M. Dora Feliciangeli¹*, Mayeli Hernández², Benny Suarez^1,3, Cinda Martínez², Arturo Bravo¹, José Bracho⁴, José Toyo⁵, Annhymariet Torrellas¹ & Rosalba Marrero¹

¹ Universidad de Carabobo, Facultad de Ciencias de la Salud, Centro Nacional de Referencia de Flebótomos y Otros Vectores (CNRFV- BIOMED), Apartado 4873, Maracay, Venezuela.

² Dirección General de Salud Ambiental, Ministerio de Salud, Maracay, Venezuela.

³ Instituto de Altos Estudios en Salud Pública “Dr Arnoldo Gabaldon”, Ministerio de Salud, Maracay, Venezuela.

⁴ Coordinación Regional de Salud Ambiental y Contraloría Sanitaria del Estado Portuguesa, Ministerio de Salud, Acarigua, Venezuela.

⁵ Coordinación Regional de Salud Ambiental y Contraloría Sanitaria del Estado Barinas, Ministerio de Salud, Barinas, Venezuela.

* Autor de correspondencia: mdora@movistar.net.ve

La estratificación de riesgo para priorizar las acciones de control en función de optimización de recursos, es de gran importancia dentro de las actividades de vigilancia epidemiológica para el control de la Enfermedad de Chagas. Para esto es necesario contar con un método para la detección de la infestación intradomiciliaria por triatominos vectores, que sea de alta sensibilidad, especialmente en condiciones de baja densidad. En este estudio se compararon los resultados obtenidos con 5 métodos de capturas de vectores, 2 de búsqueda pasiva: caja Gómez-Nuñez y papel A4 Bond colocados en el dormitorio principal de las casas, 2 de búsqueda activa por personal técnico especializado: captura directa y captura con un excitante (cypermetrina+tetrametrina) durante ½ hora y por último la recolección efectuada durante un mes por los habitantes, oportunamente entrenados. El estudio se realizó en 11 localidades y 200 casas del Estado Portuguesa y 29 localidades y 350 casas del Estado Barinas. No se encontraron diferencias estadísticamente significativas entre los resultados obtenidos con los diferentes métodos en los dos estados. Sobre el total de las 550 casas exploradas, 132 fueron positivas: en 131 (99,2%) la presencia de triatominos fue detectada por lo habitantes vs. 5,3% por búsqueda activa; 3,38 por la caja Gómez-Nuñez; 3,03% por búsqueda con excitante y 0% por la hoja de papel. Se colectaron en total 5 especies y 563 individuos. Rhodnius prolixus fue la especie predominante seguido por Triatoma maculata, Panstrongylus geniculatus y R. pictipes. Se calcularon índices entomológicos de dispersión, de colonización y de infección a Trypanosoma cruzi para cada localidad. Los datos obtenidos soportan la hipótesis de un nuevo escenario epidemiológico en Venezuela donde, en las localidades en las cuales se ha interrumpido el ciclo intradoméstico, la transmisión es fundamentalmente mantenida por R. prolixus visitantes procedentes de las palmeras cercanas. Se demuestra de forma inequívoca y se resalta la importancia de la incorporación de la participación comunitaria en la vigilancia epidemiológica dentro del Programa de Control de la Enfermedad de Chagas.

Palabras claves: triatominos vectores, métodos de captura, Enfermedad de Chagas, Venezuela.

SUMMARY

Among the epidemiological surveillance activities, risk stratification is needed in order to establish priorities in the Chagas disease control program for the purpose of resource optimization. It is therefore necessary to rely on a method of high sensitivity for the detection of domestic infestation by triatomine vectors, mainly in situations of low density. In this study the results obtained with 5 capture methods were compared, 2 of passive search: Gomez-Nuñez boxes and A4 bond paper located on the walls of the bedrooms, 2 methods of active search carried out by trained personnel: direct capture without and direct search with the aid of a flushing agent (cypermethrin + tetrametrhrin) and the collection of live triatomine vectors by the inhabitants, during 1 month. The study was carried out in 11 localities and 200 houses of Portuguesa State and in 29 localities and 350 houses in Barinas State. Results obtained with the different methods were not significantly different in the 2 states. Of the total of 550 houses explored, 132 were positive, in 131 (99.2%) the presence of bugs was detected by the inhabitants vs. 5.3% by active search: 3.38% by Gomez-Nuñez boxes; 3.03% by flushing out search and 0% by paper. Five species and 563 individuals were collected: Rhodnius prolixus was the predominant species, followed by Triatoma maculata, Panstrongylus geniculatus and R. pictipes. The epidemiological indices of dispersion, colonization and infection to Trypanosoma cruzi were calculated for each locality. Results support the hypothesis of a new epidemiological scenario where, in the localities in which the domestic cycle has been interrupted, the transmission is primarily maintained by visiting R. prolixus coming in from nearby palms. The unequivocal importance of community participation in the epidemiological surveillance in the Control Program of Chagas disease in Venezuela is pointed out.

Key words: triatomine vectors, capture methods, Chagas disease, Venezuela.

