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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In the last three decades, several emergent diseases affecting human beings have been identified, most of them from infectious origin including bacterial, viral, parasitic and even difficult to classify as spongiform encephalopathy. Most of these are zoonotic as it is the case of Arcobacter, currently considered as an emerging and food borne pathogen, of growing importance for public health. The increase in the prevalence and incidence of cases associated to this bacteria as well as in the number of actual researches and reports, suggest that the infection in human beings and animals has been underestimated due to a lack in knowledge about this bacteria and of a standardized isolation protocols, as well as the use of correct identification methods and techniques. Increasing trends in the isolation of Arcobacter from animal derivates used as food and from samples taken during production processes, cause an augment in public health awareness, since there is little knowledge about the pathogenic potential of Arcobacter species and the few focused in this bacterial group, show many different transmission routes and host species. Given this, the objective of the present review is to actualize the reader in the most important characteristics of this bacterium, including its morphology, distribution, classification, transmission, association with water, food, pets and animals, as well as the laboratory isolation techniques, virulence factors and their antibiotic susceptibility patterns.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Arcobacter: un patógeno emergente de  origen alimentario</font></b></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Gerardo Calvo, María Laura  Arias, Heriberto Fernández</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Centro de Investigación en  Enfermedades Tropicales y Facultad de Microbiología, Universidad de Costa Rica.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Instituto de Microbiología Clínica. Universidad Austral de Chile, Valdivia,  Chile</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b>. En las últimas  tres décadas, se han identificado gran número de enfermedades emergentes que  afectan al ser humano, la mayoría de las cuales son de origen infeccioso e  incluyen enfermedades bacterianas, virales, parasitarias, entre otras. Muchas de  éstas son de origen zoonótico, tal es el caso de algunas especies de Arcobacter,  actualmente consideradas bacterias emergentes y, también, asociadas a  transmisión alimentaria y de creciente importancia en salud pública. El  incremento en los datos de prevalencia e incidencia de casos asociados a esta  sugiere que la infección en humanos y animales ha sido subestimada, debido a la  carencia de conocimientos al respecto y de un protocolo estándar, universalmente  aceptado, para el aislamiento primario de este organismo y al uso de correctos  métodos y técnicas de identificación. El incremento en el hallazgo de Arcobacter  en alimentos derivados de animales y en muestras tomadas durante el proceso de  producción de alimentos, hace que aumente la preocupación en materia de salud  pública, ya que aún se conoce muy poco del potencial patogénico de las especies  Arcobacter y los pocos estudios que se han llevado a cabo, muestran una gran  cantidad de especies hospederas y rutas de transmisión. Dado lo anterior, el  objetivo de la presente revisión es el actualizar al lector en las  características más destacadas de esta bacteria en cuanto a su morfología,  distribución, clasificación, transmisión, asociación con aguas, alimentos,  mascotas y animales de crianza, como también sobre su aislamiento en  laboratorio, factores de virulencia y patrones de sensibilidad a antibióticos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave</b>:  Arcobacter, zoonosis, emergente, alimento </font></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter: a foodborne  emerging pathogen.</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>SUMMARY</b>. In the last  three decades, several emergent diseases affecting human beings have been  identified, most of them from infectious origin including bacterial, viral,  parasitic and even difficult to classify as spongiform encephalopathy. Most of  these are zoonotic as it is the case of Arcobacter, currently considered as an  emerging and food borne pathogen, of growing importance for public health. The  increase in the prevalence and incidence of cases associated to this bacteria as  well as in the number of actual researches and reports, suggest that the  infection in human beings and animals has been underestimated due to a lack in  knowledge about this bacteria and of a standardized isolation protocols, as well  as the use of correct identification methods and techniques. Increasing trends  in the isolation of Arcobacter from animal derivates used as food and from  samples taken during production processes, cause an augment in public health  awareness, since there is little knowledge about the pathogenic potential of  Arcobacter species and the few focused in this bacterial group, show many  different transmission routes and host species. Given this, the objective of the  present review is to actualize the reader in the most important characteristics  of this bacterium, including its morphology, distribution, classification,  transmission, association with water, food, pets and animals, as well as the  laboratory isolation techniques, virulence factors and their antibiotic  susceptibility patterns.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Key words</b>: Arcobacter,  zoonosis, emergent, food</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Recibido: 01-04-2013 Aceptado:  27-06-2013</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En las últimas tres décadas, se  han identificado gran número de enfermedades emergentes que afectan al ser  humano, la mayoría de las cuales son de origen infeccioso e incluyen  enfermedades bacterianas, virales, parasitarias y hasta de difícil  clasificación, como las encefalopatías espongiformes. Muchas de éstas son de  origen zoonótico, resultado de la transmisión a humanos de patógenos de otras  especies animales (1). Tal es el caso de Arcobacter¸ una bacteria emergente,  asociada a alimentos y de gran importancia en salud pública.