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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Infecciones maláricas en individuos asintomáticos en la población indígena Jivi, Amazonas, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The study was carried out to determine the present malaria infection in the asymptomatic Jivi people of Puente Parhueña. The study was prospective over three periods of time. The parasitological diagnoses were from thick and thin blood smears (GGE) and polymerase chain reaction (PCR). The antibody search was performed by ELISA. Microscopy of the slides detected the following positive results: 2% (2/261) April, 1% (3/274) September and 4% (5/135) December. Detection of Plasmodium by PCR was 46% (26/57) in April, 49% (28/57) in September y 35% (20/57) in December. Plasmodium vivax infected individuals predominated during these 3 times. Positives for ELISA were 72% (41/57) in April, 53% (30/57) September and 60% (34/57) December. The study demonstrated that people living in Puente Parhueña presented asymptomatic malaria infection with malaria antibodies persistence which likely represents a gametocyte potential reservoir for infection among the population.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p ALIGN="center"><b><font face="Verdana">Infecciones maláricas en individuos  asintomáticos en la población indígena Jivi, Amazonas, Venezuela</font></p> <font SIZE="2">     <p ALIGN="center"><font face="Verdana">Irma Rodríguez<sup>1</sup>*, Nancy De Abreu<sup>2</sup>, Aníbal  Carrasquel<sup>1</sup>, José Bolívar<sup>2</sup>, Margarita González<sup>1</sup>, José Vicente Scorza<sup>3</sup> &amp; Hilda  Pérez<sup>2</sup></font></p> </font></b><font FACE="Verdana" SIZE="2">     <p ALIGN="JUSTIFY">1 Laboratorio de Malaria del Servicio Autónomo Centro  Amazónico de Investigación y Control de Enfermedades Tropicales &quot;Simón Bolívar&quot;,  Puerto Ayacucho, Estado Amazonas, Venezuela. Ministerio del Poder Popular para la Salud. </p>     <p ALIGN="JUSTIFY">2 Laboratorio de Inmunoparasitología del Centro de  Microbiología y Biología Celular del IVIC. Venezuela.</p>     <p ALIGN="JUSTIFY">3 Centro de Investigaciones Parasitologicas JWT-NURR-ULA.  Venezuela.</p>     <p align="justify">*Autor de correspondencia: <a href="mailto:rodir@hotmail.com"> rodir@hotmail.com</a></p>     <p ALIGN="JUSTIFY">Se evaluó la presencia de infecciones maláricas en individuos  asintomáticos en la población Jivi de Puente Parhueña. El estudio fue de tipo  prospectivo en tres momentos. El diagnóstico parasitológico se realizó mediante  el examen convencional de gota gruesa y extendido (GGE) y la reacción en cadena  de la polimerasa (PCR). El diagnóstico por microscopia indicó 2% (5/261) de  láminas positivas en Abril, 1% (3/274) en Septiembre y 4% (5/135) en Diciembre.  La PCR para <i>Plasmodium </i>spp., fue 46% (26/57) en abril, 49% (28/57) en  Septiembre y 35% (20/57) en Diciembre. En los tres momentos predominó la  presencia de <i>P. vivax</i>. La prueba de ELISA demostró 72% (41/57)  seroreactivos en Abril, 53% (30/57) en Septiembre y 60% (34/57) en Diciembre. En  Puente Parhueña habitan individuos con infecciones maláricas asintomáticos, con  persistencia de anticuerpos antimalaricos, que probablemente representan un  reservorio de gametocitos dentro de la comunidad.</p> <b>     <p ALIGN="JUSTIFY">Palabras clave: </b>Jivi, asintomáticos, <i>Plasmodium vivax</i>,  PCR, ELISA, Amazonas.</p> <b>     <p align="center">Asymptomatic malaria infection in the indigenous Jivi  population, Amazonas state, Venezuela</p> </b><font SIZE="2">     <p align="justify"><b>SUMMARY</b> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">The study was carried out to determine the present malaria  infection in the asymptomatic Jivi people of Puente Parhueña. The study was  prospective over three periods of time. The parasitological diagnoses were from  thick and thin blood smears (GGE) and polymerase chain reaction (PCR). The  antibody search was performed by ELISA. Microscopy of the slides detected the  following positive results: 2% (2/261) April, 1% (3/274) September and 4%  (5/135) December. Detection of <i>Plasmodium </i>by PCR was 46% (26/57) in April,  49% (28/57) in September y 35% (20/57) in December. <i>Plasmodium vivax </i> infected individuals predominated during these 3 times. Positives for ELISA were  72% (41/57) in April, 53% (30/57) September and 60% (34/57) December. The study  demonstrated that people living in Puente Parhueña presented asymptomatic  malaria infection with malaria antibodies persistence which likely represents a  gametocyte potential reservoir for infection among the population.</p> <b>     <p align="justify">Key words: </b>Jivi, asypmtomatic, <i>Plasmodium vivax</i>,  PCR, ELISA, Amazonas</p> </font></font>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font SIZE="2" face="Verdana">Recibido el 18/05/2010 Aceptado  el 01/11/2010</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font SIZE="2"><font face="Verdana"><b>INTRODUCCIÓN</b> </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">Entre los 500 millones de casos clínicos  anuales de malaria (Tangpukdee </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et  al.</i>, 2009), unos 80 millones se relacionan con <i>Plasmodium vivax </i>y es  en América donde ocurre la mayoría de estos casos (Mendis <i>et al.</i>, 2001).  El paludismo por <i>P. vivax </i>no suele ser fatal, pero los episodios  recidivantes acentúan su morbilidad y han aumentado los reportes sobre casos de  paludismo severo ocasionados por esa especie en varias regiones del mundo (Mendis <i>et al.</i>, 2001; Torres <i>et al.</i>, 1997; 2003). En Venezuela, durante el  período 1998 - 2007, fueron diagnosticados 330.715 casos de malaria, atribuibles  en un 83,7% a <i>P. vivax</i>. De los 41.570 casos registrados en el país  durante el año 2007, Amazonas reportó 9.204 (22%) casos, de los cuales el 50%  correspondieron al municipio Atures (Metzger <i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">,  2009). Hacia el eje carretero norte de este municipio, está la comunidad de  Puente Parhueña, habitada por población indígena Jivi (Guahibo), cuya incidencia  de malaria IPA fue de 125 casos por 1000 habitantes en el 2007 (Sojo-Milano &amp;  Grande-Montalvo, 2009). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">El diagnostico de la malaria, se realiza  por el examen microscópico convencional gota gruesa y </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">extendido (GGE), siendo la técnica confiable, y  además económica, que sólo requiere de un microscopista bien entrenado. Esta  técnica mínimo detecta entre 50-100 parásitos/ul de sangre (Tangpukdee <i>et al.</i>,  2009). La técnica de la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR), ofrece alta  sensibilidad y especificidad a la detección del ADN genómico de las cuatro especies de <i> Plasmodium</i>, detecta de 1 a 5 parásito/ul de sangre (&#8804;0,0001% de glóbulos  rojos infectados) y es efectivo en la determinación de infecciones m ixtas  (Singh <i>et al.</i>, 1999). La PCR aún no ha sido incorporada a la rutina de  diagnósticos en los países endémicos de malaria por motivos técnicos y  presupuestarios. Por otro lado el papel de los anticuerpos humanos, adquiridos  en forma natural, en la inmunidad contra los estadios asexuales sanguíneos de  los <i>Plasmodium </i>ya ha sido demostrado desde los años 1960 y la captura de  anticuerpos por la técnica de ELISA (Ferreira en Yadón, 2006), demuestran que  los anticuerpos persisten entre 3 a 6 meses desde la infección inicial (Tangpukdee <i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">, 2009). </font> </p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">El estado Amazonas, contribuye con una  gran parte de los casos de malaria registrados en Venezuela. Inclusive  comunidades de las poblaciones Yanomami del Alto Orinoco son consideradas  hyperendemicas de malaria (Torres </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"> <i>et al.</i>, 1988). En estudios mediante encuestas, estudios clínicos,  diagnostico microscópico y diagnóstico por PCR, se ha demostrado la presencia de  individuos asintomáticos con bajas densidades parasitarias. En Coyowateri,  Parima B y Cocholowateri se ha observado, alta frecuencia de infecciones por <i> P. vivax </i>en individuos asintomáticos mayores de 5 años y baja frecuencia de  infecciones por <i>P. falciparum </i>en individuos sintomáticos de todas las  edades (Laserson <i>et al.</i>, 1999). Marcano <i>et al. </i>(2004) observaron  una condición similar en los Yanomami de Ocamo, Mavaca y Platanal, y baja  frecuencia (9,2%) de casos de malaria severa en niños menores de 10 años.  Metzger <i>et al. </i>(2008) en Ocamo y Mavaca observaron por microscopia 64%  pacientes positivos a malaria con parasitemias &lt; 100 parasitos/ microlitro de  sangre. Rodulfo <i>et al.</i>, (2007) en poblaciones del Municipio Atabapo  reportaron una frecuencia de infecciones asintomáticas de 34,8% para <i>P. vivax </i>y 15,2% para <i>P. falciparum</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">. </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">En el municipio Atures del estado  Amazonas, la malaria siempre había estado focalizada en los ejes carreteros  Norte y Sur donde se concentran varias comunidades de poblaciones indígenas </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2">principalmente de la etnia Jivi y  Piaroa (Oficina de estadística poblacional- Amazonas, 2001). Estudios  epidemiológicos realizados desde 1998 indicaron que la mayor incidencia de  malaria ocurría en poblaciones criollas en Puerto Ayacucho (Rodríguez 2002, com.  pers.), población que presenta menos riesgo de malaria que los indígenas de la  etnia Guhibo (Jivi), que viven en áreas alrededor de Puerto Ayacucho, (Metzger <i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">, 2009), capital y  núcleo urbano más importante del estado Amazonas, con una población en  crecimiento acelerado, migraciones constantes y movimiento poblacional  incontrolado producto de ofertas de servicio y bienes de consumo por el eje  fluvial Samariapo-Atabapo, eje fluvial fronterizo Puerto Ayacucho-Cazuarito-Carreño  (Colombia) y los ejes carreteros El Burro-Ayacuho-Samariapo. Para generar  información básica sobre la transmisión de la malaria en los pueblos indígenas  que habitan las cercanías de Puerto Ayacucho, se determinó mediante GGE, PCR y  ELISA, la presencia de infecciones maláricas en individuos asintomáticos en la  población Jivi de Puente Parhueña. </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b><font face="Verdana">METODOLOGÍA</font></b></p> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Área y población del estudio </b> </p> </i>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY">El estudio se realizó en la población Jivi de Puente Parhueña  ubicada en los paralelos 05°53’14,5&quot; N y los meridianos 67°24’14,5&quot;O, en el  municipio Atures estado Amazonas. De acuerdo a los últimos resultados del XIII  censo de población y vivienda, el estado Amazonas tiene 105.148 habitantes. La  población indígena del estado Amazonas representa unos 35.270 habitantes,  conformado por 19 grupos étnicos, de los cuales unos 10, entre estos los Jivi,  agrupan a 96% de la población indígena (Oficina de estadística poblacional-  Amazonas, 2001). De acuerdo al censo del año 2002 del Ambulatorio Rural Tipo II  de Puente Parhueña, habian 320 habitantes pertenecientes al pueblo Jivi.