Recibido el 18/01/2007 Aceptado el 15/05/2007

INTRODUCCIÓN

Rhodnius prolixus, el principal vector de la Enfermedad de Chagas en Venezuela, Colombia y algunos países de América Central (Salvador, Guatemala, Honduras y Nicaragua) (Dujardin et al., 1998) fue descrito por Stâl en 1859 con ejemplares capturados en La Guaira, Venezuela. El primer caso de Enfermedad de Chagas fue reportado en este país por Enrique Tejera en el año 1919, 10 años después que Carlos Chagas describiera la enfermedad en Brasil. Investigadores pioneros, como José Francisco Torrealba (1934) y Felix Pifano (1941), aportaron los primeros datos sobre aspectos clínicos y sobre su magnitud como problema de salud pública y social en nuestro País, enfatizando que su existencia parecía estar inexorablemente ligada al “rancho” de techode palma y paredes de bahareque donde R. prolixus  gozaba de condiciones ideales para su alimentación y reproducción. Una vez declarada erradicada la malaria del territorio nacional, presupuesto, esfuerzos y experticia del Ministerio de Sanidad y Asistencia Social fueron volcados a la Enfermedad de Chagas. Cova García & Suarez (1959) estudian los triatominos de Venezuela y su distribución y se inicia la Campaña (Guerrero et al., 1965) que en el año 1966 se denomina oficialmente Programa de Control de la Enfermedad de Chagas (PCECh). Su objetivo era la interrupción de la transmisión intradomiciliaria a través del control de los vectores intradomésticos por medio de insecticidas de acción residual. Sin embargo, ya en 1961, Gamboa Cuadrado había comprobado la presencia de R. prolixus selvático en palmas (Copernicia tectorum) en el Estado Guárico. En el año 1968 se implementaron el Programa de Vivienda Rural, iniciado en al año 1958 y el Programa de Mejoramiento de la Vivienda Campesina (1964) y más tarde, a partir de 1988, se consolidaron a nivel nacional los esfuerzos para la interrupción de la transmisión por via transfusional en los Bancos de sangre (Aché & Matos, 2001).

Después de 30 años, el éxito del PCECh se concreta en la reducción del índice de infestación de casas a R. prolixus, de 60-80% en la década 1958-1968 a 1,6-4,0% en 1990-1998 y se cristaliza en la disminución paulatina pero sostenida de los índices de seroprevalencia de 44,5% en 1958-1968 a 15,6% en 1969-1979, 13,7% en 1980-1989 y 8,1% en 1990-1999. En los niños menores de 10 años de edad, las cifras fueron 20,5%, 3,9%, 1,1% y 0,8%, respectivamente (Aché & Matos, 2001). Estudios clínicos prospectivos en zonas originariamente de alta endemia confirman las cifras del PCECh a nivel nacional (Acquatella et al., 1987).

En la década de los años 1990, entre las enfermedades endémicas, malaria y dengue encabezan la lista de prioridades del Ministerio de Sanidad yAsistencia Social, mientras el PCECh entra en una  nueva etapa, no menos importante y dificultosa, la etapa de la vigilancia epidemiológica. Sin embargo, mientras los bajos índices de infestación a triatominos arriba reportados no parecen justificar una inversión importante en las costosas acciones de control a través del uso de insecticidas de acción residual, inquietan la aparición de casos agudos sin presencia de triatominos en las casas (Añez et al., 1999a, 2004; Feliciangeli et al., 2002) y los casos inaparentes (Añez et al.,2001) y se publican nuevos aportes clínicos en pacientes crónicos (Añez et al., 1999b; Acquatella et al.,1999; Layrisse et al., 2000). Por otro lado, en el ámbito de las ciencias sociales, se enfatiza la necesidad de un nuevo enfoque en la conducción de los programas de salud a ser llevados a cabo NO “para” la comunidad, mas “con” la comunidad (Briceño-León, 1998).

En este contexto, con la finalidad de avalar una metodología que fuera útil para la detección de la infestación intradomiciliaria de vectores de la Enfermedad de Chagas, especialmente en situaciones de baja densidad, se diseñó un ensayo a gran escala para evaluar y comparar la eficacia de varios métodos de detección, incluyendo la recolección de triatominos por los habitantes y cuantificar el posible impacto de la intervención de la comunidad en la vigilancia epidemiológica, pre-requisito indispensable para el diseño de un programa de control de vectores a ser planificado en función de estratificación de riesgo y optimización de los recursos disponibles. Este estudio permitiría además actualizar los índices entomológicos (WHO, 2002) en los caseríos donde se realizaría, útiles para la evaluación y el seguimiento espacio-temporal de la dinámica de la transmisión a nivel local, municipal y estatal (Aché & Sifontes, 1995).

Area de estudio y actividades preliminares de campo

El estudio se llevó a cabo en los Estados Portuguesa (Mayo-Agosto 2002) y Barinas (Mayo 2003-Marzo 2004), el primero con largo historial de Programa de control, sin embargo con persistencia de infestación e infección; el segundo estado, tradicionalmente “malárico”, sin un programa de Chagas sostenido, más con acciones eventuales de control del vector en especial tras la denuncia de infestación por parte de los habitantes. En Portuguesa el estudio fue efectuado en 4 municipios y 11 localidades: Araure (Morichal), Ospino (Santa Lucia, San Bartolo y Pele el Hojo), Monseñor José Vicente de Hunda (El Helechal, Agua Clara, Palma Sola y La Pica), Sucre (La Esperanza, El Mosquito y Quebrada Negra) y 8 municipios y 29 localidades en el estado Barinas: Barinas (Parangula, Gallegos, Laguna Hermosa, Rio Bravo, Guaranda, Guachiquin, Carvajal), Bolívar (El Castillo, Los Morenos, Barragán, Las Carabelas), Pedraza (Ticoporo, Carreterón, Cascabel II, Sta Maria de Canaguá, Salomé, Rosalía, La Tigra), Obispo (Mata de Agua, Sta. Cruz de Obispo), Antonio José de Sucre (Chameta), Sosa (Chaparrito, Paso Real, Machado), Rojas (Caño Hondo, Trueno, Florida) y Cruz Paredes (Socó, Quebradón). La ubicación geográfica de estas localidades se muestra en la Fig 1. Este mapa fue construido con las coordenadas obtenidas utilizando  un sistema de posicionamiento global (GPS, Modelo GeoExplorer III, Garmin Corp) utilizando el software Arc view v 3.1

