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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Inborn errors of metabolism are defined as genetic disturbances that occur in the structure and/or function of protein molecules. Phenylketonuria (PKU) is a good example of this type of disturbance, which is due to an alteration in the enzymatic reaction responsible for phenylalanine (Phe) hydroxylation. Treatment of this disease is basically nutritional. In Venezuela, new raw materials with a low content of Phe are being tested, so that they can be included in the diets of children suffering from PKU. Previous administration to humans, these raw materials should be validated by in vivo biological tests, using laboratory animals. Therefore, the purpose of this study was to assess the plantain (Musa paradisíaca) meal, as the only ingredient, in the nutritional management of experimentally induced PKU in laboratory mice, using a-methyphenylalanine, as the agent responsible for blocking phenylalanine hydroxylase, at a dose of 24 µM/10 of body weight (BW). To help blockade, a dose of D-phenylalanine (52 µM/10g of BW), was also administered. The results of the investigation showed that during the pre-weaning stage, mice exhibited a slight elevation in Phe levels that was statistically significant (P&#8804;0.05), reaching a hyperphenylalalinemia level of 4-10 mg/dL of blood. In contrast, when mice were subjected to a post-weaning diet with plantain meal as the only nutritional source, a difference (P&#8804;0.05) in their development could be observed, which evidenced marked deterioration and malnutrition. It is recommended that additional studies be performed that include a glycomacropeptid along with the plantain meal, so that minimum nutritional requirements can be supplied, keeping low levels of Phe in PKU patients.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font FACE="Verdana">     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="center"> </font>  <b><font FACE="Verdana">Evaluación de la harina de plátano </font>  <font FACE="Verdana" SIZE="2"><font FACE="Verdana">(Musa paradisíaca L.) en  ratones (M. musculus) f</font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><font FACE="Verdana">enilcetonúricos</font><font FACE="Verdana"> </font>  </font>  </font>  </b><font FACE="Verdana"></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="center"> <b>Evaluation of platain (Musa paradisíaca L.) meal in phenylketonurics mice (M.  musculus)</b></p> </font>  <font FACE="Verdana" SIZE="2">      <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="center"> <b>Lilliam Sívoli*,1, Kerika Vera**, Doried Gahon**, Adriana Méndez*, Ana Zuley  Ruiz***,Elevina Pérez**** y Romel Guzmán****</b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> * Centro de Bioquímica Nutricional, Venezuela</p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> ** Estudiante Maestría en Ciencias Veterinarias, Facultad de  Ciencias Veterinarias, Universidad Central de Venezuela, Venezuela</p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> *** Cátedra de Fisiología, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad  Central de Venezuela, Venezuela</p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> **** Instituto de Ciencia y Tecnología de Alimentos, Facultad de Ciencias,  Universidad Central de Venezuela, Venezuela</p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE">Correo-E: <a href="mailto:sivoli.lilliam@gmail.com"> sivoli.lilliam@gmail.com</a></span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black; font-weight: 700">Resumen</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE">Los errores innatos del metabolismo se definen como  trastornos genéticos que ocurren en la estructura y/o función de las moléculas  proteicas. Uno de estos </span><span lang="ES-TRAD">trastornos, es</span><span lang="ES-VE">  la fenilcetonuria (PKU, por sus siglas en inglés), la cual se presenta debido a  la alteración en la reacción enzimática de la hidroxilación de fenilalanina </span><span lang="ES-TRAD">(F)</span><span lang="ES-VE">. El tratamiento de la  PKU es básicamente nutricional, por lo cual, en Venezuela, se están evaluando  nuevas materias primas con bajo contenido de </span><span lang="ES-TRAD">F,</span><span lang="ES-VE">  de manera que puedan ser incluidas en dietas de niños fenilcetonúricos. Estas  materias primas, deben ser validadas a través de pruebas biológicas <i>in vivo</i>  usando animales experimentales, antes de suministralos a los humanos. En el  presente&nbsp; estudio se </span><span lang="ES-TRAD">evaluó la harina de plátano <i> Musa paradisíaca</i> (como ingrediente único) como coadyudante en el manejo  nutricional de ratones </span><span lang="ES-VE">fenilcetonuricos </span> <span lang="ES-TRAD">inducidos </span><span lang="ES-VE">experimentalmente  utilizando un bloqueante de la enzima </span><span lang="EN-US">&#61537;</span><span lang="ES-VE">-metilfenilalanina  a una dosis