planta hospedera mediante la estimulación de la actividad  fotosintética para la captura de carbono, que compensa la transferencia continua  que el micosimbionte demanda de su hospedero, así como, con la mejora de la  disponibilidad de</span><span lang="ES-VE"> los nutrientes para la planta, al </span><span lang="ES-MX">incrementar la captación de agua y de nutrimentos como  P, N, K y Ca (Barrer, 2009).</span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Los resultados obtenidos en esta investigación del efecto de  los tratamientos con los HMA <i>S. fulgida</i>, <i>F. mosseae</i> y <i>G.  manihotis</i> y con el estiércol de ovino sobre el desarrollo vegetativo inicial  de la lechosa var. Maradol Roja, durante la fase inicial, representaron una gran  contribución para esta especie en Venezuela, en virtud de que no se dispone de  este tipo de información, y además, sientan las bases para posteriores  investigaciones. </span></font></p>     <p style="text-align: justify"><span style="text-transform: uppercase"><b> <font face="Verdana" size="2"><span lang="ES-MX">Conclusiones</span></font></b></span></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">Los tratamientos con los hongos micorrízicos arbusculares <i> S. fulgida</i>, <i>F. mosseae</i> y<i> G. manihotis</i>, y con estiércol de  ovino lavado influyeron en el desarrollo inicial y los contenidos de clorofilas  y caroteniodes en plantas de lechosa var. Maradol Roja. </span></font></p>     <p style="text-indent: 0cm" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="ES-MX">La inoculación del sustrato con <i>F. mosseae</i> permitió el  mayor<i> </i>porcentaje de colonización por hongos micorrízicos arbusculares</span><span lang="ES-MX" style="color: #222222">.</span></font></p>     <p align="justify"><i><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">S.  fulgida</span></i><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">, <i>F.  mosseae</i>,<i> G. manihotis</i> y con estiércol de ovino lavado permitieron el  mayor contenido de clorofila a. El estiércol de ovino presentó las máximas  cantidades de clorofila ab, clorofila b y carotenoides.</span></p>      <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Barea, J., M. Azcón, C.  Aguilar, J. Ocampo y R. Azcón. 1991. Morfología, anatomía y citología de las  micorrizas versículoarbusculares. Cap. 17. Fijación y movilización biológica de  nutrientes. Madrid. Edit. Consejo Superior de Investigaciones Científicas 2. pp.  150-171.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709048&pid=S1316-3361201800010000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Barrer, S. 2009. El uso de  hongos micorríticos arbusculares como una alternativa para la agricultura.  Revista de la Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad Industrial de  Santander, Bucaramanga, Colombia. 2: 120- 126.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709049&pid=S1316-3361201800010000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">3.  Bergamo, B. 2013. Efecto de <i>Funneliformis mosseae </i>y <i>Diversispora  spurca </i>sobre el crecimiento y desarrollo de plantas de parchita <i> Passiflora edulis </i>Sims. bajo condiciones de vivero<i>. </i>Tesis de Grado.  Universidad de Oriente. Venezuela. 56 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709050&pid=S1316-3361201800010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">4.  Bonilla, I. 2013. Introducción a la nutrición mineral de las plantas. Los  elementos minerales. <i>In</i>: J. Azcón y M. Talón (eds.). Fundamentos de  Fisiología Vegetal. McGraw-Hill Interamericana de España. Madrid. pp. 103-121.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709051&pid=S1316-3361201800010000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">5.  Constantino, M., R. Gómez, J. Álvarez, J. Pat y G. Espín. 2010. Efecto de la  biofertilización y los biorreguladores en la germinación y el crecimiento de <i> Carica papaya </i>L. Revista Colombiana Biotecnológica 12(2): 103-115.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709052&pid=S1316-3361201800010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">6.  Díaz, A., M. Alvarado, F. Ortiz y O. Grageda. 2013. Nutrición de la planta y  calidad de fruto de pimentón asociado con micorriza arbuscular en invernadero.  Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 4(2): 52-63.