Drs. Olivar C Castejón S*, Rafael Molina Vílchez**, Alba E Rivas A***, Omar Aguirre****, Ivis J Graterol S*****

*Coordinador General del Centro de Investigación y Análisis . Docente Asistencial del Núcleo Aragua (CIADANA) Prof. Titular en Biología celular, Fac. Cs. de la Salud, Universidad de Carabobo.

**Médico Obstetra-Ginecólogo. Hospital "Manuel Noriega". IVSS San Francisco Mbo. Edo Zulia.

***Estudiante del tercer año de la Escuela de Medicina. Fac de Cs. de la Salud, UC. Beca servicio del CIADANA.

****Estudiante del área de posgrado Fac. Cs. Veterinarias. Instructor de Bioquímica de la UCV, Investigador asociado del CIADANA.

*****Prof. Agregado del Dpto. de Morfología Normal y Patológica de la Fac. Cs. de la Salud, UC. Investigador asociado del CIADANA.

La degeneración hidrópica de la vellosidad placentaria ha originado una diversidad de cambios morfológicos los cuales van desde los observados en el aborto espontáneo no molar (1) hasta los cambios recientes observados en la displasia mesenquimal placentaria (2) pasando por los notados en la bien conocida mola hidatidiforme (3).

Estas modificaciones abarcan al componente trofoblástico de la vellosidad, el edema que ocurre en la región estromal, la variación del número de vasos sanguíneos estromales, cambios de la pared de estos, el tamaño de los vasos, así como el tipo de vellosidad afectada por el edema.

Una secuencia de imágenes mostrando las variaciones morfológicas de la vellosidad hidrópica con las alteraciones señaladas en estas tres condiciones permite distinguir la diversidad de formas que adopta la vellosidad hidrópica según sea la lesión. Es notorio que los cambios hidrópicos de aborto espontáneo no molar puedan confundirse con los observados en mola hidatidiforme parcial (4), o de casos, ya estudiados por histopatólogos, como de mola hidatidiforme parcial, resulten finalmente en casos de displasia mesenquimal placentaria (5). Por otro lado, la hiperplasia, un carácter que permite distinguir la vellosidad hidrópica presente en mola hidatidiforme de la existente en casos de abortos, es difícil localizarla en las etapas tempranas de una mola hidatidiforme parcial (6). La ultrasonografía no resuelve este problema. Para el diagnóstico diferencial es necesario la aplicación de técnicas de microscopia de luz que nos permite una mejor evaluación del material sospechoso de mola predeterminado sonográficamente.

Una visión general de los rasgos externos e internos de la vesícula molar o no molar con técnicas de microscopia de luz y electrónica de barrido, en una secuencia de imágenes simultáneas, contribuyen con el diagnóstico diferencial de cambios morfológicos de la vellosidad hidrópica, enfatizando la necesidad del examen histopatológico de las lesiones y su correlación clínica. Una clasificación de la vellosidad hidrópica en estas condiciones diferentes será realizada para una mejor organización de los cambios de la vellosidad hidrópica.

En este trabajo se pretende mostrar los rasgos de la vellosidad hidrópica, con las técnicas arriba mencionadas, en una secuencia de lesiones que permiten una visión general de la variabilidad morfológica de esta alteración vellositaria y su relación con algunos de los aspectos clínicos de la paciente.

Todos los materiales fueron obtenidos de especímenes por curetaje de pacientes que tuvieron abortos, diagnóstico de mola hidatidiforme parcial y de displasia mesenquinal placentaria. Secciones teñidas con hematoxilina-eosina de 4-5 µm de estos especímenes fueron revisados. Pequeños bloques de tejidos fueron procesados con técnicas de microscopia electrónica de barrido (MEB) como convencionalmente se realizan microfotografías en cada tipo de lesión fueron tomadas con ambas técnicas. Imágenes de MEB, simultáneamente fueron interpretadas, en conjunto con las obtenidas con la microscopia de luz. El diagnóstico de vellosidad hidrópica fue basado en el criterio de Suster y Robinson (7); el de vellosidad hidrópica correspondiente a mola hidatidiforme parcial, según criterio de Szulman y Surti (8); el de displasia mesenquimal placentaria de acuerdo con el criterio histológico de Paradinas y col. (5). El hinchamiento de la vellosidad fue macro o microscópicamente observado. No se realizaron estudios de cariotipo; la muestra correspondiente a vellosidad hidrópica con displasia mesenquimal placentaria, a la cual se le trató de determinar el cariotipo, resultó fallida.

