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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Respuesta humoral de IgM e IgG en cerdos Criollos Mexicanos y Comercial, predestete sin reto inmunológico inducido]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma de Nayarit Ciudad de la Cultura Amado Nervo ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In the present study the IgM and IgG humoral response was analyzed and compared between Mexican Creole Pigs (Cuino pig and mexican hairless pig) and commercial pigs (CP) F1 Yorkshire-Landrace, to establish differences that allowed to use them like indicator of resistance to disease. Seventy six weanling pigs to the 45 days of age without vaccination were included. A blood sample was obtained at weaning to evaluate the IgM and IgG antibody level to the bovine Pig Mixed Bacterin, contains stocks of Salmonella, Escherichia coli and Pasteurella, by ELISA. The sonicated Bacterin was used to sensitize plates. The IgM anti-bacterin levels were higher in mexican haerless pig (MHP) that in the other breeds (P<0,0001). No differences in the IgG anti bacterin levels between Cuino Pigs (CC) and MHP were found, nevertheless both Creole breeds were different that the CP (P<0,0001), who showed a lower antibody response. Our results show that MHP and CC have both a better humoral response to Salmonella, Escherichia coli and Pasteurella than CP.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[respuesta humoral]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Respuesta humoral de IgM e IgG en  cerdos Criollos Mexicanos y Comercial, predestete sin reto inmunológico inducido</font></b></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Karina Mejía-Martínez, Clemente Lemus-Flores *, José Francisco Zambrano-Zaragoza  y Carlos A. González-Morteo.</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Universidad Autónoma de Nayarit. Ciudad de la Cultura Amado Nervo. CP. 63190.  Tepic. Nayarit, México. * Correo electrónico: <a href="mailto:drclemus@yahoo.com.mx">drclemus@yahoo.com.mx</a>. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el presente estudio se analizó la respuesta humoral IgM e IgG en Cerdos  Criollos Mexicanos (Cerdo Cuino  y Cerdo Pelón Mexicano), comparados con cerdos comerciales (CCO), F1Yorkshire-Landrace,  para establecer  diferencias que pudieran ser utilizadas como indicadores de resistencias a  enfermedades. La muestra fue de 76  cerdos destetados a los 45 días de edad sin vacunación, se tomaron muestras de  sangre al destete para evaluar  niveles de anticuerpos IgM e IgG por ELISA, contra la vacuna Bacterina Mixta  Porcina, que contiene cepas de  Salmonella, Escherichia coli y Pasteurella, utilizando la misma mezcla  antigénica sonicada para sensibilizar  las placas. Los niveles de IgM anti-Bacterina Mixta Porcina fueron más altos en  el Cerdo Pelón Mexicano  (CPM) que en las otras razas (P&lt;0,0001). Los niveles de anticuerpos IgG anti-Bacterina  Mixta Porcina entre el  Cerdo Cuino (CC) y el CPM, fueron iguales, sin embargo, ambas razas criollas  fueron diferentes que los CCO,  (P&lt;0,0001), que tuvieron menor respuesta. Los resultados indican que los CPM, y  en menor medida los CC,  tienen una mejor respuesta humoral contra Salmonella, Escherichia coli y  Pasteurella que los CCO sin reto  inmunológico inducido.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Palabras clave: </b>respuesta humoral, cerdo criollo mexicano,  inmunoglobulinas.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Humoral immune response of IgM and IgG in Mexican Creole pig and commercial  preweaning without induced immunological challenge</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  In the present study the IgM and IgG humoral response was analyzed and compared  between Mexican Creole  Pigs (Cuino pig and mexican hairless pig) and commercial pigs (CP) F1 Yorkshire-Landrace,  to establish  differences that allowed to use them like indicator of resistance to disease.  