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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Pruebas de campo sobre la eficacia y persistencia de tres formulaciones de Bacillus sphaericus contra larvas de Anopheles aquasalis Curry en manglares del municipio Mariño, estado Sucre, Venezuela.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Anopheles aquasalis Curry is the main vector of malaria in northeastern Venezuela. A study of biological control of An. aquasalis larvae was carried out in Río Chiquito Abajo, Sucre State, Venezuela. The objective of this study was to evaluate effectivity and persistence of three formulations of Bacillus sphaericus against larval populations of An. aquasalis. The main breeding-sites of An. aquasalis are seasonal brackish mangrove with Avicennia germinans and semi-permanent freshwater wetlands with herbaceous emergent vegetation. A typical seasonal brackish mangrove with Avicennia germinans was selected. In these breeding-sites of An. aquasalis, three commercial formulations of B. sphaericus: VECTOLEX® CG-7.5%, VECTOLEX® WGD-51.2% and GRISELESF were evaluated in field trials. According to the results obtained VECTOLEX® CG-7.5% was effective against An. aquasalis larvae during 7 days post-treatment at rates not lower than 30 Kg/ha (3 g/m²), producing a larval reduction greater than 92.3%. This granular formulation provided very good larval control during 7 days. The two dosages (30 and 40 Kg/ha) had the same efficacy against An. aquasalis larvae. The second commercial formulation VECTOLEX® WGD-51.2% was effective against An. aquasalis larvae at dose of 2.0 Kg/ ha, producing a larval reduction greater than 85 % during 8 days post-treatment, and only 13.3 % larval reduction at 16 days after treatment; but the same formulation with at dose of 2.5 Kg/ha was more effective, producing a larval reduction greater than 90 % during 16 days posttreatment. In the same brackish mangrove, GRISELESF at rates not lower than 2.0 and 2.5 Kg/ha, appears to be less effective against An. aquasalis larvae, producing very low larval reduction at 8 and 16 days post-treatment.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <b><font FACE="Verdana">     <p ALIGN="center">Pruebas de campo sobre la eficacia y persistencia de tres  formulaciones de </font><i><font face="Verdana">Bacillus sphaericus </font></i> <font FACE="Verdana">contra larvas de <i>Anopheles aquasalis </i>Curry en  manglares del municipio Mariño, estado Sucre, Venezuela</font></b><font FACE="Verdana">.</p> </font><b><font FACE="Verdana"><i>     <p ALIGN="center">Field trials on the efficacy and persistence of three  formulations of </i>Bacillus sphaericus <i>against larvae of </i>Anopheles  aquasalis </font><i><font face="Verdana">Curry in mangroves of Mariño  municipality, Sucre state, Venezuela.</p> </font></i><font SIZE="2" face="Verdana">     <p align="center">Jesús Berti Moser¹, Melfran Herrera², Julio González Rivas¹,  Nelson Puentes², Rafael Caraballo² &amp; Jesús Valero¹</p> </font></b><font FACE="Verdana" SIZE="2">     <p ALIGN="justify">1 Servicio Autónomo Instituto de Altos Estudios &quot;Dr. Arnoldo  Gabaldon&quot;. Dirección de Investigación. Maracay, estado Aragua, Venezuela.</p>     <p ALIGN="justify">2 Servicio de Endemias Rurales, Gerencia de Malariología y  Saneamiento Ambiental. Carúpano, estado Sucre, Venezuela.</p>     <p align="justify">*Autor de correspondencia: <a href="mailto:jbertimoser@yahoo.com">jbertimoser@yahoo.com</a></p> <font COLOR="#221e1f">     <p align="justify"><b>RESUMEN</b> </p> <i>     <p align="justify">Anopheles aquasalis </i>Curry es el principal vector de  malaria de la región nororiental de Venezuela. Un estudio sobre el control  biológico de la especie fue realizado en Rio Chiquito Abajo, municipio Mariño,  estado Sucre. El objetivo del mismo fue evaluar en condiciones de campo, la  eficacia y persistencia de tres formulaciones comerciales de <i>Bacillus  sphaericus </i>contra larvas de <i>An. aquasalis. </i>Los criaderos típicos de  esta especie son humedales de agua dulce con vegetación herbácea emergente y  manglares salobres estacionales con vegetación arbórea (<i>Avicennia germinans</i>).  El hábitat seleccionado para realizar los bioensayos fue un típico manglar de <i> Avicennia germinans. </i>En este criadero de <i>An. aquasalis</i>, se evaluaron  estas formulaciones de <i>B. sphaericus: </i>dos formulaciones liquidas (GRISELESF-Cepa  2362 y VECTOLEX</font><sup><b><font COLOR="#221e1f">® </font></b></sup> <font COLOR="#221e1f">WGD-51,2%) y una formulación granulada (VECTOLEX<b><sup>®</sup> </b>CG-7,5%). En cada prueba, se aplicó un diseño completamente al azar con 4  repeticiones por tratamiento y por control. Los resultados fueron expresados  como porcentajes de reducción larval, después de aplicar la formula de Mulla. De  acuerdo con los resultados obtenidos, la formulación granulada VECTOLEX<b><sup>®</sup> </b>CG-7,5% con dosis de 30 Kg/ha (3 g/m²), resultó ser altamente eficaz hasta 7  días post-aplicación con 92,3% de reducción, la misma fue menos efectiva después  de 14 días post-aplicación con 74,8%. Al aumentar la