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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Dimensionamiento del sistema de microfiltración para la producción de la Vacuna Pertussis elaborada en el Instituto Nacional de Higiene “Rafael Rangel”]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Tangential Flow Filtration (TFF) technology was evaluated to process Whole Cell Pertussis Vaccine which is produced by Bordetella pertussis bacterium. Microfiltration (MF) is used to recovery cells to produ ce the vaccine. MF pro - cesses was evaluated to specify the filters and corresponding critical process parameters to scale-up the application. As part of the evaluation, flow rate, processing time, yield and product attributes were characterized. The cell harvest con taining the Whole Cell Pertussis was processed using a laboratory scale TFF system designed to pro duct the TFF effect. The evaluation demonstrated that a cassette in suspended screen format and membrane with 0.2&#956;m pore is the right selection for the MF step. It showed 100% of cell recovery without cell transmission to the filtrate and average process flux of 54.00 L/m2h. These results were used to scale-up the application to process the industrial volume of 650 liters in 3 hours of processing time. Membrane area sizing of MF to be acquired is estimated in 20 m².]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Dimensionamiento del sistema de microfiltración para la producción de la Vacuna Pertussis elaborada en el  Instituto Nacional de Higiene “Rafael Rangel”</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><b>  Microfiltration sistem dimension for using in Pertussis Vaccine toxin  production in the Instituto Nacional de Higiene “Rafael Rangel”</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  JOSE G SANTIAGO D<sup>1</sup>, NELSON C ZAMORA<sup>1</sup>, NORIEGAQUINTANA<sup>1</sup> Y GABRIEL OLMO<sup>2</sup></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><sup>1</sup> Instituto Nacional de Higiene  “Rafael Rangel”, División de Producción de Vacunas Bacterianas.Venezuela</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><sup>2</sup> Pall Corporation, Puerto Rico.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Tangential Flow Filtration (TFF) technology was evaluated  to process Whole Cell Pertussis Vaccine which is produced  by Bordetella pertussis bacterium. Microfiltration (MF)  is used to recovery cells to produ ce the vaccine. MF processes was evaluated to specify the filters and corresponding  critical process parameters to scale-up the application.  As part of the evaluation, flow rate, processing time, yield  and product attributes were characterized. The cell harvest  con taining the Whole Cell Pertussis was processed using a  laboratory scale TFF system designed to pro duct the TFF  effect. The evaluation demonstrated that a cassette in suspended  screen format and membrane with 0.2&#956;m pore is  the right selection for the MF step. It showed 100% of cell  recovery without cell transmission to the filtrate and average  process flux of 54.00 L/m2h. These results were used to  scale-up the application to process the industrial volume of  650 liters in 3 hours of processing time. Membrane area sizing  of MF to be acquired is estimated in 20 m2.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Key words:</b> Whole Cell Pertussis, Cell Separation, Microfiltration.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se evaluó el uso de la tecnología de Flujo de Filtración Tangencial (FFT), para obtener la Vacuna Pertussis Celular a  partir de cultivos de la bacteria Bordetella pertussis, usando el proceso de Microfiltración (MF) a objeto de recuperar  el paquete celular. Se determinaron las características de  los filtros, condiciones de trabajo y el dimensionamiento del  equipo a adquirir para la nueva producción industrial de  Vacuna Pertussis Celular. Se evaluaron el flujo y tiempo de  proceso, rendimiento y las características del producto  obtenido. Utilizando cultivos con Vacuna Pertus sis en un  equipo de filtración de laboratorio, diseñado para producir  el efecto de FFT. Se seleccionó las membranas tipo cassettes,  formato Suspended Screen, porosidad 0,2 &#956;m, como  las adecuadas para el proceso de MF, ya que mostraron un  100% de recuperación del paquete celular sin transmisión  de células al filtrado y con un flujo promedio de filtrado de  54.00 L/m2h. Estos resultaron permitieron dimensionar,  considerando las variables a utilizar en la nueva producción  industrial (Volumen 650 Litros, Tiempo de Procesos, 3  a 4 horas), el área de filtración del equipo de MF a adquirir,  estimado en 20 m2 .