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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Identificación de proteínas extrínsecas en jamones cocidos por SDS-PAGE: Nivel de detección en sistemas modelo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The Argentine Food Code (Código Alimentario Argentino) does not allow the use of any extrinsic protein in boneless ham, picnic pork shoulder and cured loin. It only allows the use of soy proteins (maximum 2% of soy isolates) in porcine products labelled "fiambre de cerdo cocido" . Protein extraction and separation in polyacrylamide slab gel electrophoresis with Laemmli system (SDS-PAGE) were used to establish the detection level of protein raw materials in mixtures with porcine meat in boneless cooked ham. Model systems of boneless cooked ham with soy protein isolates, caseinate, skim powdered milk, bovine plasma, porcine plasma and whey proteins were studied. The quantification level of this method was 0.5% for soy protein isolates, caseinate and bovine plasma and 1.0% for porcine plasma, milk powder and whey proteins in boneless cooked ham. The electrophoretic method proved to be useful to identify some proteinic raw materials in porcine meat products and verify compliance with Argentine legislation. It may be used as a control methodology.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B>    <P ALIGN="CENTER"><font face="Verdana" size="3">Identificaci&oacute;n de prote&iacute;nas extr&iacute;nsecas en jamones cocidos por SDS-PAGE: Nivel de detecci&oacute;n en sistemas modelo&nbsp;</font></P> </B>     <P ALIGN="CENTER"><FONT face="Verdana" size=2><b>Laura Beatr&iacute;z L&oacute;pez, Carola Beatr&iacute;z Greco, Patricia Ronayne de Ferrer y Mirta Eva Valencia&nbsp;</b> </FONT></P>     <P ALIGN="CENTER"><FONT face="Verdana" size=2>C&aacute;tedra de Bromatolog&iacute;a. Facultad de Farmacia y Bioqu&iacute;mica. Universidad de Buenos Aires.&nbsp; </FONT></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>RESUMEN </FONT></B> <FONT face="Verdana" size=2>&nbsp; </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2> El C&oacute;digo Alimentario Argentino establece que el jam&oacute;n cocido, la paleta cocida  y el lomo de cerdo cocido no pueden contener prote&iacute;nas agregadas ni otros extensores, permitiendo el agregado de prote&iacute;nas de soja seg&uacute;n el l&iacute;mite para chacinados  (2% de aislado de soja) &uacute;nicamente para  fiambre de cerdo cocido. Con el fin de establecer el nivel de detecci&oacute;n de materias primas proteicas  en mezcla con carne porcina en jamones cocidos se realiz&oacute; la extracci&oacute;n de prote&iacute;nas de diversos sistemas modelo y la posterior separaci&oacute;n por electroforesis en  gel de poliacrilamida, seg&uacute;n el sistema de Laemmli (SDS-PAGE). Se estudiaron  sistemas modelo de jamones cocidos  con aislado de soja, caseinato, leche en polvo descremada, plasma bovino, plasma porcino y suero l&aacute;cteo. El nivel de cuantificaci&oacute;n del m&eacute;todo fue de 0,5% de aislado de soja, de caseinato y de plasma bovino y de 1,0% de  plasma porcino, de leche en polvo descremada y de suero l&aacute;cteo en jamones cocidos. De acuerdo con estos resultados esta metodolog&iacute;a resulta &uacute;til para controlar el agregado de ciertas materias primas proteicas por lo que resulta v&aacute;lida para verificar el cumplimiento  de la legislaci&oacute;n vigente para salazones cocidas y puede ser utilizada como metodolog&iacute;a de control. </FONT></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Palabras clave: </FONT></B> <FONT face="Verdana" size=2> SDS-PAGE, prote&iacute;nas, jam&oacute;n cocido, identificaci&oacute;n, electroforesis. </FONT></P> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=1>     <P ALIGN="JUSTIFY"></P> </FONT> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Summary&nbsp; </FONT>  </P>  </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>The Argentine Food Code (C&oacute;digo Alimentario Argentino) does not allow the use of any extrinsic protein in boneless ham, picnic pork shoulder and cured loin. It only allows the use of soy proteins (maximum 2% of soy isolates) in  porcine products labelled &quot;fiambre de cerdo cocido&quot; .  