de 24 µM/10 g peso vivo (PV) y el aminoácido D-fenilalanina a una  dosis de 52µM/10 g p.v. Se observó que los ratones&nbsp; presentaron solo una  elevación de los niveles de F (P&#8804;0,05) alcanzando una hiperfenilalaninemia leve  (4-10mg/dL de sangre) durante la etapa predestete. Sin embargo, al ser sometidos  a una alimentación postdestete con la harina de plátano, como única fuente  nutritiva, se pudo observar una diferencia en el desarrollo del animal (P&#8804;0,05),  evidenciándose un marcado deterioro y desnutrición. Se recomienda realizar  estudios adicionales, que incorporen junto con la harina de plátano, un  glicomacropéptido que supla los requerimientos mínimos nutricionales de los  ratones en crecimiento y mantenga bajo los niveles de F.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE"><b>Palabras clave</b>: </span><span lang="ES-TRAD">Harina de  plátano, ratón, fenilalanina, enfermedades de carencia,&nbsp;&nbsp; </span> <span lang="ES-VE">fenilcetonuria, bloqueo enzimático, inducción enzimática</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="EN-US" style="color: black">Abstract</span></b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US">Inborn errors of metabolism are defined as genetic  disturbances that occur in the structure and/or function of protein molecules.  Phenylketonuria (PKU) is a good example of this type of disturbance, which is  due to an alteration in the enzymatic reaction responsible for phenylalanine (Phe)  hydroxylation. Treatment of this disease is basically nutritional. In Venezuela,  new raw materials with a low content of Phe are being tested, so that they can  be included in the diets of children suffering from PKU. Previous administration  to humans, these raw materials should be validated by in vivo biological tests,  using laboratory animals. Therefore, the purpose of this study was to assess the  plantain (<i>Musa paradisíaca</i>) meal, as the only ingredient, in the  nutritional management of experimentally induced PKU in laboratory mice, using  a-methyphenylalanine, as the agent responsible for blocking phenylalanine  hydroxylase, at a dose of 24 µM/10 of body weight (BW). To help blockade, a dose  of D-phenylalanine (52 µM/10g of BW), was also administered. The results of the  investigation showed that during the pre-weaning stage, mice exhibited a slight  elevation in Phe levels that was statistically significant (P&#8804;0.05), reaching a  hyperphenylalalinemia level of 4-10 mg/dL of blood. In contrast, when mice were  subjected to a post-weaning diet with plantain meal as the only nutritional  source, a difference (P&#8804;0.05) in their development could be observed, which  evidenced marked deterioration and malnutrition. It is recommended that  additional studies be performed that include a glycomacropeptid along with the  plantain meal, so that minimum nutritional requirements can be supplied, keeping  low levels of Phe in PKU patients.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><b>Key words</b>: Plantain meal, mice, phenylalanine,  deficiency diseases, phenylketonuria, enzyme interference, enzyme induction</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="ES-VE" style="color: black">Introducción</span></b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Las enfermedades hereditarias o errores  innatos del metabolismo, se definen como trastornos bioquímicos genéticamente  determinados que ocurren en la estructura y/o función de las moléculas  proteicas. En los humanos, éstas se caracterizan por la acumulación o  almacenamiento de substratos específicos de enzimas lisosomales o subproductos  dentro de las células, debido a una deficiencia total o parcial de dichas  enzimas, constituyendo una importante causa de morbi-mortalidad en edades  pediátricas </span><span lang="ES-TRAD" style="color: black">(Montoya y  Satizábal, 2007)</span><span lang="ES-VE" style="color: black">. Estas  patologías tienen en común que son generadas por mutaciones que afectan  proteínas con propiedades funcionales específicas, provocando estados morbosos  que pueden ser leves o letales (Montoya y Satizábal, 2007). Estas enfermedades  se catalogan como raras en los niños, y como grupo, pueden afectar al 1% de los  recién nacidos ya que tienen su origen en alteraciones genéticas, no existe  tratamiento farmacológico convencional y su manejo tradicionalmente está  dirigido a corregir o prevenir algunas manifestaciones clínicas, como es el caso  de la fenilcetonuria (PKU, por sus siglas en inglés, <i>phenylketonuria</i>). En  la PKU el organismo no puede metabolizar fenilalanina (F) en el hígado, debido a  la carencia de la enzima fenilalanina hidroxilasa (PAH). El manejo terapéutico  de la PKU es básicamente nutricional y consiste en dar un aporte mínimo de F  suficiente para el crecimiento y desarrollo, que además sea bien tolerado por el  paciente, con un aporte total de proteínas, carbohidratos y grasa, acorde con  los requerimientos según