Fig. 1. Ubicación de las localidades de estudio: Barinas: 1. Chameta, 2. Carvajal, 3. Gallegos, 4. Guachiquín, 5. Guaranda, 6. Laguna Hernosa, 7. Parangula, 8. Río Bravo, 9. Barragán, 10. El castillo, 11. La Carabela, 12. Los Morenos, 13. Quebradón, 14. Socó, 15. Mata de Agua, 16. Santa Cruz, 17. Carreterón, 18. Cascabel II., 19. La Tigra, 20. Salomé, 21. Santa María de Canaguá, 22. Rosalía, 23. Ticoporo, 24 Caño Hondo, 25. Florida, 26. Machado, 27. Trueno, 28. Chaparrito, 29. Paso Real; Portuguesa: 30. Morichal, 31. Pele el Ojo, 32, San Bartolo, 33. Santa Lucia, 34. El Mosquito, 35. La Esperanza, 36. Quebrada Negra, 37. Agua Clara, 38. El Helechal, 39. La Pica, 40. Palma Sola.

El estudio fue programado en el marco de un estudio epidemiológico diseñado para actualizar los índices de prevalencia en niños < de 15 años (Feliciangeli et al., 2007a) en el cual las localidades fueron seleccionadas al azar en cada Municipio hasta llegar al número de localidades que proporcionarían la muestra requerida para ese estudio, acorde al índice de prevalencia para ese grupo de edad conocido para ese municipio, utilizando la extracción simple de los códigos de localidades reportadas en el Nomenclador de centros poblados para Portuguesa (OCEI, 1994) y de la lista centros poblados georeferenciados de la Gacetilla del Estado Barinas editado por el Instituto Geográfico “Simón Bolívar” (1995), en el cual se tomó como elemento adicional, la distribución altitudinal de los caseríos. Todas las localidades tenían que llenar el requisito previo de no haber sido rociadas por lo menos durante los 2 años previos al ensayo, según datos obtenidos de los registros del PCECh. El estudio entomológico abarcó 35,48% (11/31) y 34,12% (29/85) de las localidades y 24,5% (200/816) y 28,36% (350/1236) de las casas muestreadas para el estudio epidemiológico en Portuguesa y Barinas respectivamente.

En la primera visita a los caseríos seleccionados, se proporcionaba a los habitantes una explicación sencilla y exhaustiva acerca de los objetivos del trabajo a realizar y un folleto educativo sobre la Enfermedad de Chagas y se solicitaba a cada jefe de la casa su participación voluntaria para permitir la toma de muestras hemáticas en los niños para el estudio de seroprevalencia y el estudio entomológico, de la cual quedaba constancia en el consentimiento escrito, cuyo modelo había sido avalado por la Comisión de Bioética y Bioseguridad de FONACIT.

Después de levantar el croquis y registrar las coordenadas y altitud de la localidad, se realizaba una encuesta epidemiológica contentiva de datos demográficos y datos ecológicos. Estos últimos incluían la descripción detallada de los componentes de las casas, las cuales fueron clasificadas en (1) “ranchos” (casas con alguno(-os) de los siguientes componentes: piso de tierra, paredes de adobe, bajareque, madera, palma, zinc u otro material que no fuese de bloques o ladrillos, techo de palma ); (2) casas, que incluían las típicas “viviendas rurales” construidas por el MS (con paredes de bloques, piso de cemento y techo de zinc) y las casas construidas por sus ocupantes o los anteriores, con las mismas características o mejores que las de vivienda rural.

Métodos de captura

Para la detección de la infestación intradoméstica a triatominos, en este estudio se utilizaron 5 métodos: 2 métodos de búsqueda activa, 2 métodos de búsqueda pasiva y la recolección por parte de los habitantes de la casa durante el periodo de un mes, según instrucciones impartidas a cada núcleo familiar.

Procedimiento en la aplicación de los métodos

El diseño del ensayo fue concebido de manera de garantizar, en lo posible, que no hubiese sesgo causado por conocimiento previo del personal técnico encargado de la recolección acerca del estado de infestación de las viviendas a muestrear. A tal fin, en las fechas previamente programadas para cada caserío, este personal procedía a colocar en cada casa tres cajas Gómez-Núñez, en tres paredes del dormitorio principal (si había mas de 1), a una altura de aproximadamente 1,70 m., excluyendo la pared con la puerta. Tres hojas de papel de escribir blanco (Bond A4) fueron colocadas cada una a aproximadamente 50 cm de cada caja Gomez-Nuñez a la misma altura. Las cajas y las hojas eran identificadas con el Nº del código de la casa y fecha de colocación. Se advirtió a los habitantes de no tocar las cajas o papeles, y tampoco remplazarlos en caso que se desprendieran de la pared.

