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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad bacteriostática y bactericida de la tintura de propóleos sobre bacterias enteropatógenas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Propolis is a resinous substance produced by adult bees Apis mellífera to ensure complete asepsis of the hive. Other species of bees also produce propolis. The aim of this study was to assess the bacteriostatic and bactericidal activity in vitro of commercial ethanolic tincture of propolis 70% v/v from an apiary in Cojedes State, Venezuela on enteropathogenic bacteria ATCC. Used Salmonella enterica subsp enterica suptype paratyphi A, Salmonella enterica subsp enterica suptype paratyphi B, Salmonella enterica subsp enterica subtype typhi, Shigella sonnei, Shigella flexneri, Yersínia enterocolitica, and Escherichia coli (O157:H7). The strains mentioned were exposed to different concentrations of propolis for 24 hours to determine the minimum inhibitory concentration (MIC) and minimum bactericidal concentration (MBC) using the macrodilution method in tubes. Results: S. paratyphi A was the only bacterium with a total inhibitory effect on agar BHI. In other bacteria, a partial bacteriostatic effect was observed. Y. enterocolítica was the most sensitive with a CMI 4% and CMB 8 %, followed by E. coli (O157:H7). S. typhi, S. paratyphi B and S. sonnei with CMI 8% and CMB 11% and finally S. flexneri and S. paratyphi A were the most resistant with CMI 11% and CMB 15%. Results indicate that propolis tincture has a bacteriostatic and bactericidal effect in vitro in the strains studied, and that such effect is not due to the ethanol present as solvent.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Actividad bacteriostática y bactericida de la tintura de  propóleos sobre bacterias enteropatógenas</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Marielsa Gil<sup>1*</sup>, Amarily Perelli<sup>2</sup>, Riloarbert, Alvarado<sup>1</sup>, Yuneidi Arias<sup>1</sup>, Eucaris  Blumenthal<sup>1</sup></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><sup>1</sup> Laboratorio de Diagnóstico Bacteriológico, Dpto.  de Microbiología, Escuela de Ciencias Biomédicas y  Tecnológicas, Universidad de Carabobo Venezuela. *Autor de correspondencia: Marielsa Gil Febres.  E-mail: <a href="mailto:marielsagilfd@hotmail.com">marielsagilfd@hotmail.com</a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  <sup>2</sup> Departamento de Metodología de Investigación, Facultad  de Odontología, Universidad de Carabobo  &nbsp;</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El propóleos es una sustancia resinosa que las abejas Apis  mellífera adultas producen para garantizar la total asepsia de la  colmena. Otras especies de abejas también producen propóleos.  Con el objeto de evaluar la actividad bacteriostática y bactericida  in vitro de la tintura etanólica de propóleos comercial al 70 %  v/v proveniente de un apiario del Estado Cojedes, Venezuela  sobre bacterias enteropatógenas ATCC. Se utilizaron Salmonella  entérica subsp entérica serotipo paratyphi A, Salmonella entérica  subsp entérica serotipo paratyphi B Salmonella entérica subsp  entérica serotipo typhi, Shigella sonnei, Shigella flexneri, Yersinia  enterocolitica y Escherichia coli enterohemorrágica (O157:H7).  Las cepas mencionadas se expusieron a distintas concentraciones  de tintura de propóleos durante 24 horas para determinar la  Concentración Mínima Inhibitoria (CMI) y la Concentración Mínima  Bactericida (CMB) utilizando el método de macrodilución en tubos.  Resultados: Salmonella paratyphi A fue la única bacteria con  efecto inhibitorio total en agar BHI. En las demás bacterias se  evidenció efecto bacteriostático parcial. Yersinia enterocolítica fue  la más sensible con una CMI 4% y CMB 8 %, seguida por Shigella  sonnei, Salmonella paratyphi B, Salmonella typhi y Escherichia coli  (O157:H7), con CMI 8% Y CMB 11% y finalmente Shigella flexneri  y Salmonella paratyphi A fueron las más resistente con CMI 11%  y CMB 15%. Se demostró que la tintura de propóleos tiene efecto  bacteriostático y bactericida in vitro en las cepas estudiadas y que  el etanol presente como solvente no es el responsable de tal efecto.