edad y peso (Ruíz Pons <i>et al</i>., 2004). Estas  dietas debe ser suplementadas con vitaminas, minerales y oligoelementos. Por  otro lado, el alimento debe aportar las cantidades necesarias de tirosina, ya  que la producción de este aminoácido se ve afectada directamente por la carencia  de la enzima anteriormente citada. En vista de que en la actualidad se dispone  de muy pocos productos destinados a la alimentación de individuos que padecen  PKU, en especial niños, surge&nbsp; la necesidad de desarrollar sustitutos proteicos  y harinas compuestas que presenten características organolépticas y nutritivas  apropiadas, utilizando tanto materias primas y tecnologías nacionales para la  elaboración del alimento especial. Entre las materias primas utilizadas en la  alimentación de infantes se encuentra la harina de plátano, la cual es de fácil  cultivo y adquisición, además de poseer un bajo contenido de F (Guzmán, 2011), y  tiene innumerables bondades nutricionales. En estudios realizados sobre esta  harina, Rosales (2008) destaca su disponibilidad energética, aporte de varias  vitaminas y minerales. Además, Pacheco-Delahaye y Testa (2005) citan la  presencia de almidones resistentes en la misma, cuya importancia radica en la  mejora de la digestibilidad, el funcionamiento gastrointestinal e incluso el  metabolismo hepático y del colon. Por lo antes expuesto, se hace necesario que  una vez procesados los ingredientes utilizados para elaborar&nbsp; las dietas con  bajo o nulo contenido del&nbsp; aminoácido F, se proceda a realizar pruebas  biológicas con animales experimentales (ratones), previas al suministro de las  mismas a humanos fenilcetonúricos. De lo anteriormente expuesto, el objetivo  principal de esta investigación fue </span> <span lang="ES-TRAD" style="color: black">evaluar el efecto de la harina de  plátano (<i>Musa paradisíaca </i>L.<i>)</i> como alternativa nutricional, sobre  los niveles de F en ratones fenilcetonuricos inducidos experimentalmente.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="ES-VE" style="color: black">Materiales y Métodos</span></b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Los experimentos se realizaron en el  bioterio de la Cátedra de Bioquímica de la </span> <span lang="ES-TRAD" style="color: black">Facultad de Ciencias Veterinarias de  la Universidad Central de Venezuela</span><span lang="ES-VE" style="color: black">,  bajo las normas del Comité de Bioética de dicha Institución.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Se utilizó como materia prima harina de  plátano, compuesta por una relación de 60% harina de plátano cruda y 40% de  harina de plátano pre-gelatinizada cuya composición en mezcla según </span> <span lang="ES-TRAD" style="color: black">Guzmán, (2011) fue: </span> <span lang="ES-VE" style="color: black">(2,45% grasa; 3,32% proteína; 2,10%  cenizas; 68,03% almidón total, 47,07% almidón digerible y 21,06% almidón  resistente) y un alimento comercial (Ratarina marca PROTINAL; registro del MPPAT  SASA Nº A.F. 304), con 26% proteína; 2% grasa; 6% fibra y 40% extractro libre de  nitrógeno. Los animales experimentales empleados fueron ratones (<i>M. musculus</i>)  de color negro, adultos ambos sexos y de la cepa C57.</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b><i> <span lang="ES-VE" style="color: black">Tratamientos</span></i></b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><i> <span lang="ES-VE" style="color: black">Inducción experimental de la PKU en  ratones</span></i><span lang="ES-VE" style="color: black">: Para inducir la  hiperfenilalaninemia en ratones, se usaron el inhibidor competitivo de la enzima  PHA (</span><span lang="EN-US" style="color: black">&#61537;</span><span lang="ES-VE" style="color: black">-metil-fenilalanina)  y el aminoácido D-fenilalanina (E.C. 211-603-5, <i>Sigma Mo, EUA</i>). Los  animales experimentales se mantuvieron bajo condiciones óptimas de bienestar  para su desarrollo, como es exigido por las leyes de protección de los animales  de experimentación (Zuñiga <i>et al</i>., 2001). Debido a la necesidad de  obtener, para el ensayo, ratones recien nacidos y siendo el traslado (entre el  bioterio proveedor y el utilizado en la experimentación) una fuente de estrés  para estos animales tan pequeños, se decidió realizar el apareamiento de los  animales en el mismo sitio donde se harían los experimentos. Para la inducción  de la enfermedad, se utilizó un grupo de 90 animales, con edades comprendidas  entre los 8 y 10 d de nacidos. Los cuales permanecieron en la misma jaula con  sus madres y a cada uno se les administró diariamente, vía intraperitoneal  (VIP), 0,2 mL de </span><span lang="EN-US" style="color: black">&#61537;</span><span lang="ES-VE" style="color: black">-metilfenilalanina  a una dosis de 24 µM/10g peso vivo (PV) y con 0,2 mL de F a una dosis de 52 µM/10g </span><span lang="ES-TRAD" style="color: black">PV</span><span lang="ES-VE" style="color: black">  (Del Valle <i>et al</i>., 1978).