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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: To determine seropositivity for Toxoplasma gondii and Trypanosoma cruzi in pregnant women. Methods: A cross-sectional analytical study was conducted at 678 pregnant women. ELISA was used for the detection of anti-Toxoplasma antibodies IgM, IgG and IgG avidity. For T. cruzi IgG ELISA was performed and Indirect Hemagglutination Test. Setting: Prenatal care at the Hospital Universitario de Caracas. Results: The highest number of patients was located in the age group 16 to 20 years, 42 % was in her first pregnancy, 25 % the second and 33 % had 3 or more. The 39 % was in the first trimester, 43 % in the second and 18 % in the third. The screening for T. cruzi showed no reactive person. Toxoplasmic infection was presented by IgG ELISA in 38 % of pregnant women of which 10 might be due to recent infections by having a positive IgM or low avidity of specific antibodies, 8 of them were in the first or second trimester of pregnancy. A second serology in 54 women did not show seroconversion. Conclusions: Toxoplasmosis seropositivity was high and detected some pregnant women with recent infection in the first two quarters, when there is risk of congenital malformations. The combination of these techniques in Toxoplasmosis can estimate time of evolution and its application in prenatal consultations would detect recent infections. It is equally important to emphasize the obligation of the diagnosis of Chagas’ disease which can be transmitted to the fetus and also because Venezuela is an endemic country.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font COLOR="#221e1f" face="Verdana">     <p align="center"><b>Despistaje de toxoplasmosis y enfermedad de Chagas en la  Consulta Prenatal del Hospital Universitario de Caracas </b></p> </font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f" face="Verdana">     <p align="center"><b>Drs. Belkisyolé Alarcón de Noya*, Johanna Romero**, Elearé  Sánchez**, Jesús Lugo**, Raquel Salinas**, Laura Ortiz**, Mariana Pacheco**,  Zoraida Díaz-Bello*, Luciano Mauriello*, Magdalena Soto*, María Pilar Díaz*,  José Alfonso López-Mora***</b></font></p> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f" face="Verdana"><b>     <p ALIGN="justify">TRABAJOS ORIGINALES </p> </b>     <p ALIGN="JUSTIFY">* Sección de Inmunología. Instituto de Medicina Tropical.  Facultad de Medicina. Universidad Central de Venezuela. Caracas-Venezuela</p>     <p ALIGN="JUSTIFY">** Escuela de Medicina &quot;Luis Razetti&quot;, Facultad de Medicina,  Universidad Central de Venezuela. Caracas-Venezuela</p>     <p ALIGN="JUSTIFY">*** Servicio de Obstetricia, Hospital Universitario de  Caracas. Caracas-Venezuela</p>     <p align="justify">Trabajo subvencionado por la Sección de Inmunología del  Instituto de Medicina Tropical. Presentado en el XVIII Congreso de la Federación  Latinoamericana de Parasitología, Porlamar, Nueva Esparta, 2007.</p> </font><i></i><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">     <p ALIGN="justify"><b><font face="Verdana">RESUMEN</font></b></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana"><b>Objetivo</b>: Determinar  seropositividad para Toxoplasma gondii y Trypanosoma cruzi en embarazadas,</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana"><b>Métodos</b>: Estudio analítico  transversal realizado en 678 gestantes. Para la detección de anticuerpos anti-Toxoplasma  se utilizó ELISA para la captura de IgM, IgG y avidez de IgG. Para T. cruzi se  realizó ELISA IgG y hemaglutinación indirecta.</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana"><b>Ambiente</b>: Consulta Prenatal del  Hospital Universitario de Caracas. </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana"><b>Resultados</b>: El mayor número de  pacientes se ubicó en el grupo etario 16 - 20 años, 42 % cursaba su primer  embarazo, 25 % el segundo y 33 % tenía 3 o más. El 39 % se encontraba en el  primer trimestre del embarazo, 43 % en el segundo y 18 % en el tercero. El  despistaje para T. cruzi no mostró ninguna persona reactiva. Se presentó  infección toxoplásmica por ELISA IgG en 38 % de las embarazadas de las cuales 10  pudieran corresponder a infecciones recientes por tener IgM positiva o baja  avidez de </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f"> anticuerpos específicos, 8 de ellas se encontraban en el primero o segundo  trimestre del embarazo. Una </font><font COLOR="#221e1f" size="2"> <font face="Verdana">segunda serología en 54 mujeres no reveló seroconversión.