Protein extraction and separation in polyacrylamide slab gel electrophoresis with Laemmli system (SDS-PAGE) were used to establish the detection level of protein raw materials in mixtures with porcine meat in boneless cooked ham. Model systems of boneless cooked ham with soy protein isolates, caseinate, skim powdered milk, bovine plasma, porcine plasma and whey proteins were studied. The quantification level of this method was 0.5% for soy protein isolates, caseinate and bovine plasma and 1.0% for porcine plasma, milk powder and whey proteins in boneless cooked ham. The electrophoretic method proved to be useful to identify some proteinic raw materials in porcine meat products and verify compliance with Argentine legislation. It may be used as a control methodology. </FONT>  </P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Key words: </FONT></B> <FONT face="Verdana" size=2> SDS-PAGE, proteins, boneless cooked ham, identification, electrophoresis. </FONT></P> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>    <P ALIGN="center"><B><FONT face="Verdana" size=2>Identification of extrinsic proteins in boneless cooked ham by SDS-PAGE: Detection level in model systems</FONT></B></P> </FONT>     <P ALIGN="left"><b><font face="Verdana" size="2">RECIBIDO: 02-06-2006</font></b></P>     <P ALIGN="left"><b><font face="Verdana" size="2">ACEPTADO: 05-09-2006</font></b></P>     <P ALIGN="left"><b><font face="Verdana" size="2">Introducción&nbsp;</font></b></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"> <FONT face="Verdana" size=2> La Resoluci&oacute;n SENASA Nº 395/03 establece que los jamones, paletas y lomos de cerdo cocidos no deben incluir en su formulaci&oacute;n sustancias amil&aacute;ceas ni aislados prote&iacute;nicos de soja (1). El Bolet&iacute;n Oficial  Nº 30676 del 16 de junio de 2005 incorpor&oacute; modificaciones en el C&oacute;digo Alimentario Argentino estableciendo   que el jam&oacute;n cocido (art. 294), la paleta cocida (art. 296) y el lomo de cerdo cocido (art. 297 bis) no pueden contener prote&iacute;nas agregadas ni otros extensores, permitiendo el agregado de prote&iacute;nas de soja seg&uacute;n el l&iacute;mite para chacinados  (2% de aislado de soja) &uacute;nicamente para  &quot;fiambre de cerdo cocido&quot; (art. 360 bis) (2). En la elaboraci&oacute;n de los productos c&aacute;rnicos es frecuente el agregado de prote&iacute;nas extr&iacute;nsecas debido a que sus propiedades funcionales mejoran las caracter&iacute;sticas organol&eacute;pticas y el rendimiento de este tipo de productos (3). Las prote&iacute;nas de soja son las que se agregan con mayor frecuencia pero muchos productos pueden contener no s&oacute;lo prote&iacute;nas vegetales  sino  tambi&eacute;n otras materias primas proteicas. </FONT>   </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Si bien en Argentina la metodolog&iacute;a propuesta para el control del agregado de soja en salazones cocidas es un m&eacute;todo de ELISA, el mismo tiene un costo excesivamente elevado, lo que hace que sea de muy dif&iacute;cil aplicaci&oacute;n por los organismos de control. Esta circunstancia, sumada al hecho de que ese kit comercial  &uacute;nicamente permite detectar prote&iacute;nas de soja, hace que sea necesario contar con una metodolog&iacute;a m&aacute;s econ&oacute;mica que permita la detecci&oacute;n de diversas materias primas proteicas frecuentemente agregadas a  las salazones cocidas. Entre las materias primas proteicas que se comercializan para ser utilizadas en la industria c&aacute;rnica se encuentran adem&aacute;s de las prote&iacute;nas de soja, plasma bovino, plasma porcino, diversas materias primas de origen l&aacute;cteo como por ejemplo leche en polvo, suero l&aacute;cteo y caseinatos,  mezclas de plasma bovino con prote&iacute;nas l&aacute;cteas y &quot;mezclas proteicas&quot; que contienen caseinato de sodio, lactoalb&uacute;mina, prote&iacute;nas de cerdo deshidratadas y aislado de soja, entre otros.  Estas materias primas proteicas act&uacute;an como agentes de retenci&oacute;n de agua y  emulsionantes de grasa; mejoran la liga durante el masajeo, permiten obtener muy buena coagulaci&oacute;n durante  la cocci&oacute;n y confieren brillo y humectaci&oacute;n al producto terminado. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>En trabajos previos, utilizando electroforesis en gel de poliacrilamida con dodecilsulfato de sodio, se estableci&oacute; el nivel de detecci&oacute;n de prote&iacute;nas de soja en mezcla con carne vacuna utilizando una soluci&oacute;n extractiva de prote&iacute;nas totales;  y de harina de trigo, leche en polvo y caseinato en mezcla con carne vacuna utilizando un solvente selectivo para prolaminas y case&iacute;nas, el  isopropanol 55º + 2% 2-mercaptoetanol (ISO 55<SUP>o</SUP> + 2-ME) (4-8). </FONT>   </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>En el presente trabajo se estudi&oacute; la posibilidad de detecci&oacute;n, mediante esta metodolog&iacute;a, de diversas materias primas proteicas (aislado de soja, plasma bovino, plasma porcino, leche en polvo descremada, caseinato y suero l&aacute;cteo) en sistemas modelo de jamones cocidos y se establecieron los niveles de detecci&oacute;n y de cuantificaci&oacute;n en cada caso. </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Materiales y Métodos</b></font> </P> <B>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Muestras&nbsp; </FONT></P> </B><FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2> </FONT> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Sistemas modelo </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Jamones cocidos con aislado de soja:   0,5%; 1,0%  y 2,0% de aislado de soja. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Jamones cocidos con plasma bovino:   0,5%; 1,0%  y 2,0% de plasma bovino. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Jamones cocidos con plasma porcino: 0,5%; 1,0%  y 2,0% de plasma porcino. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Jamones cocidos con leche en polvo descremada: 1,0%, 2,0%  y 3,0% de leche en polvo descremada. </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Jamones cocidos con caseinato: 0,5%; 1,0%  y 2,0% de caseinato. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Jamones cocidos con suero l&aacute;cteo:   0,5%; 1,0% y 2,0% de suero l&aacute;cteo. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Los niveles agregados de las materias primas proteicas son los de uso habitual en la industria c&aacute;rnica. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Para que todas las piezas a analizar fueran representativas se procedi&oacute; a elaborar los jamones de tal forma de lograr  una correcta y homog&eacute;nea distribuci&oacute;n de los distintos ingredientes a determinar, como se describe mas adelante. </FONT> </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Se utilizaron como controles aislado de soja, plasma bovino, plasma porcino, caseinato, leche en polvo descremada,  suero l&aacute;cteo y  jam&oacute;n cocido sin agregado de ninguna materia prima proteica. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Las preparaciones fueron elaboradas con carne porcina, agua e ingredientes secos:  sales, polifosfatos, eritorbato de sodio y glutamato de sodio,  adem&aacute;s de las materias primas proteicas mencionadas anteriormente y agregadas a los distintos tipos de jamones. La preparaci&oacute;n se realiz&oacute; de la  siguiente manera: se colocaron en una cutter  Seydelmann los cortes c&aacute;rnicos  junto con el 50% de  los ingredientes secos y el 50%  del agua, se mezcl&oacute; 5 minutos y se agregaron los ingredientes restantes,  se continu&oacute; mezclando y se agreg&oacute; el resto del agua, mezclando aproximadamente 10 minutos m&aacute;s. Se control&oacute; que la temperatura no superara los 12ºC. Una vez que se logr&oacute; un correcto mezclado se embutieron los jamones y se colocaron en un horno industrial Alkar a inyecci&oacute;n a vapor por 2 horas hasta llegar aproximadamente  a los 74ºC en el centro de la pieza. </FONT>  </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>An&aacute;lisis de las muestras </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Desgrasado/deshidratado de las muestras </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>El desgrasado/deshidratado de las muestras previamente molidas se realiz&oacute; con acetona. Se suspendi&oacute; la muestra en relaci&oacute;n 1/10 con acetona y se homogeneiz&oacute; en VirTis modelo 23 a baja velocidad durante 5 minutos. Posteriormente se centrifug&oacute; a 1200 rpm durante 20 minutos y se descart&oacute; el sobrenadante. Las muestras  fueron desgrasadas con acetona dos veces. </FONT></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Extracci&oacute;n de prote&iacute;nas </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>La extracci&oacute;n de prote&iacute;nas totales se realiz&oacute; con buffer Tris-HCl 0,0625M (pH: 6,8) con 3% de dodecilsulfato de sodio (SDS) y 2% de 2-mercaptoetanol por calentamiento en ba&ntilde;o de agua a 100<SUP>º </SUP>C durante 5 minutos con agitaci&oacute;n y posterior centrifugaci&oacute;n a  2500 rpm durante 15  minutos. Se pesaron 30 mg de muestra desgrasada/deshidrata con acetona de cada sistema modelo y de cada materia prima proteica control y se extrajeron con 2 mL de soluci&oacute;n extractiva. </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>La extracci&oacute;n de  case&iacute;nas de los jamones que conten&iacute;an caseinato o leche en polvo descremada, de leche en polvo y de caseinato, se realiz&oacute; con isopropanol 55<SUP> </SUP>% (v/v) + 2% de 2-mercaptoetanol (ISO 55<SUP>o</SUP> + 2-ME). De cada sistema modelo se pesaron 350 mg de muestra desgrasada deshidrata con acetona, de leche en polvo descremada se pesaron 80 mg y de caseinato 50 mg, en todos los casos la extracci&oacute;n se efectu&oacute; con 2 mL de ISO 55<SUP>o</SUP> + 2-ME. Las mezclas se homogeneizaron en  VirTis modelo 23 a baja velocidad durante 5 minutos, se dejaron en reposo 1 hora y se agitaron nuevamente en homogeinizador durante 5 minutos. Luego se centrifugaron 15 minutos a 2500 rpm. </FONT>  </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Electroforesis </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Se utiliz&oacute; b&aacute;sicamente el sistema  de Laemmli  (9).  