</p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Tipo de estudio </b> </p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">Es un estudio prospectivo durante el año 2003 se evaluó la  presencia de infecciones maláricas y sintomatología clínica de malaria, en tres  momentos (Abril, Septiembre y Diciembre). Usualmente Abril y Diciembre son meses  con alta transmisión y Septiembre de baja transmisión. </p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Selección de los participantes</b></p> </i>     <p align="justify">Para el estudio fueron incluidos todos aquellos individuos  asintomáticos a malaria (definidos como individuos con temperatura axilar &#8804; 37ºC,  sin antecedente de fiebre y/o cefalea en los últimos </font> <font face="Verdana" SIZE="2">tres días, ausencia de bazo palpable), presentes en los tres momentos del estudio, así  como el consentimiento informado del voluntario o su representante legal. Se  excluyeron a todos aquellos </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"> individuos sintomáticos a malaria (definidos como individuos con temperaturas  &#8805;37,5ºC, antecedentes de fiebre y/o cefalea las últimas 72 horas, bazo  palpable), enfermedades concomitantes, como influenza, hepatitis, rubeola,  dengue, leptospirosis, tuberculosis y cualquier enfermedad crónica  intercurrente, SIDA, insuficiencia renal, hepática, cardiaca. También fueron  excluidos del estudio aquellos individuos que no estuvieron presentes en los  momentos de cada una de las evaluaciones tanto clínicas como parasitologicas. Se  excluyeron visitantes y transeúntes, en general, personas con menos de un año de  estadía. </p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Enrolamiento y seguimiento </b> </p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">En el mes de Abril se enrolaron a los participantes de este  estudio. Para este paso todo voluntario fue evaluado clínicamente, excluyendo de  esta manera a aquellos que no cumplían con los criterios de inclusión. Las  muestras fueron tomadas por punción del lóbulo de la oreja de cada voluntario,  se tomaron dos muestras de sangre capilar, una sirvió al propósito del  diagnóstico microscópico por gota gruesa y extendido (GGE) y la otra se recogió  sobre papel de filtro Whatman N°3, para estudios posteriores del diagnóstico  molecular de malaria y la determinación de anticuerpos antimaláricos. Para  cumplir con el seguimiento de los individuos enrolados en Abril, en los meses de  Septiembre y Diciembre se realizó una reevaluación clínica para considerar si  aún persistían los criterios de inclusión, dicha reevaluación fue hecha de la  misma manera con diagnostico microscópico y toma de muestra para el diagnóstico  molecular de malaria y determinación de anticuerpos antimaláricos. </p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Diagnóstico parasitológico por GGE </b> </p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">Se fija el extendido por 3 minutos con metanol, luego ambas,  &quot;gota gruesa&quot; y &quot;extendido&quot;, se colorean con dilución de 20% del colorante de  Giemsa por 5 minutos. Las preparaciones se observan bajo microscopio 1000X. Para  considerar una muestra negativa, en la gota gruesa se examinan 200 campos y para  descartar una infección mixta (dos especies de <i>Plasmodium</i>) se examina en  el extendido 100 campos. </p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Ensayo de la PCR </b> </p> </i>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY">La extracción de ADN del <i>Plasmodium </i>sp. a partir de  muestras de sangre recogidas sobre papel de filtro se hizo con el reactivo  InstaGene™ (BioRad) de acuerdo a las instrucciones del fabricante. Se utilizó el  ensayo de PCR encestado descrito por Snounou <i>et al.</i>, (1993) para  amplificar secuencias específicas de género y especie presentes en los genes  ribosomales (SSUrRNA) de los parásitos <i>Plasmodium</i>, con la modificación de  Singh <i>et al. </i>(1999) para las muestras de sangre recogidas sobre papel de  filtro. Para este último se utilizaron los cebadores rPlu1/rPlu5; rPlu3/rPlu4  para la amplificación género específica y los cebadores rViV1/rViV2 para <i>P.  vivax</i>; rFal1/rFal2 para <i>P. falciparum </i>y rMal1/rMal2 para <i>P.  malariae</i>. Los productos amplificados se tiñeron con bromuro de etidio y  separados según su tamaño mediante electroforesis en gel de agarosa al 2% en  paralelo con el marcador de peso molecular adecuado a la separación de 20  fragmentos con incrementos de 100 pares de base y observados bajo iluminación  con luz UV. </p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Preparación del extracto antigénico de </b> </i><b>Plasmodium  </b> <i><b>spp. </b> </p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">El antígeno se obtuvo a partir de glóbulos rojos de ratón (NMRI/IVIC)  infectados con <i>Plasmodium yoelii</i>. Se utilizó la cepa <i>P. yoelii </i> 17XL donada al laboratorio de Inmunoparasitología del IVIC por el Dr. Mark Wiser  de la Universidad de Tulane, Louisiana, E.U.A. La separación de los glóbulos  rojos parasitados (GRP) fue según el protocolo de Ihalamulla &amp; Mendis (1987). Se  obtuvo una suspensión con 95% de parasitemia. y fue ajustada a 1x108 células/mL.  La aplicación de antígenos de <i>P. yoelii </i>para la pesquisa de anticuerpos a <i>Plasmodium </i>spp., en sueros humanos se basa en estudios que han comprobado  la existencia de antígenos compartidos entre <i>P. vivax </i>y <i>P. yoelii </i> (Bracho <i>et al. </i>1995; 1996) y entre <i>P. yoelii </i>y <i>P. falciparum </i>(Ekala <i>et al. </i>2002, Rajeshwari <i>et al. </i>2004).</p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Ensayo de ELISA </b> </p> </i>     <p align="justify">La preparación del extracto antigénico de <i>P. yoelii </i> para el ensayo de ELISA siguió el protocolo descrito por Ekala <i>et al. </i> (2002) con algunas modificaciones. Las placas fueron tapizadas con el extracto  antigénico 1x108 células/mL. Los anticuerpos fueron levigados del papel de  filtro de </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">acuerdo al procedimiento  descrito por Pérez &amp; Bolívar </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">(1989), diluidos 1:90. Las Igs totales  (GAM), fueron anticuerpos producidos en cabra y conjugados a peroxidasa (Amershan),  diluidas 1:1000; el sustrato cromogénico soluble de la peroxidasa 2,2’-azino-di  (3-etil bentiazolina sulfonato (ABTS, Amersham), diluido 0,55 mg/mL en solución  tampón de citrato pH 5,0 con 0,004% de H2O2. Se determinó la absorbancia a 405  nm pertinente a cada pozuelo con un lector de ELISA </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">TiterTek MultiSkan™ MCC/340. Con relación a los  controles: el valor negativo de referencia (X + 2 DE) se determinó a partir de  los resultados proporcionados por los 30 levigados de muestras de donantes de  sangre de Puerto Ayacucho sin antecedentes de paludismo y los controles  positivos con títulos de anticuerpos antimaláricos en ensayos de IFI &lt;1/600. </p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Análisis de datos </b> </p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">El estadístico para la correlación de variables es el  coeficiente de Pearson y para la significancia de prevalencia se usó la prueba  de Chi cuadrado, para un nivel de confianza del 95%.