Para instruir a los habitantes acerca del método de recolección de los triatominos, se les mostraban ejemplares adultos y ninfas de las principales especies en el País, R. prolixus, Triatoma maculata y Panstrongylus geniculatus, advirtiéndoles de toda manera de guardar también otros insectos parecidos encontrados dentro de la casa durante el periodo de un mes, hasta la próxima visita del personal técnico. Para esto, se les hacía entrega de un recipiente plástico con cartulina doblada en su interior y cubierto con fina organza, además de un gancho de carpeta doblado por la mitad a ser usado como pinza blanda para que evitaran el contacto directo con los insectos. Se les recomendaba no entregar los recipientes a este personal hasta que ellos mismos lo solicitaran. Ésto con la finalidad de que el colector, al llegar a la casa a muestrear, procediera de inmediato a la búsqueda activa y evitar por lo tanto que fuera influenciado por los resultados obtenidos por los habitantes.

Un mes después, el equipo asignado a cada caserío regresaba al sitio para llevar a cabo la búsqueda activa que debía realizar sin conocer los resultados de los otros métodos de captura aplicados anteriormente. Con esta finalidad cada uno de los colectores efectuaría en primer lugar, el primer día de trabajo, la búsqueda activa utilizando solamente linternas y pinzas durante ½ h en la mitad de las casas en estudio en cada caserío. Sólo después de la búsqueda activa, el colector procedía a recoger en el orden siguiente: (1) los recipientes de la recolección de triatominos efectuada por los habitantes, (2) las hojas de papel pegadas a la pared, las cuales eran revisadas en el lugar para detectar rastros de heces o huevos y llevadas al laboratorio para posterior chequeo y (3) las cajas Gomez-Nuñez guardando, en caso de estar positivas, el material colectado en recipientes debidamente rotulados y registrando todos los datos preliminares en las planillas correspondientes a cada captura que también serían chequeadas de nuevo en el laboratorio.

Al día siguiente los colectores intercambiaban las casas, de manera que, al realizar la búsqueda activa con excitante, no estarían sesgados por los resultados obtenidos el día anterior con los otros métodos de captura, ya que tenia instrucciones de no intercambiar ni comentar los resultados hasta finalizar el muestreo con todos los métodos.

Acividades de laboratorio

Todo el material era llevado al Centro Nacional de Referencia de Flebótomos y Otros Vectores de la Universidad de Carabobo (CNRFVBIOMED-UC) en Maracay para las siguientes actividades: (1) separación, identificación y censo de los insectos contenidos en los diferentes recipientes de recolección; (2) examen de heces para búsqueda de infección natural a T. cruzi, toda vez que fuera posible. Es de notar que mucho del material colectado por los habitantes durante el periodo de un mes llegaba muerto o en condiciones de ayuna al laboratorio. Por otro lado, cuando eran colectadas hembras, en muchos recipientes habían huevos eclosionados y ninfas nacidas en el frasco. La mayoría eran ninfas de Ier estadio, por lo tanto cuando habían sido recolectadas hembras, sólo se contabilizaron las Ninfas de III estadío en adelante como producto de la recolección de los habitantes, tomando en cuenta el conocido fenómeno de canibalismo o hemocleptohematofagia (Feliciangeli et al., 1988; Sandoval et al., 2000), que podría permitir la evolución, durante un periodo de un mes, de las ninfas nacidas hasta el estadio de Ninfas II. Cuando no había hembras en el recipiente, se incluyeron en la muestra todas las ninfas, cualquiera fuera el estadio.

Para la búsqueda de infección natural a T. cruzi en los triatominos, las muestras fecales se examinaron en fresco en una gota de solución fisiológica a un aumento de 40x. En caso de visualización de flagelados se practicaba la coloración de las láminas con Giemsa y se intentaba el cultivo en medio NNN para posterior identificación del linaje de T. cruzi por técnicas moleculares.

Análisis de los resultados

Los indicadores operacionales epidemiológicos, dispersión o índice de infestación en un área determinada por localidades, índice de infestación intradomiciliaria, índice de colonización e índice de de infección de especies triatomínicas a T. cruzi para cada estado, fueron calculados según WHO (2002).

RESULTADOS

Comparación de métodos de captura

En las Tablas I y II se presentan los datos de los triatominos colectados en Portuguesa y Barinas utilizando los 5 métodos de recolección de triatominos arriba descritos, por especie y estadio de desarrollo y el número de examinados y positivos a T. cruzi.

Tabla I. Triatominos colectados en 32 casas de 7 localidades del estado Portuguesa (2000-2004) disecados y positivos a Trypanosoma cruzi, distribuidos por método de captura, especie y estadío de desarrollo.

Tabla II. Triatominos colectados en 101 casas de 27 localidades del Estado Barinas (2003-2004), distribuidos por método de captura, especie y estadio de desarrollo, examinados y positivos a Trypanosoma cruzi.

De las 11 localidades de Portuguesa donde se muestrearon un total de 200 casas, 7 se encontraron positivas con 32 casas infestadas (16%), 31 fueron detectadas positivas por el método de recolección de los habitantes (2 de las cuales fueron positivas también para búsqueda activa y búsqueda activa con excitante), mientras que una sólo fue detectada positiva por el método de las caja Gomez-Nuñez. Es de notar que una casa en San Bartolo aportó el 40,75% (n=71) de todos los triatominos colectados con presencia de todos los estadios ninfales. De las 29 localidades de Barinas donde se muestrearon 350 casas, fueron positivas 27 localidades y 101 casas (28,86%): 1 fue detectada positiva sólo por la caja Gómez-Nuñez, y 1 sólo por búsqueda activa con excitante, mientras que de las restantes 99, todas detectadas positivas por los habitantes, una lo fue también por búsqueda activa, 1 por búsqueda activa por excitante y una a ambos metodos, recolección por habitantes y caja Gómez-Nuñez.