&nbsp; Este procedimiento se realizó hasta el día 21  de vida (correspondiente a la edad del destete), para lo cual, se procedió a  retirar a las madres de la jaula, dejando solo la camada. Posteriormente, solo  se </span><span lang="ES-TRAD" style="color: black">administró</span><span lang="ES-VE" style="color: black">  a cada ratón, la dosis correspondiente al inhibidor de la enzima fenilalanina  hidroxilasa (</span><span lang="EN-US" style="color: black">&#61537;</span><span lang="ES-VE" style="color: black">-metilfenilalanina),  a la misma dosis durante 15 d, con intervalos de 48 h, con la finalidad de  mantener el estado fenilcetonúrico, para efectuar los ensayos posteriores  (ensayos A y B). Simultáneamente,&nbsp; se utilizó como control a un grupo de 20  animales, a los que se les aplicó diariamente VIP, 0,2 mL de una solución de  cloruro de sodio (NaCl) al 0,9% (Del Valle <i>et al</i>., 1978).</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="ES-VE" style="color: black">Ensayo A</span></b><span lang="ES-VE" style="color: black">: </span><span lang="ES-TRAD" style="color: black">Para la determinación de F, la  sangre fue colectada de la cola de los ratones seleccionados al azar, tomando  tres animales durante las primeras dos muestras y luego uno por cada grupo bajo  experimentación, cada cuatro días durante todo el ensayo. Seguidamente, se  procedió a realizar la determinación de F por fluorimetría, utilizando un  ultramicroensayo fluorescente (UMTEST PKU).&nbsp;</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Luego de inducir la PKU en los ratones,  durante la fase de lactancia (verificado experimentalmente por los valores de F  en sangre de los animales), se procedió a dividirlos para la fase experimental  (ensayos biológicos), en dos grupos de 25 animales cada uno, a los cuales se les  mantuvo la condición de PKU con aplicaciones interdiarias con la dosis del  inhibidor de la enzima PHA, como se explicó previamente. A uno de estos grupos,  se le ofreció harina de plátano en forma de granulada (<i>pellets)</i>,  elaborada en el laboratorio (PKUHP), en tanto que el grupo control&nbsp; (PKUC)  recibió alimento comercial, suministrándole agua fresca y limpia <i>ad libitum</i>.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Al lote de 20 ratones sanos destetados,  que durante la lactancia habían recibido aplicaciones de solución salina al 0,9%  (grupo control), se le continuó el tratamiento (administraciones inter-diarias),  siendo distribuidos en dos grupos de 10 animales cada uno, los cuales,  igualmente, fueron alimentados con la harina de plátano (CHP) y ratarina  comercial (CC), respectivamente. A estos animales, una vez destetados, además  del alimento, se les suministró agua limpia y fresca <i>ad libitum</i>, al igual  que al resto de los ratones bajo experimentación.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="ES-VE" style="color: black">Ensayo B</span></b><span lang="ES-VE" style="color: black">:  Para evaluar la digestibilidad de los alimentos utilizados por los ratones al  someterlos a los tratamientos experimentales (harina de plátano y ratarina) y  para determinar cetonas y ácido fenilpirúvico, se procedió a separar a los  ratones en jaulas pequeñas con dos ratones cada una (cinco réplicas por  alimento),&nbsp; con control del consumo diario&nbsp; del alimento.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Para realizar esta evaluación se colocó,  luego de tres días postdestete, </span> <span lang="ES-TRAD" style="color: black">al azar, </span> <span lang="ES-VE" style="color: black">un animal de cada uno de los grupos  anteriormente mencionados (cuatro grupos en total) en una jaula metabólica, para  la recolección de heces y orinas durante 48 h. Pasado este tiempo, se rotaron  los animales hasta cubrir los 15 d postdestete. Posteriormente, se tomaron las  heces recolectadas durante este período y se formó un <i>pool</i> o muestra  compuesta con las mismas. Luego, estas se utilizaron para determinar la  digestibilidad aparente (FAO, 1992), el contenido de nitrógeno por el método de <i>Kjeldahl</i> (AACC, 1993) y las pruebas cualitativas de cetonas y ácido  fenilpirúvico en orina, aplicando esta última diariamente. Por otra parte, se  evaluó la conducta animal, la cual se basó específicamente en el comportamiento  del animal al momento de la manipulación, cuando se encontraban en período de  tranquilidad del entorno y la capacidad para encontrar el alimento una vez  colocados dentro de la jaula metabólica. Para la determinación de cetonas y  ácido fenilpirúvico en orina, se utilizó la prueba <span style="vertical-align: center">cualitativa comercial CETOTEST<sup>®</sup>,  mientras que para la determinación del ácido fenilpirúvico en orina, se  utilizaron las tiras reactivas cualitativas (prueba del cloruro férrico; Cardesa,  2009).