</p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Consideraciones Éticas</b></p> </i></font><font SIZE="2">     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">El protocolo de estudio fue evaluado y  aprobado por el Comité de Bioética del &quot;Centro de Investigaciones José  Witremundo Torrealba&quot; - Núcleo Universitario Rafael Rangel de la Universidad de  los Andes y el Comité de Ética del CAICET. Para la toma de muestra se obtuvo el  consentimiento informado, así como la participación voluntaria de cada jefe de  familia, previo a la exposición y discusión de los motivos y propósitos del  estudio.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY"><b><font face="Verdana">RESULTADOS</font></b></p> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Evaluación microscópica</b></p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">De 350 habitantes de Puente Parhueña, se evaluaron por  microscopia a través de la GGE a 261 (75%) individuos en Abril, 274 (78%) en  Septiembre y 135 (39%) en Diciembre. La proporción de la población con <i> Plasmodium </i>spp. fue de 2% (5/261) en Abril, 1% (3/274) en Septiembre, 3,7%  (5/135) en Diciembre. <i>Plasmodium falciparum </i>predominó en Abril (60% =  3/5) y <i>P. vivax </i>en Septiembre y Diciembre, 67% (2/3) y 60% (3/5)  respectivamente. No se observaron gametocitos en los casos de <i>P. falciparum</i>,  en los casos de <i>P. vivax </i>las formas sexuales estuvieron presentes en  todos los casos, condición que favorece la transmisión de <i>P. vivax</i>. Todas  las personas con diagnóstico microscópico de malaria recibieron tratamiento  antipalúdico impartido por el visitador rural de acuerdo a las pautas del  Programa de Control para el estado Amazonas. </p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Estudio de seguimiento </b> </p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">De 261 individuos encuestados en Abril, solo 228 individuos  fueron enrolados, puesto que 6 individuos refirieron fiebre (5 <i>Plasmodium </i> spp. por GGE) y 27 presentaron influenza. En Septiembre, 192 individuos  continuaron en el seguimiento, debido a que 3 individuos manifestaron cefalea, 4  refirieron fiebre (1 <i>Plasmodium </i>spp. por GGE); 10 presentaron influenza;  11 individuos de una familia andaban pescando fuera de la comunidad y 8 se  habían trasladado a trabajar a otros lugares. En Diciembre fueron muy pocos los  voluntarios que accedieron a la toma de muestras, imposibilitando su  seguimiento, solo 61 individuos accedieron, de los cuales 4 presentaron fiebre y  2 tenían <i>P. vivax </i>por GGE. Por lo tanto, únicamente fueron incluidos en  el análisis de éste estudio 57 individuos asintomáticos a malaria, con examen  GGE y con muestras de sangre sobre papel de filtro tanto en Abril, Septiembre  como en Diciembre. </p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Evaluación por PCR </b> </p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">Los resultados indican que una alta proporción de la  población Jivi de Puente Parhueña es portadora de infecciones asintomáticas., la  frecuencia de infecciones por PCR fue 46% (26/57) en Abril, 49% (28/57) en  Septiembre y 35% (20/57) en Diciembre. La comparación estadística indicó que la  proporción de infecciones observadas en los tres momentos no son diferentes,  para un &#967;2 = 2,47 (<i>P</i>&gt;0.05). <i>Plasmodium vivax </i>predominó en los tres  momentos en la proporción de 92% (24/26), 85% (24/28) y 95% (19/20)  respectivamente. Las infecciones mixtas por <i>P. vivax </i>más <i>P. falciparum </i>correspondieron a 8% (2/26) en Abril, 11% (3/28) en Septiembre y 5% (1/20)  en Diciembre. Ninguna infección incluyó a <i>P. malarie </i>(<a href="#tab1">Tabla  I</a>). </font></p> <font SIZE="2" face="Verdana"><b>     <p align="center"><a name="tab1">Tabla I</a>. Infecciones maláricas* en un grupo  Jivi de Puente Parhueña con seguimiento en tres momentos del año 2003.</p> </b></font>     <div align="center"> 	<table border="1" cellspacing="1" width="475" id="table1"> 		<tr> 			<td width="97"><b><font face="Verdana" size="2">meses</font></b></td> 			<td align="center" width="42"><b><font face="Verdana" size="2">N</font></b></td> 			<td align="center" width="73"><b><font face="Verdana" size="2">Neg**</font></b></td> 			<td align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Pf</font></b></td> 			<td align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Pv</font></b></td> 			<td align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Pv+Pf</font></b></td> 			<td align="center" width="96"><b><font face="Verdana" size="2"> 			Prevalencia</font></b></td> 		</tr> 		<tr> 			<td width="97"><font face="Verdana" size="2">Abril</font></td> 			<td align="center" width="42"><font face="Verdana" size="2">57</font></td> 			<td align="center" width="73"><font face="Verdana" size="2">31</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">0</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">24</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">2</font></td> 			<td align="center" width="96"><font face="Verdana" size="2">26 (46%)</font></td> 		</tr> 		<tr> 			<td width="97"><font face="Verdana" size="2">Septiembre</font></td> 			<td align="center" width="42"><font face="Verdana" size="2">57</font></td> 			<td align="center" width="73"><font face="Verdana" size="2">29</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">0</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">25</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">3</font></td> 			