Caso 1. Paciente primigesta de 25 años de edad con diagnóstico de aborto incompleto a las 11 semanas de gestación. Presentó sangrado genital y dolor abdominal. Se practicó legrado uterino sin antecedentes de enfermedades infecciosas. Análisis anatomopatológico indicó vellosidad no molar, hidrópica. La vellosidad procedente de este caso la identificamos como v.p.h.1.

Caso 2. Paciente de 28 años de edad que ingresa con sangrado genital y aborto incompleto. Ecográficamente presenta útero pequeño con imágenes vesiculares hipoecoicas. Dolor en el hipogastrio. Determinaciones de ßhCG por encima de 100 000 mU/mL. Se realizó legrado. Pacientes con antecedentes de hipertensión. Estudio anatomopatológico indicó mola hidatidiforme parcial. Vellosidad identificada como v.p.h.2.

Caso 3. Paciente primigesta de 25 años. Examen ecográfico de feto vivo a las 30 semanas con imágenes de vesículas hipoecoicas semejante a la mola hidatidiforme. Sin antecedentes de hipertensión. Valoración de laboratorio normal. Serología para VDRL, HIV, y toxoplasmosis negativo.

Determinación de ßhCG y -feto proteína normal. Rastreo morfogenético fetal normal. Perfil biofísico fetal de ocho puntos. Con perfil hemodinámico fetal indicando cambios de arterias uterinas semejantes a las que se describen como predictivos de preeclampsia. Feto con signos de retardo de crecimiento intrauterino (RCIU). Recién nacido masculino que pesó 1 200 g. Ruptura de membrana a las 33 semanas. Placenta con inserción velamentosa del cordón.

Placentomegalia. Determinación del cariotipo del neonato resultó fallida. Evolución materna y neonatal aparentemente normal.

Las vellosidades placentarias se identifican como v.p.h.3 y v.p.h.4 las cuales se corresponden con vellosidades troncales terciarias, que se originan de la placa coriónica placentaria.

Las vellosidades del caso 1, identificadas como v.p.h.1 presentan trofoblasto atenuado, hipoplásico, con crecimiento no circunferencial, local y polarizado, sin atipia nuclear, sin vacuolización, cuando prolifera lo hace para originar vellosidades mesenquimales que darán origen a nuevas vellosidades.

Región estromal sin cisterna central avascular en la mayoría de las vellosidades (Figuras 1, 2), aunque la micrografía 1 presenta capilares de reducido diámetro. Tamaño de vellosidades hasta 2 mm.

Vellosidades del caso 2, identificadas como v.p.h.2, corresponden a las bien conocidas vesículas de mola hidatidiforme parcial que pueden alcanzar hasta un tamaño de 8 mm (Figuras 3, 4, 5). Regiones estromales laberínticas intercaladas con edema. Trofoblasto hiperplásico.

Vellosidades del caso 3, identificadas como v.p.h.3 (Figuras 6, 7, 8), y v.p.h.4 (Figura 9) pertenecen a vellosidades troncales terciarias o sea con vasos, los cuales presentan dilataciones aneurismales o varicosas y trofoblasto no hiperplásico (Figura 8). Región estromal con cisterna central (Figuras 6, 9). La v.p.h.3 (Figura 6) con notables vasos de capa media bien desarrollada ocupando gran parte de la región estromal.

La v.p.h.4 (Figura 9) con regiones estromales también laberínticas semejantes a las que pueden verse en mola hidatidiforme. Ambas v.p.h.3 y v.p.h.4 pertenecen a la recién conocida displasia mesenquimal placentaria pero sin cambio corioangiomatoide ni edema de vellosidad terminal.