</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Palabras clave:</b> Vacuna Pertussis Celular, Separación Celular,  Microfiltración.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">INTRODUCCIÓN</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La Vacuna Pertussis Celular consiste en una suspensión  de una o más cepas de células inactivadas de la  bacteria Bordetella pertussis a objeto de completar el  mosaico completo de los antígenos identificados como 1,  2 y 3(1). Su actividad biológica puede ser inhibida con tratamiento  térmico o agregando formaldehído(2) al culti vo  sin destruir la integridad celular y la estructura de la proteínas  y así obtener la Vacuna Pertussis Celular, la cual  es utilizada como antígeno para la formulación de la Va -  cuna Combinada DPT (Toxoide Diftérico, Vacuna Per tus -  sis y Toxoide Tetánico), producida en el Instituto Na cio nal  de Higiene “Rafael Rangel” (INHRR)<sup>(3)</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Con el fin de incrementar la capacidad de producción,  actualizar la tecnología e incursionar en nuevos  mercados, el INHRR está construyendo una nueva planta  para la producción de Vacunas Simples y Combinadas  inactivadas en base a la Vacuna DPT, con una capacidad  de producción estimada en 42.000.000 de dosis  anuales de Vacuna Pertussis Celular. Esto implica un  aumento significativo en la producción, un cambio de  tecnología y por ende una selección de los equipos a utilizar  para la separación celular y concentración de la proteína,  a objeto de dimensionar el equipamiento adecuado  cónsono con los criterios de calidad internacionales  que rigen la producción de Biológicos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para la obtención de la Vacuna Pertussis Celular, es  necesario recuperar las células obtenidas durante el proceso  de producción en fermentadores. Este proceso consiste en la eliminación del medio líquido y la recuperación  y concentración de las células presentes en dicho medio  líquido a través de un proceso denominado MF(2,4).  En este sentido, se realizaron pruebas piloto utilizando  diferentes formatos de membranas elaboradas con  Polyetersulfona (PES), con el fin de determinar el flujo y  tiempo de proceso, rendimiento y características del producto  obtenido y de esta manera dimensionar el área de  filtración del equipo para realizar el proceso de MF de la  Vacuna Pertussis Celular a ser adquiridos para la Nueva  Planta de Producción de Vacunas del INHRR.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Vacuna Pertussis Celular:</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se utilizaron las cepas liofilizadas 134 y 509 de la  bac teria Bordetella pertussis, para la producción de la  Va cuna Pertussis Celular siguiendo los procedimientos  descritos por Santiago(1). Se utilizó el lote B-131 de la Vacuna Pertussis  Celular para realizar las pruebas de  MF.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Pruebas de Control</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La concentración de la Vacuna  Pertussis Celular se  de terminó utilizando la técnica de Unidades de Opa ci dad  por mililitro (Uop/ml)(5), donde se mide el grado de tur bi -  dez que presenta la vacuna, a través de un Espectrofotómetro “Spectronic 20” a una longitud de onda de 530 nm,  comparado con la preparación de la Referencia Internacional de Opacidad la cual corresponde a 10 Uop/ml y  puede ser considerado, para propósitos prácticos, el  equi valente a 10 x 109 células/ml.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Transmisión de Células al  Filtrado</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La presencia de células en los procesos de filtración  fue evaluada observando las muestras en un microscopio  óptico a 100x. Es importante señalar, que esta prueba  no fue realizada para determinar pureza del cultivo  sino transmisión de células a través de las membranas.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Pruebas de MF</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las pruebas de MF se realizaron  en un equipo de  laboratorio Centramate, suministrado por la empresa  Pall Corporation, compatible con todos los formatos de  membranas de las principales firmas comerciales del  mercado, el cual es diseñado y construido para producir  el efecto de FFT en membranas, formato tipo cassettes,  con un área de filtración de 0.1 m2 por cassette. Se seleccionaron membranas nuevas de diferentes formatos y  porosidades de la firma Pall, en virtud que no se tiene  experiencia el Latinoamérica en el uso de estas membranas  para la producción de toxina diftérica, siguiendo las  condiciones de trabajo que se especifican en la <a href="#t1">tabla 1</a>.  