Seventy six weanling pigs to the 45  days of age without vaccination were included. A blood sample was obtained at  weaning to evaluate the IgM  and IgG antibody level to the bovine Pig Mixed Bacterin, contains stocks of  Salmonella, Escherichia coli and  Pasteurella, by ELISA. The sonicated Bacterin was used to sensitize plates. The  IgM anti-bacterin levels were  higher in mexican haerless pig (MHP) that in the other breeds (P&lt;0,0001). No  differences in the IgG anti bacterin  levels between Cuino Pigs (CC) and MHP were found, nevertheless both Creole  breeds were different that the  CP (P&lt;0,0001), who showed a lower antibody response. Our results show that MHP  and CC have both a better  humoral response to Salmonella, Escherichia coli and Pasteurella than CP.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Keywords:</b> humoral response, mexican creole pigs, immunoglobulines.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Recibido:</b> 03/04/09 <b> Aceptado:</b> 07/10/10</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">INTRODUCCIÓN</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Un alto porcentaje de razas domésticas de cerdos  que proporcionan alimento a la humanidad tienden  a su desaparición; es de mencionarse que las razas  de cerdos criollos cuentan comúnmente con mayor  capacidad de adaptación a condiciones difíciles de  sobreviviencia: tolerancia a enfermedades infecciosas  y parasitarias, sequía y pobreza en la calidad  alimenticia (Sierra 2003, Tapia 2008), que las hacen  de interés para el establecimiento de características  que permitan mejorar a futuro las razas de cerdos  (Lemus et al., 2003, Hurtado et al., 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La gran importancia agropecuaria del cerdo  ha propiciado un notable incremento en las  investigaciones que tienen por objeto conocer con  detalle el sistema inmunológico de este animal. Sin  embargo, es necesario el conocimiento más profundo  del sistema inmunológico porcino, para que se refleje  en la reducción de las pérdidas económicas que sufren  quienes se dedican a la cría e industrialización de las  diferentes razas de cerdos (Saalmüller 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los anticuerpos forman parte de la rama humoral  de la respuesta inmunológica, además de ser  producidos por linfocitos B, en respuesta a un estímulo  antigénico, representan uno de los mecanismos de  defensa más importantes en el organismo. En el  cerdo se han descrito cuatro isotipos de anticuerpos,  IgM, IgG, IgA e IgE, aunque no se ha descartado la  existencia de IgD porcina, ya que los estudios no han  sido concluyentes (Sánchez-Vizcaíno, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La respuesta de anticuerpos puede dividirse  en respuesta primaria y secundaria. La respuesta  primaria, caracterizada por la producción de  anticuerpos de clase IgM, de 5 a 14 días después del  reto antigénico. Dentro de las funciones biológicas  de esta clase de anticuerpos, esta la de activar  complemento, neutralización viral y actividad  bactericida (Abbas 2004).  La respuesta secundaria se caracteriza por  la producción de otros isotipos de anticuerpos,  principalmente IgG, que es el de mayor concentración  en el cerdo. Aparece después de 15 días del reto, y  en esta respuesta se genera memoria inmunológica.  IgG tiene múltiples funciones biológicas, entre las  que se encuentran la actividad bactericida, antiviral,  citotóxica y la opsonización de microorganismos  (Tizard 2009).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Debido a la presión de selección intensa que  se realiza actualmente en las razas de cerdos con  alta explotación comercial, se ha propiciado que  disminuyan notablemente su variabilidad genética;  esto ha ocasionado la fijación de mutaciones genéticas  indeseables, así como la disminución de resistencia  a enfermedades. En algunos estudios moleculares,  se ha demostrado que los cerdos criollos tienen  mayor heterocigocidad, por lo que esto pudiera  ser determinante de una posible resistencia a  enfermedades (Lemus et al., 2001; Canul, et al., 2005;  Martínez et al., 2000; 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En Nayarit, México; como en algunos países  de América, se dispone de cerdos criollos que  han sobrevivido por más de 500 años sin control  sistematizado de producción ni salud, lo que hace  suponer que cuentan con una alta resistencia a  enfermedades (Benítez y Sánchez, 2001; Lemus y  Alonso, 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El objetivo de este trabajo fue comparar la  respuesta inmunológica de Cerdos Criollos Mexicanos  y Cerdos Comerciales (CCO), F1 Yorkshire-Landrace  pre destete sin reto inmunológico inducido.