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Características del género  Arcobacter.</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Es un bacilo Gram negativo  curvo, en forma de S cuando está en cultivos jóvenes y de forma cocoide o  esférica en cultivos viejos. Es una bacteria no esporulada y su tamaño oscila  entre 0,2 y 0,9 &#956;m de ancho, con un largo entre 0,5 y 3,0 &#956;m. Es móvil debido a  la presencia de flagelos polares simples (2).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las colonias de Arcobacter  usualmente carecen de pigmentos, todas las especies tienen actividad oxidasa,  presentan reacción negativa con el rojo de metilo y con el Voges-Proskauer, no  producen indol, excepto A. mytili y A. molluscorum. La mayoría de las especies  reducen nitratos y no hidrolizan el hipurato. Son quimioorganotróficas y  utilizan una gran variedad de fuentes de carbono como ácidos orgánicos y  aminoácidos (2,3).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Dentro de sus características y  por las cuales se diferencia del género Campylobacter se encuentra el que puede  crecer en un rango de temperaturas que oscila entre los 15 - 42°C, en  condiciones aerobias o anaerobias. Sin embargo, el crecimiento óptimo en el  primo aislamiento ocurre bajo condiciones de microaerofilia (3-10 % O2) y no  requiere hidrógeno para su crecimiento (2,4). Su Tm(e), o temperatura a la cual  un 50% del ADN-ARNr híbrido es desnaturalizado es, en promedio, de 66 ºC (2) y  poseen un contenido G + C entre un 27% y un 30% mol (4).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Esta bacteria fue aislada por  primera vez a partir de fetos bovinos abortados de manera espontánea en 1977 y  posteriormente fue también aislada a partir de fetos de cerdo (5, 6).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La bacteria fue inicialmente  nombrada como Campylobacter aerotolerante por Neill et al. (7), no obstante su  nombre fue cambiado luego a Campylobacter cryaerophila por Neill et al. en 1985  (8) y, finalmente, Vandamme et al. (2), propusieron la creación del género  Arcobacter.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Actualmente, el género consta  de 17 especies reconocidas: Arcobacter butzleri, A. cryaerophilus (Group 1A y  1B), A. skirrowii, A. nitrofigilis, A. cibarius, A. halophilus, y las especies  recientemente descritas, A. molluscorum, A. defluvii, A. marinus, A. trophiarum,  A. mytili, A. thereius, A. ellisii, A. bivalviorum, A. venerupis, A. cloacae y  A. suis (3, 9-18).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En el año 2002 fue descrita una  bacteria autotrófica marina sulfuro-oxidante que produce filamentos  hidrofiílicos sulfurados como producto metabólico. Los análisis filogenéticos la  ubican en el género Arcobacter y se le ha asignado el nombre de ¨Candidatus  Arcobacter sulfidicus¨, pero aún no se cuenta con su descripción formal (19).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Distribución</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El género Arcobacter ha sido  aislado a partir de ganado vacuno, porcino, ovino, caprino, en pollo y otras  aves de corral, como también en fetos de abortos porcinos y bovinos, productos  cárnicos, moluscos y leche.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Algunas especies de Arcobacter  han sido aisladas en superficies de plantas procesadoras de carne, de agua  potable, de alcantarillas, agua de río y de mar.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Sin embargo, su mayor  prevalencia se encuentra en carne de pollo, seguida de cerdo y luego por carne  de res (4, 20-23). Su aislamiento a partir de productos cárnicos ha sido  reportado a nivel mundial, incluyendo estudios realizados en Tailandia (24),  Irlanda del Norte (25), Turquía (26), México (27), Estados Unidos (28), en los  Países Bajos (29) y en Costa Rica (30).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los miembros de género  Arcobacter no son parte de la flora intestinal y el humano se puede infectar por  la presencia de este organismo en alimentos de origen animal o en agua, entre  otras vías de transmisión que aún no están bien definidas (4).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Especies de Arcobacter  descritas</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La taxonomía del género  Arcobacter, así como la de los otros géneros bacterianos se basa principalmente  en el análisis del gen ARNr 16S (31). Para las 17 especies de Arcobacter  descritas, se cuenta con similitudes interespecíficas desde 92,1% hasta un  98,9%. Las especies más relacionadas entre sí son A. cibarius y A. cryaerophilus,  y las menos relacionadas son A. thereius y A. halophilus. A continuación, se  describe brevemente cada una de las especies descritas hasta el momento:</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter nitrofigilis</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Esta bacteria es la especie  tipo del género y fue inicialmente aislada en el año 1983 por McClung et al.  (10), en la costa este de Canadá. Es una bacteria fijadora de nitrógeno y fue  encontrada en asociación con las raíces de Spartina alterniflora, una planta  acuática. Esta bacteria ha sido aislada de diversas muestras tales como, heces,  tractos reproductivos y fetos producto de abortos de muchos animales de granja,  así como de muestras de leche de vaca que tenían mastitis (7).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter skirrowi</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Esta especie de Arcobacter fue  inicialmente aislada de muestras de heces de ovejas con diarrea, productos de  abortos en cerdos, fetos bovinos y ovinos, además de encontrarlo en prepucio de  toros. Ha sido asociada a pacientes ancianos con diarreas crónicas y en algunas  ocasiones con gastroenteritis, tanto en adultos como en niños (33).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter butzleri</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Inicialmente fue aislada de  muestras humanas y de animales con diarrea (34). Las infecciones causadas por  esta bacteria se caracterizan por una diarrea acuosa con dolor abdominal,  náuseas y vómito y, en algunas ocasiones, también se presentan casos con fiebre  (35), lo cual contrasta con la diarrea sanguinolenta asociada a C. jejuni.