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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto bacteriostático y/o bactericida del extracto de gel de Aloe vera sobre cultivos de Listeria monocytogenes]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Bacteriostatic and/or bactericidal extract of Aloe vera gel on cultures of Listeria monocytogenes. Listeria monocytogenes is a bacteria responsible for food borne diseases (FBD) The effect of Aloe vera gel extract as a possible bacteriostatic and / or bactericidal against Listeria monocytogenes, was checked by determined the minimum inhibitory concentration (MIC), the time of minimum inhibition (TMI) and minimum bactericidal concentration (MBC) solutions extract of Aloe vera gel in different concentrations on cultures of Listeria monocytogenes ATCC 7635. We applied the agar diffusion method, using solutions of extract of Aloe vera gel at concentrations of 0 to 100% for the MIC. The TMI was determined by growth curves in trypticase soy broth with an initial inoculum of Listeria monocytogenes ATCC 7635 of 108 CFU/mL in each solution. It was determined that the MIC was 10% extract of Aloe vera gel and TMI was 5 hours at concentrations of 10%, 20% and 30% of Aloe vera, while concentrations of 50, 80, 90 and 100%, the time was 8 hours. It was found that indeed the Aloe vera gel is bacteriostatic power on Listeria monocytogenes (p <0.001), but yet, no bactericidal effect was obtained in our study.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Efecto bacteriostático y/o bactericida  del extracto de gel de Aloe vera sobre cultivos de Listeria monocytogenes. </font></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Luis Guillermo Ramírez  Mérida, Alba Morón de Salim, Rosangela Catinella, Luis Castillo&nbsp; </font> </b></p>     <p align="left"><font face="Verdana" size="2">Departamento de Biología, Facultad  de Ciencias y Tecnología (FACYT). Escuela de Ciencias Biomédicas y Tecnológicas.  Instituto de Investigaciones en Nutrición (INVESNUT). Escuela de Bioanálisis,  Facultad de Ciencias de la Salud. Universidad de Carabobo, Sede Valencia.  Venezuela&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b>. Listeria  monocytogenes es una bacteria responsable de enfermedades transmitidas por  alimentos (ETA). Para comprobar el efecto del extracto de gel de Aloe vera, como  posible agente bacteriostático y/o bactericida sobre Listeria monocytogenes, se  determinó la concentración mínima inhibitoria (CMI), el tiempo mínimo de  inhibición (TMI) y la concentración bactericida mínima (CBM) de soluciones de  extracto de gel de Aloe vera en diferentes concentraciones sobre cultivos de  Listeria monocytogenes ATCC 7635. Se aplicó el método de difusión en agar,  utilizando soluciones del extracto de gel de Aloe vera en concentraciones de 0 a  100% para la CMI. El TMI se determinó por curvas de crecimiento en caldo Soya  tripticasa con un inoculo inicial de Listeria monocytogenes ATCC 7635 de 108 UFC  por mL en cada solución. Se pudo determinar que la CMI fue del 10% de extracto  de gel de Aloe vera y el TMI fue de 5 horas en las concentraciones de 10%, 20% y  30% de Aloe vera, mientras que a las concentraciones de 50, 80, 90 y 100%, el  tiempo fue de 8 horas. Se comprobó que efectivamente el gel de Aloe vera tiene  poder bacteriostático sobre Listera monocytogenes (p&lt;0.001), mas sin embargo, no  se obtuvo un efecto bactericida en los ensayos realizados. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: Listeria  monocytogenes, Aloe vera, concentración mínima inhibitoria, tiempo mínimo de  inhibición </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>SUMMARY</b>. Bacteriostatic  and/or bactericidal extract of Aloe vera gel on cultures of Listeria  monocytogenes. Listeria monocytogenes is a bacteria responsible for food borne  diseases (FBD) The effect of Aloe vera gel extract as a possible bacteriostatic  and / or bactericidal against Listeria monocytogenes, was checked by determined  the minimum inhibitory concentration (MIC), the time of minimum inhibition (TMI)  and minimum bactericidal concentration (MBC) solutions extract of Aloe vera gel  in different concentrations on cultures of Listeria monocytogenes ATCC 7635. We  