</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b><font face="Verdana">Conclusiones</font></b><font face="Verdana">:  La seropositividad para toxoplasmosis fue alta y detectó algunas embarazadas con  infección reciente encontrándose la mayoría en los dos primeros trimestres,  cuando hay riesgo de malformaciones congénitas. La combinación de estas técnicas  en toxoplasmosis permite estimar tiempo de evolución y su aplicación en  consultas prenatales permitiría detectar infecciones recientes para tratamiento  oportuno. Es igualmente importante insistir en la obligatoriedad del diagnóstico  de enfermedad de Chagas por ser transmisible al feto y encontrarse Venezuela  entre los países endémicos. </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana"><b>Palabras clave</b>: Toxoplasma gondii.  Toxoplasmosis. Enfermedad de Chagas. Embarazadas. Diagnóstico. Venezuela.</font></p>     <p ALIGN="justify"><b><font face="Verdana">SUMMARY</font></b></p> <u>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b><font face="Verdana">Objective</font></b></u><font face="Verdana">:  To determine seropositivity for Toxoplasma gondii and Trypanosoma cruzi in  pregnant women. <u>Methods</u>: A cross-sectional analytical study was conducted  at 678 pregnant women. ELISA was used for the detection of anti-Toxoplasma  antibodies IgM, IgG and IgG avidity. For T. cruzi IgG ELISA was performed and  Indirect Hemagglutination Test. <u>Setting: </u>Prenatal care at the Hospital  Universitario de Caracas. </font></p> <u>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b><font face="Verdana">Results</font></b></u></font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">:  The highest number of patients was located in the age group 16 to 20 years, 42 %  was in her first pregnancy, 25 % the second and 33 % had 3 or more. The 39 % was  in the first trimester, 43 % in the second and 18 % in the third. The screening  for T. cruzi showed no reactive person. Toxoplasmic infection was presented by  IgG ELISA in 38 % of pregnant women of which 10 might be due to recent  infections by having a positive IgM or low avidity of specific antibodies, 8 of  them were in the first or second trimester of pregnancy. A second serology in 54  women </font><font COLOR="#221e1f" size="2"><font face="Verdana">did not show  seroconversion.</font></p> <u>     <p ALIGN="JUSTIFY"><b><font face="Verdana">Conclusions</font></b></u></font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">:  Toxoplasmosis seropositivity was high and detected some pregnant women with  recent infection in the first </font><font COLOR="#221e1f" size="2"> <font face="Verdana">two quarters, when there is risk of congenital  malformations. The combination of these techniques in Toxoplasmosis can estimate  time of evolution and its application in prenatal consultations would detect  recent infections. It is equally important to emphasize the obligation of the  diagnosis of Chagas’ disease which can be transmitted to the fetus and also  because Venezuela is an endemic country.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b>Key words</b>: Toxoplasma gondii.  Toxoplasmosis. Chagas´disease. Pregnancy. Diagnosis. Venezuela.</font></p> </font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f" face="Verdana"><b>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY">INTRODUCCIÓN</p> </b>     <p ALIGN="JUSTIFY">La toxoplasmosis es una zoonosis de amplia distribución  mundial (1). La infección humana es frecuente, pero pocas veces produce  síntomas, sin embargo, con el aumento de la población de inmunodeprimidos y su  asociación con el VIH, han aparecido cuadros clínicos graves (2). Los mecanismos  más frecuentes de infección toxoplásmica en el hombre son por comer carne cruda  o poco cocida que contiene el parásito en su forma de bradizoitos, por la  ingestión de ooquistes presentes en el excremento del gato o por vía  transplacentaria durante la fase aguda de la madre. </p>     <p ALIGN="JUSTIFY">Cuando una embarazada contrae toxoplasmosis, existe 40 % de  probabilidad de que transmita la infección al feto. Sin embargo, el riesgo y la  gravedad de la infección del bebé dependen del trimestre del embarazo en el cual  la madre contrae la infección. Cuanto más cerca del comienzo del embarazo ocurra  la infección, más graves son las consecuencias en el feto traducido en afección  ocular o al SNC (3).