dosis a 40 Kg/ha (4 g/m²),  la eficacia después de 7 días de la aplicación fue de 93,9 %, es decir muy  similar que a la dosis anterior. Ambas dosis presentaron la misma eficacia  contra larvas de <i>An. aquasalis</i>. Por otra parte, la otra formulación  VECTOLEX<b><sup>®</sup> </b>WGD-51,2%, con la dosis de 2,0 Kg/ ha, resultó ser  eficaz hasta 8 días post-aplicación con 85,2% de reducción larval; la misma  produjo 13,3% de reducción a los 16 días post-tratamiento; sin embargo, esta  formulación con la dosis de 2,5 Kg/ha, fue altamente eficaz hasta 16 días  postaplicación con más de 90% de reducción larval. En cambio, en el mismo  manglar el producto GRISELESF fue menos eficaz tanto a 2,0 Kg/ha como a 2,5 Kg/ha,  obteniéndose porcentajes de reducción muy bajos a los 8 y 16 días  post-aplicación. </p> <b>     <p align="justify">Palabras clave: </b><i>Bacillus sphaericus, Anopheles, </i> control biológico, control microbiano, larvas, malaria, manglar salobre,  vectores, Sucre, Venezuela.</p> <i>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY"><b>SUMMARY</b> </p> </i>     <p ALIGN="JUSTIFY">Anopheles aquasalis <i>Curry is the main vector of malaria in  northeastern Venezuela. A study of biological control of </i>An. aquasalis <i> larvae was carried out in Río Chiquito Abajo, Sucre State, Venezuela. The  objective of this study was to evaluate effectivity and persistence of three  formulations of </i>Bacillus sphaericus <i>against larval populations of </i>An.  aquasalis<i>. The main breeding-sites of </i>An. aquasalis <i>are seasonal  brackish mangrove with </i>Avicennia germinans <i>and semi-permanent freshwater  wetlands with herbaceous emergent vegetation. A typical seasonal brackish  mangrove with </i>Avicennia germinans <i>was selected. In these breeding-sites  of </i>An. aquasalis<i>, three commercial formulations of </i>B. sphaericus: <i> VECTOLEX<sup>® </sup>CG-7.5%, VECTOLEX<sup>® </sup>WGD-51.2% and GRISELESF were  evaluated in field trials. According to the results obtained VECTOLEX<sup>® </sup>CG-7.5% was effective against </i>An. aquasalis <i>larvae during 7 days  post-treatment at rates not lower than 30 Kg/ha (3 g/m²), producing a larval  reduction greater than 92.3%. This granular formulation provided very good  larval control during 7 days. The two dosages (30 and 40 Kg/ha) had the same  efficacy against </i>An. aquasalis <i>larvae. The second commercial formulation  VECTOLEX<sup>® </sup>WGD-51.2% was effective against </i>An. aquasalis <i>larvae  at dose of 2.0 Kg/ ha, producing a larval reduction greater than 85 % during 8  days post-treatment, and only 13.3 % larval reduction at 16 days after treatment;  but the same formulation with at dose of 2.5 Kg/ha was more effective, producing  a larval reduction greater than 90 % during 16 days posttreatment. In the same  brackish mangrove, GRISELESF at rates not lower than 2.0 and 2.5 Kg/ha, appears  to be less effective against </i>An. aquasalis <i>larvae, producing very low  larval reduction at 8 and 16 days post-treatment. </p> </i>     <p><b>Key words</b>: Bacillus sphaericus, Anopheles, biological control,  microbial control, malaria, larvae, brackish mangrove, vectors, Sucre,  Venezuela.</p>     <p>Recibido el 30/01/2012 Aceptado el 24/04/2012</p>     <p align="justify"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">Los problemas asociados al  control de la malaria en el estado Sucre, han generado una serie de  investigaciones de campo sobre bionomía, ecología y manejo integrado de sus  principales vectores (Berti <i>et al</i>., 1993; Zimmerman &amp; Berti, 1994; Berti  &amp; Zimmerman, 1998; Grillet <i>et al., </i>1998; Berti <i>et al., </i>2002; Zoppi <i>et al., </i>2002; Berti <i>et al., </i>2003; Berti &amp; González, 2004; Berti <i> et al</i>., 2004; Berti <i>et al., </i>2010). El vector principal de malaria en  ese estado es <i>Anopheles aquasalis </i>Curry (Zimmerman &amp; Berti, 1994).  Durante muchos años las actividades de control de este vector se han basado  principalmente en la aplicación espacial de insecticidas contra el adulto (Berti  &amp; Zimmerman, 1998). Hasta el presente se han implementado muy pocos programas de  control mediante la aplicación de <i>Bacillus sphaericus </i>contra larvas de <i> An. aquasalis. </i>Apesar de sus grandes ventajas ambientales, este producto  biológico es poco usado en el país para el control de vectores de la malaria  (Berti <i>et al., </i>2010; Moreno <i>et al., </i>2010), lo cual es muy  preocupante. No obstante, en otros países se conocen muchos trabajos sobre su  uso exitoso contra vectores de la malaria (Castro <i>et al., </i>1996; Groves &amp;  Meisch, 1996; Skovmand &amp; Bauduin, 1997; Skovmand &amp; Sanogo, 1999; Karch <i>et  al., </i>1991; Berrocal <i>et al., </i>2000; Blanco-Castro <i>et al., </i>2000).  