</span></span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b><i> <span lang="ES-VE" style="color: black">Análisis Estadístico</span></i></b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Los datos obtenidos fueron analizados  utilizando la prueba de comparación de medias Tukey. Para determinar las  diferencias entre tratamientos, se utilizó el paquete estadístico Statistic  (1996). Los resultados se expresaron como medias ± la desviación estándar (DE).  Es importante resaltar que la unidad experimental estuvo conformada por cada uno  de los animales.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="ES-VE" style="color: black">Resultados y Discusión</span></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b><i> <span lang="ES-VE" style="color: black">Determinaciones Bioquímicas</span></i></b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><i> <span lang="ES-VE" style="color: black">Ensayo A. Determinación de fenilalanina  en sangre</span></i></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Para el día inicial del ensayo, se  obtuvo un valor promedio en el lote total de animales de 1,18 mg/dL de  fenilalanina en sangre; luego de transcurridos los primeros 12 d del ensayo, se  reportaron valores de 1,25±0,06 mg/dL de F para el grupo de animales control y  de 4,62±0,24 mg/dL para el grupo de animales PKU, siendo estadísticamente  diferentes (P&lt;0,05). En la <a href="#tab1">Tabla 1</a>, se observa que para el  día 22 de edad (cinco días postdestete), no se presentaron diferencias  significativas de concentración de F en sangre entre los grupos; mientras que  para el día 25 (nueve días postdestete) el grupo PKUC mostró diferencias en  comparación con el grupo CC pero no con los otros, aunque todos los valores  estuvieron dentro de una hiperfenilalaninemia benigna. Es importante resaltar  que el grupo que mostró el mayor nivel, coincide con los animales PKU que  consumieron alimento comercial, ya que el mismo tiene un elevado contenido de  proteínas (26%). Tomando en consideración la clasificación que realizaron  Ramírez <i>et al</i>. (2007), se logró alcanzar durante la fase experimental una  hiperfenilalaninemia leve (4-8 mg/dL) el día 12 de administración.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="center"> <a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfcv/v54n2/art06tab1.gif" width="367" height="470"></a></p>     
<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Diversos autores han corroborado,&nbsp; que  cuando la </span> </font><span style="color: black" lang="en-us"> <font FACE="Times New Roman" SIZE="2">&#945;</font></span><font FACE="Verdana" SIZE="2"><span lang="ES-VE" style="color: black">-metilfenilalanina  (AMF) es </span><span lang="ES-TRAD" style="color: black">administrada</span><span lang="ES-VE" style="color: black">  junto con F (24 y 52 µM/10g PV, respectivamente) en ratones de 3-15 d de edad,  se reduce la actividad de la PAH en un 75%, lo cual ocasiona un incremento en la  concentración de F en plasma, además de otras pequeñas alteraciones comparables  con los pacientes PKU (Del Valle <i>et al</i>., 1978; Binek-Singer y Jonson,  1982; Diamond <i>et al</i>., 1994; Austic <i>et al</i>., 1999; Costabeber <i>et  al</i>., 2003). Los autores citados sostienen que la concentración plasmática de  la F se mantiene durante 18 h después de la administración de la dosis  farmacológica y que la misma desciende paulatinamente entre el día 18 y 23 de  edad de los animales. Sin embargo, dicho descenso también se ha observado en los  ratones utilizados como controles, a los que solo se les administró diariamente  NaCl al 0,9%. En este estudio, se observó un leve descenso de la concentración  plasmática del aminoácido; sin embargo, este descenso también puede ser  atribuido al hecho de que justamente esta fecha coincidió con el destete de los  animales y con la simultánea variación en cuanto a la dosis de inducción de la  patología, ya que se dejó de administrar la F y sólo se administró AMF. Por otra  parte, los mismos autores también afirman que la concentración plasmática del  aminoácido solamente se mantiene elevada desde una hora luego de la  administración de la dosis de inducción, hasta pasadas las 18 h post aplicación,  tendiendo a la normalización a partir de las 24 h y llegando a su completa  normalidad entre el segundo y el cuarto día de aplicación de la dosis. <s>En el  estudio </s>realizado, se puede corroborar lo afirmado, ya que se logró observar  diferencias en las concentraciones plasmáticas de la F cuando se tomaron  muestras inter-diarias (48 h post inyección) y 18 h post inyección. Según  reportan, </span><span lang="ES-TRAD" style="color: black">Del Valle <i>et al</i>.,  1978 y Costabeber <i>et al</i>., 2003, </span> <span lang="ES-VE" style="color: black">nunca se logra una completa supresión de  la PAH, por lo que es posible observar niveles de tirosina (Tyr) en plasma de  los animales PKU con una concentración de 350 nmol/mL entre los días 6-10 y de  98 nmol/mL entre los días 24-27.