</p>     <p ALIGN="JUSTIFY">Generalmente la infección toxoplásmica aguda del adulto  inmuno-competente es asintomática y el riesgo de infección fetal no se  correlaciona con los síntomas maternos, por lo que resulta mandatorio que en  toda embarazada se investigue la presencia de anticuerpos séricos anti-toxoplasma,  IgM e IgG, preferentemente antes de las 8 semanas de gestación. Si las IgG e IgM  son negativas, la embarazada está expuesta a la infección aguda y se le debe  instruir para prevenirla, además de realizar controles serológicos mensuales.  Cuando los estudios serológicos detectan anticuerpos anti-toxoplasma, interesa  estimar si adquirió la infección aguda antes o después de la concepción.  Diversos estudios de seroprevalencia en poblaciones aparentemente sanas arrojan  resultados entre 30 % y 60 % de infección toxoplásmica (1). En estudios previos  en gestantes en Venezuela, se encontró que la frecuencia de enfermedad crónica  varió de 38 % a 62</font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#ffffff">.</font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f" face="Verdana">%  y la infección reciente fue alrededor de 1 % (4-6).</p>     <p ALIGN="JUSTIFY">La enfermedad de Chagas (ECh) es una infección exclusiva del  Continente Americano y frecuente en Latinoamérica. La Organización Mundial de la  Salud estima que en la región hay 40 millones de personas expuestas al riesgo de  contraer la enfermedad y que en al menos 8 países de esta región 16 a 18  millones de personas pueden estar infectadas (7). El mecanismo de infección es  principalmente la transmisión vectorial a través de triatominos, comúnmente  llamados chipos, los cuales pican y defecan simultáneamente causando la  contaminación de la picadura o las mucosas del individuo favoreciendo la entrada  del agente causal. Otras formas de infección ocurren por transfusiones y  trasplantes, congénita y por ingestión de alimentos contaminados por las heces  del vector. La infección aguda ocurre en un grupo muy limitado de personas y la  gran mayoría de los infectados pasan a la fase crónica de manera desapercibida.  En Venezuela el despistaje de la ECh es obligatorio en Bancos de Sangre pero no  en embarazadas. Cifras del Ministerio de Salud en su Anuario de Mortalidad,  señalan que para el año 2004 se registraron 716 defunciones por ECh (B57),  correspondiendo 321 al sexo femenino de las cuales 16 ocurrieron en mujeres en  edad fértil (12 - 44 años de edad) (8).</p>     <p ALIGN="JUSTIFY">Actualmente, la toxoplasmosis y la ECh son dos patologías que  a pesar de requerir la presencia de factores específicos de riesgo, no tienen  distingo entre sexo, edad o condición. Un grupo especialmente susceptible es el  de las embarazadas, debido a que estas infecciones no solamente las afectan a  ellas, sino que pueden tener repercusión sobre sus hijos cuando ocurre la  transmisión transplacentaria. El presente trabajo tiene como objetivo determinar  la seroprevalencia de anticuerpos contra <i>Trypanosoma cruzi y Toxoplasma  gondii</i>, en las gestantes que acuden a la consulta prenatal del Hospital  Universitario de Caracas concientizándolas sobre la necesidad de un nuevo examen  en caso de resultar negativas a toxoplasmosis y de igual manera concientizar a  las autoridades médicas para realizar despistaje de manera obligatoria, de estas  dos patologías parasitarias en el embarazo a fin de prevenir la transmisión  vertical. </p> <b>     <p ALIGN="JUSTIFY">MÉTODOS </p> </b>     <p align="justify">El presente es un estudio prospectivo en el cual se  seleccionó como área de trabajo, la consulta pre-natal del Ambulatorio Docente  del Hospital Universitario de Caracas, en el lapso comprendido entre junio 2006  y junio 2007. Se realizó una charla informativa a cada grupo de participantes,  aclarando dudas y explicando el motivo y pertinencia del estudio. Se estimuló la  participación de las primigestas pero no se excluyó a nadie que deseara  participar, sin distinción de edad ni período gestacional. Se elaboraron fichas  de entrada y registro de consentimientos previa información por cada embarazada  luego de lo cual se tomó una muestra sanguínea para la obtención del suero. Se  enfatizó sobre la conveniencia de solicitar los resultados en las consultas de  control y de continuar con el seguimiento en caso de resultado negativo en  toxoplasmosis. </p> <b>     <p ALIGN="JUSTIFY">Muestras biológicas</p> </b>     <p ALIGN="JUSTIFY">De cada embarazada se obtuvo una muestra sanguínea de 5 mL de  sangre por punción venosa. Las muestras fueron centrifugadas a 1 000 x g por 20  minutos a 4° C y el suero repartido en dos alícuotas para su inmediato  procesamiento. A todas las muestras se les practicó ELISA-Ig G para despistaje  de ECh y ELISA IgG, ELISA IgG- Avidez y ELISA IgM para el despistaje de  toxoplasmosis. Se tomó una segunda muestra sanguínea y se procesó de igual  forma, en las embarazadas que atendieron la recomendación de nueva serología en  caso de negatividad para toxoplasmosis.