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Palabras clave: </b>tintura de propóleo, concentración mínima  inhibitoria, concentración mínima bactericida, bacterias  enteropatógenas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Bacteriostatic and bactericidal activity of propolis  tincture on enteropathogenic bacteria</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>ABSTRACT</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Propolis is a resinous substance produced by adult bees Apis  mellífera to ensure complete asepsis of the hive. Other species of  bees also produce propolis. The aim of this study was to assess  the bacteriostatic and bactericidal activity in vitro of commercial  ethanolic tincture of propolis 70% v/v from an apiary in Cojedes  State, Venezuela on enteropathogenic bacteria ATCC. Used  Salmonella enterica subsp enterica suptype paratyphi A, Salmonella  enterica subsp enterica suptype paratyphi B, Salmonella enterica  subsp enterica subtype typhi, Shigella sonnei, Shigella flexneri,  Yersínia enterocolitica, and Escherichia coli (O157:H7). The strains  mentioned were exposed to different concentrations of propolis  for 24 hours to determine the minimum inhibitory concentration  (MIC) and minimum bactericidal concentration (MBC) using the  macrodilution method in tubes. Results: S. paratyphi A was the only  bacterium with a total inhibitory effect on agar BHI. In other bacteria,  a partial bacteriostatic effect was observed. Y. enterocolítica was  the most sensitive with a CMI 4% and CMB 8 %, followed by E.  coli (O157:H7). S. typhi, S. paratyphi B and S. sonnei with CMI 8%  and CMB 11% and finally S. flexneri and S. paratyphi A were the  most resistant with CMI 11% and CMB 15%. Results indicate that  propolis tincture has a bacteriostatic and bactericidal effect in vitro  in the strains studied, and that such effect is not due to the ethanol  present as solvent.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Key words:</b> propolis tincture, minimum inhibitory concentration,  minimum bactericidal concentration, enteropathogenic bacteria.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Recibido: Enero 2012 Aprobado: Agosto 2012</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El propóleos es una sustancia resinosa que las abejas  adultas producen para garantizar la asepsia de la colmena.  Entre las especies de abejas que producen propóleos  están Apis mellífera, Melipona quadrifasciata, Melipona  compressipes, Tetragonisca angustula y Nannotrigona  sp. Sin embargo, está demostrado que los propóleos de  las abejas africanizadas (Apis mellífera) presentan mayor  efectividad antimicrobiana que las de abejas europeas (1).  Las características organolépticas varían según su origen  botánico; por lo general tiene un sabor acre, frecuentemente  amargo, de olor agradable. Etimológicamente su nombre  deriva del griego “pro” que significa en defensa de; y  “polis” que significa ciudad, indicando de esta manera  que el material se encuentra a la entrada del panal (2). La  abeja lo utiliza para desinfectar la colmena, sellar grietas y  embalsamar intrusos que no puede expulsar por su tamaño  (3). La composición química del propóleos es compleja  y variable y depende del lugar de origen, pero es sabido  que posee terpenos, polisacáridos, ácidos aromáticos,  polifenoles, ésteres de ácidos fenólicos, minerales, vitaminas  y aminoácidos (1, 3, 4).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Diversos estudios tanto en Europa como en Latinoamérica  han descrito las numerosas propiedades medicinales del  propóleos entre las cuales destaca la actividad antibacteriana  sobre distintos géneros como (Staphylococcus aureus,  Streptococcus sp., Micrococcus sp., Bacillus sp.,  Pseudomona aeruginosa, Acinetobacter baumanii,  Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Elizabethkingia  meningoséptica entre otras), pero con mayor eficacia sobre  bacterias Gram positivas y en menor grado sobre bacterias</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Gram negativas, ya que esta actividad varía en efectividad  de acuerdo a las características del ambiente donde se  desarrollan las abejas, lo cual influye en la composición del  propóleos (1, 4, 5).