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El mecanismo por el cual esta  bacteria produce la diarrea acuosa no está bien dilucidado. No obstante, se ha  descrito que tiene capacidad de adherencia al epitelio, que causa una disfunción  de la barrera epitelial induciendo cambios en las proteínas de unión estrecha (tight  junction proteins), además de inducir la apoptosis epitelial, con lo cual  produce una diarrea tipo fuga de flujo (36-37).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se ha sugerido que este  microorganismo tiene el potencial de invadir otras partes del cuerpo y producir  complicaciones, ya que se ha aislado de pacientes con cirrosis hepática y  apendicitis gangrenosa aguda (38).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Esta bacteria se ha asociado a  diarrea crónica y a casos de diarrea del viajero; en un estudio realizado por  Teague et al. (39) en Tailandia se aisló A. butzleri en un 13% de los platillos  servidos en los mejores cinco restaurantes en Bangkok. También Jiang et al (40)  en Guatemala, México e India, encontraron un 8% de casos positivos de diarrea  por A. butzleri en visitantes de estas ciudades.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter cryaerophilus</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">A. cryaerophilus es la especie  de Arcobacter predominantemente asociada a casos de aborto en animales. Se ha  aislado también de pacientes con cáncer, fallo renal y hasta en pacientes con  hiperuricemia y alcoholismo (41). También se ha aislado en Suiza a partir de  muestras de heces de trabajadores de mataderos, sin síntomas de infección (42).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Dentro de esta especie se  encuentran dos grupos denominados 1A y 1B o 1 y 2, los cuales se han separado  mediante diferentes RFLP (restriction fragment length porlymorfisms) de los  genes 16s y 23s (34), además del contenido total de proteínas celulares y ácidos  grasos (9). El grupo 1A es el más prevalente (3, 42-43). No obstante, ambos  grupos han sido aislados simultáneamente en muestras de alimentos y en muestras  clínicas de animales y humanos (3, 42). Algunos estudios han planteado la  necesidad de separar estos dos grupos en dos especies distintas pero, estudios  recientes realizados por Debruyne, L. et al. (41), basándose en AFLP y  secuencias del gen hsp60, rechazan esta separación.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter cibarius</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Descrita en el 2005 por Houf et  al. (11), fue aislada de carne de pollos en Bélgica. Comparaciones del gen 16S  ARNr revelan similitudes del 97,5% con A. cryaerophilus y un 96,5% con respecto  a A. butzleri.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter halophilus</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Es una especie que fue  recuperada en una laguna hipersalina en Hawaii en el año 2005, siendo la única  especie halofílica obligada del género (12).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Arcobacter mytili</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Fue aislada de mejillones y de  muestras de agua salobre en Cataluña, en el Noreste de España y presenta la  característica de ser incapaz de hidrolizar el indoxil acetato (3).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Arcobacter thereius</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Aislado en el año 2009 en  Dinamarca por Houf. y colaboradores (17) , se ha recuperado de hígados y riñones  de cerdos con abortos espontáneos y en muestras de las cloacas de patos. No se  ha detectado en muestras humanas (45).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter marinus</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Esta especie ha sido descrita  con base a una sola cepa. Fue aislada de una mezcla de agua marina, estrellas de  mar y algas en Corea. Aún no se ha encontrado en mamíferos (15). Difiere  fenotípicamente de A. halophilus por su capacidad de crecer en condiciones  aerobias a 10 ºC y por su incapacidad de crecer bajo condiciones anaerobias  (15).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter trophiarum</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Fue asilado en Bélgica en  muestras de heces de cerdos de engorde y en animales estabulados y produce el  mismo patrón RFLP que A. butzleri <b>(16,21).</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Arcobacter molluscorum</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Aislada de muestras de ostras y  mejillones. Esta bacteria tiene una similitud del 97,6% con A. marinus, seguido  de un 95,6% con A. halophilus y un 94,7% con A. mytili. Esta especie es incapaz  de hidrolizar la urea y el indoxil acetato (13).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Arcobacter defluvii</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Aislado en el año 2010 de  muestras de aguas residuales; presenta la mayor similitud del gen 16S ARNr con  A. nitrofigilis (95,6%) (14).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Arcobacter ellisii</b> Esta  especie fue aislada de tres muestras de mejillones en España y debe su nombre a  W.A. Ellis, quien hizo la descripción de los primeros aislamientos de Arcobacter  a partir de fetos bovinos abortados (46).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter bivalviorum</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Descrito en el año 2012, por  Levicán et al. (18) a partir de muestras de bivalvos, provenientes de muestras  recolectadas en el delta del río Ebro, en Cataluña, España.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Arcobacter venerupis</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Al igual que A. bivalviorum, se  aisló en muestras de moluscos recolectadas en el delta del río Ebro, en Cataluña  (18).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter cloacae sp. nov.  y Arcobacter suis sp. nov</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Estas especies fueron aisladas  a partir de muestras de ostiones, carne de pollo y aguas negras. Dados su patrón  de 16S rDNA-RFLP y su secuenciación genética, fueron clasificadas como dos  especies diferentes a las anteriormente descritas (18).