applied the agar diffusion method, using solutions of extract of Aloe vera gel  at concentrations of 0 to 100% for the MIC. The TMI was determined by growth  curves in trypticase soy broth with an initial inoculum of Listeria  monocytogenes ATCC 7635 of 108 CFU/mL in each solution. It was determined that  the MIC was 10% extract of Aloe vera gel and TMI was 5 hours at concentrations  of 10%, 20% and 30% of Aloe vera, while concentrations of 50, 80, 90 and 100%,  the time was 8 hours. It was found that indeed the Aloe vera gel is  bacteriostatic power on Listeria monocytogenes (p &lt;0.001), but yet, no  bactericidal effect was obtained in our study. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Key words</b>: Listeria  monocytogenes, Aloe vera, minimum inhibitory concentration, time of minimum  inhibition&nbsp;&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: 22-01-2012 Aceptado:  15-05-2012</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>INTRODUCCIÓN</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La incidencia global de  enfermedades transmitidas por alimentos (ETA) es difícil de estimar; sin embargo  para el 2005, la Organización Mundial para la Salud (OMS), reportó cerca de 1,8  millones de personas que murieron por enfermedades diarreicas, con una  considerable proporción de estos casos atribuidos a alimentos y aguas  contaminadas. En los países industrializados, el porcentaje de la población  afectada por ETA se estima en un 30%, mientras que en los países en vías de  desarrollo su incidencia puede ser mayor (1). Listeria monocytogenes, es  responsable de ETA y agente etiológico de la listeriosis, infección  gastrointestinal invasiva cuyas manifestaciones clínicas dependen del estado de  la persona infectada: pacientes inmunosuprimidos, mujeres embarazadas, neonatos  y personas de edad avanzada (2). El inóculo exacto y el periodo de incubación  son desconocidos; se cree que se necesitan más de 103 microorganismos y entre 11  y 70 días para que se produzca la infección invasiva (3). La listeriosis no  ocurre muy a menudo; para el 2001 la incidencia osciló entre 0,3 a 7,5 casos por  millón de personas en Europa (4); en Australia fue de 3 casos por millón de  personas para el 2003 (5). En Venezuela no se han confirmado casos de  listeriosis, sin embargo, entre los datos disponibles de ETA, se reportaron 37  brotes entre 950 personas afectadas para el 2003 (6). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Si bien es cierto que la  incidencia anual de listeriosis puede parecer relativamente baja en comparación  con otras ETA, hay que considerar que esta patología se ha posicionado como una  de las enfermedades transmitidas por alimentos más importante, debido al aumento  de la población susceptible, las implicaciones a nivel clínico y su alta tasa de  letalidad, así como la ubicuidad de <i>Listeria monocytogenes.</i> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se ha evidenciado que los  ácidos orgánicos como el acido láctico y el ácido acético, generalmente usados  en los alimentos para el control de microorganismos, provocan ácido tolerancia  en Listeria monocytogenes; de allí que esta bacteria sea de interés, por su gran  resistencia y capacidad de adaptación a diferentes medios (7-9). Aunado a la  capacidad de sobrevivir en ambientes hostiles, Listeria monocytogenes posee  rasgos fenotípicos que actúan como factores de virulencia. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i>Listeria monocytogenes,</i>  emerge hoy en día, como uno de los microorganismos de mayor riesgo para las  poblaciones susceptibles y responsable de brotes en diversas partes del mundo.  En este sentido y con la intensión de aportar medios sencillos y eficaces que  permitan reducir al mínimo la cantidad de Listeria monocytogenes en los  alimentos, se propone la utilización de soluciones de extracto de gel de Aloe  vera como sustancia no tóxica y con un potencial bacteriostático y/o bactericida  sobre Listeria monocytogenes (10). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aloe vera, posee hojas que  contienen una pulpa o parénquima incoloro que forma el gel/cristal del Aloe, el  cual representa aproximadamente el 65 a 80% del peso de la planta. Este gel está  conformado por carbohidratos que son sintetizados en exceso, agua, minerales y  ácido málico almacenado. Los polisacáridos mucilaginosos son los principios  activos responsables de la actividad biológica del gel (11-13); en tal sentido,  se ha demostrado una cierta actividad antimicrobiana del gel frente a diferentes  microorganismos como Trichophyton mentagrophytes, Staphylococcus aureus y  Candida albicans (14,15). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Considerando el comprobado  efecto inhibitorio que posee el gel de Aloe vera sobre los microorganismos, se  propuso evaluar el efecto bacteriostático y/o bactericida que pudiese tener el  extracto de gel de Aloe vera frente a Listeria monocytogenes, ya que el gel/cristal  de Aloe vera es de naturaleza comestible y no altera considerablemente las  propiedades organolépticas de los alimentos, por lo que, demostrar que posee un  efecto bacteriostático y/o bactericida frente a Listeria monocytogenes podría  dar paso a su utilización como biopreservante, proporcionando medios  alternativos en pro de mejorar la calidad microbiológica de los alimentos. De  igual forma, serían excelentes alternativas naturales y económicas frente a los  biopreservantes químicos usados en la actualidad. </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">MATERIALES Y METODOS </font> </b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Investigación de campo, donde  se evaluó el efecto bacteriostático y/o bactericida de soluciones del extracto  de gel de Aloe vera, que actuaron sobre cultivos de Listeria monocytogenes ATCC  7635, cepas donadas por el Laboratorio de Biotecnología de la Facultad de  Ciencias y Tecnologías FACYT, de la Universidad de Carabobo.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Procedimiento Metodológico </font></b></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Obtención del extracto de gel  de Aloe vera. </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las muestras (pencas) fueron  donadas por la Facultad de Agronomía de la Universidad Central de Venezuela  (núcleo Maracay, Edo. Aragua). Las pencas fueron cortadas de la base de la  planta Aloe vera de aproximadamente dos (2) años de edad; se lavaron con agua y  un agente tensoactivo, y se enjuagaron con una solución yodada al 2%; luego se  procedió al despunte y descortezado de las mismas para la extracción del gel/cristal.  El gel/cristal fue lavado por aspersión de agua y escurrimiento, para eliminar  el acíbar secretado por la corteza al ser excluida. Luego, el gel/cristal fue  comprimido para obtener el jugo o mucílago, el cual se filtró mediante el empleo  de un filtro a presión manual y 25 ºC de temperatura; el filtrado se centrifugó  a 15000 rpm, en una centrifuga Avanti Centrifuge J-26 XP, a 37°C con la  intensión de eliminar sólidos en suspensión y disminuir la viscosidad; una vez  clarificado el mucílago, se procedió a pasteurizarlo a 50°C durante 2 horas, y  se concentró hasta 50% de su volumen inicial. Para ello se utilizó un  concentrador al vacío Eppendorf 5301, manteniendo una temperatura de 45°C  durante 90 min. Con el extracto concentrado de gel de Aloe vera se prepararon  soluciones de concentración del 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90 y 100%,  respectivamente, con agua estéril, para los ensayos posteriores. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Preparación del inóculo. </font> </b> </p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A partir de un cultivo original  de <i>L. monocytogenes</i> ATCC 7635 de 24 h/overnight, se tomo con una asa de  platino y se sembró en placas de agar nutritivo, incubándose a 35°C por un  período de 4 a 6 horas, para lograr la fase logarítmica. Posteriormente y a  partir de una colonia aislada se tomó con el asa y se preparó una suspensión con  agua estéril, ajustando la densidad de la suspensión del cultivo por comparación  de su turbidez con un estándar de 0,5 de Mc Farland de BaSO4, mediante este  procedimiento se garantizó un inóculo inicial de 108 UFC/mL de Listeria  monocytogenes. </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Método de difusión en Agar  según Kirby Bauer. </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Para esta prueba se prepararon  