</p> <b>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY">Antígenos</p> </b>     <p ALIGN="JUSTIFY">Para los ensayos de toxoplasmosis se utilizó una suspensión  de taquizoitos, producto de la infección intraperitoneal de ratones, que luego  de ser lavados y ultracentrifugados se extrajo el sobrenadante para ser  utilizado como antígeno soluble en todas las pruebas de diagnóstico (9,10). Para  el despistaje de la ECh se utilizó un extracto total de epimastigotes de <i>T.  cruzi </i>deslipidizado y liofilizado (11). </p> </font><b><font SIZE="2" COLOR="#221e1f" face="Verdana">     <p ALIGN="JUSTIFY">ELISA-IgG y ELISA-IgM anti-<i>T. gondii</i>.</p> </font></b><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">     <p ALIGN="JUSTIFY">El ELISA-IgG se realizó según el método modificado de Voller  y col. (12). Se utilizaron placas de poliestireno Maxi Sorp (NUNC), las cuales  fueron sensibilizadas con el antígeno toxoplasmósico (2,5 &#956;g de proteínas/pozo).  Se agregó por duplicado 100 &#956;L de los sueros, diluidos 1/100 y se incubaron a  37° C por 20 minutos. Las placas se lavaron 3 veces con PBS-Tween 20 al 0,05 %.  Se agregó 100 &#956;L de anti-IgG humano conjugado a fosfatasa alcalina, diluido  1/500 y las placas se incubaron a 37° C por 20 minutos. Se repitió el mismo  esquema de lavado. Se agregó 100 &#956;l del substrato p-nitrofenil fosfato, diluido  en buffer dietanolamina, pH 10 (1 mg/mL). Se incubó a 37° C por 15 minutos. Para  detener la reacción se agregó 100&#956;l de NaOH (1N) y se leyó a 405 nm. El punto de  corte se fijó en 0,200 de densidad óptica (D.O), como resultado del promedio de  la D.O. (± 2 D.S.) de 100 sueros de pacientes con resultados de ELISA-Ig-polivalente,  ELISA-IgG, y ELISA-IgM negativos. Para la detección de IgM, la técnica fue  similar solo que se utilizó un conjugado anti-IgM de fosfatasa alcalina. </p> </font><b><font SIZE="2" COLOR="#221e1f" face="Verdana">     <p ALIGN="JUSTIFY">ELISA-Avidez de la IgG anti-<i>T. gondii</p> </i></font></b><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">     <p ALIGN="JUSTIFY">El ELISA-IgG se realizó según los métodos modificados de  Camargo y col. (13) y Maekelt y col. (14). Se utilizaron placas de poliestireno  Maxi Sorp (NUNC), las cuales fueron sensibilizadas con un antígeno  toxoplasmósico (2,5 &#956;g de proteínas/pozo). Se agregó por duplicado 100 &#956;l de los  sueros, diluidos 1/100 y se incubaron a 37° C/20’. Un pozo de cada duplicado se  lavó con PBS-Tween 20 al 0,05</font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#ffffff">.</font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">%.  El otro pozo se lavó con urea (6M), disuelta en PBS-Tween 20 al 0,05 % tres  veces por 5 min cada vez. El último lavado se realizó con PBS-Tween- 20 al 0,05  % para ambos pozos. Se agregó 100 &#956;L del antisuero humano IgG, conjugado a  fosfatasa alcalina, diluido 1/500 y se incuba a 37° C/20 min. Luego se lavó con  PB S-Tween 20 al 0,05 % y se añadió 100 &#956;L de substrato p-nitrofenil fosfato,  diluido en buffer dietanolamina, pH 10 (1 mg/mL). Se incubó a 37° C/15 min y la  reacción se detuvo con 100 &#956;L de NaOH (IN). Se realizó la lectura a 405 nm en un  lector TECAN Modelo spectra.</p> </font><b><font SIZE="2" COLOR="#221e1f" face="Verdana">     <p ALIGN="JUSTIFY">ELISA IgG anti-<i>T. cruzi </p> </i></font></b><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">     <p ALIGN="JUSTIFY">Se utilizó como antígeno el extracto total de epimastigotes  concentrado a 0,67 mg/m, siguiendo en general, la técnica de Voller y col.  descrita arriba (12). Los ajustes fueron los siguientes: el antígeno se fijó a  placas Immulon II (Dynatech) a la concentración de 10 &#956;g/mL en solución fosfato  salino (PBS) de pH 7,2 durante toda la noche a 4° C. Los sueros fueron diluidos  1:100 en PBS-leche descremada al 5 % Tween 20 al 0,05 % y la anti IgG humana  conjugada a fosfatasa alcalina (Sigma Chemical) fue diluida 1:1000. La reacción  fue revelada con el substrato para-nitrofenilfosfato en Buffer dietanolamida pH  10 y leida la placa a 405 nm en lector de ELISA (Spectra Classic, Tecan) (11).</p> <b>     <p ALIGN="JUSTIFY">Otras consideraciones </p> </b>     <p ALIGN="JUSTIFY">Cada resultado fue colocado en las historias clínicas de las  pacientes del Servicio de Obstetricia con el fin de entregarles los resultados y  dar las instru cciones individualmente.