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Candidatus Arcobacter  sulfidicus</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En el año 2002 fue descrita una  bacteria marina, microareofílica, autotrófica y sulfuro-oxidante que produce  filamentos hidrofílicos sulfurados como producto metabólico. Se ha propuesto  como una nueva especie potencial. No obstante, aún no se cuenta con su  descripción oficial ni con su reconocimiento formal como entidad taxonómica  (19).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Importancia clínica y  prevalencia de Arcobacter en humanos El rol de las especies de Arcobacter como  causantes de patología humana y animal no ha sido totalmente establecido y sólo  tres especies, A. butzleri, A. cryaerophilus y A. skirowii, han sido asociadas  con padecimientos gastrointestinales, siendo la diarrea el principal síntoma  reportado (21, 45, 47-49). También se ha reportado en varios estudios la  existencia de portadores asintomáticos de especies de Arcobacter con lo cual  aumentan las dudas sobre el potencial patogénico de este género bacteriano (32,  42, 48).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La infección con Arcobacter  puede ocurrir por contaminación cruzada en la manipulación de alimentos, el  consumo de alimentos de origen animal contaminados, consumo de agua contaminada  o por contaminación directa con materia fecal, tanto animal como humana y se ha  postulado la infección por el contacto con humanos infectados (21, 42). Es  posible que en la transmisión hídrica tengan participación amebas de vida libre,  como Acanthamoeba castellanii con la cual, A. butzleri puede establecer  endosimbiosis sobreviviendo al interior del protozoo al menos por 10 días (50).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La gravedad del cuadro clínico  en las infecciones de Arcobacter es muy variada, presentándose desde infecciones  asintomáticas (32, 42, 48), diarreas leves, diarreas crónicas y abundantes,  hasta casos entéricos graves que ameritan hospitalización, como en el caso de un  brote en una escuela en Italia en el año 1992, en el cual diez niños fueron  afectados por A. butzleri, tres de los cuales fueron hospitalizados, el síntoma  principal fue calambres abdominales sin diarrea (51).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La prevalencia de las especies  de Arcobacter depende de muchos factores propios de la metodología de detección  (33). Existe una carencia de un protocolo oficial y un método de aislamiento que  actué como estándar de oro para la identificación de Arcobacter (22, 35, 48), lo  cual ha causado que los valores de la prevalencia de los distintos estudios no  puedan ser comparados entre sí (22). Sin embargo, el reporte de casos y  prevalencia evidencia que existe un impacto importante por parte de especies de  Arcobacter en la salud humana y animal.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Usando métodos de cultivo, la  prevalencia reportada de Arcobacter en muestras de heces diarreicas en los  estudios poblacionales puede variar entre 0,1% en África hasta un 2,4% en  Tailandia. Sin embargo, usando métodos moleculares (m-PCR) se encuentra una  prevalencia mayor, que oscila entre un 1,2% en Francia hasta un 12,9% en  Sudáfrica (21).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Algo que es común en todos los  estudios, ya sea que utilicen métodos de aislamiento o moleculares, es que A.  butzleri presenta la mayor prevalencia, seguido por A. cryaerophilus y luego A.  skirrowii (32, 33).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La coinfección de Arcobacter  con otros enteropatógenos, incluyendo C. jejuni, C . coli, C. concisus y  Helicobacter pylori ha sido reconocida (32). Hasta el momento, no se ha  establecido de manera clara cuál es el rol que juegan en la infección las  características del hospedero, incluyendo edad, sexo y estado inmunológico pero,  al igual que con otros patógenos, se estima que son factores predisponentes, que  facilitan o propician la infección. Feraet al. (52) plantean que factores como  el estado de salud, la hipertensión y el diámetro de la circunferencia del  abdomen, son factores predisponentes para la infección por Arcobacter y por  otros microorganismos similares.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En los últimos años y a partir  de estudios realizados en México, Guatemala e India, se logró demostrar que  especies de este género han actuado como agentes causales de diarrea del viajero  (40) y en muy pocas situaciones se ha asociado a bacteremia (38).</font></p>      <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Arcobacter en animales</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El género Arcobacter ha sido  aislado de muestras del tracto intestinal y muestras de heces de diferentes  animales de granja tales como pollos, vacas y cerdos (33), también en otros  animales domésticos y salvajes, como perros, peces, moluscos, tortugas,  avestruces, monos, mapaches y alpacas (33, 47, 49, 53, 55, 56). En los animales  los efectos más serios de la infección varían desde abortos, mastitis y diarrea.  Sin embargo, al igual que en los humanos, esta bacteria se ha aislado de  animales asintomáticos (33).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se ha aislado Arcobacter en  muestras fecales de ganado vacuno (23, 33, 56), en cerdos (33, 42), pollos (33),  ovejas y caballos (23). La prevalencia de las distintas especies de Arcobacter  en animales sanos varía de país a país, pero se observa una menor prevalencia en  ganado vacuno que en cerdos (20).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">A pesar de que en la carne de  pollo se aísla con mucha frecuencia Arcobacter spp., la bacteria no se aísla con  la misma frecuencia en su tracto intestinal (31). La posible explicación a esta  situación sería que la bacteria solamente pasa a través del tracto digestivo sin  colonizarlo, posiblemente debido a que la alta temperatura corporal de los  pollos (41ºC) no contribuiría a crear un hábitat favorable para las especies de  Arcobacter (31).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La edad de los animales también  se ha asociado con la prevalencia de Arcobacter. Wesley y Baetz(31), observaron  mayores prevalencias en pollos de 56 semanas de edad (57%) con respecto a los  pollos de 8 y 16 semanas (1% y 3% respectivamente). En cerdos se observó el  mismo fenómeno en Bélgica (56), esto quizá por una mayor tiempo de exposición a  un ambiente contaminado, aunque este aspecto está todavía en discusión (20),  especialmente porque en algunos estudios en ganado se ha reportado un fenómeno  similar al encontrar mayor prevalencia de A. butzleri en vacas que en terneros  (28), contrastando con otros, en los que la mayor prevalencia se encuentra en  terneros y no en vacas adultas (56).