En Venezuela, podemos contar actualmente con insecticidas químicos de mayor  acción residual para efectuar los rociamientos intradomiciliarios contra la  malaria. Estos rociamientos dentro de la casa fueron suspendidos en el estado  Sucre desde 1991, debido a la elevada exofilia y exofagia que tenía <i>Anopheles  aquasalis </i>(Zimmerman &amp; Berti, 1994; Berti &amp; Zimmerman, 1998). La utilización  de agentes de control biológico, tanto depredadores de larvas, como bacterias  patógenas a larvas (<i>B. sphaericus</i>), implica tener buen conocimiento sobre  la Ecología larvaria del vector (Berti &amp; Zimmerman, 1998; Grillet <i>et al., </i> 1998; Berti <i>et al., </i>2003; Berti <i>et al.</i>, 2010). La utilización de  depredadores de larvas como estrategia de control puede combinarse con el uso  periódico de <i>B. sphaericus</i>; para lo cual es indispensable la evaluación  en el campo de las diferentes formulaciones comerciales existentes en el mercado  (GRISELESF, VECTOLEX CG-7,5% y VECTOLEX WGD51.2%). En Venezuela, Berti <i>et al</i>.  (2002) evaluaron la persistencia VECTOLEX CG-7,5% a la dosis 30 kg/ ha en  pantanos herbáceos no salobres, señalando una reducción larvaria de 76% contra <i>An. aquasalis </i>a los 21 días post-aplicación. En ese mismo ambiente,  también fue evaluado VECTOLEX WGD-51,2% a la dosis 2,5 kg/ha, obteniéndose una  reducción larval mayor de 80% por 24 días post-aplicación (Berti y González,  2004). En el estado Bolívar, Moreno <i>et al. </i>(2010) evaluaron la  persistencia VECTOLEX CG-7,5% también en pantanos herbáceos no salobres,  señalando resultados muy prometedores. En ningún hábitat del tipo &quot;manglares  salobres&quot; se habían probado estas tres formulaciones. En cambio, el producto  GRISELEF-Cepa 2362 (formulación líquida), había sido evaluado en Venezuela  contra larvas de <i>Anopheles nuneztovari </i>(Rojas <i>et al., </i>2001)<i>. </i>No obstante, el producto todavía no había sido probado en el país contra  larvas de <i>An. aquasalis </i>en manglares. El presente estudio hace referencia  a la evaluación de la eficacia y la persistencia de estas tres formulaciones (GRISELESF,  VECTOLEX CG-7.5% y VECTOLEX WGD-51.2%) contra larvas de <i>An. aquasalis </i>en  un hábitat del tipo manglares salobres, ubicado en la Península de Paria,  localidad de Río Chiquito Abajo, municipio Mariño, estado Sucre. </p>     <p align="justify"><b>MATERIALES Y MÉTODOS </b></p> <i>     <p align="justify">Área de estudio </p> </i>     <p align="justify">La Península de Paria, está localizada en la región  nororiental de Venezuela (<a href="#fig1">Fig. 1</a>), estado Sucre, entre 10°  27’ 00’’ N; 10° 42’ 32’’ N (latitud) y 62° 32’00’’W; 63° 11’00’’W(longitud) y  comprende un área geográfica de 1.078 Km². Al norte de la misma se encuentra el  Mar Caribe y al sur el Golfo de Paria (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). Entre las  características ambientales más resaltantes de la región tenemos: pendientes que  varían entre 0 y 5%, precipitación media anual entre 1.200 y 1.700 mm y  temperatura media anual entre 27ºC y 29ºC; dependiendo de la altitud del lugar,  gran parte del área permanece con suelos muy húmedos o con grandes zonas de  acumulación de agua de mar y/o de lluvia, denominadas humedales y que están  representadas principalmente por: manglares costeros (estuarios), manglares de  cuenca (sin comunicación con el mar), manglares de franja, pantanos arbóreos  salobres, pantanos herbáceos de agua dulce (temporales o permanentes), bosques  inundados por agua dulce, lagunas, canales de irrigación de cultivos y canales  para el manejo de hatos o fincas de ganado vacuno o bufalino (Hato Río de Agua).</p>     <p align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06fig1.gif" width="496" height="378"></a></p>     
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<body><![CDATA[<p align="justify">Los bioensayos con las formulaciones de <i>B. sphaericus </i> se realizaron en la localidad de Río Chiquito Abajo (10° 35’ 29’’N; 62° 36’ 32’’  W) Península de Paria, municipio Mariño (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). Se escogió  un hábitat tipo &quot;manglar salobre&quot; (<a href="#fig2">Fig. 2</a>); el cual podría  ser clasificado como un manglar de cuenca. El mismo está separado del mar desde  hace aproximadamente un siglo y tanto la carretera nacional que conduce a Guíria,  como el río Irapa le sirven de barreras con la costa del Golfo de Paria. En este  humedal, el régimen de inundación depende de las lluvias, la escorrentía  superficial de tierras altas adyacentes y de manantiales de aguas subterráneas  (salobres), el pH es generalmente básico y la salinidad es alta. La profundidad  media del manglar fue de 19,30 cm (10 cm- 43 cm); el mismo presenta una única  especie de mangle, <i>Avicennia germinans, </i>cuya cobertura varió entre 45 % y  65 %. Esta vegetación se caracteriza por un dosel abierto, con alturas que  variaron entre 20m y 25m. Las otras especies acuáticas dominantes presentes son  principalmente: <i>Sesuvium virginicus </i>y <i>Sesuvium portulacastrum</i>.</p>     <p align="center"><a name="fig2"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06fig2.gif" width="499" height="432"></a></p> <i>     