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Por otra parte, se conoce que las bacterias en los últimos años  han sido capaces de desarrollar innumerables mecanismos  de resistencia ante los antibióticos; entre los más destacados  se encuentran: la producción de enzimas que inactivan  al antibiótico, como por ejemplo las betalactamasas,  especialmente las de espectro extendido (BLEE); la  expresión de sistemas efflux de excreción que evitan que  el fármaco alcance su blanco intracelular (bomba de eflujo),  las mutaciones que impiden el contacto del antibiótico con el  sitio de acción impidiendo la entrada del mismo a la bacteria  o generando una vía metabólica alterna que evite la acción  del fármaco (6, 7). Todos estos mecanismos de resistencia  van en aumento, problema que preocupa a los especialistas  en el área de la salud, debido a los costos que conlleva  la compra de nuevos y eficientes antibióticos con pocos  efectos secundarios para el tratam</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los bacilos entéricos, cuyo hábitat natural en algunos casos  es el ser humano, no escapan a esta realidad, y además  están asociados a diversos tipos de infecciones como  neumonía, abscesos, meningitis, septicemia, infección  intestinal, siendo la causa principal de las infecciones  intrahospitalarias (9). Esta familia incluye géneros como  Escherichia, Shigella, Salmonella, Enterobacter, Klebsiella,  Serratia, Proteus, entre otros. Algunos microorganismos  entéricos, como Escherichia coli, forman parte de la flora  normal e incidentalmente causan enfermedad; mientras  que Salmonella, Shigella y Yersinia enterocolitica con  gran frecuencia son patógenas para los humanos; éstos  tienen reservorios muy variados y dan lugar a diversas  enfermedades que van desde las enteritis causadas por las  Shigella, Salmonellas y Escherichia coli 0:157, hasta sepsis  causada por Yersinia enterocolitica (9, 10).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Según la Organización Mundial de la Salud (OMS) (11),  el microorganismo E. coli es responsable cada año de la  muerte de 380.000 niños en todo el mundo y de 210 millones  de episodios de diarrea. En resumen, las enfermedades  diarreicas son las responsables de unos tres millones de  muertes en todo el mundo (11, 12). En Venezuela, según el  Ministerio del Poder Popular para la Salud las enfermedades  infecciosas intestinales representan una de las principales  causa de morbilidad y la tercera de mortalidad en niños  menores de cinco años (13).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La preocupación en el campo de la salud es combatir estos  microorganismos de forma rápida y eficaz. En la antigüedad,  el propóleos fue ampliamente utilizado por diferentes  culturas con diversas finalidades, entre ellas en medicina.  Con el posterior desarrollo de la química farmacéutica y  al igual que ocurrió con los tratamientos fitoterápicos, el  propóleos dejó de utilizarse (14).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Sin embargo, en la actualidad con los diversos mecanismos  de resistencia desarrollados por las bacterias frente a los  antibióticos, se hace necesario la búsqueda de alternativas  que ayuden a solventar la situación.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Es por ello que el propóleos se ha convertido en un producto  de interés en el campo de la salud, por lo cual se están  realizando estudios en relación a las acciones, efectos y  posibles usos en las áreas de Biología, Medicina humana y  Veterinaria (5, 15, 16).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En Venezuela, son escasos los estudios sobre la acción  bacteriostática y bactericida del propóleos autóctono de  diversas regiones del país. Sin embargo, hay reportes  de su eficacia sobre cepas de: Streptococcus mutans,  Enterococcus faecalis, Pseudomona aeruginosa, Klebsiella  pneumoniae, Acinetobacter baumanii, Escherichia coli,  Elizabethkingia meningoséptica, con el propóleos de  Cojedes y sobre Micrococcus luteus y Staphylococcus  aureus con el propóleos de Miranda (16,17). Es por ello  que el objetivo del presente estudio fue determinar la  concentración mínima inhibitoria ó bacteriostática (CMI) y  bactericida (CMB) de una tintura de propóleos producido en  un Apiario del estado Cojedes sobre el crecimiento in vitro  de bacterias enteropatógenas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  MATERIALES Y METODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Tintura de Propóleos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para el estudio se utilizó una tintura de propóleo comercial  al 70% fabricada por un Apiario ubicado en el Sector El  Paradero del Municipio Lima Blanco del Edo. Cojedes,  Venezuela. Este Apiario trabaja con propóleos producidos  por abejas Apis mellífera y el solvente que