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Rutas de transmisión de  Arcobacter Arcobacter es un patógeno potencial de transmisión alimentaria y por  vía hídrica (41, 57-59). Además, las especies de Arcobacter han sido definidas  como agentes de potencial zoonótico debido a su rol patogénico en humanos y  animales (20, 60).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Arcobacter spp. es  frecuentemente aislado en muestras de origen animal, tales como pollo, cerdo,  res y ovejas, la mayor incidencia se encuentra en pollos, seguido de cerdos y  luego res (20). La alta prevalencia de Arcobacter en los tractos intestinales y  muestras fecales de los animales de granja y en muchos productos de carne apoya  la hipótesis de que los alimentos son una de sus principales rutas de  transmisión (33), planteando que el mal manejo de los alimentos crudos o el  consumo de alimentos mal cocidos contaminados de origen animal como carne,  leche, mariscos o comida marina son la vía más probable de transmisión de  Arcobacter (3, 23).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Por otro lado, el agua tiene un  rol importante en la transmisión de las especies de Arcobacter, tanto para los  animales como para los humanos. Se ha estimado que cerca del 63% de las  infecciones en humanos se debe al consumo o contacto con agua contaminada (20,  34, 60). Esta bacteria también ha sido recuperada de muestras de aguas  ambientales como ríos, lagos, aguas subterráneas y aguas marinas, así como en  plankton (47).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Una ruta adicional de  transmisión que ha sido planteada para esta bacteria es el contacto cercano con  mascotas como perros y gatos, o con sus heces (17, 33, 47, 51, 55). Se ha  demostrado transmisión trasplacentaria de Arcobacter spp. en cerdas preñadas,  así como transmisión horizontal o postnatal de las crías por parte de sus  madres, de otros recién nacidos o del ambiente (20).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La transmisión se ve favorecida  por características propias de la bacteria que la hacen resistente a ambientes  adversos, incluyendo su tolerancia a altas concentraciones de hipoclorito de  sodio, a metales pesados, su capacidad de crecer a bajas temperaturas, en  ambientes secos y de adherirse a diversas superficies (61). En este sentido,  también debe tenerse en cuenta su capacidad para establecer endosimbiosis con  amebas de vida libre, las cuales, además de servirle de transporte, pueden  proteger a la bacteria de factores ambientales adversos (50).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Aislamiento y detección</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">No existe un medio ni un  procedimiento estandarizado de referencia para el aislamiento de Arcobacter (21)  y los medios ensayados para su aislamiento no son de uso cotidiano en los  laboratorios clínicos y en algunas ocasiones en los laboratorios de alimentos,  por lo que se dificulta aún más el hallazgo e identificación de esta bacteria.  Aunado a esto, el uso de antimicrobianos en los medios de aislamiento es de  vital importancia para poder aislar Arcobacter en muestras de heces, agua y  alimentos, ya que la presencia de este microorganismo raramente ocurre como la  bacteria dominante en las muestras (22).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Uno de los protocolos más  utilizados para el aislamiento de esta bacteria incluye la utilización de un  caldo de enriquecimiento suplementado con cefoperazona, anfotericina B y  teicoplanina (caldo CAT). Este paso de enriquecimiento es seguido por un  aislamiento selectivo, el cual puede realizarse por filtración pasiva en  membrana de 0,45 um colocada sobre agar sangre (21) o utilizando medios con agar  y antibióticos, tales como el agar Arcobacter y el medio semisólido de  Ellinghausen-McCullogh-Johnson-Harris.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">También se han desarrollado  varios métodos moleculares para la detección de este microorganismo, los cuales  han mejorado la sensibilidad y reducido el tiempo requerido por los métodos  convencionales para la detección de Arcobacter pero, aún no existe consenso en  los protocolos a utilizar (21). El más más utilizado es el m-PCR usando como  blanco los genes 16S o el 23S ARN ribosomal, desarrollado por Houf et al. (22).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Factores de virulencia y  patogenicidad</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La patogenicidad y los  mecanismos de virulencia de Arcobacter no han sido estudiados a profundidad y  aun no son comprendidos en su totalidad, a pesar de que varios estudios han  intentado demostrar la capacidad de adherencia, de invasión y la citotoxicicidad  de esta bacteria en varias líneas celulares (4, 20, 21).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En general, estos estudios han  encontrado que las cepas de A. butzleri mostraron un 50% (36/72) y un 100%  (78/78) de adherencia, 13% (4/30) de invasión y un 83% (133/161) citotoxicidad  (4, 20, 21, 37).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Por otro lado, en el caso de A.  cryaerophilus se ha demostrado que un 64% (14/22) de las cepas mostraron en los  cultivos celulares la capacidad de adherencia, invasión un 50% (5/10) y un 100%  (14/14) causó citotoxicidad (4, 20, 21). Esta es la especie que presenta mayor  capacidad de invasión. La virulencia de esta especie fue de las primeras que se  describió cuando se observó que las cepas investigadas inducían la acumulación  de fluidos y electrolitos en ensayos en intestino de rata y mostró invasión en  cultivos celulares en las células Hep-2 (21).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para el caso de A. skirrowi, de  19 cepas evaluadas, todas presentaron la capacidad de adherencia y ninguna la  capacidad de invadir las células. Sin embargo, un 89% (17/19) de las cepas  demostraron citotoxicidad en cultivos celulares (20).