<td align="center" width="96"><font face="Verdana" size="2">28 (49%)</font></td> 		</tr> 		<tr> 			<td width="97"><font face="Verdana" size="2">Diciembre</font></td> 			<td align="center" width="42"><font face="Verdana" size="2">57</font></td> 			<td align="center" width="73"><font face="Verdana" size="2">37</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">0</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">19</font></td> 			<td align="center"><font face="Verdana" size="2">1</font></td> 			<td align="center" width="96"><font face="Verdana" size="2">20(35%)</font></td> 		</tr> 	</table> </div> <font SIZE="2" face="Verdana">     <p align="justify">*Individuos asintomáticos con un frotis de sangre negativo en  la gota gruesa y positivo en el ensayo de PCR; ** Individuos asintomáticos con  un frotis de sangre negativo en la gota gruesa y negativos en el ensayo de PCR; <i>Pf</i>= número de infecciones por <i>Plasmodium falciparum</i>; <i>Pv</i>=  número de infecciones por <i>Plasmodium vivax</i>; <i>Pv + Pf </i>= número de  infecciones por <i>P. vivax </i>más <i>P. falciparum</i>.</p> </font><font SIZE="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana">Los resultados por PCR muestran que 81%  (46/57) de la población se encontró infectada en alguno de los tres momentos,  mientras que 19% estuvo consistentemente asintomático y sin evidencia de  infección. De los 46 sujetos con infección malárica: 26 se encontraban  infectados en Abril, de los cuales 13 continuaban infectados en Septiembre y 10  en Diciembre; los otros 13 individuos, positivos en Abril, estaban libres de  infecciones maláricas en los siguientes dos momentos. En Septiembre se sumaron  otros nuevos 15 individuos infectados por malaria, de los cuales 5 continuaron  infectados y 10 no tenían la infección en Diciembre. En el último momento 5  nuevos individuos estaban infectados en diciembre. </font></p> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b>Evaluación por ELISA </b></p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">Entre los 57 individuos incluidos en el estudio de  seguimiento, la prevalencia de anticuerpos en Abril, Septiembre y Diciembre de  2003 fue 72% (41), 53% (30) y 60% (34) respectivamente, la tendencia a una mayor  prevalencia coincidió con la época de mayor transmisión, con una declinación en  el mes de Septiembre con significación estadística para un &#967;2 3,94 (<i>P</i>&lt;0,05).  En el mes de Diciembre hay tendencia al incremento de individuos seroreactivos  con respecto al mes de Septiembre, sin significancia estadística para &#967;2 1,14 (<i>P</i>&gt;0,05).  En el grupo mayor de 20 años se observó un incremento de la prevalencia de  anticuerpos antimaláricos en Diciembre (74%) respecto al corte de Abril (58%),  sin significación estadística con un &#967;2 de 0,93 (<i>P</i>&gt;0,05). Por el  contrario en el grupo menor de 20 años la prevalencia de anticuerpos  antimaláricos fue menor en el corte de Diciembre, respecto al del mes de Abril.</p> <i>     <p ALIGN="JUSTIFY">Relación entre la presencia de anticuerpos y las infecciones  submicroscópicas en una cohorte de Amerindios Jivi de Puenta Parhueña, evaluados  en tres momentos efectuados en Abril, Septiembre y Diciembre del 2003 </p> </i>     <p align="justify">La posible relación entre la presencia de infecciones  submicroscópicas y el perfil de anticuerpos </font><font SIZE="2"> <font face="Verdana">antimaláricos fue evaluado en los 57 individuos del grupo  de seguimiento, quienes resultaron negativos en la GGE. Durante la época de  mayor transmisión que es el mes de Abril, la prevalencia de anticuerpos  antimaláricos fue 69% (18) en los 26 individuos con presencia de infecciones  submicroscópicas y 74% (23) en los 31 individuos sin infecciones  submicroscópicas. Durante el corte efectuado en coincidencia con la estación  seca del mes de Septiembre, la prevalencia de anticuerpos antimaláricos fue 46%  (13) en los 28 individuos con infecciones submicroscópicas, y 57% (17) en los 29  individuos sin infecciones submicroscópicas. Llegado el mes de diciembre, época  cuando se activa el segundo pico de transmisión, la situación de la prevalencia  de anticuerpos fue similar entre los 20 individuos con infecciones  submicroscópicas y los 37 individuos sin infecciones submicroscópicas, 60% (12)  y 59% (22) respectivamente.</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana"><b>DISCUSIÓN</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">En el presente estudio, se detectaron  infecciones por PCR a </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Plasmodium </i>spp. en un 81% (46/57) en individuos asintomáticos, infecciones que no han  sido consideradas en las medidas del Control aplicadas por el Programa de  Malaria, puesto que las medidas de control van dirigidas a pacientes  sintomáticos y el método de diagnostico de rutina es la Gota Gruesa. Este tipo  de infecciones ocultas pudieran ser responsables en alguna medida de la  transmisión de malaria en Puente Parhueña y posibles gametocitos reservorios de  la morbilidad registrada. Al respecto Alves <i>et al. </i>(2002); Tada <i>et al. </i>(2007) y Katsuragawa <i>et al. </i>(2010), señalan para la región amazónica  del Brasil que individuos portadores de malaria asintomática son fuente de  infección de malaria. Alves (2006) señala para la región amazónica del Brasil  que individuos asintomáticos pueden infectar a <i>Anopheles darlingi</i>, que  las personas asintomáticas permanecen infectivas más tiempo que los pacientes  sintomáticos que son tratados y que la prevalencia de las infecciones  asintomáticas es más alta que la de las infecciones sintomáticas. Estas son  consecuencias del Programa de Control de malaria del Brasil, que focaliza sus  acciones principalmente en el tratamiento de pacientes sintomáticos.