utilizan es el  etanol.Cepas Bacterianas</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las cepas utilizadas fueron las siguientes bacterias  enteropatógenas ATCC (American Type Culture Collection):</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Salmonella entérica subsp entérica serotipo paratyphi  A 630 ATCC 9150, Salmonella entérica subsp entérica  serotipo paratyphi B 333 BIO UCV-13. Salmonella entérica  subsp entérica serotipo typhi 495 CDC57, Shigella sonnei  635 ATCC 25931, Shigella flexneri 634 ATCC 29903,  Yersinia enterocolitica 245 BIO UCV-4 y Escherichia coli  enterohemorrágica (O157 :H7 35150) obtenidas en el Centro  Venezolano de Colecciones de Microorganismos (CVCM).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Preparación de las suspensiones bacterianas</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las cepas liofilizadas ATCC se prehidrataron en caldo BHI  (infusión cerebro corazón) y se incubaron por 24 horas a 37  ºC para su reproducción, tal como lo indica el CVCM. Luego  se resembraron en agar sangre. Se seleccionaron colonias  aisladas suspendiéndolas en caldo BHI hasta alcanzar la  turbidez del patrón de 0,5 % Mc. Farland equivalente a 1.5  x 108 UFC/mL. (10).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para las diluciones se utilizó la técnica de macrodilución en  tubo, con algunas adaptaciones, por tratarse de un producto  natural diferente a los antibióticos comunes, realizada por Gil  y cols en 2008 (17). Se procedió de la siguiente manera: Por  cada bacteria usada se preparó una batería de once tubos  de 150 x 20 correspondientes a 10 diluciones puntuales y al  control de crecimiento, quedando así una concentración de  tintura de propóleos desde el tubo 1 al 11 de 4 , 8 , 11 , 15 ,  19 , 23 , 26 , 30 , 34 , 37 % y 0 % respectivamente. Se utilizó  un inóculo de 1,5 mL de la suspensión bacteriana (2,25 x  108 UFC/mL) a cada tubo y se mezcló en varias ocasiones     durante su incubación a temperatura ambiente (25ºC) por  24 horas (17).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Determinación de la actividad bacteriostática y  bactericida</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Trascurrido el tiempo de exposición de las bacterias con  las distintas concentraciones de propóleos, se procedió a  inocular 10 &#956;L de cada tubo a placas de BHI, utilizando  la técnica de siembra en superficie con espátula de  Drigalski, así mismo de cada tubo de dilución se tomó con  asa calibrada 10 &#956;L y se inoculó en caldo BHI. En ambos  procedimientos se incubó durante 24 a 48 horas a 37ºC.  Posteriormente, se observó si hubo o no crecimiento del  microorganismo (17).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Evaluación de la actividad inhibitoria del etanol utilizado  como solvente del propóleos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Este ensayo se realizó para establecer el efecto del etanol  utilizado como solvente del propóleos 90% v/v sobre el  crecimiento de los microorganismos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las concentraciones de etanol a utilizar se eligieron de  acuerdo al porcentaje que alcanzó este vehículo al diluir la  tintura de propóleos en cada tubo de caldo BHI, siendo las  siguientes: (2, 3, 5, 7, 9, 10, 12, 14, 15, 17 y 0 %).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Determinación de la concentración mínima inhibitoria y  bactericida del etanol</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se realizó la misma metodología empleada con la tintura de  propóleos, obteniendo las siguientes concentraciones: 4, 9,  13, 18, 22, 26, 31, 35, 39, 44 y 0%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Controles utilizados durante el desarrollo de la  metodología</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cada ensayo se utilizó un control de viabilidad, el cual  garantiza que el microorganismo es capaz de reproducirse en  el agar y en el caldo BHI. Adicionalmente, en los tubos y en las  placas donde se observó crecimiento bacteriano se realizó  tinción de Gram, y las pruebas bioquímicas convencionales  para su identificación, con la finalidad de confirmar si se  trataba de las bacterias enteropatógenas utilizadas o de una  posible contaminación. Cada procedimiento se realizó por  duplicado, obteniéndose reproducibilidad de los resultados.