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">Resistencia a antibióticos</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La mayoría de los casos de  enteritis causada por Arcobacter son autolimitadas y no requieren de terapia  antimicrobiana, aunque la severidad y prolongación de los síntomas pueden  justificar la antibioticoterapia. Para el caso de Arcobacter no se han  estandarizado los test de susceptibilidad y se han ensayado E-test, dilución en  agar, difusión en agar por discos, métodos de microdilución en caldo (11, 47,  48, 62), los cuales han revelado que algunas cepas de A butzleri son resistentes  a la clindamicina, azitromicina, ciprofloxacina, metronidazole, carbenicillina,  a la cefoperazona, al cloranfenicol y ampicilina (11, 39, 62).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El tratamiento con  fluoroquinolonas y tetraciclina se ha propuesto para el tratamiento de las  infecciones por Arcobacter tanto en animales como en humanos (48) ya que estos  presentan una buena actividad contra las cepas de Arcobacter (47, 48).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">CONCLUSIONES</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">A pesar de que Arcobacter sp.  no es el microorganismo de mayor importancia para la salud pública ni cuente con  la importancia que se le brinda a otros enteropatógenos de transmisión  alimentaria, el incremento en los datos de prevalencia e incidencia de casos y  el aumento de reportes e investigaciones sugiere que la infección en humanos y  animales ha sido subestimada, debido a la carencia de un protocolo estándar para  el aislamiento primario de este organismo y al uso de correctos métodos y  técnicas de identificación.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La tendencia en el incremento  en el hallazgo de Arcobacter en alimentos derivados de animales y en muestras  tomadas durante el proceso de producción de alimentos, hace que aumente la  preocupación en materia de salud pública, ya que aún se conoce muy poco del  potencial patogénico de las especies de Arcobacter y los pocos estudios que se  han llevado a cabo, muestran una gran cantidad de especies hospederas y muchas  rutas distintas de transmisión.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Es necesario el desarrollo de  métodos y protocolos de aislamiento e identificación para Arcobacter, uniformes  eficientes, robustos y fáciles de implementar. La utilización de métodos  moleculares, se plantea como una opción de alta sensibilidad y especificidad  para la identificación de Arcobacter en diferentes matrices.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En Costa Rica, ya se ha  reportado la presencia de Arcobacter en carne de pollo, pero aún se desconoce la  prevalencia, tanto en pollo como en otros alimentos de origen animal, al igual  que en agua de consumo, mataderos, animales y en humanos sanos y sintomáticos,  etc. Es evidente la creciente importancia de esta bacteria en la salud pública,  no obstante, aún hay mucha investigación que realizar al respecto.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">AGRADECIMIENTOS</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se agradece el financiamiento  recibido a través de los proyectos 803 B1 039, Vicerrectoría de Investigación,  Universidad de Costa Rica y Foncecyt 1110202</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">REFERENCIAS</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. Kershenobich D. Enfermedades  Emergentes. El ejercicio actual de la Medicina. UNAM. 2008.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=523211&pid=S0004-0622201300020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2. Vandamme P &amp; De Ley J. Proposal for a New Family, Campylobacteraceae. Int. J. System. Bacteriol. 1991;  41: 451-455.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=523212&pid=S0004-0622201300020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3. Collado L, Guarro J &amp;  Figueras M. Prevalence of Arcobacter in meat and shellfish. J. Food Prot. 2009.  72: 1102-1106.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=523213&pid=S0004-0622201300020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">4. Shah A.A, Saleha Z, Zunita M  &amp; Murugaiyah M. Arcobacter an emerging threat to animals and animal origin food  products?. Trends Food Sci. Technol. 2011. 22: 225-236.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=523214&pid=S0004-0622201300020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">5. Ellis W, Neill S, O`Brien J,  Ferguson H &amp; Hanna J. Isolation of Spirillum/Vibrio-like organisms from bovine  fetuses. Vet. Record. 1977. 100: 451-452.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=523215&pid=S0004-0622201300020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">6. Ellis W, Neill S, O`BrianJ &amp;  Hanna J. Isolation of Spirillum like organism from pig fetuses. Vet. Record.  1978. 102: 106.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=523216&pid=S0004-0622201300020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">7. Neill S, Campbell J, O`Brian  J, Weatherup S &amp; Ellis W. Taxonomic position of Campylobacter cryoaerophila  species nov. Int. J. System. Bacteriol. 1985. 35: 342-356.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=523217&pid=S0004-0622201300020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">8. Neill S, Ellis W &amp; O`Brian.  J. Designation of aerotolerant Campylobacter like organism from porcine and  bovine abortion to the genus Campylobacter. Research Vet. Sci. 1979. 27:  180-186.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=523218&pid=S0004-0622201300020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">9. Vandamme P, Vancanneyt M,  Pot B, Mels L, Hoste B, Dewettinck D, Vlaes L, Van den Borre C, Higgins R, &amp;  Hommez J. Polyphasic taxonomic study of the emended genus Arcobacter butzleri  comb. nov. and Arcobacter skirrowii sp. nov., an aerotolerant bacterium isolated  from veterinary specimens. Int. J. System. Bacteriol. 1992. 42: 344-356.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">10. McClung C, Patriquin D&amp;Davis  R. Campylobacter nitrofigilis sp. nov, a nitrogen-fixing bacterium associated  with roots of Spartina alterniflora Loisel. Int. J. System. Bacteriol. 1983. 33:  605-612.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">11. Houf K, On S, Coenye T,  Mast J, Van Hoof J&amp; Vandamme P. Arcobacter cibarius sp. nov isolated from  broiler carcasses. Int. J. System. Evol. Microbiol. 2005. 55: 713-717.