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Animales</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se emplearon 76 animales criados y procedentes  de la Unidad Académica de Medicina Veterinaria y  Zootecnia de la Universidad Autónoma de Nayarit,  divididos en tres grupos:  25 cerdos de la raza Cerdo Pelón Mexicano (CPM).  25 cerdos de la raza Cerdo Cuino (CC).  26 cerdos de la raza comercial (F1 Yorshire-  Landrace; CCO).  Los cerdos fueron alojados y agrupados en corrales  de piso, en condiciones ambientales naturales sin  control artificial del clima, bajo el mismo manejo de  alimentación y sin programa de vacunación.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Obtención de las muestras biológicas</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se extrajeron 5 ml de sangre de la vena cava de  cada cerdo en tubos sin anticoagulante a los 45 días  de nacidos, justo antes del destete sin inmunizar, para  determinar los niveles de IgM e IgG contra la vacuna  Bacterina Mixta Porcina que contiene cepas de  Salmonella, Escherichia coli y Pasteurella (Intervet/</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">SAGARPA-B-0273-133). El suero  se obtuvo por  centrifugación a 1500 rpm durante 15 minutos y se  guardó en alícuotas a -20°C hasta su uso.  Antígeno  Cinco mililitros de la Bacterina Mixta Porcina  se sonicaron (30 ciclos de 30 segundos a intervalos  de 1 minuto), determinándose la concentración de  proteínas por el método de Lowry (Lowry et al, 1951).  Esta mezcla antigénica fue guardada en alícuotas a  -20°C.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Determinación de los niveles de IgG e IgM anti Bacterina Mixta Porcina</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se sensibilizaron placas de poliestireno de 96  pozos de fondo plano (Corning), con 1&#956;g del antígeno/  pozo, diluido en regulador de carbonatos pH 9,6 y se  incubó toda la noche a 4°C. Posteriormente, la placa  se lavó 3 veces con PBS-Tween al 0,05 % (PBS-T) y se  bloqueó con leche descremada al 5% diluida en PBSleche  (PBS-L), luego fue incubado 1 hora a 37°C.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Después del bloqueo, se repitió el proceso de  lavado, adicionándose el suero problema diluido 1:100  en PBS-L y se incubó una hora a 37°C. Transcurrido  el tiempo de incubación se repitió el proceso de  lavado y se adicionó el anticuerpo conjugado, IgG  de cabra anti-IgM o anti-IgG de cerdo, conjugado a  peroxidasa (RocklandR), diluido 1:5000 en regulador  de bloqueo y se incubó una hora a 37°C. Enseguida se  repitió el proceso de lavado, se reveló la interacción  con o-fenilendiamina (0,2 mg*ml-1) y 0,012% de  H2O2 en regulador citrato-fosfato (ácido cítrico  al 0,1M y Na2HPO4 al 0,2M) pH 5,0 y se incubó  a temperatura ambiente, en oscuridad durante 25  minutos para IgM y 15 minutos para IgG. La reacción  se detuvo adicionando 50 &#956;L de H2SO4 8N. Se leyó  la absorbancia a 490 nanómetros (nm), en un lector  de microplacas de ELISA (Bio-Rad modelo 680). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En todos los casos se restó la  absorbancia obtenida de los  controles sin antígeno y fue el valor reportado en cada  medición.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  Análisis estadístico</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se utilizó la prueba de Kruskal-Wallis para  comparar los niveles de IgM e IgG anti-Bacterina  Mixta Porcina en las diferentes razas de cerdos y  la prueba de Wilcoxon, para conocer las diferencias  entre los distintos pares de comparaciones raciales.  Siguiendo las recomendaciones de Castilla y Cravioto  (2002), para muestras pequeñas y datos que no se  ajustan a la normalidad. En todos los casos se utilizó  el programa estadístico SAS (2002).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En todos los lechones de las 3 razas se detectaron  anticuerpos IgM e IgG anti-Bacterina Mixta Porcina.  