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la Tabla 1 puede observarse el efecto inhibitorio y  bactericida sobre todas las bacterias estudiadas. Salmonella  paratyphi A fue la única en la que se evidenció un efecto  inhibitorio total en agar BHI y en el resto de las bacterias  se evidenció efecto bacteriostático parcial. Yersinia  enterocolítica fue la más sensible con una CMI 4% y CMB  8 %, seguida por Shigella sonnei, Salmonella paratyphi B,  Salmonella typhi y Escherichia coli (O157:H7), con CMI 8%  Y CMB 11 % y finalmente Shigella flexneri y Salmonella  paratyphi A fueron las más resistente con CMI 11 % y CMB  15 %.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En las siete bacterias estudiadas se encontró un crecimiento  abundante en los controles de viabilidad sin propóleos, lo  que valida los resultados obtenidos</font></p>     <p align="justify"><a name="t1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v16n3/art06t1.gif" width="483" height="391"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Tabla 1. Determinación de la concentración mínima inhibitoria</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En la tabla 2 se presentan los resultados de la evaluación  de la actividad bacteriostática y bactericida de las  concentraciones de etanol presentes en las distintas  diluciones del propóleos. En este ensayo se utilizaron  las bacterias Yersinia enterocolítica y Shigella flexneri  como representantes del grupo de bacterias en esta  investigación, por ser la más sensible y la más resistente  respectivamente en la actividad bacteriostática y  bactericida con el propóleos. En ellas se evidencian que  hubo crecimiento en todas las diluciones.</font></p>     <p align="justify"><a name="t2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v16n3/art06t2.gif" width="495" height="582"></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  &nbsp;l</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la Tabla 3 se muestra la concentración mínima inhibitoria  y bactericida del etanol sobre las bacterias enteropatógenas  obteniéndose que la CMI fue 18% y la CMB 20% en ambas  bacterias, la cual es una concentración mayor que la  encontrada en el último tubo de dilución de la evaluación de la  actividad bacteriostática y bactericida de las concentraciones  de etanol presentes en las distintas diluciones del propóleo,  (tubo 10, ver tabla 2) lo que confirma que el propóleos es  quien ejerce la acción sobre las bacterias.</font></p>     <p align="justify"><a name="t3"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v16n3/art06t3.gif" width="492" height="222"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>DISCUSIÓN Y CONCLUSIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para entender los resultados se debe aclarar que se  concibe por CMI el valor de la menor dilución que inhibió  parcial o totalmente el desarrollo de las bacterias sobre el  agar BHI, pero no así sobre caldo BHI; y por CMB el valor  de la menor dilución en la que no se observa crecimiento  de las bacterias en agar BHI y tampoco en caldo BHI.  Este último procedimiento, con la finalidad de corroborar  el efecto bactericida, ya que en algunas ocasiones los  microorganismos pueden no crecer en agar BHI sólo porque  están estresadas por la presencia de la sustancia inhibidora,  pero al resembrarlas en caldo éstas se reproducen  normalmente debido a que el factor inhibitorio está diluido  (17).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  De acuerdo con los resultados obtenidos, se puede analizar  que el propóleos utilizado es de alta efectividad, ya que  posee actividad bacteriostática y bactericida sobre bacterias  Gram negativas, lo cual es un hallazgo importante debido a  que tinturas de propóleos de otros países sólo son efectivos  contra bacterias Gram positivas (1, 4, 5, 18).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Por otra parte, se encontró que la CMI y CMB alcanzadas  en esta investigación fueron más elevadas que las de otros  propóleos en el mundo, tal como lo demuestra el estudio de  Sforcin y cols en 2000, (19) sobre la actividad antimicrobiana  del propóleos, por el método de dilución en agar, abarcando  un rango de concentraciones de 0,4 a 14,0 % (v/v), en donde  demostraron que el propóleos inhibe las bacterias Gram  positivas a bajas concentraciones (0,4%) y que las bacterias  Gram negativas son menos susceptibles con mayores CMI  que oscilan entre 4,5 a 8,0 %. Los autores concluyen que  el propóleos de Brasil posee una mayor actividad sobre  las bacterias Gram positivas y una apreciable efectividad  sobre las bacterias Gram negativas en comparación con el  propóleos utilizado en esta investigación, cuyo rango fue de  8 % a 15 %.