La vellosidades identificadas como v.p.h 1 son las descritas en caso de aborto espontáneo, vellosidades normales de etapas tempranas del embarazo existentes en la zona ubicada entre corion leve y corion frondoso (9) y casos de muerte fetal ocurrida antes de la sexta a séptima semanas de gestación según fecha de última menstruación (6). Nuestro estudio demuestra que en caso de feto vivo detectado por ultrasonografía, con imágenes de vellosidades hipoecoicas, similares a la de mola hidatidiforme y observadas en el tercer trimestre, es posible pronosticar una displasia mesenquimal placentaria.

Los resultados presentados son útiles en el diagnóstico histopatológico que nos permite diferenciar la displasia mesenquimal de la mola hidatidiforme en base a la ausencia principal de la hiperplasia en el trofoblasto.

Los resultados además demuestran que si bien el estroma de la v.p.h.4 es similar al encontrado en algunas de las vellosidades de mola hidatidiforme nos revelan un trofoblasto atenuado y cambios en la pared del vaso estromal sin relación con enfermedad trofoblástica gestacional.

La distinción de estas vellosidades de las del embarazo molar o de la displasia mesenquimal placentaria puede a veces ser muy difícil, dificultándose la necesidad de obtener pronóstico e información terapéutica acerca de estas entidades. Es importante que la clasificación sea lo más exacta posible. La hiperplasia del trofoblasto ha sido evaluada (10) en el aborto hidrópico no molar, abortos del segundo trimestre no hidrópico y mola parcial mediante inmunotinción, utilizando un marcador de proliferación celular (PCNA). La vellosidad hidrópica mediante esta técnica mostró un índice de PCNA inferior al de la mola parcial pero no hubo diferencia significativa con respecto a la del aborto no hidrópico de la misma edad gestacional. Una posterior evaluación con un estudio análogo (11) utilizando la proteína Ki-67, en secciones de tejidos incluidas en parafina permitió distinguir vellosidades normales de las molares pero sin distinguir las dos variedades de vellosidades encontradas en la mola hidatidiforme (la parcial de la completa). Esto se logró posteriormente con otro estudio (4) de inmunohistoquímica que ayudó a la distinción de los tipos de vellosidades presentes en la mola hidatidiforme, separándola de la observada en abortos resultando finalmente que la tinción con Ki-67 logra una mejor distinción que la notada con PCNA.

Un diagnóstico diferencial más exacto se obtiene utilizando cadena de reacción de la polimerasa (PCR) (12) aplicada al ADN de la vellosidad coriónica y al ADN materno, una técnica de genética molecular que emplea tejidos fijados en formalina e incluidos en parafina, la cual ha sido consistente con el diagnóstico histopatológico y la citometría de flujo (13). Con esta técnica la presencia de tres alelos en la vellosidad en un locus simple se interpretó como mola parcial. La presencia de un alelo en la vellosidad diferente a todos los alelos maternos en un mismo locus se interpretó como mola completa.

Nuestro caso número 3 es similar al de los quince casos presentados por Paradinas y col. (5) quienes mostraron placentomegalia, vellosidad troncal hidrópica, dilatación aneurismal marcada de los vasos de la vellosidad, cambio corioangiomatoide de los vasos y edema de la vellosidad terminal coexistiendo con fetos que pueden ser normales o teniendo los rasgos del síndrome de Beckwith-Wiedemann, enfermedad hereditaria provocada por anomalía en el cromosoma 11. Pero el caso presentado por nosotros no mostró cambio corioangiomatoide ni vellosidad terminal edematosa. La literatura (14) reporta dos casos con displasia mesenquimal placentaria de los cuales uno no presentó el cambio corioangiomatoide de los vasos en la vellosidad hidrópica, lo que coincide con lo observado en este trabajo. Como se comprenderá las v.p.h.p.3 y v.p.h.4 no están relacionadas con hiperplasia ni desorden trofoblástico gestacional alguno sino más bien con malformaciones congénitas, embarazos de alto riesgo complicado con parto prematuro o muerte intrauterina (5,14).