No se encontraron diferencias estadísticamente  significativas (P&gt;0,05), en los niveles de anticuerpos  IgM entre el CCO (con una media de 0,125 y una  desviación estándar de ± 0,039) y CC (con una media  de 0,151 y una desviación estándar de ± 0,065);  mientras que la raza CPM (con una media de 0,252 y  una desviación estándar de ± 0,112) mostró niveles de  IgM significativamente mas elevados que en las otras  dos razas (P&lt;0,001; Figura 1).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el caso de los niveles de IgG anti-Bacterina  Mixta Porcina, se encontró que la raza comercial  CCO, presenta niveles significativamente menores  (media 0,102 y desviación estándar ± 0,031), que entre  las razas criollas (P&lt;0,001). Los niveles de IgG en  la raza CPM (con una media de 0.327 ± y desviación  estándar 0,182), y CC (con una media de 0,244 y  desviación estándar ± 0,111), no mostraron diferencias  estadísticamente significativas (Figura 2).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Como puede observarse, las tres razas de cerdo  analizadas presentan anticuerpos de clase IgM e  IgG. Sin embargo, la raza CPM presenta mayores  niveles de anticuerpos tipo IgM que las razas CCO y  CC. Esto puede deberse a que han obtenido mayores  concentraciones de IgM a través de la leche materna,  ya que, se ha demostrado que en la placenta no existe  traslado alguno de inmunoglobulinas maternales por  circulación fetal, por lo tanto, el lechón al nacimiento,  se encuentra prácticamente desprovisto de anticuerpos  y es hasta la tercera semana de vida que comienza  su propia producción y sólo hasta la sexta u octava  es cuando completa su maduración inmunológica  (Newby et al., 1982; Tlaskalowa-Hogenova et al.,  1994; Buxadé, 1996).</font></p>     <p align="justify"><a name="F1"></a></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/zt/v28n2/art12f1.gif" width="577" height="337"></p>     
<p align="justify"><a name="f2"></a></p>     <p align="center"> <img border="0" src="/img/fbpe/zt/v28n2/art12f2.gif" width="571" height="354"></p>     
<p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Supuesto que fortalecen Allen  et al. (2000),  cuando mencionan que la estructura histológica de  la placenta no permite la transferencia al útero de  inmunoglobulinas, esto reafirma que las secreciones  mamarias (amamantamiento), son las únicas fuentes  de transferencia de ellas, lo que permitirá al lechón  pueda ser protegido por los anticuerpos de la madre, mientras alcanza su madurez  inmunológica; factor  que se considera que en este estudio pudo influir y  que las cantidades de inmunoglobulinas medidas  pueden ser producto de los anticuerpos de la madre.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Como resultado del amamantamiento se  obtuvieron respuestas similares a las obtenidas  por Gómez, et al. (1998), donde midieron variables  inmunológicas en cerdos comerciales con diferente  alimentación y observaron que aquellos cerdos  alimentados con calostro de cerda, presentaron mayor  resistencia inmunológica que los alimentados con  otros productos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Por otro lado, Brown et al. (2006), concluyeron que  el sistema inmune porcino va cambiando conforme va  declinando la inmunidad pasiva, estos cambios son  muy importantes en la sobrevivencia de los cerdos, ya  que, se hace notar que en siguientes retos antigénicos  va madurando el sistema inmunológico, mientras la  protección por la inmunidad maternal pasiva declina,  efecto que hace a los animales más resistentes, de  acuerdo con esto es probable que los CPM maduren su  sistema más pronto al tener mayor respuesta inmune.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para el caso de IgG se observó que todas las razas  presentan esta clase de anticuerpos, aunque no se  encontró diferencia en sus valores entre las razas  criollas, CPM y CC. Para el caso de la raza de CCO se  encontró que presentan menores niveles que las otras  dos razas analizadas. Esto es importante, debido a  que los anticuerpos de clase IgG son los principales  en la respuesta secundaria, que además asegura que  hay memoria inmunológica, con lo que los cerdos  estarían en mejores condiciones de respuesta hacia  los patógenos. El que presenten niveles mayores  podría indicar que tienen un mayor número de  clonas con receptores para antígenos de las bacterias  analizadas, lo que nuevamente redundaría en una  mejor protección.