<p align="justify">Diseño experimental </p> </i>     <p align="justify">En ese ambiente se efectuaron las pruebas biológicas de  campo, conocidas como bioensayos de eficacia a fin de evaluar tres formulaciones  de <i>Bacillus sphaericus </i>contra <i>Anopheles aquasalis. </i>Estas  formulaciones son: Vectolex CG-7,5% a la dosis de 30 Kg/ha y de 40 Kg/ha en 2  ensayos sucesivos; Vectolex WGD-51,2 % a la dosis de 2,0 Kg/ha en un tercer  ensayo; y Griselesf a la dosis de 2,0 y 2,5 Kg/ha, también en ensayos sucesivos.  Y asimismo, en otro bioensayo se comparó la eficacia y persistencia de Vectolex  WGD-51.2 % y Griselesf a la misma dosis de 2,5 Kg/ha (en un solo ensayo). La  formulación granulada Vectolex CG-7,5% se aplicó de forma manual al criadero,  las dos restantes son formulaciones liquidas que fueron aplicadas mediante una  motomochila. </p>     <p align="justify">En cada uno de los bioensayos, se aplicó el mismo diseño  experimental. En ese sentido, se aplicó el diseño estadístico completamente  aleatorizado, estableciéndose cuatro parcelas experimentales de igual superficie  (5 x 5m = 25 m²); que fueron delimitadas artificialmente (5 m/lado) para la  obtención de las unidades experimentales a tratar con las respectivas dosis de  cada formulación de <i>Bacillus sphaericus </i>(Kg de producto por hectárea). Se  establecieron cuatro parcelas (25 m² cada una) por tratamiento (Kg de producto  por hectárea) y tam<b>b</b>ién cuatro parcelas como controles (4 repeticiones  por tratamiento y 4 por parcela control). La separación entre cada parcela fue  de 10 m. En cada bioensayo, una primera evaluación (pre-evaluación), se realizó  inmediatamente antes de la aplicación del respectivo producto, las restantes  evaluaciones (post-tratamiento) fueron efectuadas periódicamente a los 2, 4, 8,  16, 24, y 34 días post-tratamiento, o a los 2, 4, 7, 14 y 21 días  post-aplicación. En la mayoría de los casos a causa de las lluvias fueron  suspendidas las evaluaciones correspondientes al día 21 o al día 24. En cada  parcela de 25 m², mediante uso del cucharón se tomaron 20 muestras de agua (<a href="#fig3">Fig.  3</a>) de un litro y de cada muestra se colectó, identificó y contó el número  total de larvas de tercero y cuarto instar de <i>An. aquasalis</i>. El efecto de  cada tratamiento (Kg de producto por hectárea) fue cuantificado, calculando el  porcentaje de reducción de larvas de tercero y cuarto estadio; según la fórmula  siguiente: % de Reducción = 100-[ [C1/C2 x T2/T1] <font COLOR="#221e1f" FACE="Verdana" SIZE="2"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">x  100], desarrollada por Mulla <i>et al</i>. (1971); y donde C1 y C2, representan  al promedio de larvas (3er y 4to instar) en el control antes (C1) y después (C2)  del tratamiento; y T1 y T2 representan al promedio de larvas (3er y 4to instar)  en las parcelas tratadas, antes (T1) y después (T2) del tratamiento. Todos los  resultados obtenidos fueron expresados como el porcentaje de reducción de larvas  de <i>An. aquasalis </i>de tercer y cuarto instar después de aplicar la formula  de Mulla <i>et al</i>. (1971). </font><font SIZE="2" COLOR="#1a1619">Se aplicó  un análisis de varianza con un solo criterio de clasificación o de una vía; y  después un análisis de pruebas de separación de medias de Duncan y/o del mínimo  rango significativo con un nivel de significación del 5%; antes de la aplicación  del ANOVA, los porcentajes de reducción fueron transformados a arcoseno, a fin  de normalizar los datos. </font></font></p> </font>     <p align="center"><a name="fig3"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06fig3.gif" width="497" height="446"></a></p> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">     
<p align="justify"><b>RESULTADOS</b> </p>     <p align="justify">Los resultados de los dos primeros bioensayos (formulación  Vectolex</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">CG-7,5 %) se presentan en las <a href="#tab1"> Tablas I</a> y <a href="#tab2">II</a>. El producto, resultó ser altamente eficaz  a la dosis de 30 Kg/ha, con un porcentaje de reducción larval de 92,3% hasta 7  días post-aplicación (<a href="#tab1">Tabla I</a>), con esta misma dosis 14 días  después de la aplicación presentó una menor eficacia, disminuyendo a 74,8 % de  reducción larval (<a href="#tab1">Tabla I</a>). Al aumentar la dosis a 40 Kg/ha  (en el segundo bioensayo) la eficacia 7 días después de la aplicación fue de  93,9 %, es decir, muy similar que a la dosis anterior (<a href="#tab1">Tablas I</a>  y <a href="#tab2">II</a>); en consecuencia estos resultados sugieren que tanto a  30 como a 40 Kg/ha, este producto resultó ser muy poco persistente en este tipo  de ambiente (<a href="#tab1">Tablas I</a> y <a href="#tab2">II</a>).</font></p>     <p align="center"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab1.gif" width="558" height="248"></a></font></p>     