Como era de esperarse, la mayoría de los insectos colectados fueron adultos en ambos estados por ser éstos de mayor tamaño y por lo tanto más facilmente detectados tanto por los recolectores, como por los habitantes. Por lo tanto no parece apropiado tomar estos resultados como representativos de la composición etaria de la población en condiciones naturales intradomiciliaria, aún cuando, en algunas oportunidades, los habitantes colectaron hasta ninfas de 1er estadio. No hubo una diferencia significativa en la proporción de Ninfas vs. adultos en las muestras colectadas entre los dos estados (c2= 0,87; P=0,35; df= 1; OR= 0,83<0,57<1,21) lo cual fue corroborado también a través de la comparación del índice de colonización.

En la Tabla III se presenta el análisis de la comparación del rendimiento obtenido para cada método utilizado sobre el número de casas detectadas positivas, no encontrándose diferencias significativas en la eficacia de un mismo método en los dos estados. Cuando se compararon los resultados obtenidos con el método de recolección por los habitantes vs. los obtenidos con todos los otros métodos, la diferencia fue altamente significativa a favor de la recolección de los triatominos por los habitantes, tanto en Portuguesa como en Barinas, siendo por lo tanto obvio que este método fue superior a cada uno de los otros, si considerado separadamente. Esto a pesar de que la información recopilada en las encuestas epidemiológicas sobre la estructura de un total de 481 viviendas en el estado Barinas y 237 en el estado Portuguesa arrojó los siguientes resultados: 320 “ranchos” vs. 161 “casas” en Barinas y 112 “ranchos” vs. 125 “casas” en Portuguesa, siendo la diferencia de proporciones estadísticamente significativa con mas “ranchos” en el Edo Barinas que en Portuguesa (c2 = 23,80; df=1; P= 0,0000), lo cual indicaría que el tipo de casas no afectó los resultados de los métodos de captura.

Tabla III. Resultados de 5 métodos de captura intradoméstica de triatominos en las casas detectadas positivas en Portuguesa (n=32) y Barinas (n=101), Venezuela.

Ya habiendo descartado que hubiera diferencia entre los resultados obtenidos en los dos estados, tratando la muestra Portuguesa-Barinas como un solo conglomerado, en la Fig. 2 se grafican los resultados totales de infestación sobre la muestra de las 132 casas positivas y sobre las 550 casas exploradas en total. Sobre el total de casas positivas, en 131 (99,2%) la presencia de triatominos fue detectada por lo habitantes vs. 5,3% por búsqueda activa; 3,38 por la caja Gómez-Nuñez; 3, 03% por búsqueda con excitante y 0% por la hoja de papel. Sobre el total de casas exploradas, el valor mayor de infestación intradomiciliaria fue obtenido por los habitantes: 23,95% vs.0,23% con la búsqueda activa; 0,07% con la búsqueda activa con excitante y 0,91% con la Caja Gómez-Núñez. En ambos casos la comparación de proporciones evidenció la eficacia muy superior de este método con respecto a todos los otros.

Fig. 2. Resultados de diferentes métodos de captura intradoméstica de triatominos por casas positivas (n=132) y por el total de casas exploradas (n= 550): RH (recolección por los habitantes), BA (búsqueda activa), BA exc (búsqueda activa con excitante), G-N (cajas Gómez-Núñez), HP (Hoja de papel).

Índices entomológicos

En las Tablas IV y V se presentan datos crudos y algunos indicadores entomológicos (infestación intradomiciliaria, colonización e infección natural a T. cruzi), referidos únicamente a R. prolixus, el vector predominante por localidad en cada estado. Tomando en cuenta todos los métodos utilizados, el índice de dispersión (No. de localidades positivas a triatominos /No. de localidades investigadas x 100) fue de 63,3% (7/11) en Portuguesa y 93,10% (27/29) en Barinas (P=0,03; OR: 0,01<0,13<1,19); el índice de infestación intradomiciliaria a triatominos (No. de casas positivas /No. casas exploradas x 100) fue igual a 16% (32/200) en Portuguesa y significativamente mayor, 28,86% (101/350) en Barinas (c2= 10,78; P=0,001; 0,29<0,47<0,75). Este indicador cambió muy poco cuando se calculó solamente para R. prolixus, el cual, como era de esperarse, fue la especie predominante.

Tabla V. Índices entomológicos para 29 localidades del Estado Barinas (2003-2004).

En cambio, no hubo diferencias en el índice de colonización a R. prolixus (No. de casas con ninfas / No. de casas exploradas x 100) de 4% (8/200) en Portuguesa con respecto al 6% (21/350) en Barinas (c2= 0,66; P= 0,41; OR= 0,26<0,65<1,59).

Finalmente, el índice de infección registrado en la muestra del estado Portuguesa fue de 1,09 % (1 R. prolixus positivo/91 R. prolixus examinados x 100) y de 11,66 (19/163 x 100) en Barinas (c2= 5,95; P= 0,01; OR= 0,02 <0,10<0,44). Los flagelados en heces coloreadas con Giemsa, por características morfológicas del núcleo, kinetoplasto y pliegues de la membrana ondulante fueron identificados todos como T. cruzi.

DISCUSION

Los resultados obtenidos con los 5 métodos para la detección de la presencia de triatominos (recolección por los habitantes, búsqueda activa, búsqueda activa con excitante, caja Gómez-Nuñez y hoja de papel) en 550 casas en los Estados Portuguesa y Barinas, demostraron de manera inequívoca la mayor eficiencia del método de recolección por los habitantes con relación a todos los otros métodos.