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Aunque existen escasos estudios realizados con  la finalidad de medir la respuesta inmune en cerdos  criollos, Guerrero et al. (2008a), midieron la respuesta  inmune celular en CPM comparándola con la de los  cerdos comerciales; los resultados mostraron una  respuesta similar en la linfoproliferación y fagocitosis  en ambos genotipos de cerdos, antes y después de la  etapa del destete. Sin embargo, existió una tendencia  a una mayor respuesta inmune celular en los CPM que  en los CCO. Lo que hace considerar que la respuesta  inmune celular del CPM tiende a ser mejor que la de  un cerdo comercial mejorado, como el Yorkshire x  Landrace, debido quizá a su memoria inmunológica,  rusticidad, a su mejor adaptación al medio y a que  pueden ser reservorios de determinantes genéticos de  resistencia natural a diferentes enfermedades.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Esto es importante en cerdos nativos ya que la  inmunidad innata puede controlar la infección hasta  que la respuesta inmune adaptativa tome el control.  Asimismo, la inmunidad innata es esencial para  la inducción y dirección de la respuesta inmune  adaptativa (Janeway, 2000). Este sistema es un  requisito previo para una eficaz inmunidad adaptativa  (Fox y Harrison 2000). Al contacto con la mayoría  de microorganismos, se activa el reconocimiento al  patógeno producto de un juego de receptores.  Otro estudio realizado por Guerrero et al.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  (2008b), con la finalidad de comparar la capacidad de  respuesta inmunológica por medio de los niveles de  IgG en cerdos CPM y CCO, en 4 etapas diferentes  de maduración inmunológica (28, 32, 45 días de  edad sin reto inmunológico y 60 días de edad de los  cerdos después del reto inmunológico), se observaron  resultados similares a nuestro estudio; los niveles de  IgG en los CPM fueron mayores en las diferentes  etapas de medición. Por lo que, se puede inferir que la  respuesta inmune del CPM, tiende a ser mayor que la  del CCO, debido quizá a su memoria inmunológica,  rusticidad y a su mejor adaptación al medio.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se ha reportado que la variación genética en  las poblaciones criollas de México es mayor que  en las poblaciones de raza comercial, lo que puede  ser un factor a considerar para el desarrollo de una  respuesta inmunológica, o bien, esta variabilidad  genética propiciar una mejor respuesta inmune. Los  Cerdos Criollos locales se encuentran separados  genéticamente de los cerdos modernos, debido a la  falta de programas sistematizados de mejora genética  (Martínez et al., 2000; Lemus et al., 2001; Martínez  et al., 2005; Lemus 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En nuestro país no se han aplicado programas de  selección productiva para este tipo de cerdos criollos;  sin embargo, han sobrevivido por más de 500 años  a problemas de zoonosis, lo que hace suponer que  tienen alta resistencia a enfermedades, además de  representar un reservorio genético para obtener  variedades nacionales mejor adaptadas. (Benítez y  Sánchez 2001; Lemus et al., 2001; Sierra et al., 2005;  Canul et al., 2005).</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">CONCLUSIONES</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los Cerdos Pelón Mexicano presentaron  valores mas altos de IgM (P&lt;0,001) que los Cuinos  y Comerciales, y al igual que los cerdos Cuinos  presentaron mayores niveles de IgG (P&lt;0,001); estos  resultados indican que los cerdos criollos al destete  tuvieron mayor respuesta humoral.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Proyecto financiado por SAGARPACONACYT-  1472-2002.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">  LITERATURA CITADA.</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. Abbas K. A. y H. A. Lichtman.  2004. Inmunología Celular y Molecular. Quinta Edición. Editorial GEA Consultoría  Editorial. SAUNDERS. Elsevier Science and Elsevier Imprim, Madrid España. </font> </p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2. Allen W. E., Y. Kyoung-Jin  and J. Zimmerman. 2000. Immune Components in Porcina Mammary Secretions. Viral  Immunology. 13-3:383-397. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674316&pid=S0798-7269201000020001200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3. Benítez O. W., y D. M.  Sánchez. 2001. Los cerdos criollos en América Latina. En FAO (ed.). Los Cerdos  Locales en los Sistemas Tradicionales de Producción. Estudio FAO Producción y  Sanidad Animal. 148:13-35. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674317&pid=S0798-7269201000020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">4. Buxadé C. C., 1996.  Zootecnia. Bases de Producción animal. Tomo VI. Editorial Mundi Prensa.  Barcelona España. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674318&pid=S0798-7269201000020001200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">5. Brown C. D., V. C. Maxwell,  F. G. Erf, E. M. Davis, S. Singh and B. Z. Johnson. 2006. Ontogeny of T  Lymphocytes and intestinal morphological characteristics in neonatal pigs at  different ages in the postnatal period. J. Anim. Sci. 84:567-578. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674319&pid=S0798-7269201000020001200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">6. Canul S. M., V. A. Sierra.,  M. A. Martínez., O. J. Ortiz, J. V. Delgado, J. L. Vega-Pla, y G. F Pérez. 2005.  Caracterización genética del cerdo pelón mexicano mediante marcadores  moleculares. Arch. Zootec. 54:267-272. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674320&pid=S0798-7269201000020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">7. Castilla Serna L. y J.  Cravioto. 2002. Estadística simplificada para la investigación en ciencias de la  salud. Editorial Trillas. México, D.F. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Fox A. and L. C. Harrison, 2000. Innate  immunity and graft rejection. Inmunological Reviews. 173:141-147. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674322&pid=S0798-7269201000020001200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">9. Hurtado, E., C. González y  H. Vecchionacce. 2005. Estudio morfológico del cerdo criollo del estado Apure,  Venezuela. Zootecnia Trop. 23(1):17-26. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674323&pid=S0798-7269201000020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">10. Gómez G. G., O. Phillips and  A. R. Goforth. 1998. Effect of Immunoglobulin Source on Survival, Growth, and  Hematological and Immunological Variables in Pigs. J. Anim. Sci 76:1-7. </font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674324&pid=S0798-7269201000020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">11. Guerrero Q. L. A., D. A. F. Villagómez, G. Zaitzeva, C. Lemus, J. J. Taylor, J. Galindo, D. R. Sánchez, M.  A. Ayala, M. T. Merlos y J. J. Roa. 2008a. Respuesta inmune celular mediante  técnicas de linfoproliferación y fagocitosis en Cerdos Pelón Mexicano antes y  después del destete. Revista computarizada de producción porcina. Respuesta  inmune celular en cerdo pelón mexicano. 15(1):76-81. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674325&pid=S0798-7269201000020001200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">12. Guerrero Q. L. A., D. A. F. Villagómez, M. Huerta, J. Estrada, Luquín de Anda S., S. A. Rosales, C. Lemus,  J. J. Taylor, J. Galindo, D. R. Sánchez, M. A. Ayala, M. T. Merlos y J. J. Roa.  2008b. Comparación de los niveles de IgG en Cerdos Pelón Mexicano y Yorkshire x  Landrace en diferentes etapas de maduración inmunológica. Revista computarizada  de producción porcina. Maduración inmunológica en cerdos Pelón Mexicano.  15(1):72- 75. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674326&pid=S0798-7269201000020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">13. Janewey Jr. C.A. 2000. The  Road Less Traveled by: The Role of Innate Immunity in the Adaptive Immune  Response. Immunological reviews. 173:539-544. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674327&pid=S0798-7269201000020001200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">14. Lemus F. C., R. Ulloa-Arvizu,  , M. Ramoskuri., F. J. Estrada and R. A. Alonso 2001. Genetic analisis of  Mexican hairless pig populations. J. Anim. Sci. 79:1-6. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674328&pid=S0798-7269201000020001200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">15. Lemus F. C., M. R. Alonso.,  M. Alonso-Spilsbury,. and N. R. Ramírez., 2003. Morphologic characteristics in  mexican native pigs. Características morfológicas en cerdos nativos mexicanos.  