<p align="center"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab2.gif" width="558" height="226"></a></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Por su parte, la formulación VECTOLEX</font><sup><font SIZE="1" COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WDG-51,2 %, a la dosis de 2,0 Kg/ha,  resultó ser bastante efectiva con 85,12% de reducción larval, pero hasta 8 días  post-aplicación, la misma solo produjo 13,3 % de reducción larvaria a 16 días  post-aplicación (<a href="#tab3">Tabla III</a>). Por el contrario, GRISELESF  (formulación<sup> </sup>liquida), a la dosis de 2,0 Kg/ha (<a href="#tab4">Tabla  IV</a>) fue muy poco eficaz, obteniéndose bajos valores de reducción larvaria,  los cuales fluctuaron entre 12,69 % y 44,60 </font> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><sup>% </sup>(<a href="#tab4">Tablas IV</a> y <a href="#tab5">V</a>). No obstante, en el siguiente ensayo al aumentar la dosis  de GRISELESF (formulación liquida) a 2,5 Kg/ha, se observó, que los porcentajes  de reducción larval siguieron siendo bajos, ya que después de 8 y 16 días de la  aplicación, estos fueron de 32,5 y 23,1 respectivamente (<a href="#tab6">Tabla  VI</a>).</font></p>     <p align="center"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab3.gif" width="556" height="254"></a></font></p>     
<p align="center"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><a name="tab4"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab4.gif" width="558" height="217"></a></font></p>     
<p align="center"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><a name="tab5"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab5.gif" width="557" height="220"></a></font></p>     
<p align="center"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><a name="tab6"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab6.gif" width="558" height="253"></a></p>     
<p align="justify">Por ultimo, en el bioensayo para comparar la eficacia de  GRISELESF (formulación liquida) y VECTOLEX</font><font COLOR="#221e1f">® </font> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WDG a una dosis de 2,5 Kg/ha, se observó que el  producto GRISELESF, resultó ser mucho menos eficaz que VECTOLEX</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WDG. En efecto los porcentajes de  reducción larvaria después de 8 y 16 días de la aplicación, fueron de solo  42,82% y 48,06 % respectivamente (<a href="#tab7">Tablas VII</a>, <a href="#tab8">VIII</a> y <a href="#tab9">IX</a>). Este producto, tanto con  dosis de 2,0 Kg/ha como de 2,5 Kg/ha, resultó ser mucho menos eficaz. Por el  contrario, al aumentar la dosis de VECTOLEX</font><font COLOR="#221e1f">® </font> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WDG a 2,5 Kg/ha, se observó que el producto fue  altamente eficaz hasta 16 días post-aplicación con 90,2% de reducción larvaria (<a href="#tab7">Tablas  VII</a>, <a href="#tab8">VIII</a> y <a href="#tab9">IX</a>). Según estos  resultados, las aplicaciones de VECTOLEX</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WDG con la dosis de 2,5 Kg/ha, en  este ambiente de manglares deberán ser cada 20 días (<a href="#tab7">Tablas VII</a>  y I<a href="#tab9">X</a>). </font></p>     <p align="center"><a name="tab7"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab7.gif" width="558" height="325"></a></p>     
<p align="center"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><a name="tab8"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab8.gif" width="558" height="318"></a></font></p>     
<p align="center"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><a name="tab9"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v52n1/art06tab9.gif" width="561" height="283"></a></p>     
<p align="justify"><b>DISCUSIÓN</b><sup> </p> </sup>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En Río Chiquito Abajo, las evaluaciones de las dos  formulaciones de Vectolex (Vectole</font><font COLOR="#221e1f">® </font> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">CG7,5% y Vectolex</font><font COLOR="#221e1f">® </font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WGD-51,2%), demuestran que el producto fue  poco persistente en ese ambiente (manglar), sobre todo cuando se comparan con  resultados previos contra larvas de <i>An. aquasalis </i>en otros tipos de  hábitat (Berti <i>et al., </i>2002; Berti &amp; González, 2004). No obstante, éste  fue un resultado esperado, ya que este hábitat de manglares es muy adverso en  cuanto a condiciones de mayor salinidad, mayor cantidad de materia orgánica,  mayor turbidez, mayor alcalinidad, menor porcentaje de oxigeno y<sup> </sup> menor densidad de vegetación emergente. Vectolex</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">CG, resultó ser altamente eficaz  (92,3% reducción larval) a la dosis de 30 Kg/ha durante 7 días post aplicación (<a href="#tab1">Tabla  I</a>) y con la misma dosis a 14 días de la aplicación fue menos eficaz (74,8 %  reducción larval). Al aumentar la dosis a 40 Kg/ha, la efectividad del producto  a 7 días de la aplicación fue de 93,9%, muy similar que a la dosis de 30 Kg/ha </font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f" FACE="Verdana">(<a href="#tab1">Tablas I</a>  y <a href="#tab2">II</a>).</font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"> </p>     <p align="justify">El municipio Sifontes del estado Bolívar, es la principal  área endémica a malaria de Venezuela (Moreno <i>et al.