</p>     <p ALIGN="JUSTIFY">En África se ha señalado que los asintomáticos portadores de <i>Plasmodium falciparum</i>, tienen riesgo de ataques de malaria y son  reservorios infectantes de los transmisores. Por lo tanto, se ha planteado  mantener una vigilancia de diagnostico temprano de los asintomáticos, para la  aplicación sistemática del tratamiento preventivo intermitente con terapia  combinada basada en artemisina como artemether- lumefantrine; aplicación de  medidas de protección personal con el uso de mosquiteros impregnados con  insecticida y aplicación de rociamiento residual (Le Port <i>et al.</i>, 2008;  Ogutu <i>et al.</i>, 2010; Lawpoolsri <i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">,  2010). </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">Es poco frecuente encontrar poblaciones  expuestas a una sola especie de parásitos de malaria y en muchas áreas  endémicas, coexisten hasta tres especies de </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Plasmodium </i>y en áreas endémicas de malaria  la población adquiere la infección por <i>P. vivax </i>y luego adquieren una  segunda infección por <i>P. falciparum </i>(Snounou &amp; White, 2004). En éste  estudio se evidencia, a través de la PCR la coexistencia de dos especies de <i> Plasmodium </i>(<i>vivax y falciparum</i>), sin embargo, en el Programa de  Control de Malaria en Puente Parhueña no hay registros de infecciones mixtas. Un  diagnostico microscópico limitado, afecta la efectividad de los Programas de  Control, la selección del tratamiento de malaria depende de la especie de <i> Plasmodium </i>infectante, un diagnóstico retardado y mixto a malaria a <i>P.  falciparum </i>implica el riesgo de malaria complicada que puede ser fatal,  especialmente en individuos no inmunes, en el caso de malaria a <i>P. vivax</i>,  constituye un desafío al tratamiento adecuado y oportuno, puesto que los  gametocitos favorecen la transmisión y dispersión de la enfermedad. Bruce-Chwatt  (1986) señala que la gametogénesis en <i>P. vivax </i>ocurre con las primeras  parasitemias asexuales, y para <i>P. falciparum </i>la gametogénesis ocurre 10 a  12 días después de la primera onda eritocitica. En el estado Amazonas el  tratamiento para malaria a <i>P. falciparum </i>es artesunato + mefloquina y  para los efectos curativos radicales de <i>P. vivax </i>es cloroquina +  primaquina; esta última droga con acción terapéutica sobre los hipnozoitos de <i> P. vivax </i>y sobre los gametocitos de todas las especies de <i>Plasmodium </i> </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">en humanos; además el tratatamiento  de la malaria es gratuito, administrado y supervisado por el personal de salud  del Programa de Control; aunque a veces la continuidad del tratamiento se ve  afectada por la condición socio cultural de los jivi, o a la falla en la  logística del personal del Programa de Control. </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">De los 46 individuos con infecciones por  PCR a </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>P. vivax, </i>50% (23)  desaparecieron la infección, aún sin recibir tratamiento por parte del Programa  de Control. Esta situación también ha sido observada en la amazonia Brasilera  (Alves <i>et al.</i>, 2002). Es posible que la eliminación de la infección esté  relacionada a la inmunidad de estos individuos: puesto que más del 50% de los  voluntarios en seguimiento mostraron presencia de anticuerpos anti-maláricos. Al  respecto Pérez <i>et al. </i>(1998) indican en estudios sobre malaria en el  estado Amazonas, que las comunidades Jivi del Municipio Atures, presentan alta  frecuencia de seroreactivos para <i>P. vivax </i>y anticuerpos específicos a  péptidos sintéticos derivados de la PvMSP-1. Por otro lado durante la encuesta  efectuada a la población jivi de Puente Parhueña, algunos individuos refirieron  el consumo de raíces, hojas y tallo de plantas como medicina alternativa para  mejorar los malestares provocados por la malaria. Es posible que en alguna  medida estas plantas participen en la eliminación de los parásitos. Vale la pena  destacar que Caraballo <i>et al. </i>(2004) identificaron a 18 especies </font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">de plantas de 13 familias usadas en el  tratamiento de la malaria en el estado Bolívar, las cuales tienen compuestos con  actividad antimalárica. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana">La caracterización epidemiológica de la  malaria depende de muchas variables: Desde el punto de vista entomológico, uno  de los parámetro que permite estimar la intensidad de la transmisión de malaria  es la tasa de esporozoitos, esto es, la proporción de mosquitos en una población  con esporozoitos en las glándulas salivales (Rubio-Palis, 2009). Desde el punto  de vista clínico-inmunologico se caracteriza un área hiperendémica de malárica,  por la presencia de splenomegalia malarica hiperreactiva (HMS), esto es,  individuos con bazo recrecido, presencia de altos niveles de IgM en suero, altos  niveles de anticuerpos antimalaricos, linfocitosis sinusoidal hepáticos y  regresión del tamaño del bazo después de terapia antimalarica continua (Torres </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al.</i>, 1988). Es importante  destacar que en Puente Parhueña entre los invididuos evaluados clínicamente,  ninguno resultó con bazo palpable. Desde el punto de vista de la parasitemia se  han caracterizado áreas endémicas de malaria, en relación a como fluctúan </font> <font face="Verdana" SIZE="2">las parasitemias en las personas  asintomáticas: áreas de alta endémicidad como Tanzania se observan parasitemias  de 400 a 500 parásitos por microlitro de sangre; en áreas de mediana endemicidad  como Gambia las parasitemias están por debajo de 500 parásitos por microlitro de  sangre y áreas de baja endemicidad, existe un alto porcentaje  de infecciones sub-microscópicas como al Oeste de Sudan (Staalsoe &amp; Hviid, 1998)  y en Amazonas-Brasil (Alves </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et  al.