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El presente estudio demuestra que la actividad bacteriostática  y bactericida ejercida por la tintura de propóleos sobre las  bacterias enteropatógenas evaluadas son similares entre sí,  debido a que S. sonnei, S. paratyphi B, S. typhi y E. coli (O  157:H7) obtuvieron los mismos resultados. Este hallazgo es  comparable con los resultados obtenidos por Gil y cols en  2008 (17) los cuales trabajaron con una tintura de propóleos  de Tinaquillo Edo. Cojedes, Venezuela sobre siete bacterias  de interés clínico entre las que se encuentran dos bacilos  aerobios entéricos (Escherichia coli y Klebsiella pneumoniae)  en donde el resultado obtenido en la determinación de la  CMB sobre estas dos bacterias fue igual al conseguido en  esta investigación (ver Tabla 1); y aunque la fabricación  de las tinturas de propóleos provienen de la misma zona  geográfica, cabe destacar que se elaboraron en apiarios  diferentes. Esto sugiere que podría establecerse rangos de  efectividad por géneros bacterianos de acuerdo a la zona  geográfica en la que se produce el producto, siendo una  guía para futuros tratamientos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En otro estudio realizado por Erkmen y Ozcan en 2008 (20)  se observó que una concentración de 0,02 % a 2,5 % (v /  v), de propóleos turco sobre Escherichia coli y Salmonella  typhi fue ineficaz. Este trabajo coincide con estos resultados  ya que el propóleos utilizado necesitó concentraciones  más altas para ser efectivo con una CMB de 11 % para  las bacterias mencionadas. Sin embargo, Ugur y Arslan en  2004 (21) realizaron un estudio in vitro sobre la actividad  antimicrobiana de los propóleos de la provincia de Mugla  de Turquía, en donde obtuvieron como resultado que el  microorganismo más sensible a los propóleos fue Shigella  sonnei en el grupo de bacterias Gram negativas, lo cual  difiere de los resultados de la presente investigación, ya  que la bacteria más sensible fue Yersinia enterocolítica.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Esto posiblemente pueda deberse a la composición química  de ambos propóleos debido a que provienen de zonas  geográficas diferentes. Sin embargo, cabe destacar que con  ambos propóleos hubo efectividad.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el presente estudio, se demostró que el etanol utilizado  como solvente del propóleos en crudo no es el responsable  de la actividad bacteriostática ni bactericida sobre las  bacterias enteropatógenas, debido a que se encontró que  la CMI y la CMB del etanol son más elevadas que las  alcanzadas en las diluciones del propóleos; además, para  que este solvente pueda tener algún efecto se necesitan  concentraciones más altas (ver Tabla 3). Con ello se aclara  que el etanol es sólo utilizado como un solvente de esta  resina y no como coadyuvante y, aunque está demostrado  que los extractos etanólicos de propóleos son más efectivas  que las acuosas (22), es razonable que esto se deba a que  el propóleos es poco soluble en agua.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En este estudio también se evidenció que E. coli O157:H7,  a pesar de ser más patógena que Shigella flexneri, muestra  ser más sensible in vitro a la tintura de propóleos. Esto  representa un dato importante, ya que E. coli O157:H7  no posee tratamiento farmacológico eficaz, sin efectos  adversos (23).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Debido a la importancia que poseen las enterobacterias en  los síndromes diarreicos agudos (24), es de vital importancia  demostrar que la tintura de propóleos pueda ser una nueva  alternativa en su tratamiento, con un producto natural al cual  no se le ha demostrado resistencia hoy en día y cuya única  contraindicación hasta ahora es que el paciente sea alérgico  a los productos apícolas. (25)</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Finalmente, de acuerdo con los resultados de la  investigación del estudio in vitro, se concluye que  el propóleos puede ser utilizado como un agente  antimicrobiano contra las bacterias enteropatógenas,  coincidiendo con lo que afirman otros autores, que la  tintura de propóleos puede ser utilizado como un excelente  antimicrobiano (15, 17, 26, 27).