Por otro lado, existe el informe de un caso (15) de este tipo de vellosidad troncal placentaria hidrópica provocada por una deficiencia de deshidrogenasa 3 ß hidroxiesteroide debido a hiperplasia adrenal congénita fetal. La v.h.p.3 de nuestro caso es similar también al caso 8 de Paradinas y col. (5) al presentar edema de vellosidad troncal con dilatación aneurismal, sin hiperplasia y sin edema de vellosidad terminal. Ellos pensaron que su caso 8 era triploidia derivada maternalmente o un mosaico. En nuestro caso la determinación cariotípica quedó imposibilitada. Cuando por ultrasonografía se nota la sobrevivencia fetal a término, en estudios con imágenes de mola hidatidiforme, casi siempre, sostiene Paradinas y col. (5) está relacionada con el mosaicismo. Las cromosomopatías fetales entre las 11 y 15 semanas de gestación, como trisomías 13,18 y 21, triploidías y monosomías x fueron sistemáticamente asociadas a edema fetal y placentario (16). En estos estudios de embarazos con aneuploidias, sin interrupción de la gravidez con el uso de biopsia de vellosidad coriónica, se ha descrito un defecto cardiovascular fetal que provoca una reducción en la circulación vellosa originándose edema estromal generalizado de la vellosidad. Si bien la mayoría de los cambios hidrópicos se asocian con anomalías estructurales cromosómicas ellos se encuentran con aproximadamente igual frecuencia en placentas con cariotipo normal o anormal (1).

La secuencia de imágenes mostrada permite orientar los estudios futuros mediante la identificación histológica de los cambios observados en distintas lesiones. Como hay diferencias en el origen, morfología y la historia natural de los tejidos vellosos placentarios hidrópicos (17) es importante identificar y documentar especímenes raros que se desvían de las imágenes aquí presentadas.

La organización laberíntica del estroma observada en la v.p.h.4, descrita también por Szulman y Surti (8) en casos de mola parcial, tiene su explicación en nuestro caso. Una vez que el fluido se mueve desde el espacio intervelloso hacia dentro de la vesícula, el estroma periférico cortical, debajo del trofoblasto, puede ser separado en forma de una banda constituida por tejido conjuntivo. Esta banda de tejido estromal queda separado por un espacio entre la banda y la membrana basal del trofoblasto. Este espacio subyacente al trofoblasto puede ser continuo o no en la periférica del estroma cortical. Si es continuo la presión del movimiento de fluido desde afuera de la vesícula invagina la banda de estroma cortical hacia el espacio ocupado por la cisterna central. Si este movimiento se realiza periféricamente en varios puntos de la banda se produce un estroma con la organización laberíntica, es decir, una banda de estroma que presenta evaginaciones e invaginaciones, con trayecto sinusoidal.

Las corrientes de fluido que han sido identificadas con microscopia electrónica de barrido en mola hidatidiforme (18) es posible que también den origen al estroma laberíntico de la v.p.h.4 sustentando, en parte, la explicación dada.

Las imágenes de v.p.h.3 y v.p.h.4 corresponden al primer diagnóstico de displasia mesenquimal placentaria observada en Venezuela y constituyen una ampliación al trabajo previamente realizado (19) con técnicas de microscopia de luz electrónica de barrido donde se describe la superficie externa e interna de estas vellosidades tomadas del paciente, caso 3.

Si bien la patogénesis de estos cambios tiene un carácter multifactorial (19) la gran mayoría de ellos están bajo la influencia de anomalías cromosómicas.

Al fondo fijo institucional de la Fac. Cs de la Salud para el CIADANA por intermedio de la coordinación de administración del núcleo Aragua. Al centro médico maternidad la Floresta Maracay, Hospital Central de Maracay y Hospital Manuel Noriega Trigo, IVSS, del estado Zulia por facilitar historial clínico y material enviado para estudio.