</i>, 2002). Puente Parhueña podría ser considerada un área de baja  endemicidad de malaria, puesto que hay individuos asintomáticos, con una alta  prevalencia de infecciones sub-microscópicas a <i>P. vivax</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">. </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">En Puente Parhueña habitan individuos  asintomáticos con infecciones malaricas submicroscópicas, con persistencia de  anticuerpos y pasan desapercibidos por el Programa de Control de Malaria. Si  estos individuos realmente son reservorios de la enfermedad, consecuentemente  son un foco de infección de personas no inmunes en Puerto Ayacucho por el  movimiento poblaciones hacia esta capital. Se sugiere en épocas de menor  transmisión el uso de mosquiteros tratados con insecticida a toda la población  en riesgo, el rociamiento de interiores con insecticida de acción residual,  tratamiento con larvicida en los humedales. Sería interesante diagnosticar a la  población de Puente Parhueña por GGE y PCR en Julio- Agosto, mes de máxima  precipitación donde hay una baja densidad de </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Anopheles </i>spp., administrar tratamiento  antimalárico a los positivos, con el fin de cortar un posible segundo pico  malarico y prevenir sintomatología grave. Sería recomendable además hacer  estudios de infección experimental en <i>Anopheles</i>, utilizando muestras de  sangre de individuos con infecciones submicroscópicas a <i>Plasmodium </i> </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">ssp, para conocer si éstos individuos  representan un reservorio de gametocitos dentro de la comunidad.</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana"><b>AGRADECIMIENTOS</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Los autores agradecen el apoyo económico  recibido de los proyectos IVIC 103 y FONACIT (G-2001000999), la cooperación de  la población Jivi de Puente Parhueña y del personal del Ambulatorio Rural tipo  II de la parroquia Parhueña, la colaboración en campo de María Gámez y de Sonia  Carrasquel por revisión del summary. </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b><font face="Verdana">REFERENCIAS</font></b></p>     <!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">1. Alves F. P. (2006). </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Portadores asintomáticos de </i>Plasmodium <i> spp. como fuente de infección para mosquitos vectores de malaria en la región  amazónica de Brasil. </i>pp 95-103. Programa de pequeños subsidios en  enfermedades Tropicales. Informe finales 1994-2004. Eds. Yadon Z., Zicker </font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">F., Salomón O. D. 1ra ed. TDR/OPS/OMS.  Buenos Aires, Argentina.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840919&pid=S1690-4648201000020000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">2. Alves F., Durlacher R., Menezes M. J.,  Krieger H., Pereira da Silva L., Camargo E. P. (2002). High prevalence of  asymptomatic </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Plasmodium vivax </i> and <i>Plasmodium falciparum </i>infections in native Amazonian populations. <i> Am. J. Trop. Med. Hyg. </i><b>66: </b></font><font SIZE="2"> <font face="Verdana">641-648.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840920&pid=S1690-4648201000020000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">3. Bracho C., De la Rosa M., Romano M.,  Pérez H.A. (1995). </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Un anticuerpo  monoclonal a </i>Plasmodium vivax <i>inhibe la parasitemia de </i></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">Plasmodium yoelii. LV Convención Anual de  ASOVAC, Caracas, Venezuela.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840921&pid=S1690-4648201000020000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">4. Bracho C., De la Rosa M., Romano M.,  Pérez H.A. (1996). </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Identidad  antigénica de PV148, un antígeno eritrocítico de </i>Plasmodium vivax<i>, con </i>Plasmodium yoelii <i>y </i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana"> Plasmodium bergheí. XV Jornada Anual &quot;José Witremundo Torrealba&quot;, Caracas,  Venezuela.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840922&pid=S1690-4648201000020000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">5. Bruce-Chwatt L. J. (1986). </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Essential Malariology</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">.  William Heinema Medical Books. Londres UK.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840923&pid=S1690-4648201000020000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">6. Caraballo A., Caraballo B., Rodríguez  Acosta A. (2004). Preliminary assessment of medicinal plants used as  antimalarials in the southeastern Venezuelan Amazon. </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Rev. Soc. Brasilleira Med. Trop. </i><b>37: </b> </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">186-188.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840924&pid=S1690-4648201000020000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">7. Ekala M.T., Jouin H., Lekouou F.,  Issifou S., Puijalon O.M., Ntoumi F. (2002). </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Plasmodium falciparum </i>merozoite surface  protein 1 (MSP1): genotipyng and humoral responses to allele-specific variants. <i>Acta Trop. </i><b>81: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">33-46.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840925&pid=S1690-4648201000020000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">8. Ferreira Marcelo U. (2006). </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Distribución de la subclase IgG en  anticuerpos adquiridos en forma natural contra Plasmodium falciparum, en  relación a la exposición y a la severidad de malaria</i>. pp. 117-128.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840926&pid=S1690-4648201000020000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font FACE="Verdana" SIZE="2">9. Programa de pequeños subsidios  en enfermedades Tropicales. Informe finales 1994-2004. Eds. Yadon Z., Zicker F.,  Salomón O.D. 1ra </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">ed. TDR/OPS/OMS.  Buenos Aires, Argentina.