Se trabaj&oacute; con placas de geles de poliacrilamida en sistema discontinuo, con gel de separaci&oacute;n (poro fino) y gel de concentraci&oacute;n (poro grueso). El gel de separaci&oacute;n se prepar&oacute; con 10% de  acrilamida   en una soluci&oacute;n 1,5 M Tris-ClH con 0,4% de SDS (pH: 9,2). El gel de concentraci&oacute;n se prepar&oacute; con 3%  de  acrilamida   en una soluci&oacute;n 0,5 M Tris-ClH con 0,4% de SDS (pH: 6,8). </FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Para la siembra de los extractos de prote&iacute;nas totales y de prote&iacute;nas solubles en ISO 55<SUP>o</SUP> + 2-ME de los sistemas modelos de jamones cocidos se realizaron en cada caso las siguientes mezclas: </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>- 1 volumen de extracto de prote&iacute;nas totales  de la muestra + 1/2 volumen de glicerina 50% + 1/2 volumen de soluci&oacute;n de azul de bromofenol (0,001% en agua). </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>- 1 volumen de extracto de prote&iacute;nas solubles en ISO 55<SUP>o </SUP>+ 2-ME de la muestra </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>+ 1 volumen de glicerina 50% +   1/10 volumen   de   soluci&oacute;n   de azul de   bromofenol  (0,001% en agua). </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Para la siembra de los extractos de prote&iacute;nas totales  de aislado de soja, plasma bovino, plasma porcino, leche en polvo descremada y suero l&aacute;cteo se realizaron en cada caso las siguientes mezclas: </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>- 1/6 volumen de extracto de prote&iacute;nas totales  de la muestra + 1  volumen de glicerina 50% + 1  volumen de soluci&oacute;n de azul de bromofenol (0,001% en agua). </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Para la siembra de los extractos de ISO 55<SUP>o</SUP> + 2-ME de leche en polvo descremada y de caseinato se realizaron en cada caso las siguientes mezclas: </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>- 1 volumen de extracto de prote&iacute;nas solubles en ISO 55<SUP>o </SUP>+ 2-ME de la muestra </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>+ 3 vol&uacute;menes  de glicerina 50% +   1/3 volumen   de   soluci&oacute;n   de azul de   bromofenol  (0,001% en agua). </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Las al&iacute;cuotas sembradas fueron de 5 uL para los extractos de prote&iacute;nas totales y de  20 ul  para los extractos de prote&iacute;nas solubles en ISO 55<SUP>o </SUP>+ 2-ME. </FONT>  </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>La electroforesis se realiz&oacute; con  equipo &quot;Mini-Protean II Electrophoresis Cell&quot; de BioRad a 180 V durante 40 minutos.  La tinci&oacute;n se realiz&oacute; con Coomassie Brilliant Blue R 250 al 0,25% en soluci&oacute;n metanol 50% y &aacute;cido ac&eacute;tico 9% durante 30 minutos. La destinci&oacute;n de las placas se realiz&oacute; por difusi&oacute;n con soluci&oacute;n  etanol 50%  y &aacute;cido ac&eacute;tico 9% durante aproximadamente 2 horas con renovaci&oacute;n constante. En todos los casos las placas se conservaron en soluci&oacute;n de &aacute;cido ac&eacute;tico 7%. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>La densitometr&iacute;a  de las resoluciones proteicas de las distintas muestras  se realiz&oacute;  con equipo Shimadzu Dual - Wavelength Chromatogram Scanner Model CS - 910. Se trabaj&oacute; con longitud de onda de m&aacute;xima absorci&oacute;n de 550 nm. La adquisici&oacute;n de datos se realiz&oacute; con el programa Chromatography Station CSW de DataApex Ltd. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Se consider&oacute; como l&iacute;mite de detecci&oacute;n la menor concentraci&oacute;n de una materia prima proteica  agregada que puede ser detectada por electroforesis por la aparici&oacute;n de bandas caracter&iacute;sticas de dicha materia prima proteica y como l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n la menor cantidad agregada  a partir de la cual se puede efectuar la cuantificaci&oacute;n utilizando sistemas modelos con agregado de distintos niveles  de la materia prima proteica en cuesti&oacute;n. </FONT></P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Resultados y Discusión&nbsp;</b></font></P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Sistemas modelo jamones cocidos con agregado de aislado de soja </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Del an&aacute;lisis de las muestras con agregado de soja surge que es posible detectar la presencia de prote&iacute;nas de soja en mezcla con prote&iacute;nas de carne de cerdo en los tres niveles agregados. En la <a href="#f1"> Figura 1</a> se presentan los densitogramas correspondientes a las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con 0,5% de aislado de soja, jam&oacute;n cocido con 1,0% de aislado de soja, jam&oacute;n cocido con 2,0% de aislado de soja y de aislado de soja analizadas con soluci&oacute;n extractiva de prote&iacute;nas totales. Se se&ntilde;alan en los densitogramas de los sistemas modelo y de aislado de soja  los picos S1 y S2 caracter&iacute;sticos de prote&iacute;nas de soja que permiten detectar la presencia de soja en mezcla con prote&iacute;nas de carne de cerdo. Dichos picos se incrementan al aumentar el porcentaje de aislado de soja agregado. El pico S3 de la soja tambi&eacute;n se observa en los densitogramas de los sistemas modelos, sin embargo su incremento no es tan evidente como el de los picos S1 y S2.  