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709053&pid=S1316-3361201800010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">7.  FEDEAGRO. 2016. Estadísticas Agropecuarias. Confederaciones de Asociaciones de  Productores Agropecuarios. <a style="color: blue; text-decoration: underline; text-underline: single" href="http://www.fedeagro.org/"> http://www.fedeagro.org</a>. (Consulta 15/08/2016).</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709054&pid=S1316-3361201800010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2">8.  Fernández, J., M. García y J. Maldonado 2013. Absorción y transporte de  nutrientes minerales. <i>In: </i>J. Azcón y M. Talón (eds.). Fundamentos de  Fisiología Vegetal. McGraw-Hill. Madrid. pp. 123-141.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709055&pid=S1316-3361201800010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana"> <font size="2">9. Herrera, E., M. Lozano, F. Santamaría, J. Cristóbal, A.  Cabrera y N. Marbán. </font><span lang="EN-US"><font size="2">2014. Arbuscular  mycorrhizal for the control of <i>Rotylenchulus reniformis </i>(Tylenchida:  Hoplolaimidae) in <i>Carica papaya </i>cv. Maradol. Nematropica 44(2):218-227.</font></span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709056&pid=S1316-3361201800010000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 10. Hoyos, J. 1999. Frutales en Venezuela. Monografía 36. Sociedad de Ciencias  Naturales La Salle. Venezuela. Pp. 84-86.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709057&pid=S1316-3361201800010000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 11. Huber, O. y M. Oliveira. 2010. Ambientes Terrestres de Venezuela. <i>In</i>:  J. Rodríguez, F. Rojas y D. Giraldo (eds.). Libro rojo de los Ecosistemas  Terrestres en Venezuela. Provita, Shell de Venezuela, Lenovo. Venezuela.  Caracas. pp. 29-89 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709058&pid=S1316-3361201800010000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 12. Jiménez, I. 2015. Efecto de micorrizas arbusculares en el crecimiento  inicial del ají misterioso (<i>Capsicum frutescens </i>L. var. Misterioso).  Trabajo de Grado. Facultad de Agronomía. Universidad del Zulia. 39 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709059&pid=S1316-3361201800010000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana"> <font size="2">13. Khade, S. y B. Rodrigues. </font><span lang="EN-US"> <font size="2">2009. Arbuscular mycorrhizal fungi associated with varieties of <i>Carica papaya </i>L. in tropical agro-based ecosystem of Goa, India. 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Caracterización  física-química y biológica de enmiendas orgánicas aplicadas en la producción de  cultivos en República Dominicana. </font><span lang="EN-US"><font size="2"> Journal of Soil Science and Plant Nutrition 8 (4): 10-29.</font></span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709062&pid=S1316-3361201800010000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="EN-US">16. Phillips, J. y D. Hayman. 1970. Improved procedures for  clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi  for rapid assessment of infection. 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Martin, A. Calderón y A. Torrez. 2011. Utilización de cepas  eficientes de hongos micorríticos arbusculares en el desarrollo de portainjertos  de aguacate en un sustrato suelo-cachaza. Cultivos Tropicales 32(2): 172-183.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709068&pid=S1316-3361201800010000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 22. Rojas, L. 2010. Respuesta del cultivo de pimentón (<i>Capsicum annuum</i>) a  la inoculación con <i>Glomus manihotis </i>y <i>Acaulospora lacunosa. </i>Tesis  de Maestría. Facultad Experimental de Ciencias. Universidad del Zulia.  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Revista Chapingo Serie  Horticultura 17(Esp.1): 69-74.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=709071&pid=S1316-3361201800010000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none" align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <span lang="EN-US">25. Wellburn, A. R. 1994. The spectral determination of  chlorophylls a and b, as well as total carotenoids, using various solvents with  spectrophotometers of different resolution. 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