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">12. Donachie S, BowmanJ, On S &amp;  Alam M. Arcobacter halophilus sp. nov., the first obligate halophile in the  genus Arcobacter. Int. J. System. Evol. Microbiol. 2005. 55: 1271-1277.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">13. Figueras M, Collado,  Levican A, Perez J, Solsona M &amp; Yustes C. Arcobacter molluscorum sp. nov., New  species isolated from shellfish. Int. J. System. Evol. Microbiol. 2011. 34:  105-109.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">14. Collado L, Levican A, Perez  J, &amp; Figueras M. Arcobacter defluvii sp. nov., isolated from sewage. Int. J.  System. Evol. Microbiol. 2010. 61; 2155-2161.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">15. Kim H, Hwang C, &amp; Cho B.  Arcobacter marinus sp. nov., Int. J. System. Evol. Microbiol. 2010. 60: 2172-  2178.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">16. De Smet, S, Vandamme P, De  Zutter L, On SL, Douidah L, Houf K. Arcobacter trophiarum sp. nov., isolated  from fattening pigs. Int. J. System. Evol. Microbiol. 2011. 61: 356-361.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">17. Houf K, On S, Coenye T,  Debruyne L, De Smet S&amp; Vandamme P. Arcobacter thereius sp. nov., isolated from  pigs and ducks. Int. J. System. Evol. Microbiol. 2009. 59: 2599-2604.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">18. Levican A, Collado L,  Aguilar C, Yustes C, Dièguez A, &amp; Romalde J, Figueras MJ. Arcobacter bivalviorum  sp. nov. and Arcobacter veneriupis sp. nov., new species isolated from shellfish.  System. Appl. Microbiol. 2012. 35: 133-138.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">19. Wirsen C, Siever, S,  Cavanaugh C, Molyneaux S, Ahmad A, &amp; Taylor L. Characterization of an  autotrophic sulfide-oxidizing marine Arcobacter species that produces  filamentous sulfur. Appl. Environm. Microbiol. 2002. 68: 316 -325.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">20. Ho H, Lipman L&amp; Gaastra W.  Arcobacter, what is known and unknown about a potential foodborne zoonotic agent!.  Vet. Microbiol. 2006. 115: 1-13.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">21. Collado L &amp; Figueras M.  Taxonomy, epidemiology and clinical relevance of the genus Arcobacter. Clin.  Microbiol. Rev. 2011. 24: 174–192.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">22. Houf K, Devriese L, De  Zutter L, Van Hoof J, &amp; Vandamme P. Susceptibility of Arcobacter butzleri,  Arcobacter cryaerophilus, and Arcobacte skirrowii to Antimicrobial Agents Used  in Selective Media. J. Clin. Microbiol. 2001. 39: 1654–1656.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">23. Van Driessche E., Houf K,  Van Hoof J, De Zutter L, &amp; Vandamme, P. Isolation of Arcobacter species from  animal feces. FEMS Microbiology Letters.2003. 229: 243-248.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">24. Vindigni S, Srijan  Wongstitwilairoon, B, Marcus R, Meek J, Riley P, &amp; Mason C. Prevalence of  foodborne microorganisms in retail foods in Thailand. Foodborne Path Dis. 2007.  4: 208-215.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">25. Scullion R, Harrington S, &amp;  Madden R. Prevalence of Arcobacter spp. in raw and retrial raw milk and retail  meats in Northen Ireland. J. Food Prot. 2006. 69: 1986-1990.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">26. Aydin F, Gumussoy S, Atabay  H, Ica T &amp; Abay S. Prevalence and distribution of Arcobacter species in Turkey  and molecular analysis of isolated strains by ERIC-PCR. J. Appl. Microbiol.  2007. 103: 27-35.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">27. Villaruel-Lopez A,  Márquez-González M, Garay-Martínez L, Zepeda H, Castillo A, Mota de la Garza L,  Murano E, &amp; Torres-Vitela R. Isolation of Arcobacter spp. from retail meats and  cytotoxic effects of isolates against vero cells. J. Food Prot. 2003. 66:  1374-1378.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">28. Golla S, Murano E, Johnson  L, Tipton N, Cureington E, &amp; Savell J. Determination of the occurrence of  Arcobacter butzleri in beef and dairy cattle from Texas by various isolation  methods. J. Food Prot. 2002. 65: 1849-1853.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">29. De Boer E, Tilburg J,  Woodward D, Lior H, &amp; Johnson M. A selective medium for the isolation of  Arcobacter from meats. Lett. Appl. Microbiol. 1996. 23: 64-66.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">30. Arias M, Cid A, &amp; Fernández  H. Arcobacter butzleri: First isolation report from chicken carcasses in Costa  Rica. Braz. J. Microbiol. 2011. 42: 703-706.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">31. Wesley I, &amp; Miller G.  Arcobacter an opportunistic human food-borne pathogen?, In: Scheld, W.M.,  Grayson, M.L., Hughes, J.M., editors. Emerging Infections 9. Washington, DC:  American Society for Microbiology Press. 2010. p. 185-211.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">32. Samie A, Obi C, Barrett ,  Powell S, &amp; Guerrant, R. Prevalence of Campylobacter species, Helicobacter  pylori and Arcobacter species in stool samples from the Venda region, Limpopo,  South Africa: Studies using molecular diagnostic methods. J. Infectol. 2007. 54:  558-566. 81.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">33. Patyal A, Rathore R, Mohan  H, Dhama K, &amp; Kumar A. Prevalence of Arcobacter spp. in humans, animals and  foods of animal origin including sea food from India. Transbound. Emerg. Dis.  2011. 58: 402-410.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">34. Kielbauch J, Plikaytis B,  Swaminathan B, Cameron D, &amp; Wachsmuth I. Restriction fragment length  polymorphisms in the ribosomal genes for species identification and subtyping of  aerotolerant Campylobacter species. J. Clin. Microbiol. 1991. 29: 1670-1676.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">35. Snelling W, Matsuda M,  Moore J, &amp; Dooley J. Under the microscope: Arcobacter. Lett. Appl. Microbiol.  2006. 42: 7-14. 82</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">36. Bucker R, Troeger H, Kleer  J, Fromm M, &amp; Schulzke J. Arcobacter butzleri induces barrier dysfunction in  intestinal Ht-29/B6 cells. J. Infect. Dis.2009. 200: 756- 764.