</i>, 2010). En este  municipio se evaluó la persistencia de Vectolex</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">CG 7,5%, en criaderos naturales de <i>Anopheles marajoara </i>Galvao &amp; Damásceno, <i>An. triannulatus </i>(Neiva &amp;  Pinto<i>, </i>1922) y <i>An. braziliensis </i>(Chagas, 1907). Para ello se  evaluaron las dosis de 20 y 30 Kg/ha de Vectolex</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">CG durante 60 y 90 días. Los  resultados indicaron que existen diferencias en la persistencia por tipo de  criadero y especie de <i>Anopheles. </i>Las tendencias para las tres especies  indicaron que el porcentaje de reducción larvaria fue 100% durante la primera  semana, luego disminuyó paulatinamente hasta más o menos 40% después de 28 días  de la aplicación, para luego recuperarse hasta alrededor de 60% de reducción  larvaria a 45 días post-aplicación (Moreno <i>et al., </i>2010). Este resultado  fue más evidente en <i>An. marajoara</i>; mientras que con <i>An. triannulatus </i>su eficacia a 30 Kg/ha fue de alrededor de 80% de reducción durante 90 días;  con <i>An. braziliensis </i>la eficacia se mantiene en 100% hasta 14 días post  aplicación con ambas concentraciones; para luego caer abruptamente sin  recuperación (Moreno <i>et al., </i>2010). Estos resultados junto con los del  estado Sucre (Berti <i>et al., </i>2002; Berti &amp; González, 2004), confirman que  existen diferencias en la persistencia por tipo de criadero y especie de <i> Anopheles </i>y que indudablemente en manglares salobres la persistencia es  mucho menor que en humedades de agua dulce. </p>     <p align="justify">Los manglares son comunidades de plantas leñosas que forman  densos bosques en zonas costeras, deltas y estuarios. En estos ecosistemas, las  especies de mangle han desarrollado adaptaciones fisiológicas y morfológicas que  les permiten adaptarse a un ambiente adverso de altas concentraciones de sales y  bajo contenido de oxigeno disuelto. Se caracterizan por presentar alta  productividad, jugando un importante rol en el reciclaje de nutrientes, también  sirven de hábitat y refugio para una gran diversidad de especies acuáticas,  desde crustáceos, insectos e invertebrados acuáticos hasta peces y aves. Este  ecosistema es muy sensible a cualquier impacto producto de las actividades  humanas; asimismo es muy buen indicador de la calidad ambiental. Es por ello  que, el uso de agentes de control biológico como <i>Bacillus sphaericus </i>en  manglares costeros de Venezuela, es la mejor alternativa al uso indiscriminado  de productos químicos o medidas de ingeniería ambiental contra la malaria. </p>     <p align="justify">Con relación a Vectolex</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WDG, es la primera vez que se evalúa  sobre alguna especie de <i>Anopheles </i>en manglares costeros de Venezuela,  considerándose estos resultados muy prometedores para el programa de control de  vectores del país. En ese sentido, con la dosis de 2,0 Kg/ha, el producto  resultó ser bastante efectivo (85,12%) hasta por 8 días post-aplicación (<a href="#tab3">Tablas  III</a> y <a href="#tab4">V</a>); asimismo a 2,5 Kg/ha fue altamente efectivo  (92,2%) hasta por 16 días post-aplicación (<a href="#tab7">Tablas VII</a>, <a href="#tab8">VIII</a> y <a href="#tab9">IX</a>). Según estos resultados, las  aplicaciones del producto en este ambiente, deberán ser cada 20 días a la dosis  de 2,5 Kg/ha. En Venezuela, este producto solo fue evaluado previamente en  humedales del estado Sucre del tipo herbazales o pantanos herbáceos, en los  cuales la persistencia fue por 24 días con más de 80% de reducción larval (Berti  &amp; González, 2004). </p>     <p align="justify">Por el contrario, el producto GRISELESF fue mucho menos  efectivo que los restantes, obteniéndose valores de reducción larvaria muy bajos  que fluctuaron entre 12,44 % y 62,80 % (<a href="#tab4">Tablas IV</a>, <a href="#tab5">V</a>, <a href="#tab6">VI</a>, <a href="#tab8">VIII</a> y <a href="#tab9">IX</a>). Con este producto a la dosis de 2,5 Kg/ha, los  porcentajes de reducción larvaria después de 8 y 16 días de la aplicación,  fueron de solo 42,82% y 48,06% respectivamente (<a href="#tab8">Tablas VIII</a>  y <a href="#tab4">IV</a>). Estos resultados, hacen prácticamente inviable y muy  poco rentable el uso periódico de GRISELESF (formulación líquida) contra <i>An.  aquasalis </i>en este tipo de ambiente. Por tal razón, se concluye que esta  formulación no debe ser utilizada contra larvas de <i>An. aquasalis </i>en  hábitats de manglares y tampoco en Venezuela; hasta tanto no se pruebe en otros  ambientes y contra otros vectores de malaria que pudieran ser más susceptibles,  como <i>Anopheles pseudopunctipennis </i>Theobald, <i>Anopheles darlingi </i> Root, y <i>An. marajoara </i>Galvao &amp; Damásceno. En Venezuela, GRISELESF-Cepa  2362 formulación líquida, ya había sido evaluado contra larvas de <i>Anopheles  nuneztovari </i>(Rojas <i>et al., </i>2001). Según Rojas <i>et al. </i>(2001),  se utilizó una formulación líquida de <i>B. sphaericus </i>(GRISELESF-Cepa 2362)  contra <i>Anopheles nuneztovari </i>en el estado Mérida, obteniéndose 85% de  reducción larvaria por 4 meses<i>. </i>Las causas de estas grandes diferencias  pueden tener