1.Novak R, Agamanolis D, Dasu S, Igel H, Plat M, Robinson H, et al. Histologic analysis of placental tissue in first trimester abortions. Pediat Pathol 1988;8:477-482.        [ Links ]

2.McCowan LM, Becroft DM. Beckwith-Wiedeman syndrome, placental abnormalities, and gestational proteinuric hypertension. Obstet Gynecol 1994;83:813-817.        [ Links ]

3.Jauniaux E. Partial Moles: From posnatal to prenatal diagnosis Placenta 1999;20:379-388.        [ Links ]

4.Ostrzega N, Phillipson J, Liu P. Proliferative activity in placentas with hydropic change and hydatidiform mole as detected by Ki-67 and proliferating cell nuclear antigen inmunostaining. Am J Clin Pathol 1998;110:776-781.        [ Links ]

5.Paradinas FJ, Sebire NJ, Fisher RA, Rees HC, Foskett M, Secki MJ, et al. Pseudo-partial moles: Placental stem vessel hydrops and the association with Beckwith-Wiedemann syndrome and complete moles. Histopathology 2001;39:447-454.        [ Links ]

6.Lewis SH, Perrin E. Pathology of the placenta. New York: Churchill Livingstone 1999.        [ Links ]

7.Suster S, Robinson MJ. Placental intravillous accumulation of sulfated mucosubstances. A reevaluation of so-called hydropic degeneration of villi. Ann Clin Lab Sci 1992;22:175-181.        [ Links ]

8.Szulman A, Surti U. The syndrome of hydatidiform moles: Morphologic evolution of the complete and partial mole. Am J Obstet Gynecol 1978;132:20-27.        [ Links ]

9.Fujikura T, Ezaki K, Nishimuna H. Chorionic villi and syncytial sprouts in spontaneous and induced abortions. Acta Obstet Gynecol Scand 1980;59:509-512.        [ Links ]

10.Jeffers MD, Grehan D, Gillan JE. Comparison of villous trophoblast proliferation rate in hydatidiform mole and non molar abortion by assessment of proliferating cell nuclear antigen expression. Placenta 1994;15:551-556.        [ Links ]

11.Shammel DP, Bocklage T. p 53, PCNA, and Ki-67 in hydropic molar and non molar placentas: An immunohistochemical study. Int J Gynecol Pathol 1996;15:158-166.        [ Links ]

12.Bell KA, Van Deerlin V, Addya K, Clevenger CV, Van Deerlin PG, Leonard DG. Molecular genetic testing from paraffinembedded tissue distinguishes nonmolar hydropic abortion from hydatidiform mole. Mol Diagn 1999;4:11-19.        [ Links ]

13.Rua S, Comino A, Fruttero A, Abrate M. DNA flow cytomeric analysis of abortions. A simple method for detects triploidy and tetraploidy in the trophoblastic cells. Pathologica 1995;87:107-111.        [ Links ]

14.Hee-Jae J. Placental mesenquimal dysplasia with different DNA ploid patterns. Placenta 1999;20:A35.        [ Links ]

15.Furuhashi M, Oda H, Nakashima T. Hidrops of placental stem villi complicated with fetal congenital adrenal hyperplasia. Arch Gynecol Obstet 2000;264-101-104.        [ Links ]

16.Jauniaux E, Hustin J. Chromosomally abnormal early ongoing pregnancies correlation of ultrasound and placental histological findings. Human Pathol 1998;29:1195-1199.        [ Links ]

17.Fukunaga M, Endo Y, Ushigone S. Clinicopathologic study of tetraploid hydropic villous tissues. Arch Pathol Lab Med 1996;120:596-572.        [ Links ]

18.Castejón OC, Belouche CR, Morett de Castejón V. Microscopia electrónica de barrido del estroma de la vellosidad molar. Rev Obstet Gynecol Venez 1998;58:17-22.        [ Links ]

19.Castejón OC, Vilchez M, Microscopia electrónica de barrido de la vellosidad placentaria hidrópica. Rev Obstet Gynecol 62 (en prensa).        [ Links ]

Correspondencia: Prof. Olivar C Castejón. Coordinador General del CIADANA. Prof. Titular en Biología celular. Laboratorio de Microscopia electrónica, Fac. Cs de la Salud. Universidad de Carabobo. Maracay. Apdo 4944.