Los métodos de captura pasivas vs. los métodos de captura activa de triatominos han sido comparados en diferentes países por varios autores. El método tradicional más usado, la búsqueda activa, no necesariamente prueba la ausencia de los triatominos y a menudo falla en situaciones de baja densidad (Schofield, 1978). Su confiabilidad depende además del número de colectores y el tiempo invertido en la búsqueda y de la experticia y fatiga de los colectores (Forattini et al., 1969; Gomez-Nuñez, 1965). La búsqueda activa con excitantes proporcionó mejores resultados, siendo recomendado especialmente para el monitoreo de la infestación post-rociado (Pinchin et al., 1981). Sin embargo en nuestro trabajo la búsqueda con excitante no fue mucho más efectiva que la búsqueda activa, lo cual puede encontrar explicación en que ya la mayoría de los insectos presentes en la casa habían sido recolectados sea bien por los habitantes o por el técnico que efectúo el día anterior la búsqueda activa sin excitante. La caja Gómez-Nuñez ha tenido en varios países buena aceptación como método no influenciado por variables inherentes al colector y por demostrar una alta sensibilidad incluso en situaciones de baja densidad, por lo tanto muy útil (Schofield, 1978), sin embargo, según García-Zapata et al. (1985), es demasiado costoso para ser adoptado para la vigilancia epidemiológica. Estos autores comparan este método y proponen remplazar la caja Gómez-Nuñez por una hoja de papel de menor costo, por demostrar la misma sensibilidad en la detección de la presencia de triatominos por rastros fecales.

En este trabajo, ni los métodos de búsqueda activa, ni los de búsqueda pasiva fueron realmente útiles para un conocimiento adecuado de la situación  epidemiológica, puesto que todos estos métodos en conjunto llegaron a detectar sólo el 12,03% vs. el 99,25 % de todas las casas positivas detectadas por los habitantes. Estos resultados sugieren un nuevo escenario epidemiológico en Venezuela, donde, en las localidades en las cuales se ha interrumpido el ciclo doméstico, la presencia de los insectos dentro de la casa parece ser principalmente producto de la invasión continua de R. prolixus visitantes que incursionan a las viviendas procedentes de las palmas cercanas y, debido a sus características estructurales, sea bien “viviendas rurales” o “casas de bloques” en el estado Portuguesa, o “ranchos” de tablas de madera en el estado Barinas, los insectos no encuentran un hábitat propicio para el establecimiento de colonias estables, como lo demuestran los bajos índices de colonización. Esto explicaría porqué su presencia es detectada fácilmente por los habitantes durante las horas nocturnas cuando éstos llegan a las casaso salen de sus precarios escondites, mientras que no  son colectados por el personal de salud que efectúa la búsqueda durante las horas del día. Esto no excluye la persistencia de focos en los cuales se mantiene el ciclo intradoméstico y en éstos, después del rociamiento de las casas, pueden reaparecer poblaciones residuales.

Casos de transmisión vectorial mantenida por triatominos silvestres visitantes ha sido reportadas en otros Países. La emergencia de la Enfermedad de Chagas en Paó de Lumiar, Estado de Maranhāo, Brazil fue atribuida a R. prolixus y Rhodnius neglectus ancestralmente adaptados a la palma Attalaea phalerata (Texeira et al., 2001). La palma ”tagua” (Phytelephas aequatorialis) infestada por Rhodnius ecuadoriensis, el segundo vector en Ecuador y Perú, es considerada un “ecotopo de riesgo” para los habitantes que viven en su cercanía (Abad-Franch et al., 2005) y la aparición en 1987 de dos casos agudos en niños en Posocol de San Carlos, y más tarde de dos casos crónicos en dos niñas en Los Chiles, en Costa Rica, en ausencia de Triatoma dimidiata, sugirió que estos casos fueron debido a transmisión por R. pallescens, habitante de Attalea butyracea y visitante consuetudinario de las casas en los llanos de Nicaragua y Costa Rica (Zeledón et al., 2006). Estas situaciones ponen en duda la posibilidad de eliminación de la Enfermedad de Chagas celebrada en el Cono Sur (Schofield & Dias, 1999) y perseguida por las Iniciativas de los Paises Andinos (WHO, 1997) y de Centro-América (WHO, 1998).

Indudablemente son necesarias bases científicas para el entendimiento de las diferentes situaciones epidemiológicas para la optimización de los recursos disponibles y los resultados de este trabajo resaltan la importancia de la educación para la salud y la incorporación efectiva de la comunidad al PCECh como una ayuda muy valiosa en la vigilancia epidemiológica de la Enfermedad de Chagas. Su efectividad, a través de puestos de notificación de triatominos (PNT), fue ampliamente comprobada en Brasil (Pinto Dias & Ribeiro García, 1978; García Zapata & Marsden, 1993). En Venezuela, ya en 1995, Aché y Sifontes propusieron esta alternativa para la actualización permanente de los indicadores a nivel de los caseríos a través de estimaciones puntuales, necesarias para la estratificación de riesgo y focalización de las medidas de control, sin embargo para esa fecha no fue implementada y solo recientemente se ha iniciado un estudio piloto con el establecimiento de los PNT en el Estado Trujillo (Benitez et al., 2006). La implementación de este método a escala nacional debería ser vista como una necesidad y una prioridad.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos el Dr. Clive Davies y Dr. Diarmid Campbell-Lendrum por las útiles discusiones en el diseño del estudio, la Dra. Giomar Hernández de Valenzuela, Coordinadora Regional de Salud Ambiental y Contraloría Sanitaria del estado Portuguesa, al Dr. Roberto Rangel y a la Dra. Leonidas Escalona, Coordinadores Regionales de Salud Ambiental y Contraloría Sanitaria del Estado Barinas por su interés y apoyo para su realización y todo el personal de las Demarcaciones por su colaboración. También agradecemos a los habitantes de las localidades estudiadas su cordial receptividad y colaboración.