placas de Petri con agar PALCAM con un grosor de 6 mm en cada placa. Una vez  solidificado el agar, se impregnaron hisopos estériles con la solución de  Listeria monocytogenes ATCC 7635 y se procedió a inocular cada una de las  placas, cubriendo todo el espacio disponible, hasta obtener una distribución  uniforme de las colonias. Por otro lado, discos de papel de filtro Watman N° 54,  con diámetro de 6 mm, y estériles, fueron impregnados con las soluciones de  concentraciones específicas de extracto de gel de Aloe vera, previamente  preparadas, y se colocaron en las placas inoculadas anteriormente; se colocaron  cinco (5) discos de concentraciones diferentes de extracto de Aloe vera por  placa inoculada. Las placas fueron incubadas a 37°C, se observaron a las 24 y 48  horas de incubación. Los halos de inhibición alrededor de los discos, fueron  medidos con un vernier tomando dos medidas por cada disco promediándose; los  ensayos se llevaron a cabo por duplicado. Como patrón de referencia, de los  antibiogramas, se utilizaron discos de Ampicilina y Gentamicina específicos para  la inhibición de Listeria en concentraciones de 10 &#956;g respectivamente. </font> </p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Determinación del tiempo mínimo  de inhibición. </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La determinación del tiempo  mínimo de inhibición se realizó midiendo el crecimiento bacteriano, para ello se  prepararon 7 frascos Erlenmeyer de 50 mL, identificados del 1 al 7, a cada una  se les vertió 10 mL de caldo nutritivo estéril; seguidamente al frasco Nº 1 se  le agregaron 10 mL de extracto de Aloe vera al 10%; al frasco Nº 2, 10 mL de  extracto de Aloe vera al 20%, y realizando el mismo procedimiento para las  concentraciones 30%, 50%, 80%, 90%, 100% respectivamente; se preparó un frasco  control con 10 mL de caldo nutritivo. Cada uno de los frasco fueron inoculados  con 0,1 mL de suspensión de 107 UFC/mL de Listeria monocytogenesATCC 7635;  inmediatamente se procedió a medir la absorbancia con un espectrofotómetro  Thermo Spectronic Génesys UV, a 540 nm (tiempo 0). Posteriormente los frascos  inoculados se incubaron a 37°C midiendo la absorbancia a intervalos de una hora  hasta transcurridas 12 horas desde la primera medición. Los datos obtenidos  fueron graficados para obtener las curvas de crecimiento respectivas. Se comparó  la curva resultante de cada concentración de la solución de Aloe vera con la  curva de 0%, a fin de evidenciar diferencias significativas en el crecimiento de  Listeria monocytogenes. Todos los experimentos se realizaron por duplicado. </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Concentración Mínima  Bactericida. </font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">De los frascos preparados para  la prueba de Tiempo Mínimo de Inhibición, se tomó una asada y se sembró en una  placa de Petri con agar Palcam, se incubaron a 37°C durante 24h. Luego de las  24h se observaron las placas y se seleccionó aquella en la que no hubo  crecimiento bacteriano. La concentración de la solución de Aloe vera en la que  no hubo crecimiento bacteriano en la placa fue tomada como la concentración  bactericida mínima. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Análisis de los Datos</b>. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los  datos relativos a la formación o no del halo de inhibición microbiológico, así  como el diámetro del halo, fueron por duplicado y se promediaron. Se procesaron  a través de un análisis descriptivo (media aritmética) y se construyeron  diagramas de cajas y aristas (BOX &amp; WHISKER PLOT) en relación a la media de los  halos de inhibición obtenidos. Para determinar cambios en la dinámica de  crecimiento en Listeria monocytogenes, de acuerdo a las concentraciones del  extracto de gel de Aloe vera usadas en el estudio, se promediaron y se  graficaron las densidades ópticas obtenidas, a fin de presentar las respectivas  curvas de crecimiento microbiano, comparando cada uno de los tratamientos  mediante la aplicación de la prueba de correlación de Spearman (prueba no  paramétrica) que mide la diferencia entre una distribución observada y otra  esperada). Los datos fueron procesados a través del programa estadístico  STATISTIX 9.0.0. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos  durante la realización de los ensayos propuestos para evaluar el efecto  bacterios tático y/o bactericida del extracto de gel de Aloe vera en cultivos de  Listeria monocytogenesATCC 7635, en comparación con los halos de inhibición de  los patrones de referencia de antibióticos (0,5 mm), mostraron que los halos de  inhibicion promedio, obtenidos con las diferentes concentraciones del extracto  de gel de Aloe vera, fueron de 1,5 mm para las concentreaciones de 10 a 40%  respectivamente, asi como de igual magnitud para las concentraciones 60,70 y  100%, mientras que se pudo observar una tendencia inhibitoria superior en la  concentracion del 90%, según se evidencia en la figura de caja y aristas (<a href="#fig1">Figura  1</a>).&nbsp; </font></p>     <p align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v62n1//art11.fig1.jpg" width="448" height="353"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La <a href="#fig2">Figura 2</a>, muestra la curva  de crecimiento de Listeria monocytogenes en condiciones normales de caldo  nutritivo y curvas de crecimiento del microorganismo en soluciones de Aloe vera  a diferentes porcentajes de concentración y medidas por densidad óptica. La  curva normal de crecimiento sin Aloe vera (0%), muestra el comportamiento  esperado: una fase de latencia o adaptación la cual se inicia luego de la  inoculación del microorganismo culminando aproximadamente a las 4 horas;  seguidamente una fase logarítmica o exponencial hasta alcanzar su pico máximo de  multiplicación a las 8 horas de incubación para mantenerse en fase estacionaria  hasta el final de las mediciones. Las curvas de crecimiento del microorganismo a  las diferentes concentraciones del extracto de Aloe vera evidencian un patrón de  crecimiento que sigue la tendencia de fase de latencia que, para las soluciones  con concentraciones del extracto de 10, 20 y 30% respectivamente finaliza a las  2 horas, mientras que para las concentraciones de 50, 80, 90 y 100% finaliza a  las 4 horas; la fase logarítmica o exponencial se mantiene desde las 2 horas  hasta las 5 horas para las concentraciones de 10, 20 y 30% y a partir de este  momento se mantiene en fase estacionaria hasta el final de las mediciones  realizadas. Por otro lado, para las concentraciones de 50, 80, 90 y 100% de  extracto de Aloe vera la fase logarítmica o exponencial del crecimiento del  microorganismo comienza después de 4 horas de incubación y se mantiene hasta las  8 horas, con una declinación leve del crecimiento, por lo que se puede  considerar que entra en fase estacionaria, y luego continuar un crecimiento  hasta las 11 horas. </font></p>     <p align="center"><a name="fig2"> <img border="0" src="/img/fbpe/alan/v62n1//art11.fig2.jpg" width="436" height="343"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>DISCUSIÓN</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos en la  prueba de correlación de Spearman, evidenciaron que al comparar la curva de  crecimiento normal respecto a las distintas soluciones de concentraciones de  Aloe vera, existe una diferencia estadísticamente significativa (p &lt; 0,01). En  la gráfica de crecimineto microbiano, resultante de la aplicación de Aloe vera,  se pueden observar que las tres fases de crecimiento se lograron en un menor  tiempo, respecto a la curva control (0%). Este comportamiento pudiera deberse a  la presencia de ciertas sustancias contenidas en el gel de Aloe vera, que  pudieron favorecer el crecimiento de la bacteria, tales como: minerales,  vitaminas, proteínas, iones y como principal carbohidrato, la glucosa (12). Sin  embargo, a pesar de este favorecimiento, las curvas de crecimientos resultantes  para cada una de las concentraciones de Aloe vera utilizadas, muestran picos de  absorbancias muy por debajo al obtenido en la curva control, demostrando esto,  que a pesar de que se alcanzó la fase exponencial rápidamente, las diferentes  concentraciones de gel Aloe vera, interfirió en el crecimiento de Listeria, que  pudo ser debido a la presencia de ciertos factores inhibidores presentes en el  gel (14). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Agary y col. (14), demostraron  que el gel del Aloe vera posee efectos inhibitorios sobre otros microorganismos,  tales como Staphylococcus aureus y Trichophyton mentagrophytes, efecto que no  lograron al aplicar extractos de la penca sobre los mismos cultivos, sugiriendo  que existen constituyentes del gel de la penca que no están presentes en la  corteza de la misma y que tienen un potencial antimicrobiano importante, no sólo  para cierto tipos de microorganismos, sino para diferentes bacterias e incluso  hongos, de tal manera que a lo demostrado en trabajos precedentes, se une lo  logrado en la presente investigación, al demostrarse la existencia de una acción  bactericida sobre Listeria monocytogenes. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Adicional al efecto inhibitorio  que el gel de Aloe vera tiene sobre algunos microorganismos, existen trabajos  que reportan efectos positivos de ciertos componentes purificados de este gel,  tal como es el caso del acemanano, uno de los principales componentes  polisacáridos que están presentes en el gel de la planta y que según  investigaciones, permite potenciar la actividad inmunomoduladora, al incrementar  la sensibilidad de los macrófagos, aumentando la superficie de expresión  molecular (16). Por otra parte, también se ha identificado que dicha sustancia,  el acemanano, tiene la facultad de inhibir la adherencia de Pseudomona  aeruginosa a las células epiteliales del pulmón en humanos (17), por lo que se  amplían los descubrimientos sobre los efectos de este carbohidrato del que el  gel de Aloe vera es tan rico. Si bien el gel de Aloe vera posee muchos otros  componentes, no se debe dejar a un lado la posibilidad de que el acemanano sea  responsable, entre otras cosas, del efecto bacteriostático sobre Listeria  monocytogenes, reflejado en el presente trabajo. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se pudo demostrar que el  extracto del gel de Aloe vera posee cierto efecto bacteriostático sobre Listeria  monocytogenes, requiriendo para ello una concentración mínima de 10% del mismo.  Asimismo, se pudo observar en las curvas de crecimiento que no se logró un  efecto bactericida, por cuanto en cada una de ellas la bacteria logró  desarrollarse en mayor o menor medida. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El tiempo requerido para  observar el efecto inhibitorio del gel de Aloe vera sobre Listeria monocytoges,  fue de 5 horas para las diferentes concentraciones del extracto de gel de Aloe  vera, con un efecto bacteriostático estadisticamente significativo (p&lt;0,01),  aunque el efecto no fue directamente proporcional al aumento de su  concentración. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se puede inferir que el gel de  Aloe vera tiene potencial para ser sugerido como biopreservante en la industria  alimenticia, evitando de esta manera la proliferación de Listeria monocytogenes,  como un patógeno emergente, con capacidad de afectar a un segmento importante de  la población, principalmente los más susceptibles. Se recomienda la realización  de estudios donde se lleve a cabo la correlación de los halos de inhibición  obtenidos del extracto de gel de Aloe vera con otros compuestos con capacidad  antibacteriana a diferentes concentraciones, en el que la bacteria en estudio  resulte sensible, para de esta manera discernir mejor el efecto bacteriostático  de Aloe vera y tener un marco de referencia comparativo. De igual forma se  sugiere la utilización del extracto de gel de Aloe vera liofilizado, siendo esta  una buena alternativa de concentración de esta sustancia que pudiera ofrece  mejores y mayores resultados sobre Listeria monocytoges y demás patógenos  alimentarios.&nbsp; </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Organización Mundial para la  Salud OMS. Food safety and foodborne illness 2007. Disponible en:  <a href="http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs237/en/">http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs237/en/</a>  (Consulta: 2011, Febrero 24). </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=521055&pid=S0004-0622201200010001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Vázquez-Boland J, Kuhn M,  Berche P, Chakraborty T, Dominguez-Bernal G, Goebel W, et al. Listeria  Pathogenesis and Molecular Virulence Determinants. Clinical Microbiology Reviews  2001; 4 (3): 584–640. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Salas, J. Listeriosis, una  infección poco frecuente 2002 Disponible en:  <a href="http://www.consumer.es/seguridad-alimentaria/ciencia-ytecnologia/2002/01/15/629.php">http://www.consumer.es/seguridad-alimentaria/ciencia-ytecnologia/2002/01/15/629.php</a>  (Consulta: 2010, Noviembre 25).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. De Valk H, Jacquet C, Goulet  V, Vaillant V, Perra A, Desenclos JC et al. Feasability study for a  collaborative surveillance of listeria infections in Europe. Informe presentado  por el Institut de veille sanitaire e Institut Pasteur a la Comision Europea.  Paris: European Commission, 2003. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Organización de las Naciones  Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO)/ Organización Mundial para la  Salud (OMS). Evaluación de riesgos de Listeria monocytogenes en alimentos listos  para el consumo 2004 (Documento en linea). Disponible en: <a href="http://ftp.fao.org/docrep/fao/008/y5393s/y5393s00.pdf">http://ftp.fao.org/docrep/fao/008/y5393s/y5393s00.pdf</a>  (Consulta: 2010, Noviembre 25). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Organización de las Naciones  Unidas para la Agricultura y la Alimentación (FAO)/ Organización Mundial para la  Salud (OMS). Situación actual del control de la inocuidad de alimentos en venezuela: análisis de la situación 2005. Disponible en:  <a href="http://ftp.fao.org/docrep/fao/meeting/010/af112s.pdf">http://ftp.fao.org/docrep/fao/meeting/010/af112s.pdf</a>  (Consulta: 2010, Noviembre 25). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Adams M, Moss M.  Microbiología de los Alimentos (1ª edición). Zaragoza: Editorial Acribia, 1995. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. O´Driscoll B, Gahan CG, Hill  C. Adaptive acid tolerance response in Listeria monocytogenes: isolation of an  acid-tolerant mutant which demostrates increased virulence. Applied and  environmental microbiology 1996 Mayo;62 (5):1693-1698. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Oteo J, Alós J. Listeria Y  LISTERIOSIS 2004. Disponible en:  <a href="http://www.seimc.org/control/revi_Bacte/listeria.htm">http://www.seimc.org/control/revi_Bacte/listeria.htm</a> Consulta: 2008, Septiembre 15. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. García J, Picazo J.  Microbiología médica (1ª edición., Vol. I). Madrid: Editorial Mosby, 1996. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Schweizer M. Aloe vera: la  planta que cura (1ª edición). Paris: A P B, 1995. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Boudreau MD, Beland FA. An  Evaluation of the Biological and Toxicological Properties of Aloe Barbadensis (Miller),  Aloe Vera. Journal of Environmental Science and Health 2006; 24 (1): 103-154. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Tai-Nin Chow J, Williamson  D, Yates K, Goux W. Chemical characterization of the immunomodulating  polysaccharide of Aloe vera L. Carbohydrate research 2005 Mayo; 340 (6):  1131-1142. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Agarry O, Olaleye M,  Bello-Michael C. Comparative antimicrobial activities of Aloe vera gel and leaf.  African Journal of Biotechnology 2005 Diciembre; 4 (12): 1413-1414. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Ferro VA, Bradbury F,  Cameron P, Shakir E, Rahman SR, Stimson WH. In vitro susceptibilities of  Shigella flexneri and Streptococcus pyogenes to inner gel of Aloe barbadensis  Millier. Antimicrobial agents and chemotherapy 2003 Marzo; 47 (3):1137-1139. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Zhang L, Tizard I.  Activation of a mouse macrophage cell line by acemannan: the major carbohydrate  fraction from Aloe vera gel. Journal of Immunopharmacology 1996 Noviembre;  35(2):119-28. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Azghani A, Williams I,  Holiday D, Johnson A. A betalinked mannan inhibits adherence of Pseudomonas  aeruginosa to human lung epithelial cells. Glycobiology 1995 Septiembre; 5 (1):  39-44.</font></p>      ]]></body>
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