Para realizar cada prueba de MF se utilizaron 6 Litros del  cultivo obtenido directamente del proceso de producción  de la Vacuna Pertussis Celular a una concentración de  50 Uo/ml.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para la realización de las pruebas de MF, se ensambló  un sistema como se observa en la <a href="#f1">figura 1</a>. Se colocó  el producto a filtrar en el Envase correspondiente y por  medio de una bomba peristáltica, se hizo pasar dicho  producto a través de la unidad de filtración, donde se instalaron  los diferentes formatos de los filtros a probar. Por  la línea de Producto filtrado, debe pasar el producto que  ha atravesado el filtro (transmisión) y por la Línea de  Producto Retenido debe retornar al Envase inicial, el  producto que no pudo ser filtrado. La presión de entrada (PE) se estableció con  el manómetro instalado en la Línea de Alimentación, entre la bomba y el módulo del filtro.  La presión de Retorno (PR) se estableció con el manómetro instalado en la Línea de Producto Retenido,  entre el filtro y la Válvula de retorno. La Diferencia de Presión (DP) es la resta entre PE y PR. La Presión de Filtrado (PF) se estableció con el manómetro instalado en  la Línea de Producto Filtrado, entre el filtro y la válvula de  filtrado. La Presión Transmembrana (PTM) se estimó como el resultado obtenido al promediar los valores de las  PE y PR y restarlo al valor obtenido en el manómetro  ubi cado en la Línea de Filtrado. El flujo del filtrado se determinó dividiendo el valor obtenido en el flujómetro instalado  en la Línea de Producto Filtrado, entre el área de  filtración del cassette. El Flujo Promedio de Filtrado se  calculó promediando los valores del flujo del filtrado ob -  tenidos durante el proceso de filtración.</font></p>     <p align="justify"><a name="t1"></a></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/inhrr/v43n1/art04t1.gif" width="589" height="144"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Tabla 1  Características de las membranas y condiciones de trabajo establecidas para las  pruebas de MF</font></p>     <p align="justify"><a name="f1"></a></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/inhrr/v43n1/art04f1.gif" width="576" height="460"></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Figura 1. Diagrama esquemático  del diseño  para la realización de las pruebas de MF y UF.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las pruebas a realizar  consistieron en determinar el  efecto del tiempo y de la PTM sobre el flujo de proceso,  para lo cual se recirculó todo el sistema, colocándose las  Líneas de Retorno de Productos y de Filtrado de Producto</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">to en el Envase de Producto a  Filtrar, estableciéndose las  condiciones según lo indica cada ensayo. Posteriormente  y con el valor de la PTM establecido, se realizó el efecto  de la concentración del Producto a Filtrar sobre el flujo de  proceso, lo que constituye el proceso de filtración de la  Vacuna Pertussis Celular.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para la obtención de la Vacuna Pertussis Celular una  vez culminado su proceso de producción en fermentadores,  es necesario realizar la recuperación de las bacterias  obtenidas en el cultivo. Este proceso puede realizarse  de diferentes maneras: usando centrifugas de flujo  continuo, filtración convencional con cartuchos o membranas,  o filtración usando la tecnología FFT. Esta tecnología  consiste en someter al cultivo a un proceso de filtración  de forma tangencial (no de forma directa como en el  caso de la filtración convencional), lo cual permite que  las membranas no se colapsen por el taponamiento prematuro  producto de la formación de depósitos celulares  que ocurren durante la interacción con la membrana  (polarización), debido al limitado espacio que hay en los  canales por donde circula el fluido. Con la FFT es posible  utilizar mayores cantidades de volúmenes de producto  por área de filtración, con velocidades constantes de flujo  de trabajo en el tiempo. La incorporación de esta tecnología  permite realizar el proceso de separación celular de  forma más limpia, segura y en menor tiempo, en virtud  que es posible conectar el equipo con Tecnología de FFT  en un circuito cerrado con el fermentador y de esta manera minimizar los riesgos de contaminación del producto  o del operario durante la manipulación del proceso, lo  cual es una condición indispensable para el cumplimiento  de las Buenas Prácticas de Manufactura en la producción  de Biológicos<sup>(2)</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para la realización de las pruebas de MF, se seleccionaron  las membranas Supor (rango de trabajo desde 0.1  hasta 1.2&#956;m), fabricadas en PES, formatos Medium  Screen (MS) de 0.2 &#956;m y Suspended Screen (SS) 0.2 &#956;m.