A medida que aumenta el porcentaje de soja se observa un aumento relativo de S3 respecto de los picos de carne  que se encuentran a ambos lados de dicho pico. </FONT> </P> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2> </FONT>     <P ALIGN="JUSTIFY">&nbsp;</P> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>     <P ALIGN="center"><b>FIGURA 1</b></P> </FONT><FONT SIZE=2>    <P ALIGN="center"></FONT><FONT face="Verdana" size=2>Densitogramas correspondientes a prote&iacute;nas totales de las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con 0,5% de aislado de soja, jam&oacute;n cocido con 1,0% de aislado de soja, jam&oacute;n cocido con 2,0% de aislado de soja y  aislado de soja, separadas por SDS-PAGE.  S1, S2 y S3: picos caracter&iacute;sticos de prote&iacute;nas de aislado de soja. C1 y C2: picos caracter&iacute;sticos de prote&iacute;nas de carne de cerdo.  </FONT></P>     <P ALIGN="center"><a name="f1"><img border="0" src="/img/fbpe/Alan/v56n3/art12%20fig1.jpg" width="474" height="318">    </a>    </P>     
]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Se graficaron  las relaciones de &aacute;reas de picos de soja (S1+S2  y S1+S2+S3) / &aacute;reas de picos de carne de cerdo que no se superponen a picos de soja (C1+C2) en funci&oacute;n del % de aislado de soja agregado. La mejor correlaci&oacute;n se obtuvo graficando  &aacute;reas de  S1+S2/&aacute;reas  de C1+C2 en funci&oacute;n del % de aislado de soja agregado. La  correlaci&oacute;n obtenida fue R<SUP>2</SUP> de 0,998.  </FONT>    </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>En mezcla con aislado de soja el l&iacute;mite de detecci&oacute;n y de cuantificaci&oacute;n es de 0,5%.  </FONT>   </P> <B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Sistemas modelo jamones cocidos con agregado de   plasma bovino o plasma porcino  </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Con el agregado de plasma porcino o de plasma bovino se observan las mismas modificaciones en los densitogramas de la carne porcina. Esto se debe a que el plasma porcino y el plasma bovino presentan pr&aacute;cticamente el mismo patr&oacute;n electrofor&eacute;tico, diferenci&aacute;ndose &uacute;nicamente en la intensidad de las bandas. El plasma porcino presenta bandas de menor intensidad que el plasma bovino.  </FONT>   </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Del an&aacute;lisis de las muestras con agregado de plasma bovino surge que es posible detectar la presencia de prote&iacute;nas de plasma bovino en mezcla con prote&iacute;nas de carne de cerdo en los tres niveles agregados. En la <a href="#f2"> Figura 2</a> se presentan los densitogramas correspondientes a las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con 0,5% de plasma bovino, jam&oacute;n cocido con 1,0% de   plasma bovino, jam&oacute;n cocido con 2,0% de plasma bovino y de plasma bovino analizadas con soluci&oacute;n extractiva de prote&iacute;nas totales. Se se&ntilde;alan en los densitogramas de  los sistemas modelo  y de plasma bovino los picos P1 y P2 caracter&iacute;sticos de prote&iacute;nas de plasma bovino que permiten detectar la presencia de  esta materia prima en mezcla con prote&iacute;nas de carne de cerdo. Dichos picos se incrementan al aumentar el porcentaje   de plasma bovino agregado.  </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Se grafic&oacute; la relaci&oacute;n de &aacute;reas de picos de plasma bovino (P1+P2)/&aacute;reas de picos de carne de cerdo que no se superponen a picos de plasma bovino (C1+C2) en funci&oacute;n del % de plasma bovino agregado. Se observ&oacute; que existe muy buena correlaci&oacute;n siendo el R<SUP>2</SUP> de 0,9975.  </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>En mezcla con plasma bovino el l&iacute;mite de detecci&oacute;n y de cuantificaci&oacute;n es de 0,5%.  </FONT>   </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Como resultado del an&aacute;lisis de los sistemas modelo   con agregado de   plasma  porcino se observ&oacute; que con el agregado de 0,5% de plasma porcino no resulta tan evidente la presencia de esta materia prima proteica por la menor intensidad de los picos  caracter&iacute;sticos, pero s&iacute; se detecta claramente  la presencia de 1,0% y 2,0% de plasma porcino, observ&aacute;ndose una  buena correlaci&oacute;n cuando se grafica la relaci&oacute;n de &aacute;reas de picos de plasma porcino (P1+P2)/&aacute;reas de picos de carne de cerdo que no se superponen a picos de plasma porcino (C1+C2) en funci&oacute;n del % de plasma porcino agregado, siendo el R<SUP>2</SUP> de 0,9984. Con esta materia prima proteica el l&iacute;mite de cuantificaci&oacute;n es 1,0%.  </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Debe mencionarse que si se desconoce cu&aacute;l es la materia prima proteica agregada (si es plasma bovino o plasma porcino) no hay posibilidades de establecerlo a trav&eacute;s del an&aacute;lisis electrofor&eacute;tico. Con el agregado de plasma bovino los picos de plasma (P1 y P2) aparecen m&aacute;s intensos que cuando se agrega igual concentraci&oacute;n de plasma porcino pero al ser los mismos picos no es posible distinguir el origen de la materia prima.  </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Ante el an&aacute;lisis de una muestra inc&oacute;gnita si la misma presenta picos caracter&iacute;sticos de plasma es posible realizar la cuantificaci&oacute;n  y expresar los resultados obtenidos en porcentaje de plasma bovino o porcino seg&uacute;n los sistemas modelo utilizados.  </FONT> </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="center"> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2> <b>FIGURA 2</b> </FONT> </P> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>     <P ALIGN="center"><FONT face="Verdana" size=2>Densitogramas correspondientes a prote&iacute;nas totales de las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con 0,5% de plasma bovino, jam&oacute;n cocido con 1,0% de plasma bovino, jam&oacute;n cocido con 2,0% de plasma bovino  y   plasma bovino, separadas por SDS-PAGE.   P1 y P2: picos caracter&iacute;sticos de plasma vacuno. C1 y C2: picos caracter&iacute;sticos de prote&iacute;nas de carne de cerdo  </FONT></P>  </FONT> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>     <P ALIGN="center"><a name="f2"><img border="0" src="/img/fbpe/Alan/v56n3/art12%20fig2.jpg" width="483" height="318"></a></P>  </FONT> <B>    
<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Sistemas modelo jamones cocidos con agregado de leche en polvo descremada  </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>De acuerdo con resultados previos el isopropanol 55º + 2% de 2-mercaptoetanol (ISO 55º + 2-ME) resulta de utilidad para extraer case&iacute;nas en mezcla con prote&iacute;nas c&aacute;rnicas, ya que las prote&iacute;nas c&aacute;rnicas son muy poco solubles en este solvente mientras que las case&iacute;nas presentan una buena extracci&oacute;n (7-8). Por este motivo se analizaron estos sistemas modelo con ISO 55º + 2-ME.  </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>En la <a href="#f3"> Figura 3</a> se presentan los densitogramas correspondientes a  las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con 1,0% de leche en polvo, jam&oacute;n cocido con 2,0% de leche en polvo, jam&oacute;n cocido con 3,0% de leche en polvo y de  leche en polvo analizadas con ISO 55º + 2-ME. En los respectivos densitogramas se observa que el agregado de 1,0% de leche en polvo se puede detectar ya que se observan claramente los picos correspondientes a case&iacute;nas (Ca1 y Ca2), dichos picos se incrementan con el aumento de leche agregada. Es posible graficar las &aacute;reas de  picos caracter&iacute;sticos de case&iacute;nas en funci&oacute;n del % de leche agregado  y se obtiene una buena correlaci&oacute;n R<SUP>2</SUP>: 0,9967.  </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>De acuerdo con los resultados obtenidos es posible detectar el agregado de leche en las muestras de jamones   en los niveles analizados  e incluso se presume que es posible detectar cantidades menores a&uacute;n (8).  </FONT>  </P>     <P ALIGN="center"> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2> <b>FIGURA 3</b></FONT>  </P> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>     <P ALIGN="center"><FONT face="Verdana" size=2>Densitogramas correspondientes a prote&iacute;nas solubles en ISO 55º + 2-ME de las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con 1,0% de leche en polvo, jam&oacute;n cocido con 2,0% de leche en polvo, jam&oacute;n cocido con 3,0% de leche en polvo y leche en polvo descremada, separadas por SDS-PAGE.  Ca1 y Ca2: picos caracter&iacute;sticos de leche en polvo  </FONT></P>  </FONT>  <B>    <P ALIGN="center"><a name="f3"><img border="0" src="/img/fbpe/Alan/v56n3/art12%20fig3.jpg" width="471" height="334"></a></P>     