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">A toda persona negativa a toxoplasmosis se le indicó la  conveniencia de nueva serología en las próximas consultas con el mismo grupo de  trabajo, además que expresamente se le escribió en el reporte escrito entregado.  El despistaje de ECh se realizó una sola vez. El protocolo de trabajo de la  presente investigación fue aprobado por el Comité de Ética del Hospital  Universitario de Caracas. Los registros de las pacientes tienen en anexo, el  Consentimiento previa información firmado por cada participante en el estudio. </p> <b>     <p ALIGN="JUSTIFY">RESULTADOS</p> </b>     <p ALIGN="JUSTIFY">Se realizaron los exámenes de diagnóstico de ECh y  toxoplasmosis en 678 embarazadas siendo 61,6 % del grupo estudiado igual o menor  de 25 años y el grupo etario consultante en este período más frecuente el de  16-20 años (29,5 %) (<a href="#cua1">Cuadro 1</a>). Cursaban su primer embarazo 42 % de las  gestantes, 25 % el segundo embarazo y 33 % el tercer o más embarazos. El 40,6 %  de la población estudiada se encontraba en el primer trimestre del embarazo,  41,4 % en el segundo y 17,8 % en el tercero. No se registraron personas con  serología positiva para ECh.</p>     <p ALIGN="center"><a name="cua1"> <img border="0" src="/img/fbpe/og/v70n2/art02cua1.gif" width="461" height="260"></a></p> </font><font FACE="Verdana" COLOR="#221e1f" size="6"> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">     
<p align="justify">La seropositividad general para toxoplasmosis fue de 38 %  encontrándose presencia de anticuerpos IgG específicos para los diferentes  grupos etarios en un rango entre 18 % a 52 % de las personas, siendo el grupo de  edad de 36 a 40 años, en el cual se presentó la más alta frecuencia de  positividad para la IgG, 52 %. Cuando se determinó la avidez de IgG, ocho  personas (1,18 %) se ubicaron en el rango menor de 50 % y sólo una de ellas  presentó avidez menor de 30 %. Todas estas personas tenían menos de 30 años de  edad. La determinación de IgM fue positiva en 8 mujeres y en el <a href="#cua1">Cuadro 1</a> se  muestra su distribución de edad. El <a href="#cua2">Cuadro 2</a> muestra los resultados de los  ensayos de inmunodiagnóstico realizados en 622 embarazadas en quienes se  realizaron todas las pruebas. Solo en un caso coincidieron la avidez menor de 50  % con IgM positiva, de hecho esta embarazada presentó 26</font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#ffffff">.</font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">%  de avidez, pero el aislamiento del parásito no fue exitoso. Otras 2 embarazadas  mostraron anticuerpos específicos IgM sin anticuerpos IgG. Estas pacientes  recibieron tratamiento anti-parasitario.</font></p>     <p align="center"><a name="cua2"> <img border="0" src="/img/fbpe/og/v70n2/art02cua2.gif" width="452" height="171"></a></p> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f">     
<p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">En el <a href="#cua3">Cuadro 3</a> se ubican las 10  embarazadas con infección reciente. Cuando se analiza la información de las 622  embarazadas en quienes se realizaron todas las pruebas (<a href="#cua2">Cuadros 2</a> y  <a href="#cua3">3</a>), los  resultados pudieran agruparse e interpretarse de la siguiente manera:</font></p>     <p ALIGN="center"><a name="cua3"> <img border="0" src="/img/fbpe/og/v70n2/art02cua3.gif" width="466" height="190"></a></p> </font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">     
<p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">IgM + con IgG negativa: 2 casos de  infección muy reciente quienes se encontraban en el primer trimestre </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">IgM + con IgG &lt;50 %: 1 caso reciente en  el segundo trimestre</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">IgM + con IgG &gt;50 %: 5 casos crónicos  con persistencia de la IgM</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">IgM – con IgG &lt;50 %: 7 casos recientes  en tránsito a la fase crónica (la avidez de estas personas se encontró &gt;30 % y  &lt;50 %) y se encontraban 2 en el primer trimestre, 3 en el segundo y 2 en el  tercer trimestre </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">Ig M – con IgG &gt;50 %: 227 casos crónicos</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">Ig M – con IgG –: 380 casos negativos</font></p> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f"><b>     <p ALIGN="JUSTIFY">DISCUSIÓN</p> </b>     <p