&nbsp; En cuanto a la concentración de la F en sangre  de ratones, a los cuales se les ha inducido la PKU, Del Valle <i>et al</i>.  (1978) lograron determinar un concentración de 70-100 nmol/mL en los animales  del grupo control y de 6-9 veces aumentada en los animales inducidos. Por su  parte, Diamond <i>et al</i>. (1994) aseveran que para los controles (NaCl 0,9%)  se obtuvo un promedio de 2,2 mg/dL en sangre mientras que los animales tratados  con AMF más F se logra detectar un promedio de 13,7 mg/dL en sangre; cómo fue  posible observarlo durante el quinto y noveno día del período de inducción (predestete)  del grupo experimental utilizado posteriormente para administrarle la dieta  comercial. En cuanto a los resultados de los animales del grupo control, se  aproximaron mayormente a los expresados por Del Valle <i>et al</i>. (1978).</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><i> <span lang="ES-VE" style="color: black">Ensayo B. Digestibilidad, determinación  de cetonas y ácido fenilpirúvico </span></i></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black; letter-spacing: -.1pt">En la <a href="#tab2">Tabla 2</a>, se observa la digestibilidad aparente de los  alimentos utilizados en los tratamientos,&nbsp; </span> <span lang="ES-VE" style="color: black">evidenciándose claramente, una elevada  digestibilidad del alimento comercial en comparación con la harina de plátano  (P&lt;0,05), lo cual explica la deficiencia en cuanto al desarrollo corporal y  ganancia de peso de los animales alimentados con harina de plátano, ya que la  misma no cubre los requerimientos nutricionales mínimos de la especie. Por otra  parte, como lo expresa Guzmán (2011), la mezcla utilizada de harina de plátano  cruda y pre gelatinizada, a una proporción de 60:40, contiene una alta cantidad  de almidón resistente por lo cual hace que su digestibilidad <i>in vitro</i> sea  baja (±18%-120 min), debido a la limitada actividad enzimática y bacteriana para  la digestión de los compuestos de amilosa que esta harina contiene. Este  principio es corroborado por </span><span lang="ES-TRAD" style="color: black"> Pacheco-Delahaye</span><span lang="ES-VE" style="color: black"> (2002) y  Waliszewski <i>et al</i>. (2003), quienes expresan que la harina de plátano  verde contiene 86% de almidón, del cual 40,7% es amilosa y además forma el 8,6%  de fibra dietética. Varios estudios han sido realizados sobre el potencial  benéfico del almidón presente en la banana verde. En este sentido, Faisant <i>et  al</i>. (1995) estudiaron la resistencia del almidón a la hidrólisis enzimática  en individuos sanos, encontrando que un 84% del almidón ingerido era capaz de  alcanzar el íleon terminal, demostrando ser resistente a la hidrólisis por las  amilasas. Estudios posteriores han encontrado que un 17% puede ser excretados en  las heces (González y Pacheco-Delahaye, 2006).</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="center"> <a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfcv/v54n2/art06tab2.gif" width="557" height="154"></a></p>     
<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Por todo lo antes expuesto, además del  desbalance de una dieta completa, se explica claramente la desnutrición letal de  los animales en este ensayo, debido a que hubo un mínimo aporte proteico a  través de la harina de plátano, siendo insuficiente para cubrir los  requerimientos mínimos fisiológicos para su crecimiento y desarrollo. Los  animales entraron en una fase de latencia, en la cual poco a poco fueron  consumiendo sus reservas proteicas y posteriormente sus proteínas funcionales,  hasta culminar en desnutrición avanzada y muerte.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">En la <a href="#tab3">Tabla 3</a>, se  muestran los datos obtenidos sobre presencia de las cetonas y el ácido  fenilpirúvico en muestras de orina. Estas determinaciones se realizaron durante  todo el período experimental a los seis grupos, observando mayor positividad en  los animales a los cuales se les indujo la PKU y en la etapa predestete. Del  Valle <i>et al</i>. (1978) y Lane <i>et al</i>. (1980), citan que, cuando los  ratones jóvenes son tratados con AMF y F de manera simultánea, además de  observarse un aumento en la concentración de F en plasma, también es posible  detectar excreción de metabolitos como el ácido fenilpirúvico y cetonas (Colombo <i>et al</i>., 2003). Cuando se realiza la prueba del cloruro férrico a  pacientes PKU, y esta es positiva, la cinta se torna de color verde, indicando  la presencia del ácido fenilpirúvico. Lo que fue posible corroborar al momento  de realizar la prueba de cloruro férrico a los ratones tratados. No siempre es  posible detectar dichos metabolitos, por lo cual se puede justificar el hecho de  que a pesar de que el día ocho de haber sido tratados, cuando se observó el más  elevado nivel de F en sangre, no coincidiera con la presencia de ácido  fenilpirúvico ni cetonas en orina en los ratones. También, se puede explicar la  no coincidencia de estos metabolitos con todas las elevaciones de la F en  sangre, debido al hecho de que no siempre ambas muestras pertenecían a los  mismos animales. Otro factor que evidentemente afectó la muestra, fue el hecho  de que nuestros animales PKUHP y CHP presentaron una notable disminución en la  excreción de orina y heces, además de un estado de desnutrición e inanición, lo  que pudo dar como resultado falsos positivos.</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="center"> <a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/rfcv/v54n2/art06tab3.gif" width="514" height="214"></a></p>     