Este trabajo fue financiado por el FONACIT (Agenda Salud - Proyecto 20000088) y Wellcome Trust (Proyecto No. 062984/Z/00Z) y TDR/ UNDP/WORLD BANK Proyecto ID: A00877.

REFERENCIAS

1. Abad-Franch F., Palomeque F. S., Aguilar H. M. & Miles M. A. (2005). Field ecology of sylvatic Rhodnius populations (Heteroptera, Triatominae): risk factors for palm tree infestation in western Ecuador. Trop. Med. Int. Health. 10: 1258-1266.        [ Links ]

2. Aché A. & Matos A. J. (2001). Interrupting Chagas disease transmission in Venezuela. Rev. Inst. Med. Trop. Sâo Paulo. 43: 37-43.        [ Links ]

3. Aché A. & Sifontes R. (1995). Alternativas para las evaluaciones epidemiológicas en el Programa de Control de la Enfermedad de Chagas en Venezuela. Bol. Dir. Mal. San. Amb. 35: 34-38.        [ Links ]

4. Acquatella H., Catalioti F., Gómez-Mancebo J. R., Dávalos V. & Villalobos L. (1987). Longterm control of Chagas disease in Venezuela: effects on serologic findings, electrocardiographic abnormalities and clinical outcome. Circulation. 76: 556-562.        [ Links ]

5. Acquatella H., Perez J. E., Condado J. A., Sanchez I. (1999). Limited myocardial contractile reserve and chronotropic incompetence in patients with chronic Chagas’ disease: assessment by dobutamine stress echocardiography. J. Am. Coll. Cardiol. 33: 522-529.        [ Links ]

6. Añez N., Carrasco H., Parada H., Crisante G., Rojas A., Gonzalez N., Ramirez J. L., Guevara P., Rivero C., Borges R. & Scorza J. V. (1999a). Acute Chagas’ Disease in western Venezuela: A clinical, seroparasitologic and epidemiologic study. Am. J. Trop. Med. Hyg. 60: 215-222.        [ Links ]

7. Añez N., Carrasco H., Parada H., Crisante G., Rojas A., Fuenmayor C., et al. (1999b). Myocardial parasite persistence in chronic chagasic patients. Am. J. Trop. Med. Hyg. 60: 726-732.        [ Links ]

8. Añez N., Crisante G., Rojas A., Carrasco H., Parada H., Yepez Y. et al. (2001). Detection and significance of inapparent infection in Chagas disease in western Venezuela. Am. J. Trop. Med. Hyg. 65: 227-232.        [ Links ]

9. Añez N., Crisante G. & Rojas A. (2004). Update on Chagas disease in Venezuela. A Review. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 99: 781-787.        [ Links ]

10. Benítez J., Reyes P. & Maldonado C. (2006). Programa de Control de la Enfermedad de Chagas en Venezuela. Situación actual. Año 2005. pp 34-39. En: Memorias Curso-Taller Internacional. El uso de Sistemas de Información Geográfica (SIG) y Sensores Remotos (SR) en Salud Pública. Eds. Guhl F. & Danes C. Bogotá, Colombia.        [ Links ]

11. Briceño Leon R. (1998). El contexto político de la participación comunitaria en América Latina. Cad. Saude Publ. 14 (Suppl 2): 141-147.        [ Links ]

12. Cova García P. & Suárez M. (1959). Estudio de los Triatominos en Venezuela. Publicación No 11. División de Malariología. MSAS; Tipografía Vargas, S. A. Caracas, Venezuela.        [ Links ]

13. Dujardin J. P., Muñoz M., Chavez T., Ponce C., Moreno J. & Schofield C. J. (1998). The origin of Rodnius prolixus in Central America. Med. & Vet. Entomol. 12: 113-115.        [ Links ]

14. Feliciangeli M. D., Cracavallo R. & Fernandez E. (1988). Canibalismo y transmisión directa de Trypanosoma cruzi entre ninfas de Rhodnius prolixus. Chagas. 5: 18-22.        [ Links ]

15. Feliciangeli M. D., Dujardin J. P., Bastrenta B., Mazzarri M. Villegas J., Flores M. & Muñoz. M. (2002). Is extradomestic Rhodnius robustus (Hemiptera: Reduviidae) responsible for sporadic transmission of Chagas disease in western Venezuela? Trop. Med. & Intern Health. 7: 280-287.        [ Links ]

16. Feliciangeli M. D., Campbell-Lendrum D., Martinez C., Gonzalez D., Coleman P. & Davies C. (2003). Chagas disease control in Venezuela: lessons for the Andean Region and beyond. Trends Parasitol. 19: 44-49.        [ Links ]

17. Feliciangeli M. D., Sánchez-Martín M. J., Suárez B., Marrero R., Torrellas A., Bravo A. et al.. (2007a). Risk factors for Trypanosoma cruzi human infection in Barinas state, Venezuela. Am. J. Trop. Med. Hyg. 76: 915-921.        [ Links ]

18. Feliciangeli M. D., Sanchez-Martin M. J., Marrero R, Davies C. & Dujardin J. P. (2007b). Morphometric evidence for a possible role of Rhodnius prolixus from palm trees in house reinfestation in the State of Barinas (Venezuela). Acta Tropica. 101: 169-177        [ Links ]