ALIGN="JUSTIFY">La toxoplasmosis es la zoonosis parasitaria más difundida en  la naturaleza. Encuestas serológicas indican una tasa de infección del 40 % a 60  % en diversos estudios alrededor del mundo (1). Las gestantes constituyen el  grupo en que el contagio con toxoplasmosis repercute en forma más notoria por el  riesgo concebido de la transmisión en forma vertical. En el presente trabajo se  observó que el contacto de la población estudiada con <i>Toxoplasma gondii </i> es alto (38 %). En muchos casos, no hay conciencia del riesgo de infección por  desconocimiento de estas patologías, como se ha demostrado para toxoplasmosis  (6). La falta de anticuerpos anti-toxoplasma en el 62 % de las embarazadas  examinadas las expone al riesgo de infección aguda en edades tempranas del  embarazo, con secuelas graves para los niños. En este grupo es cuando el  seguimiento serológico del paciente está indicado por cuanto las embarazadas se  encuentran bajo riesgo de contraer toxoplasmosis debido a los múltiples  mecanismos de infección a los cuales se podrían exponer (1,15). Las medidas de  profilaxis (charlas en consultas prenatales, panfletos </font> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><font face="Verdana">divulgativos, difusión por  medios de comunicación etc.) adquieren importancia relevante en este grupo por  cuanto la infección aguda en la embarazada puede ocasionar malformaciones en el  feto. </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">En el presente trabajo se analizan los  resultados de la combinación de tres pruebas de diagnóstico (ELISA IgG, avidez  de la IgG y ELISA IgM) para utilizarlos de orientación en la estimación del  tiempo de la infección, teniendo en cuenta que solo el </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">indicador de la IgM no es  suficiente por cuanto puede suceder que los títulos sean bajos y la prueba no  los detecte (falsos negativos) o que haya persistencia de anticuerpos IgM en la  fase crónica (falsos positivos para la fase reciente) (16-19). De hecho,  Contreras y col. (18) no encontraron diferencias significativas en la frecuencia  de positividad a la IgM en sueros crónicos vs sueros de infección reciente en  contraposición con la avidez de IgG la cual si fue significativa en estas dos  poblaciones. Aunque el porcentaje de avidez a la IgG se ha fijado en 30 % </font> <font face="Verdana"><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">(17) nosotros preferimos  ampliarlo hasta 5 % como un margen de seguridad. Utilizando esta orientación se  logra hacer diagnóstico de fase crónica en la mayoría de las embarazadas, lo  cual es una situación sin riesgo o con mínimo riesgo para el feto. En el  presente estudio, si incluimos cualquier criterio de infección reciente y  ampliamos la avidez hasta 50 % se pudiera inferir infección reciente en 10  embarazadas lo que representa 1,6</font><font SIZE="2" COLOR="#ffffff">.</font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">%  del total de la población estudiada. Manejar 10 personas en este universo de 622  para la aplicación de tratamiento anti-parasitario y seguimiento no es tarea  difícil y en </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f"> definitiva aporta mayor beneficio al binomio madre-</font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><font face="Verdana">hijo  que si dejáramos alguna sin tratamiento. Este análisis es más preocupante cuando  observamos que 8 de las 10 embarazadas cursaban el primero o segundo trimestre  del embarazo pues es conocido que la infección toxoplásmica mientras más  temprana en la gestación mayor es el riesgo de efectos adversos sobre el feto.  Hasta tanto no se desarrollen como pruebas de rutina las técnicas de biología  molecular para indicar presencia parasitaria, la serología sigue estando en la  primera línea de diagnóstico (20). </font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">El presente estudio fue gratuito, con  contacto directo con la embarazada. Sin embargo, el resultado </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">del seguimiento no satisfizo  nuestras expectativas por cuanto solo se logró realizar una segunda evaluación  en 54 personas seronegativas para toxoplasmosis (menos del 10 % de la población  estudiada), a pesar de la presencia casi diaria por un año del equipo promotor  en la consulta prenatal. Entre otros factores, la población consideraba que con  una serología que resultase negativa era suficiente para no someterse a </font> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><font face="Verdana">un nuevo control de  laboratorio. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">En el despistaje de enfermedad de  Chagas, no se encontró ninguna persona reactiva al antígeno deslipidizado de  epimastigotes de </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f"><i> Trypanosoma cruzi. </i>Sin embargo, su diagnóstico está justificado por ser </font><font face="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">Venezuela un país  endémico con focos activos para la transmisión de esta patología, más aun cuando  se ha diagnosticado un brote epidémico de transmisión oral de ECh en la ciudad  de Caracas (21). Hay desconocimiento de la efectividad de la  transmisión trasplacentaria de </font> <font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f"><i>Trypanosoma cruzi </i></font> <font SIZE="2" COLOR="#221e1f"><font face="Verdana">y esta situación se ha  convertido en un problema de salud entre la población de inmigrantes  latinoamericanos en Europa donde no hay transmisión vectorial (22).</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">En Venezuela no se hace despistaje  rutinario de estas enfermedades en las embarazadas, por lo que el aporte de este  trabajo es destacar, no solo la prevalencia existente de toxoplasmosis en este  grupo humano y el diagnóstico de la forma reciente de infección sino también  proponer ampliar la cobertura a la ECh de la cual tenemos evidencias de su  transmisión al hombre en la ciudad capital. En ambas infecciones existe el  riesgo de infección transplacentaria por lo que su despistaje debe incorporarse  de manera obligatoria, como parte de la vigilancia epidemiológica en los  programas de control de estas parasitosis para el diagnóstico precoz y  posibilidades terapéuticas tempranas durante la gestación en el caso de  toxoplasmosis y al recién nacido en el caso de ECh. La propuesta puede de hecho  ser más amplia y formalizar la Consulta Preconcepcional en la cual se evaluaría  integralmente a futuras embarazadas, enfatizando en antecedentes familiares,  personales (diabetes, hipertensión, etc.) y estudio socio-ambiental lo cual,  apoyado en un panel de multidiagnóstico simultáneo para enfermedades infecciosas  (23) adaptado a esta consulta, detectaría </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">factores de riesgo que pudiesen  influir en el desarrollo </font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f"> <font face="Verdana">de la futura gestación y pronóstico materno-fetal.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">Algunas recomendaciones se desprenden de  los resultados presentados:</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">Educación orientada a las mujeres en  edad fértil y evaluación de factores de riesgo en consulta preconcepcional y  durante el embarazo para evitar la adquisición de toxoplasmosis y enfermedad de  Chagas.</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">Realizar un programa de salud que aborde  el problema para descubrir casos durante el embarazo, mediante la realización de  pruebas serológicas a todas las embarazadas de primer trimestre que acuden al  control prenatal, complementado con entrevistas epidemiológicas para descubrir  exposición al riesgo para toxoplasmosis y enfermedad de Chagas.</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">En las embarazadas negativas para  toxoplasmosis, repetir la serología en el segundo y tercer trimestre, al menos,  para ofrecer una atención adecuada y oportuna en caso de infección.</font></p>     <p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">Formalizar la realización de las tres  pruebas de diagnóstico de toxoplasmosis estudiadas (IgG, </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">avidez de IgG e IgM) a fin de  seleccionar aquellas embarazadas con posible infección reciente y aplicarles  tratamiento anti-parasitario con seguimiento clínico y de la serología. </p> <b>     <p ALIGN="JUSTIFY">Agradecimientos: </b>Este estudio fue financiado por Ingresos  propios de la Sección de Inmunología del Instituto de Medicina Tropical. Los  autores expresan su agradecimiento al Dr. Humberto Gutiérrez Coordinador del  Ambulatorio, al Dr. Aaron Cohen por su apoyo inicial y a la Lic. Cecilia  Colmenares y Sra. Milagros Aponte por la colaboración en la recepción de  muestras y en el apoyo a los estudiantes. Al Consejo Científico y Humanístico de  la Universidad Central de Venezuela (CDCH-UCV) y Comisión de Investigación de la  Facultad de Medicina de la Universidad Central de Venezuela por el  financiamiento para la Asistencia al XVIII Congreso Latinoamericano de  Parasitología celebrado en Porlamar, estado Nueva Esparta Venezuela, donde se  presentaron resultados parciales del presente trabajo. </p> <b>     <p ALIGN="justify">REFERENCIAS </p> </b></font><font SIZE="2" COLOR="#221e1f">     <!