relación con variables como: la especie de mosquito, tipo de  hábitat, altitud, temperatura, tipo de formulación (sólida, líquida, soluble,  etc.), densidad de larvas y sus depredadores, parámetros físicos y químicos del  criadero, cantidad de materia orgánica, temperatura del agua y precipitación. En  el estado Sucre en ambos casos, las variables bióticas y abióticas del hábitat  impactarían por igual, tanto a las parcelas tratadas con VECTOLEX</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">como en las tratadas con GRISELESF,  puesto que en Río Chiquito Abajo, las evaluaciones se efectuaron de forma  simultánea en un mismo ensayo para ambas formulaciones (2,5 Kg/ha). Por otro<sup> </sup>lado, no hay que olvidar que estas formulaciones (GRISELESF-Cepa 2362 y  VECTOLEX</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WDG) tienen propiedades físicas y químicas  distintas<i>. </i>Otro factor muy importante que debería ser bien estudiado en  condiciones controladas para cada formulación comercial, es la capacidad de  ingestión y la velocidad de ingestión de partículas del producto por parte de  larvas de diferentes especies de mosquito; ya que este aspecto puede tener gran  influencia al ocasionar un menor o mayor grado de susceptibilidad de cada  especie al <i>B. sphaericus</i>. Al respecto, alguna formulación comercial  pudiera ser menos &quot;apetecible&quot; para larvas de una u otra especie de mosquito. La  presencia de &quot;fago-estimulantes&quot; es un factor que debería ser incluido como tema  de investigación por los fabricantes del producto GRISELESF-Cepa 2362  formulación líquida, con el objeto de mejorar la calidad del mismo. </p>     <p align="justify"><b>CONFLICTOS DE INTERESES </b></p>     <p align="justify">Los Autores manifestamos que no ha habido conflictos de  intereses en la realización de este trabajo. </p>     <p align="justify"><b>AGRADECIMIENTOS</b> </p>     <p align="justify">A todo el personal técnico y obreros de Malariología del  estado Sucre, adscritos a las demarcaciones A y B y muy especialmente a la  doctora Letty González Rebolledo, Ex Jefe de La Gerencia de Malariología y  Saneamiento Ambiental de Carúpano, estado Sucre, debido a su invalorable  cooperación y constante apoyo logístico para la realización del trabajo de  campo. A Segundo Rosales y Julio Pérez por su amistad y apoyo logístico. Al  doctor Russell Gardner por suministrarnos las muestras de los productos  formulados de <i>B. sphaericus</i>: VECTOLEX</font><sup><font COLOR="#221e1f">® </font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">CG-7,5% y VECTOLEX</font><sup><font COLOR="#221e1f"><i>® </i></font></sup><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">WGD-51,2%. Este trabajo fue  financiado por el MPPCTI a través de FONACIT, Proyecto Misión Ciencia  2008000911, Sub-Proyecto Malaria 2008000911-3 y por el Servicio Autónomo  Instituto de Altos Estudios &quot;Dr. Arnoldo Gabaldon&quot;, Dirección de Investigación.</font></p> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">     <p align="justify"><b>REFERENCIAS</b> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">1. BLANCO-CASTRO S., MARTÍNEZ A., CANO O., TELLO R. &amp; MENDOZA I.  (2000). Introducción de <i>Bacillus sphaericus </i>cepa 2362 para el control  biológico de vectores de Malaria en Guatemala. <i>Rev. Cubana Med. Trop. </i><b> 52</b>: 37- 43. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846363&pid=S1690-4648201200010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">2. BERROCAL E., CAREY C., RODRIGUEZ L., CALAMPA C. &amp; VALDIVIA L.  (2000). A residual effect of <i>Bacillus sphaericus for </i>control of <i> Anopheles darlingi, </i>in Iquitos in Perú. <i>J. Amer. Mosq. Contr. Assoc</i>. <b>16</b>: 295-312. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846364&pid=S1690-4648201200010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">3. BERTI J. &amp; ZIMMERMAN R. (1998). Métodos para el control  integrado de vectores de la malaria en Venezuela. <i>Bol. Dir. Malariol. San.  Amb</i>. <b>38</b>: 123-136. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846365&pid=S1690-4648201200010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">4. BERTI J. &amp; GONZALEZ J. (2004). Evaluación de la efectividad y  persistencia de la nueva Formulación de <i>Bacillus sphaericus </i>contra larvas  de <i>Anopheles aquasalis Curry </i>en los criaderos naturales del estado Sucre,  Venezuela. <i>Bol. Mal. Salud Amb. </i><b>44</b>: 21-27. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846366&pid=S1690-4648201200010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">5. BERTI J., ZIMMERMAN R. &amp; AMARISTA J. (1993). Adult abundance,  biting behavior and parity of <i>Anopheles aquasalis </i>in two malarious areas  of Sucre State, Venezuela. <i>Mem. Inst. Oswaldo Cruz. </i><b>88: </b>363-369. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846367&pid=S1690-4648201200010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">6. BERTI J., RAMÍREZ X., HERRERA M. &amp; GONZALEZ J. (2002).  