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840927&pid=S1690-4648201000020000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">10. Ihalamulla L. &amp; Mendis K. (1987). </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Plasmodium vivax</i>: isolation of  mature asexual stages and gametocytes from infected human blood by colloidal  silica (Percoll) gradient centrifugation. <i>Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. </i> <b>81: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">25-28.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840928&pid=S1690-4648201000020000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">11. Katsuragawa T., Soares L., Tada M.,  Silva A., Neves J., Araújo M., Escobar A. </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(2010). <i>The dynamics of  transmission and spatial distribution of malaria in Riverside Areas of Porto  Velho, Rondônia, in the Amazon Region of Brazil. </i></font><font SIZE="2"> <font face="Verdana">Documento en línea: <a href="http://www.plosone.org/article/info:doi/10.1371/journal.pone.0009245"> http://www.plosone.org/article/info%3Adoi%2F10.1371%2Fjournal.pone.0009245</a>  (Consultado: 2010, Agosto 04).</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840929&pid=S1690-4648201000020000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">12. Laserson K. F., Petralanda I., Almera  R., Barker R. H. Jr., Spielman A., Maguire J. 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Publ. </i><b>12: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">79-84.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840942&pid=S1690-4648201000020000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">25. Singh B., Bobogare A., Cox-Singh J.,  Snounou G., Abdullah M. S. &amp; Rahman H. A. (1999). A genus- </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">and species-specific nested polymerase chain  reaction malaria detection assay for epidemiologic studies. <i>Am. J. Trop. Med.  Hyg. </i><b>60: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">687-692.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840943&pid=S1690-4648201000020000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">26. Snounou G. &amp; White N. (2004). The co-existence  of </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Plasmodium</i>: sidelights  from falciparum and vivax malaria in Thailand. <i>Trends Parasitol. </i><b>20: </b>333-339.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840944&pid=S1690-4648201000020000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY">27. Snounou G., Viriyakosol S., Zhu XP., Jarra W., Pinheiro L., do  Rosario V.E., Thaithong S., <i>et al. </i>(1993). High sensitivity of detection  of human malaria by the use of nested polymerase chain reaction. <i>Mol. Biochem.  Parasitol. </i><b>61: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">315-320.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840945&pid=S1690-4648201000020000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">28. Sojo-Milano M. &amp; Grande-Montalvo T.  (2009). Epidemiología de casos repetidores de malaria en Amazonas, Venezuela. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Bol. Mal. Salud Amb. </i><b>49: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">73-89.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840946&pid=S1690-4648201000020000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">29. Staalsoe T. &amp; Hviid L. (1998). The role  of variant-</font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2">specific Immunity in  asintomatic malaria infections: maintining a fine balance. <i>Parasitol. Today. </i><b>14: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">177-178.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840947&pid=S1690-4648201000020000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">30. Tada M., Marques R., Mesquita E., Dalla  R., Rodríguez J., NevesJ., Rocha R., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(2007). <i>Urban malaria in the  Brazilian Western Amazon Region I. High prevalence of asymptomatic carriers in  an urban riverside district is associated with a high level of clinical malaria</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">.  Documento en línea. <a href="http://www.scielo.br/pdf/mioc/nahead/5680.pdf"> www.scielo.br/pdf/mioc/nahead/5680.pdf</a> (Consultado: 2010, Agosto 04).</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840948&pid=S1690-4648201000020000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">31. Tangpukdee N., Duangdeev C., Wilaratana  P., Krudsood S. (2009). Malaria Diagnosis: A brief review. </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Korean J. Parasitol. </i><b>47: </b>93-102.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840949&pid=S1690-4648201000020000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY">32. Torres J., Noya O., Mondolfi A., Peceño C. &amp; Botto C. (1988). Hyperreactive malarial splenomegaly in Venezuela. <i>Am. J. Trop. Med. Hyg. </i> <b>39: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">11-4.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840950&pid=S1690-4648201000020000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">33. Torres J. R., Pérez H. A., Postigo M. M.  &amp; Silva J. R. (1997). Acute non-cardiogenic lung injury in benign tertian  malaria. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Lancet. </i><b>350: </b> </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">31-32.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840951&pid=S1690-4648201000020000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">34. Torres J. R., Villegas L., Pérez H. A.,  Suárez L, Torres V. M. A. &amp; Campos M. (2003). Low-grade parasitaemias and cold  agglutinins in patients with hyper-reactive malarious splenomegaly and acute  haemolysis. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Annals Trop. Med.  Parasitol. </i><b>97: </b>125-130. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2840952&pid=S1690-4648201000020000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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