<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">En cuanto a la conducta animal, se pudo  observar mayor docilidad de los animales PKU, con respecto a sus controles al  momento de la manipulación. Por otra parte, también se observó un retraso de  10-15 min de los animales PKU al momento de encontrar el alimento una vez  colocados dentro de la jaula metabólica. Además, los animales alimentados con la  harina de plátano presentaron una conducta aletargada y encorvada. Brass y  Greengard (1982), realizaron un estudio en ratas adultas, que fueron tratadas&nbsp;  con AMF más F, durante las primeras tres semanas de vida mostraron problemas de  laterización, presentando actividades o movimientos en círculos, conducta que ha  sido asociada a patrones de comportamiento regulados por la ruta dopaminérgica.  Por otra parte, Diamond <i>et al</i>. (1994) afirman que otros patrones  observados en éste y otros estudios modelos de PKU, es el anormal desarrollo de  parámetros como la habilidad de aprendizaje de estos animales en una prueba de  laberinto y&nbsp;&nbsp; la capacidad de locomoción. Si bien es cierto que durante nuestro  ensayo no se realizó una prueba de laberinto, se logró observar un retraso  evidente en cuanto a la locomoción y movimiento de los animales PKU, con  respecto a algunos sanos, que a<span style="letter-spacing:-.1pt">demás  resultaron menos dóciles a la manipulación. La </span>otra condición de conducta  observada fue la capacidad que tenían los animales sanos para encontrar con  mayor facilidad el alimento y el agua una vez colocados dentro de una jaula  metabólica. Los animales PKU presentan un retraso mensurable de hasta 15 min de  diferencia, con respecto a los animales sanos.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="ES-VE" style="color: black">Conclusiones</span></b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">Se logró inhibir experimentalmente la  enzima fenilalanina hidroxilasa empleando </span> <span lang="EN-US" style="color: black">a</span><span lang="ES-VE" style="color: black">-metilfenilalanina  hidroxilasa como inhibidor competitivo, ocasionando una hiperfenilalaninemia  leve. La utilización de la harina de plátano (60:40) en animales PKU permitió  disminuir los niveles de F en sangre en los ratones en la etapa postdestete. Por  otra parte, la conducta de los animales PKU se evidenció aletargada y un  evidente retraso, además también se observó una gran disminución en la excreción  de heces y orina. Igualmente, se evidenció la presencia de cetonas y ácido  fenilpirúvico en orina en los animales PKU, la cual prevaleció solamente en la  etapa pre destete. Por todo lo antes expuesto, se recomienda realizar estudios  adicionales, en los cuales se incorpore, junto con la harina de plátano un  glicomacropéptido que supla los requerimientos mínimos nutricionales de los  ratones, en crecimiento y mantenga bajos los niveles de F en pacientes  fenilcetonúricos.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="ES-VE" style="color: black">Agradecimiento</span></b></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">A<span style="letter-spacing:-.1pt">l  Consejo de Desarrollo Científico y Humanístico (CDCH) de la Universidad Central  de Venezuela, Proyecto PG- 11.007133 2008/1. Al Instituto de Estudios Avanzados </span></span><span lang="ES-VE" style="color: black; letter-spacing: -.1pt"> (IDEA, Laboratorio Errores Innatos del Metabolismo) y a la MSc. Liz Pérez por su  valioso apoyo en el análisis de fenilalanina en sangre.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"><b> <span lang="EN-US" style="color: black">Referencias</span></b></p>     <!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">1. AACC. 1993. Approved methods of the  American Association of Cereal Chemists (AACC). Methods 46-11 and 54-30A. AACC,  St. Paul, Minnesota, USA.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823141&pid=S0258-6576201300020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">2. Austic, R.; Chun-Li, Su; Strupp, B.;  Levitsky, D. 1999.&nbsp; Effects of dietary mixtures of amino acids on fetal growth  and maternal and fetal amino acid pools in experimental maternal Fnylketonuria. <i>Am. J. Clin. Nut</i>., 69:687-96.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823142&pid=S0258-6576201300020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">3. Binek-Singer, P.; Jonhson, T. 1982.  