]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Sistemas modelo jamones cocidos con agregado de caseinato  </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Estas muestras fueron analizadas con ISO 55º + 2-ME. En la <a href="#f4"> Figura 4</a> se presentan los densitogramas correspondientes a las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con  0,5% de caseinato, jam&oacute;n cocido con 1,0% de caseinato, jam&oacute;n cocido con 2,0% de caseinato  analizadas con ISO 55º + 2-ME.  En los tres jamones con agregado de caseinato se observan claramente las bandas correspondientes a case&iacute;nas (Ca1 y Ca2), incluso cuando se agrega 0,5% de caseinato. En estas muestras tambi&eacute;n hubo una buena correlaci&oacute;n cuando se grafic&oacute; &aacute;reas de picos  caracter&iacute;sticos de case&iacute;nas en funci&oacute;n del porcentaje de caseinato agregado (R<SUP>2</SUP>: 0,9207). Al igual que en las mezclas con leche ser&iacute;a posible detectar cantidades menores de caseinato agregadas (8).</FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Tanto en los  jamones con agregado de leche como en los  jamones con agregado de caseinato lo que se observa en los respectivos densitogramas son los picos caracter&iacute;sticos de case&iacute;nas. Por este motivo si en una muestra inc&oacute;gnita se visualizan picos caracter&iacute;sticos de case&iacute;nas no es posible confirmar si lo que se le agreg&oacute; fue leche o caseinato. Se puede realizar una cuantificaci&oacute;n de case&iacute;nas utilizando sistemas modelo con caseinato o con leche y expresando los resultados en porcentaje de case&iacute;nas.</FONT> </P>     <P ALIGN="center"> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2> <b>FIGURA 4</b></FONT> </P> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>     <P ALIGN="center"><FONT face="Verdana" size=2>Densitogramas correspondientes a prote&iacute;nas solubles en ISO 55º + 2-ME de las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con 0,5% de caseinato, jam&oacute;n cocido con 1,0% de caseinato,  jam&oacute;n cocido con 2,0% de caseinato y de caseinato, separadas por SDS-PAGE.  Ca1 y Ca2: picos caracter&iacute;sticos de caseinato.  </FONT></P>  </FONT>  <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>     <P ALIGN="center"><a name="f4"><img border="0" src="/img/fbpe/Alan/v56n3/art12%20fig4.jpg" width="473" height="333"></a></P>  </FONT> <B>    
<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Sistemas modelo jamones cocidos con agregado de  suero l&aacute;cteo  </FONT></P> </B>    <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Del an&aacute;lisis de las muestras con agregado de suero l&aacute;cteo surge que es posible detectar la presencia de prote&iacute;nas de suero l&aacute;cteo en mezcla con prote&iacute;nas de carne de cerdo cuando se agrega 1,0% y 2,0% de suero l&aacute;cteo. No es posible detectar el agregado de 0,5% de suero l&aacute;cteo.  En la <a href="#f5"> Figura 5</a> se presentan los densitogramas correspondientes a las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con  0,5% de suero l&aacute;cteo, jam&oacute;n cocido con 1,0% de suero l&aacute;cteo, jam&oacute;n cocido con 2,0% de suero l&aacute;cteo  y de suero l&aacute;cteo analizadas con soluci&oacute;n extractiva de prote&iacute;nas totales. En los densitogramas de las muestras analizadas y  de suero l&aacute;cteo se se&ntilde;alan el pico SL caracter&iacute;stico de prote&iacute;nas de suero l&aacute;cteo que permite detectar la presencia de esta materia prima en mezcla con prote&iacute;nas de carne de cerdo. Dicho pico se incrementa con el agregado de 1,0% y 2,0% de suero l&aacute;cteo.  </FONT>  </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Se grafic&oacute; la relaci&oacute;n de &aacute;reas de picos de suero l&aacute;cteo (SL)/&aacute;reas de picos de carne de cerdo que no se superponen a picos de suero l&aacute;cteo (C1+C2) en funci&oacute;n del % agregado, para las muestras de jam&oacute;n sin agregado, con agregado de 1,0% y de 2,0% de suero l&aacute;cteo. Se observ&oacute; que existe muy buena correlaci&oacute;n siendo el R<SUP>2</SUP> de 0,9868.  </FONT>  </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>En mezcla con suero l&aacute;cteo el l&iacute;mite de detecci&oacute;n y de cuantificaci&oacute;n es de 1,0% de suero l&aacute;cteo. Por debajo de 1,0% se podr&iacute;a presumir la presencia de suero l&aacute;cteo pero no cuantificar.  </FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="center"> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2> <b>FIGURA 5</b></FONT></P>     <P ALIGN="center"><FONT face="Verdana" size=2>Densitogramas correspondientes a prote&iacute;nas totales  de las muestras jam&oacute;n cocido control, jam&oacute;n cocido con 0,5% de suero l&aacute;cteo, jam&oacute;n cocido con 1,0% de suero l&aacute;cteo,  jam&oacute;n cocido con 2,0% de suero l&aacute;cteo y de suero l&aacute;cteo, separadas por SDS-PAGE.  SL: picos caracter&iacute;sticos de suero l&aacute;cteo. C1 y C2: picos caracter&iacute;sticos de prote&iacute;nas de carne de cerdo.  </FONT></P>      <P ALIGN="center"><a name="f5"><img border="0" src="/img/fbpe/Alan/v56n3/art12%20fig5.jpg" width="473" height="306"></a></P>     