Arch. Zootec. 52:197 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674329&pid=S0798-7269201000020001200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">16. Lemus F. C., y M. Alonso-Spilsbury.  2005. El cerdo pelón mexicano y otros cerdos criollos. 1ª. Edición. Editorial  Universitaria. Universidad Autónoma de Nayarit. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">17. Lemus, C. 2008. Diversidad  genética del cerdo criollo mexicano. Revista Computadorizada de Producción  Porcina. 15:33-40 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674331&pid=S0798-7269201000020001200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">18. Lowry O. H., N. J  Rosenbrough., A. L. Farr, and R. J. Randall. 1951. Protein measurement with the  folin phenol reagent. Journal of Biol. Chem. 193:355. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674332&pid=S0798-7269201000020001200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">19. Martínez A. M., J. V.  Delgado Rodero and J. L. Vega- Pla. 2000. Genetic structure of the Iberian pig  breed using microsatellites. Animal Genetics. 31: 295-301. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674333&pid=S0798-7269201000020001200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">20. Martínez A. M., E.  Pérez-Pineda, J. L. Vega-Pla., C. Barba., F. J. Velásquez y J. V. Delgado. 2005.  Caracterización genética del cerdo criollo cubano con microsatélites. Arch.  Zootec. 54: 369-375. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674334&pid=S0798-7269201000020001200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">21. Newby T. J., C. R. Stokes  and F. J. Bourne, 1982. Immunological activities of milk. Vet. Immunol.  Immunopathol. 3:67-94. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674335&pid=S0798-7269201000020001200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">22. Saalmüller A., 1998.  Linfocitos T y la respuesta inmune especifica de antígeno contra patógenos  varios en el cerdo. Rev. Sci.tech.off.int. Epiz. 17:71-83. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674336&pid=S0798-7269201000020001200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">23. Sanchez-Vizcaino J. M.,  2004. Curso de introducción a la Inmunología porcina [Recurs electrònic] / J. M.  Sánchez-Vizcaíno. 2ª Edición. Editorial: Amer: Laboratorios Hipra. Revista  electrónica de Veterinaria. www.veterinaria.org. ISBN: 84- 699-4740-0.  Barcelona, España. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">24. SAS. 2002. SAS/STAT User’s  Guide. Release 6.12. Cary NC. SAS Institute, Inc. USA. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">25. Sierra V.A., S.M. Canal.,  A.F. Cen,, C.R. Rodríguez., B.J.V. Delgado., M.A. Martínez. 2003. El cerdo pelón  mexicano: programa de conservación genética de una raza en peligro. México.  Arch. Zootec. 52:279-284. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674339&pid=S0798-7269201000020001200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">26. Sierra, A., T. B. Poot, Z.  I. Díaz, A. H. Cordero y J. V. Delgado. 2005. El cerdo Pelón Mexicano, una raza  en peligro. Arch. Zootec. 54:165-170 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674340&pid=S0798-7269201000020001200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">27. Tapia, A. E. 2008. El cerdo  criollo en el Caribe y Latinoamérica. Revisión bibliográfica. Universidad  Nacional de Cajamarca. Facultad de Medicina Veterinaria. Curso seminario  avanzado de investigación Caja de San Marcos. Revista electrónica 1-5. </font> </p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">28. Tizard I. R. 2009.  Introducción a la Inmunología Veterinaria. Octava edición. Elsevier, Barcelona,  España. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">29. Tlaskalová H., H. Hogenová.,  L. Mandel., I., Trevichavsky., F. Kováru., R., Barot and J. Sterzl. 1994.  Development of immune response in early pig ontogeny.Vet. Immunol. Immunopathol.  43:135-142.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2674343&pid=S0798-7269201000020001200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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