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las membranas de  polyetersulfona (PES) son membranas construidas con polímeros de PES pura. Este  material permite eliminar partículas durante los procesos  de filtración general y sus características hidrofílicas y de  baja fijación de las proteínas las hacen especialmente  apropiada para su uso en aplicaciones biomédicas(6). El  formato MS permite el procesamiento de fluidos clarificados  de mediana o baja viscosidad, en cambio el formato  SS, permite el procesamiento de fluidos no clarificados  como cosechas celulares provenientes de fermentadores,  así como también soluciones con detritos o partículas  no solubles y de alta viscosidad. El efecto de suspendido  se crea incorporando al diseño de construcción del  cassette, un espaciador de poliofelina (180 &#956;m), entre la  malla de poliéster (Screen) y la membrana<sup>(7)</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los resultados del efecto del tiempo sobre el flujo de  proceso (ver <a href="#g1">gráfico 1</a>), mostraron una disminución proporcional  del flujo de proceso a medida que transcurrió el  tiempo de corrida, para todos los formatos de membranas  probados. Ello es debido a la polarización de la membrana, lo cual disminuyó progresivamente sus capacidades de filtración, siendo el formato SS 0.2 &#956;m, el  que mostró mejor comportamiento en el tiempo. Por otra  parte, a medida que se incrementó la PTM, desde 0.25  hasta 1.5 Bar (ver <a href="#g2">gráfico 2</a>), se observó un aumento significativo  del flujo de proceso con la membrana formato  SS de 0.2 &#956;m hasta alcanzar una PTM de 1 Bar. Valores  superiores de la PTM, mostraron una leve disminución  del Flujo de Procesos. El formato MS de 0.2 &#956;m, mostró  valores de flujos de proceso inferiores y estables durante  el ensayo. Los efectos de polarización se alcanzaron  cuando la PTM superó el valor de 1.0 Bar, por lo que se  estableció valores iguales o inferiores a 1.0 bar para los  siguientes ensayos.</font></p>     <p align="justify"><a name="g1"></a></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/inhrr/v43n1/art04g1.gif" width="488" height="363"></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="g2"></a></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/inhrr/v43n1/art04g2.gif" width="491" height="314"></p>     
<p align="justify"><a name="g3"></a></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/inhrr/v43n1/art04g3.gif" width="497" height="354"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Para cada uno de los formatos  de los filtros empleados  en el proceso de MF, se establecieron las condiciones  que se indican en el <a href="#g3">gráfico 3</a>, con el fin de determinar  como se afecta el Flujo de Proceso a medida que se  va concentrando el producto en el Envase de Producto a  filtrar, como consecuencia del retorno de las células al  mismo. En el <a href="#g3">gráfico 3</a>, se puede observar para los dos  formatos, que a medida que se va concentrado el producto  a filtrar, no se observa un efecto significativo de  polarización de la membrana, lográndose alcanzar en  ambos caso un factor de concentración de 20 x, sin embargo el flujo de proceso de la membrana formato SS,  duplica los valores obtenidos con el formato MS.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los resultados obtenidos  indicaron que el cassette,  formato MS 0.2 &#956;m, aunque presentó un flujo promedio  de filtrado aceptable (21.00 L/m2h) y ausencia de células  en el filtrado, no fue considerado en virtud que sólo se  pudo recuperar un 85% de las células en el retenido, por  lo que se sugirió realizar un tercer lavado para recuperar el resto de las  células, incrementándose el tiempo de  pro ceso. El cassette, formato SS 0.2 &#956;m, presentó un  me jor flujo promedio de filtrado (54.00 L/m2h), 95% de  recuperación de las células en el retenido y ausencia  de células en el filtrado, indicando que desde el punto de  vista de la porosidad y compatibilidad, cumple con las  especificaciones requeridas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El comportamiento observado en ambas membranas,  se atribuye al tamaño de las células, las cuales permanecen  en su mayoría en su forma integral ejerciendo  un efecto de polarización de la membrana en el tiempo,  los cuales a medida que interaccionan con la membrana  se van depositando, limitando el proceso de filtración y  por ende disminuyendo la recuperación de las mismas,  razón por la cual es importante realizar lavados posteriores  para recuperar la totalidad de las células, favoreciendo,  de esta manera, a la membrana formato SS 0.2 &#956;m  por el flujo promedio de filtrado alcanzado.