Evaluación de la efectividad <i>Bacillus sphaericus </i>contra larvas de <i> Anopheles aquasalis </i>en criaderos naturales del estado Sucre. <i> Entomotropica. </i><b>17</b>: 1-5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846368&pid=S1690-4648201200010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7. BERTI J., NAVARRO E. &amp; GONZÁLEZ J. (2003). Lista de géneros  de Coleópteros asociados a hábitats larvarios de <i>Anopheles aquasalis </i>en  humedales de la península de Paria, Venezuela. <i>Bol. Mal. Salud Amb</i>. <b>43</b>:  31-36. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846369&pid=S1690-4648201200010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">8. BERTI J., GUTIÉRREZ A. &amp; ZIMMERMAN R. (2004). Relaciones  entre tipos de hábitat, algunas variables químicas y la presencia de larvas de <i>Anopheles aquasalis </i>Curry y <i>Anopheles pseudopunctipennis </i>Theobald,  en un área costera del estado Sucre, Venezuela. <i>Entomotropica. </i><b>19</b>:  79-84.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846370&pid=S1690-4648201200010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">9. BERTI J., GONZÁLEZ J., NAVARRO E., DELGADO L., ZOPPI E. &amp;  GORDON E. (2010). Estacionalidad de la densidad larval del mosquito <i>Anopheles  aquasalis </i>(Diptera: Culicidae) y otros insectos asociados a su hábitat en  Sucre, Venezuela. </font><font SIZE="2" COLOR="#1a1619"><i>Rev. Biol. 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Estudio  biosistemático y ecológico de <i>Anopheles aquasalis </i>y sus implicaciones  para el control de malaria en el estado Sucre. II. Ecología de los criaderos. <i> Bol. Dir. Malariol. San. Amb</i>. <b>38: </b>38-46. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846373&pid=S1690-4648201200010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">12. GROVES R. &amp; MEISCH M. (1996). Laboratory and field plot  bioassay of <i>Bacillus sphaericus against Arkansas mosquito species. J. Amer.  Mosq. Contr. Assoc. </i><b>12</b>: 220-224. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846374&pid=S1690-4648201200010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">13. KARCH S., MANZAMBI Z. &amp; SALAUN, J. (1991). Field trials with  Vectolex-G and Vectobac-G against <i>Anopheles gambiae </i>and <i>Culex  quinquefasciatus </i>breeding in Zaire. <i>J. Amer. Mosq. Contr. Assoc. </i><b> 7: </b>176-179. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846375&pid=S1690-4648201200010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">14. MORENO J., ACEVEDO P., MARTINEZ A., SANCHEZ V. &amp; PETTERSON L.  (2010). Evaluación de la persistencia de una formulación comercial de <i> Bacillus sphaericus </i>en criaderos naturales de anofelinos vectores de malaria  en el estado Bolívar, Venezuela. <i>Bol. Mal. Salud. Amb</i>. <b>50</b>:  109-117. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846376&pid=S1690-4648201200010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">15. MULLA M., NORLAND R., FANARA D., DARWAZEH H. &amp; MEKEAN D.  (1971). Control of chironomid midges in recreational lakes. <i>J. Econ. Entomol. </i><b>64</b>: 300-307. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846377&pid=S1690-4648201200010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">16. ROJAS J., MAZARRI M., SOJO M. &amp; GARCÍA G. (2001). Evaluación  de la efectividad de <i>Bacillus sphaericus </i>sobre larvas de </font><i> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">Anopheles nuneztovari<b>. </b></font></i> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">Mérida, Venezuela. <i>Invest. 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Ecol</i></font><b><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">.  22<i>: </i></font></b><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><i>43-51.</i></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846379&pid=S1690-4648201200010000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">18. SKOVMAND O. &amp; SANOGO E. (1999). Experimental formulations of <i>Bacillus sphaericus </i>and <i>Bacillus thuringiensis israelensis </i>against <i>Culex quinquefasciatus </i>and <i>Anopheles gambiae </i>in Burkina Faso. <i> J. Med. Entomol. </i><b>36: </b>62-67. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846380&pid=S1690-4648201200010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">19. ZIMMERMAN R. &amp; BERTI J. (1994). The importance of integral  control of the Malaria for the preservation of wetlands in Latin America. pp.  797-803. En: <i>Global Wetlands Old World and New</i>. Ed. W. Witson. Elsevier  Science. Ohio, USA. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846381&pid=S1690-4648201200010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">20. ZOPPI E., GORDON E., DELGADO L., BERTI J. &amp; RAMOS S. (2002).  Association of cyclopoid copepods with the habitat of the malaria vector <i> Anopheles aquasalis </i>in the Península of Paria, Venezuela. <i>J. Amer. Mosq.  Contr. Assoc</i>. <b>18</b>: 47-51.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2846382&pid=S1690-4648201200010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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