<P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>De acuerdo con los resultados obtenidos en el presente trabajo en una misma muestra es posible detectar y cuantificar con soluci&oacute;n extractiva de prote&iacute;nas totales la presencia de prote&iacute;nas de soja, de plasma y de suero l&aacute;cteo dado que cada una de estas materias primas proteicas presentan picos caracter&iacute;sticos que no se superponen entre s&iacute;. Adem&aacute;s en dicha muestra utilizando un solvente selectivo (ISO 55º + 2-ME) es posible detectar y cuantificar la presencia de prote&iacute;nas case&iacute;nas.  </FONT> </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2"><b>Conclusiones&nbsp;</b></font> </P> <B> </B><FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>  </FONT>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>El nivel de cuantificaci&oacute;n del m&eacute;todo fue de 0,5% de aislado de soja, de caseinato y de plasma bovino y de 1,0% de  plasma porcino, de leche en polvo descremada y de suero l&aacute;cteo en jamones cocidos. De acuerdo con estos resultados esta metodolog&iacute;a resulta &uacute;til para controlar el agregado de diversas materias primas proteicas en salazones cocidas.  </FONT>  </P>     <P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>Dado que la legislaci&oacute;n actual prohibe la incorporaci&oacute;n de prote&iacute;nas agregadas u otros extensores en la elaboraci&oacute;n de jamones, paletas y lomos de cerdo, se propone esta metodolog&iacute;a como una de las posibles para efectuar el control de este tipo de productos.  </FONT></P> <FONT FACE="Times,Times New Roman" SIZE=2>  </FONT> <B>    <P ALIGN="left"><FONT face="Verdana" size=2>Referencias&nbsp;  </FONT></P> </B>      <!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana" size="2">1. Resoluci&oacute;n 395/03 del Servicio Nacional de Sanidad y Calidad Agroalimentaria (SENASA). www.senasa.gov.ar/dinamicas/prensa/muestra.php?id=18690, visitada abril 2006.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470316&pid=S0004-0622200600030001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>2. C&oacute;digo Alimentario Argentino, actualizado, 2006.  www.anmat.gov.ar/ principal.html,  visitada abril 2006.  </FONT> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470317&pid=S0004-0622200600030001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>3. Giese J. &quot;Proteins as ingredientes: Types, functions, applications&quot;. Food Technol. 1994;48 (10): 49-60.  </FONT> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470318&pid=S0004-0622200600030001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>4. Olivera Carri&oacute;n M. &quot;Separaci&oacute;n de prote&iacute;nas alimenticias por electroforesis: Estudio de los cambios inducidos por el procesado, identificaci&oacute;n de especies y detecci&oacute;n de prote&iacute;nas en mezclas&quot;. [Tesis Doctoral]. Universidad de Buenos Aires. Argentina; 1988.  </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470319&pid=S0004-0622200600030001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>5. Olivera Carri&oacute;n M y Valencia M. &quot;Detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de soja en productos  c&aacute;rnicos por electroforesis. I. Estudio en sistema modelo.&quot; Rev. Agroqu&iacute;m. Tecnol. Aliment. 1990; 30 (4): 509-517.  </FONT> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470320&pid=S0004-0622200600030001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>6. Olivera Carri&oacute;n M y Valencia M. &quot;Detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de soja en productos c&aacute;rnicos por electroforesis. II. Identificaci&oacute;n e interferencias de otras prote&iacute;nas diferentes de soja&quot;. Rev. Agroqu&iacute;m. Tecnol. Aliment. 1990; 30(4): 518-528.  </FONT> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470321&pid=S0004-0622200600030001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>7. L&oacute;pez Laura B. &quot;Separaci&oacute;n, identificaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de prote&iacute;nas en alimentos procesados&quot;. [Tesis Doctoral]. Universidad de Buenos Aires. Argentina; 2000.  </FONT> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470322&pid=S0004-0622200600030001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>8. L&oacute;pez LB y Valencia ME. &quot;Detecci&oacute;n de prote&iacute;nas extr&iacute;nsecas en productos c&aacute;rnicos comerciales por SDS-PAGE&quot;. Revista Chilena de Nutrici&oacute;n. 2001; Vol. 28 N<SUP>o</SUP> 3: 447 – 456.  </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470323&pid=S0004-0622200600030001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="JUSTIFY"><FONT face="Verdana" size=2>9. Laemmli UK. &quot; Cleavage of structural proteins during the assembly of the head bacteriophage t4&quot;. Nature. 1970; 227: 680 – 685.  </FONT> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=470324&pid=S0004-0622200600030001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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