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Estos resultados demostraron que la membrana, formato  SS 0,2 &#956;m, es la seleccionada para realizar el procedimiento  de separación celular de la Vacuna Pertussis.  En este sentido y tomando en consideración los resultados  obtenidos, se dimensionó el área de filtración para el  equipo de MF de acuerdo a la siguiente formula:</font></p>     <p align="justify"> <img border="0" src="/img/fbpe/inhrr/v43n1/art04g4.gif" width="388" height="105"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Donde:  Volumen total a procesar en la nueva planta de producción  de la Vacuna Pertussis, considerando 50 L Ino cu -  lo, 500L Medio Fermentador, 5 lavados a razón de 20L  cada uno 100 L, Total: 650 L. Tiempo de procesamiento  deseado: 3 h. Flujo medio de trabajo estimado por este  estudio para la membrana, formato SS 0.2 &#956;m: 54.00  L/hm2.  Por lo tanto, el área de filtración calculada para el  equipo de MF es de: 4.01 m2, tomando un factor de seguridad del 20 % de área, quedaría: 4.81 m2. Entonces, y  considerando que la máxima concentración posible a  obtener de la Vacuna Pertussis Celular en Bioreactores es de 92 Uo/ml, el equipo  de MF a ser adquirido por el  INHRR para realizar el proceso de separación celular de la  vacuna Pertussis, debe ser un modelo de sistema de MF,  di señado y construido para un área máxima de filtración  de 20.00 m2.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Con los resultados obtenidos en  este trabajo y la experiencia de los actuales procesos de producción en vacunas similares desarrollados en los Institutos Finlay  (Cuba) y Butantan (Brasil), se probaron las membranas  específicas usadas por dichas instituciones, tanto en MF  como en UF de otras firmas comerciales reconocidas,  obteniéndose resultados similares a las membranas seleccionadas en este trabajo (datos no reportados), lo que  permitió identificar los formatos específicos de todas las  membranas de las firmas comerciales reconocidas, que  son compatibles con la producción de la toxina diftérica  elaborada en el INHRR, a objeto de disponer de diferentes  opciones técnicas y económicas en el momento de  ad quirir dichas membranas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">BIBLIOGRAFÍA</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  (1) Santiago JG, Zamora N, De La Rosa E, Carrión C, Padrón  P, Hernández M, et al. Optimización del Proceso de Pro -  ducción de la Vacuna Pertussis. Acta Cient. Venez. 1995  46 (2): 129-134.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2242540&pid=S0798-0477201200010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  (2) Cardoso D. Paquete Tecnológico para la obtención de vacunas bacterianas con un enfoque de proceso unitario.  Tesis Doctoral, Instituto Superior Politécnico, Cuba. 2000.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2242541&pid=S0798-0477201200010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  (3) Santiago JG, Zamora N, Ibarz MT y Pombo M. Evaluación  y mejoramiento del aspecto físico de las Vacunas Per tus -  sis y DPT elaboradas en el INHRR. Rev. Inst. Nac. Hig. Ra -  fael Rangel.1998; 29: 41-49.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  (4) Van Hemert P. Vaccine production as a unit process. Rijks.  Instituut voor de Volksgezondheid. Vaccine Department,  Bilthoven, Netherlands 1971, 76-101.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2242543&pid=S0798-0477201200010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->  (5) World Health Organization. Manual for the production and  control of vaccines. Pertussis vaccine BLG/UNDP/77.3.  Rev. 1, 1977.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2242544&pid=S0798-0477201200010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  (6) Howel JA, Sánchez V, Field RW. Membranes in bioprocessing: theory and applications. Chapman &amp; Hall. London  1993. 203-242.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2242545&pid=S0798-0477201200010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  (7) Mulder M. Membrane processes. Chapter VI. In: Basic principles of membrane technology, second edition, Kluwer  Academic Publishers, 1996. 280-306.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2242546&pid=S0798-0477201200010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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