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los autores agradecen al Profesor Tomás Rojas y al  Profesor Germán González de la Universidad de Carabobo,  Valencia por sus valiosas asesorías e incondicional apoyo  y al personal Administrativo y Obrero del Departamento de  Microbiología de la misma Casa de Estudios por el soporte  técnico.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  1. Manrique A, Santana W. Flavonoides, actividades  antibacteriana y antioxidante de propóleos de abejas sin  aguijón, Melipona quadrifasciata, Melipona compressipes,  Tetragonisca angustula y Nannotrigona sp. de Brasil y  Venezuela. Zootecnia Trop. 2008; 26 (2)157-166.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219206&pid=S1316-7138201200030000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  2. Peña R. Estandarización en propóleos: antecedentes  químicos y biológicos. Cienc Inv Agr. 2008; 35(1):17-26.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219207&pid=S1316-7138201200030000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  3. Chaillou L, Herrera H, Maidana J. Estudio del propóleos de  Santiago del Estero, Argentina. Ciênc Tecnol Aliment. 2004;  24 (1):11-15.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219208&pid=S1316-7138201200030000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  4. Marcucci M, Ferreres F, García-Viguera C, Bankova V, De  Castro S, Dantas A. Phenolic compounds from Brazilian  propolis with pharmacological activities. J Ethnopharmacol.  2001; 74 (2):105-112.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219209&pid=S1316-7138201200030000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  5. Farré R, Frasquet I, Sánchez A. El própolis y la salud. Ars  Pharmaceutica. 2004; 45 (1): 21-43.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219210&pid=S1316-7138201200030000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  6. Reyes H, Navarro P, Reyes Barrios H. Resistencia  bacteriana a los antimicrobianos. Antibiót e Infec. 1998; 6  (2): 12-19.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219211&pid=S1316-7138201200030000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  7. Sader H. Resistencia antimicrobiana en Latinoamérica:  ¿Cómo estamos? Rev Chil Infectol. 2002; 19 (1): 5-13.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219212&pid=S1316-7138201200030000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  8. Gómez A. La resistencia bacteriana...es un problema de  salud. Rev. Salud Integra. 2009; 8(49):54.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219213&pid=S1316-7138201200030000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  9. González M, González N. Familia Enterobacteriaceae (XXI)  Enterobacterias En: Manual de Microbiología Médica (2da  ed.) Valencia - Venezuela: Producción Editorial Universidad  de Carabobo; 2011. p177-189.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219214&pid=S1316-7138201200030000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  10. Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn  W. Diagnóstico Microbiológico. (6ta ed.). Argentina, Editorial  Panamericana S.A; 2008. p.196-206.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219215&pid=S1316-7138201200030000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  11. Organización Mundial de la Salud. Estadísticas Sanitarias  Mundiales 2010. Disponible en  <a href="http://www.who.int/whosis/whostat/ES_WHS10_Full.pdf">http://www.who.int/whosis/whostat/ES_WHS10_Full.pdf</a> . Consultado el 15 de  septiembre de 2011.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219216&pid=S1316-7138201200030000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  12. Rincón G, Ginestre M, Harris B, Romero S y Martínez  A. Frecuencia de bacterias enteropatógenas en niños  menores de cinco años. Kasmera. 2002; 30(1): 33-41.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  13. Ministerio del Poder Popular para la Salud (MPPS).  Anuario de Mortalidad 2008. Caracas, Dirección General  de Epidemiología, 2008; 256:1-384.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219218&pid=S1316-7138201200030000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  14. Burdock G. Review of the biological properties and toxicity  of bee propolis (propolis). Food Chem Toxicol. 1998;  36(4):347-363.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219219&pid=S1316-7138201200030000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  15. Quintana T, Lugones M, González E y Rodríguez T.  