19. Fitzpatrick S. (2005). The analysis of the relationship between sylvatic and domestic populations of R. prolixus/robustus (Hemiptera: Reduviidae) in Venezuela by morphometric and molecular methods. Infectious & Tropical Diseases PhD Thesis. London, London School of Hygiene & Tropical Medicine. University of London.        [ Links ]

20. Forattini O. P., Huarez E. & Correa R. R. (1969). Medida de infestação domiciliar por Triatoma infestans. Rev. Saude Publica. 3: 159-172.        [ Links ]

21. Gamboa Cuadrado J. (1961). Comprobación de Rhodnius prolixus extradoméstico. Bol. Inf. Dir. Mal. San. Amb. 1: 139-142.        [ Links ]

22. García Zapata M. T., Schofield C. J. & Marsden P. D. (1985). A simple method to detect the presence of live triatomine bugs in houses sprayed with residual insecticides. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 79: 558-559.        [ Links ]

23. García-Zapata M. T. & Marsden P. D. (1993). Chagas’ disease: control and surveillance through use of insecticidas and community participation in Mambai, Goias, Brazil. Bull. Pan. Am. Health Organ. 27: 265-279.        [ Links ]

24. Gómez Núñez J. C. 1965. Desarrollo de un nuevo método para evaluar la infestación intradoméstica por Rhodnius prolixus. Acta Cient. Venez. 16: 26-31.         [ Links ] 25. Guerrero L., Domínguez-Quesada M., García-Martín G. & Borges L. (1965). Estado actual de la campaña contra la enfermedad de Chagas en Venezuela. Arch. Venez. Med. Trop. Parasit. 5: 219-265.        [ Links ]

26. Gürtler R. E., Schweigmann N. J., Cecere M. C., Chuit R. & Wisnivesky-Colli C. (1993). Comparison of two sampling methods for domestic populations of Triatoma infestans in north-west Argentina. Med. Vet. Entomol. 7: 238-242.        [ Links ]

27. Instituto Geográfico de Venezuela Simón Bolivar. (1995). Gacetilla del Estado Barinas. Ministerio del Ambiente y del los Recursos Naturales Renovables. Servicio Autónomo de Geografía y Cartografía Nacional.        [ Links ]

28. Layrisse Z., Fernandez M.T., Montagnani S., Matos M., Balbas O., Herrera F., Colorado IA, Catalioti F, Acquatella H. (2000). HLA-C(*)03 is a risk factor for cardiomyopathy in Chagas disease. Hum. Immunol. 61: 925-929.        [ Links ]

29. OCEI (1994). Nomenclador de centros poblados. XII. Censo General de Población y Vivienda 1990. Taller Gráfico de la Oficina Central de Estadística e Informática.        [ Links ]

30. Pinchin R., Fanara D. M., Castleton C. W. & Oliveira Filho A. M. (1981). Comparison of techniques for detection of domestic infestations with Triatoma infestans in Brazil. Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg. 75: 691-694.        [ Links ]

31. Pifano F. (1941). La epidemiología de la Enfermedad de Chagas en el estado Yaracuy. Rev. San. Asist. Soc. 6: 303-310.        [ Links ]

32. Pinto Dias J. C. & Ribeiro García A. L. (1978). Vigilância epidemiológica com participación comunitária. Um Programa de Enfermedad de Chagas. Bol. Of. Sanit. Panam. 84: 533-544.        [ Links ]

33. Pinto Dias J. C. (1998). Problemas e possibilidades de participação comunitária no controle das grandes endemias no Brasil. Cad. Saúde Publ. 14 (Suppl. 2): 19-37.        [ Links ]

34. Sánchez-Martin M. J., Feliciangeli M. D., Campbell-Lendrum D. & Davies C. (2006). Could the Chagas Disease elimination programme be compromised by reinvasion of houses by sylvatic Rhodnius prolius bug populations?. Trop. Med. Int. Health. 11: 1585-1593.        [ Links ]

35. Sandoval C. M., Joya M. I., Gutierrez R. & Angulo V. M. (2000). Cleptohaematophagy of the Triatomine bug Belminus herreri. Med. Vet. Entomol. 14:100-101.        [ Links ]

36. Schofield C. J. (1978). A comparison of sampling techniques for domestic populations of Triatominae. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 72: 449-55.        [ Links ]

37. Tejera E. (1919). La trypanosomose americaine ou maladie de Chagas au Venezuela. Bull. Soc. Pathol. Exot. 12: 509-513.        [ Links ]

38. Teixeira A. R., Monteiro P. S., Rebelo J. M., Arganaraz E. R., Vieira D., Lauria-Pires L. et al. (2001). Emerging Chagas disease: trophic network and cycle of transmission of Trypanosoma cruzi from palm trees in the Amazon. Emerg. Infect. Dis. 7: 100-112.        [ Links ]

40. Torrealba J. F. (1934). Investigaciones sobre la Enfermedad de Chagas. Recopilación de trabajos. Fasc 1-6, San Juan de los Morros, Estado Guárico, Venezuela.

41. Zeledón R., Marin F., Calvo N., Lugo E. & Valle S. (2006). Distribution and ecological aspects of Rhodnius pallescens in Costa Rica and Nicaragua and their epidemiological implications. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 101: 75-79.

42. WHO (1997). Andean countries initiative launched in Colombia. TDR News. 53: 3.

43. WHO (1998). Chagas Disease: Central America initiative launched. TDR News. 55: 6. 44. WHO (2002). Control of Chagas disease. Technical Report. Series 905. Geneva.