The effects of chronic hyperFnylalaninemia on mouse brain protein synthesis can  prevent by other amino acids. <i>Biochem. J.</i>, 206:207-414. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823143&pid=S0258-6576201300020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">4. Brass, C.; Greengard, O. 1982.  Modulation of cerebral catecholamine concentration during hyperFnylalaninemia. </span><i><span lang="ES-VE" style="color: black">Biochem. J.,</span></i><span lang="ES-VE" style="color: black">  208:765-771.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823144&pid=S0258-6576201300020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">5. Cardesa, J. 2009. Aspectos históricos  de la fenilcetonuria. Universidad Badajoz. </span> <span lang="EN-US" style="color: black">14 p.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823145&pid=S0258-6576201300020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">6. Costabeber, E.; Kessler, A.; Dutra,  C.; Souza, A.; Wajner, M.; Duval, C. 2003. HyperFnylalaninemia reduces creatine  kinase activity in the cerebral cortex of rats. <i>Int. J. Devl. Neurosc.,</i>  21:111-116.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823146&pid=S0258-6576201300020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">7. Colombo, M.; Cornejo, V.; Raimann, E.  2003. </span><span lang="ES-VE" style="color: black">Errores Innatos del  Metabolismo de los Aminoácidos.&nbsp;&nbsp; Errores Innatos en el Metabolismo de los  Niños. Capítulo 3. Editorial Universitaria. Santiago de Chile. 2<sup>da</sup>.  Edición, 71-13.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823147&pid=S0258-6576201300020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black; letter-spacing: -.1pt">8. Del Valle, J.A;  Dienel, G.; Greengard, O. 1978. </span> <span lang="EN-US" style="color: black; letter-spacing: -.1pt">Comparison of a-methylFnylalanine  and p-chloroFnylalanine as inducers of chronic hyperFnylalaninaemia in </span> <span lang="EN-US" style="color: black">developing rats. <i>Biochem. J.,</i>  170:449–598. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823148&pid=S0258-6576201300020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">9. Diamond, A.; Ciaramitaro, V.; Donner,  E.; Djali, S.; Robinson, M. 1994. An animal model of early-treated PKU.&nbsp; <i>J.  Neuro.</i>, 14:3072-382. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823149&pid=S0258-6576201300020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">10. Food and Agriculture Organization (FAO).  1992. Determinación Digestibilidad Aparente.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823150&pid=S0258-6576201300020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">11. Faisant, N.; Gallart, D.J.; Champ, M.  1995. Banana starch breakdown in the human small intestine studied electron  microscopy. </span><i><span lang="ES-VE" style="color: black">Eur. J. Clin. Nutr.,</span></i><span lang="ES-VE" style="color: black">  49:99-104.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823151&pid=S0258-6576201300020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">12. González, O.; Pacheco-Delahaye, E.  2006. Propiedades físicas y reológicas de la harina de banana verde (Musa-AAA)  en la elaboración de geles de piña (Ananas-cromosus-L-Merr.).<i> </i></span><i> <span lang="EN-US" style="color: black">Rev. Fac.Agron.</span></i><span lang="EN-US" style="color: black">,  32:27-40. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823152&pid=S0258-6576201300020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">13. Guzmán, R. 2011.&nbsp; Estudio integral  de dos variedades de musas (Musa spp) I. elaboración de productos a base de  harinas II. Producción de maltodextrinas y uso en microencapsulación de  antioxidantes. Tesis Doctoral, Instituto Ciencia Tecnología de Alimentos, UCV. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823153&pid=S0258-6576201300020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US" style="color: black">14. Lane, J.D.; Schöne, B.; Langenbeck,  U.; Neuhoff, V. 1980. Characterization of experimental Fnylketonuria.  Augmentation of hyperFnylalaninemia with a-methylFnylalanine and p-chloroFnylalanine. </span><i><span lang="ES-VE" style="color: black">Biochim. Biophys. 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Waliszewski, K.N.; Aparicio, M.A.;  Bello, L.A., Monroy, J.A. 2003. </span><span lang="EN-US" style="color: black"> Changes of banana starch by chemical and physical modification. <i>Carbohydrates  polymers</i>. </span><span lang="ES-VE" style="color: black">52:237-242.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1823161&pid=S0258-6576201300020000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="ES-VE" style="color: black">22. Zuñiga, J.; Tur, J.; Milacco, J.;  Pineda. 2001. Ciencia y Tecnología en Protección y Explotación Animal. Ed.  McGraw-Hill Interamericana. 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