Comparación de dos tratamientos: propóleos y lugol, en  pacientes con cervicitis aguda. Rev Cubana Med Gen  Integr. 1996; 12(3):255-263.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  16. Manrique, A. Actividad antimicrobiana de propóleos  provenientes de dos zonas climáticas del estado Miranda,  Venezuela. Efecto de la variación estacional. Zoot Trop.  2006; 24 (1):43-53.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219221&pid=S1316-7138201200030000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  17. Gil M, Reyes D, Rojas T. Flores M. Actividad bacteriostática  y bactericida de una tintura de propóleos proveniente del  Estado Cojedes sobre bacterias de interés clínico. Bol  Venez de Infectol. 2008; 19 (2): 124.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219222&pid=S1316-7138201200030000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  18. 18. Uzel A, Sorkun K, Onça&#287; O, Cog&#365;lu D, Gençay O,  Salih B. Chemical compositions and antimicrobial activities  of four different Anatolian propolis samples. Microbiol Res.  2005; 160(2):189-95.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219223&pid=S1316-7138201200030000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  19. Sforcin J, Fernándes A, Lopes C, Bankova V y Funari S.  Seasonal effect on Brazilian propolis antibacterial activity. J  Ethnopharm. 2000; 73: 243-249.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  20. Erkmen O, Ozcan M. Antimicrobial effects of Turkish  propolis, pollen, and laurel on spoilage and pathogenic  food-related microorganisms. J Med Food. 2008; 11(3):587-  92.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219225&pid=S1316-7138201200030000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  21. Ugur A, Arslan T. An in vitro study on antimicrobial activity of  propolis from Mugla province of Turkey. J Med Food. 2004;  7(1):90-94.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219226&pid=S1316-7138201200030000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  22. Tolosa L, Cañizares E. Obtención, caracterización y  evaluación de la actividad antimicrobiana de extractos de  propóleos de Campeche. Ars Pharmaceutica. 2002; 43:1-2;  187-204.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219227&pid=S1316-7138201200030000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  23. Wolff R. Consecuencias adversas inesperadas durante el  uso de antimicrobianos: Cuándo el tratamiento puede ser  peligroso para la salud. Rev Chil Infectol. 2002; 19 (1): 56-  61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219228&pid=S1316-7138201200030000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->  24. Síndrome diarreico agudo: Recomendaciones para el  diagnóstico microbiológico. Rev Chil Infectol. 2002; 19(2):  101-113.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  25. Neacato S. Uso de extractos etanólicos de propóleos para  el control de Staphylococcus aureus in vitro obtenidos  de leche de vacas con mastitis. Facultad de Ingeniería  de Ciencias Agropecuarias. ESPE-IASA I. Sede El  Prado (2005). Disponible en: http://repositorio.espe.edu.  ec/handle/21000/2593 <a href="http://repositorio.espe.edu.ec/handle/21000/2593">http://repositorio.espe.edu.ec/handle/21000/2593</a> . Consultado el 05 de mayo de 2012.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  26. Ugur A, Barlas M, Ceyhan N, Turkmen V. Antimicrobial effects  of propolis extracts on Escherichia coli and Staphylococcus  aureus strains resistant to various antibiotics and some  microorganisms. J Med Food. 2000; 3(4):173-80.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219231&pid=S1316-7138201200030000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  27. Berretta A, Nascimento A, Bueno P, Marchetti J.  Propolis Standardized Extract (EPP-AF®), an Innovative  Chemically and Biologically Reproducible Pharmaceutical  Compound for Treating Wounds. Int J Biol Sci. 2012; 8(4):  512-521.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3219232&pid=S1316-7138201200030000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Flavonoides actividades antibacteriana y antioxidante de propóleos de abejas sin aguijón Melipona quadrifasciata Melipona compressipes Tetragonisca angustula y Nannotrigona sp de Brasil y Venezuela]]></article-title>
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