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">1. Sukthana Y. Toxoplasmosis: Beyond  animals to humans. Trends Parasitol. 2006;22:137-142. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095150&pid=S0048-7732201000020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">2. Suzuki Y, Remington JS. Toxoplasmic  encephalitis in AIDS patients and experimental models for study of the disease  and its treatment. Res Immunol. 1999;144:66-67. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095151&pid=S0048-7732201000020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">3. Montoya JG, Liesenfeld O.  Toxoplasmosis. Lancet. 2004;363:1965-1976. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095152&pid=S0048-7732201000020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">4. Maekelt A, Díaz-Bello Z, Valdivia M,  Boiso J, Mauriello L, Reyes F, et al. La incidencia de la infección toxoplásmica  en mujeres embarazadas de Venezuela. Arch Ven Med Trop. 1998;2:22-28. </font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095153&pid=S0048-7732201000020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">5. Triolo-Mieses M, Traviezo-Valles L.  Seroprevalencia de anticuerpos contra </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f"><i>Toxoplasma gondii </i></font> <font COLOR="#221e1f" size="2"><font face="Verdana">en gestantes del municipio  Palavecino, Estado Lara, Venezuela. Kasmera. 2006;34:7-13. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095154&pid=S0048-7732201000020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">6. Riera de Crespo L, Traviezo LE,  Cárdenas E. Conocimiento sobre toxoplasmosis en gestantes de dos ambulatorios  del Estado Lara. Venezuela. Talleres. 2008;11:58-95. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095155&pid=S0048-7732201000020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">7. World Health Organization. 2007.  Reporte sobre la Enfermedad de Chagas 1-96. WHO/TDR/SWG/09 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095156&pid=S0048-7732201000020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">8. Ministerio de Salud de la República  Bolivariana de Venezuela. Anuario de Mortalidad 2004. Dirección de Epidemiología  y Análisis Estratégico. Dirección de Información Social y Estadísticas. </font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095157&pid=S0048-7732201000020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">9. Jacobs L, Lunde MN. A  hemoaglutination test for toxoplasmosis. J Parasitol. 1957;43:308-314. </font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095158&pid=S0048-7732201000020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">10. Maekelt A, Barraez S de, Sánchez Z  de, Barraez T. La prueba de hemoaglutinación indirecta aplicada al diagnóstico  de la toxoplasmosis. Arch Ven Med Trop Parasit Med. 1965;5:465-482. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095159&pid=S0048-7732201000020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">11. Díaz Bello Z, Zavala-Jaspe R,  Díaz-Villalobos M, Mauriello L, Maekelt A, Alarcón de Noya B.Diagnóstico confirmatorio de anticuerpos  anti-</font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f"><i>Trypanosoma  cruzi </i></font><font COLOR="#221e1f" size="2"><font face="Verdana">en donantes  referidos por bancos de sangre en Venezuela. Invest Clin. 2008;49:141-150. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095160&pid=S0048-7732201000020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">12. Voller A, Bidwell DE, Barlett A,  Fleck DG, Perkins M, Oladein B. A microplate enzyme-immunoassay for </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f"><i>Toxoplasma </i>antibody.  J Clin Pathol<i>. </i></font><font COLOR="#221e1f" size="2"> <font face="Verdana">1976;29:150-153. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2095161&pid=S0048-7732201000020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="JUSTIFY"><font face="Verdana">13. Camargo ME, Silva SM, Láser PG,  Granato CH. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#221e1f">Avidez  de anticorpos IgG específicos como marcadores de infeccao primaria recente pelo <i>Toxoplasma gondii</i></font><font COLOR="#221e1f" size="2"><font face="Verdana">.  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