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">37. Fernández H, Flores S, &amp;  Inzunza F. Arcobacter butzleri strains isolated from different sources display  adhesive capacity to epithelial cells in vitro. Acta Scientiae Veterinariae.  2010. 38: 283-287.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">38. Yan J, Ko W, Huang A, Chen  H, Jin Y, &amp; Wu J. Arcobacter butzleri bacteremia in a patient with liver  cirrhosis. J. Formosan Med Ass. 2000. 99: 166-169.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">39. Teague N, Srijan A,  Boonchai W, Poramathikul K, Champathai T, &amp; Supaporn R. Enteric pathogen  sampling of tourist restaurants in Bangkok, Thailand. J. Travel Med. 2010. 17:  118-123.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">40. Jiang Z, DuPont H, Brown E,  Nandy R, Ramamurthy T, &amp; Sinha A. microbial etiology of traveller´s diahrrea in  Mexico, Guatemala, and India: importance of enterotoxigenic Bacteriodes fragilis  and Arcobacter species. J. Clin. Microbiol. 2010. 1417-1419.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">41. Lehner A, Brumberger V, &amp;  Preac-Mursic V. Severe diarrhea associated with Arcobacter butzleri. Europ.  J.Clin. Microbiol. Infect. Dis. 1994. 13: 660-662.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">42. Houf K, &amp; Stephan R.  Isolation and characterization of the emerging foodborne pathogen Arcobacter  from human stool. J. Microbiol. Meth. 2007. 68: 408-413.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">43. Kabeya H, Maruyama S,  Morita Y, Ohsuga T, Ozawa S, Kobayashi Y, Abe M,Katsube Y, &amp; Mikami T.  Prevalence of Arcobacter species in retail meats and antimicrobial  susceptibility of the isolates in Japan. Int. J. Food Microbiol. 2004. 90:  303-308.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">44. Debruyne L, Houf K, Douidah  L, De Smet S, &amp; Vandamme P. Reassessment of the taxonomy of Arcobacter  cryaerophilus. System. Appl. Microbiol. 2010. 33: 1-14.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">45. Douidah L, De Zutter L,  Vandamme P&amp; Houf K. Identification of five human and mammal associated  Arcobacter species by novel Multiplex-PCR assay. J. Microbiol. Meth. 2010. 80:  281-286.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">46. Figueras M, Levican A,  Collado L, Inza I&amp; Yustes C. Arcobacter ellisii sp. nov. isolated from mussels.  System. Appl. Microbiol. 2011. 34: 414-418.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">47. Fera M, Maugueri T,  Gugliandolo C, La Camera E, Lentini V, Favaloro A, Bonanno D, &amp; Carbone, M.  Induction and resuscitation of viable nonculturable Arcobacter butzleri cells.  Appl. Environm. Microbiol. 2008. 74: 3266-3268.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">48. Vandenberg O, Dediste A,  Houf K, Ibekwem S, Souavah H, Cadranel S. Douat N, Zissis G, Butzler JP, &amp;  Vandamme P. Arcobacter species in Humans. Emerg. Infect. Dis. 2004. 10:  1863-1867. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">49. Fera M, La Camera E,  Carbone H, Malara D, &amp; Pennisi, M. Pet cats as carriers of Arcobacter spp. in  Southern Italy. J. Appl. Microbiol. 2009. 3266-3268.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">50. Fernández H, Villanueva M &amp;  Medina G. Endosimbiosis de Arcobacter butzleri en Acanthamoeba castellanii. Rev.  Arg. Microbiol.2012. 44: 133.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">51. Vandamme P, Pugina P, Benzi  G, Van Etterijck R. Vlaes L, Kerster, K, Butzler J, Lior H, &amp; Lauwers S.  Outbreak of recurrent abdominal cramps 84 associated with Arcobacter butzleri in  an Italian School. J. Microbiol. 1992. 30: 2335-2337.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">52. Fera M, Russo G, Di  Benedetto A, La Camera E, Orlando A, Anna O, Giandalia A, Ruffa V, Lanza G,  Lentini V, Perdichizzi G, &amp; Cucinotta D. High prevalence or Arcobacter carriage  in older subjects with Diabetes type II. J. Biomedic. Biotech . 2010. 69: 1-7.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">53. Wesley I, Schroeder-Tucker  L, &amp; Franklin, S. Recovery of Arcobacter species from exotic animal species.  Int. J. Med. Microbiol. 2003. 293-305.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">54. Hamir A, Sonn R, Franklinn  S, &amp; Wesley I. Campylobacter jejuni and Arcobacter species associated with  intussusception in a raccoon (Pocyon lotor). Vet. Records. 2004. 155: 338-340.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">55. Fernández H, Vera,, F, &amp;  Villanueva MP. Arcobacter and Campylobacter species in birds and mammals from  southern Chile. Arch. Med. Vet. 2007. 39: 163- 165.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">56. Van Driessche E., Houf K.,  Vangroenweghe F, De Zutter L, &amp; Van Hoof. Prevalence, enumeration and strain  variation of Arcobacter species in faeces of healthy cattle in Belgium. Vet.  Microbiol. 2005. 105: 149-154.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">57. González A, &amp; Ferrus M.  Study of Arcobacter spp. contamination in fresh lettuces detected by different  cultural and molecular methods. Int. J. Food Microbiol. 2010. 145: 311-314.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">58. Gugliandolo C, Irrera G,  Lentini V&amp; Maugueri T. Pathogenic Vibrio, Aeromonas and Arcobacter spp.  associated with copepods in the straits of Messina (Italy). Marine Pollution  Bull. 2008. 580-606.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">59. Miller W, Wesley I, On S,  Houf,W, Megraud F, &amp; Wang G. First multi-locus sequence typing scheme for  Arcobacter spp. BMC Microbiol. 2009. 9: 196-197.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">60. Cardoen S, Van Huffel X,  Berkvens D, Quoilin S, Ducoffre G, Saegerman C, Speybroeck N, Imberechts H,  Herman L, Ducatelle R &amp; Dierick, K. Evidence based semi-quantitative methodology  for priorization of foodborne zoonosis. Foodborne Pathogens and Disease. 2009.  6: 1-13.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">61. Cervenka, L. Survival and  Inactivation of Arcobacter spp., a current status and future prospect. Crit.  Rev. Microbiol. 2007. 33: 101-108.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">62. Otth L, Wilson M, Cancino  R&amp; Fernández H. In vitro susceptibility of Arcobacter butzleri to six  antimicrobial drugs. Arch. Med. Vet. 2004. 36: 207-210.</font></p>       ]]></body>
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