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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estrategias alimenticias en el levantamiento de Postlarvas de Coporo (Prochilodus mariae) para una producción sustentable]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Feeding strategies in uprising of Coporo postlarvae (Prochilodus mariae) for sustainable production]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Growing of coporo (Prochilodus mariae), has increased in Venezuela because of it’s high yields and ease of fattening. The production of this species in captivity is characterized by the massive planting of postlarvae. There are few studies using formulated food for fi rst feeding management of this species, a prerequisite for sustainable development of aquaculture. Therefore, the objective of this work was to develop a feeding strategy to optimize uprising of coporo larvae; through a (natural or artifi cial) food that promotes growth and introdes survival. T1 diet formulated with 40% CP and 2500: This 250 larvas/50l placed in aquaria with dimensions of 1.0 x 0.4 x 0.3 m, uniformly and randomly distributed into six treatments with two replications were used kcal / kg (C), T2 microencapsulated (M), T3 zooplankton (P), T4 formulated diet (C) + microencapsulated (M), T5 and T6 P C + M + P, up to 15 days in culture. The results were analyzed using a completely randomized statistical model and the use of an ANOVA and a posteriori tests using the level of signifi cance &#945; =0.05. The results indicated that the use of feed in the larval estage of coporo improved growth rates and survival (P&#8804;0.05), therefore, it is feasible to use asa feed during the larval stage on the uprising P. mariae.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <div class=Section1>      <p align=center><b><span style='font-family:Verdana'>Estrategias alimenticias en el levantamiento de Postlarvas de Coporo (Prochilodus mariae) para una producción sustentable </span></b></p>      <p align="center"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Glenn M. Hernández<sup>1*</sup>, José A. González<sup>2</sup>, Irana Matute<sup>1</sup>, María Araujo<sup>1</sup>, Zoraida Linares<sup>1</sup>, Dinora Pacheco<sup>1</sup>, Lismar Ramirez<sup>1</sup> Yuraima Arvelaez<sup>1</sup> y Yudith Palma<sup>1</sup> </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>1 Centro Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA-CENIAP). Laboratorio de Nutrición Animal, Maracay, Venezuela. *Correo electrónico: <a href="mailto:ghernandez@inia.gob.ve">ghernandez@inia.gob.ve</a>&nbsp;&nbsp;</span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>2 Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA), Estación Local Guanapito, Altagracia de Orituco, Venezuela. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>RESUMEN </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El cultivo de coporo (Prochilodus mariae), se ha incrementado en Venezuela debido a los altos rendimientos que produce y su facilidad de engorde. La producción en cautiverio de esta especie se caracteriza por la siembra masiva de postlarvas. Existen pocos estudios en alimentos formulados para el manejo de la primera alimentación de esta especie, una información imprescindible para el desarrollo sustentable de la piscicultura. Por lo tanto, el objetivo del presente trabajo fue desarrollar una estrategia de alimentación, para optimizar el levantamiento de larvas de coporo; a través de un alimento (natural o artifi cial) que favorezca su crecimiento y supervivencia. Para ello se utilizaron 250 larvas/50l colocadas en acuarios con dimensiones de 1,0 x 0,4 x 0,3 m, uniforme y distribuida al azar, en seis tratamientos, con dos repeticiones: T1 Dieta formulada con 40% PC y 2.500 kcal/kg (C), T2 Microcapsulado (M), T3 zooplancton (P), T4 Dieta formulada (C) + Microcapsulado (M), T5 C + P y T6 M + P, hasta los 15 días de cultivo. Los resultados fueron analizados a través de un modelo estadístico completamente aleatorizado y la aplicación de un ANOVA y pruebas a posteriori tomando el nivel de significación &#945;=0,05. Los resultados indicaron que el uso de alimentos balanceados en el levantamiento larval del coporo permite mejora en las tasas de crecimiento y sobrevivencia (P&#8804;0,05) y por lo tanto, es factible la utilización de alimentos balanceados durante la etapa de su levantamiento larval en P. mariae. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Palabras clave:</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> larvas, alimento, formulado, microcapsulado, plancton, coporo. </span></p>      <p align=center><b><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'>Feeding strategies in uprising of Coporo postlarvae (Prochilodus mariae) for sustainable production </span></b></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>ABSTRACT </span></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Growing of coporo (Prochilodus mariae), has increased in Venezuela because of it’s high yields and ease of fattening. The production of this species in captivity is characterized by the massive planting of postlarvae. There are few studies using formulated food for fi rst feeding management of this species, a prerequisite for sustainable development of aquaculture. Therefore, the objective of this work was to develop a feeding strategy to optimize uprising of coporo larvae; through a (natural or artifi cial) food that promotes growth and introdes survival. T1 diet formulated with 40% CP and 2500: This 250 larvas/50l placed in aquaria with dimensions of 1.0 x 0.4 x 0.3 m, uniformly and randomly distributed into six treatments with two replications were used kcal / kg (C), T2 microencapsulated (M), T3 zooplankton (P), T4 formulated diet (C) + microencapsulated (M), T5 and T6 P C + M + P, up to 15 days in culture. The results were analyzed using a completely randomized statistical model and the use of an ANOVA and a posteriori tests using the level of signifi cance </span><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>&#945;</span><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> =0.05. The results indicated that the use of feed in the larval estage of coporo improved growth rates and survival (P&#8804;0.05), therefore, it is feasible to use asa feed during the larval stage on the uprising P. mariae. </span></p>      <p align="justify"><b><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Key words:</span></b><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> larvae, food, formulated microencapsulated, plankton, coporo.</span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Recibido: 22/10/13 Aprobado: 30/06/14</span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>INTRODUCCIÓN </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El objetivo de la larvicultura es producir juveniles sanos y con tallas adecuadas a un costo mínimo, en un tiempo determinado y disponible permanentemente (Atencio, 2001). En el periodo larvario de los peces se debe hacer énfasis en que el alimento suministrado cumpla con los requisitos mínimos necesarios para asegurar su sobrevivencia y mantener el crecimiento, debido a que en el momento de iniciar la alimentación exógena tienen un sistema digestivo menos complejo que el de los juveniles y adultos, desde el punto de vista de su morfología, histología y fisiología (Atencio et al., 2003a). El cultivo de especies nativas tiene ventajas comparativas con respecto otras especies, con una mayor adaptación a las condiciones climáticas y de calidad de agua (Carvalho et al., 2003). El Coporo (Prochilodus mariae) es una especie autóctona, reofílica, muy abundante en el río Orinoco y Apure. </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La especie es muy apreciada por la calidad y sabor de la carne en las poblaciones llaneras originando que sea una de las especies de agua dulce con mayor demanda de consumo en el país (González y Heredia, 1998). En las estaciones piscícolas de Venezuela donde se realiza reproducción de los alevines, la técnica se caracteriza por la siembra masiva de las postlarvas una vez que hayan reabsorbido el saco vitelino, en estanques generalmente de tierra y en algunos casos de concreto, donde ocurre el levantamiento de los alevines, para su posterior comercialización y engorde en diferentes modalidades de producción, este tipo de manejo ofrece irregularidades en las tasas de sobrevivencia final. La alimentación en la mayoría de las estaciones se realiza a través de la fertilización orgánica e inorgánica de los espejos de agua, para la producción de plancton, aunque existen otros tipos de estrategias alimenticias como la adición de microcapsulado obtenido a partir de huevo de gallina. </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Tales microdietas se han utilizado para reemplazar parcialmente los rotíferos en algunos programas de cultivo de larvas de agua dulce, sin embargo, transcurrirán varios años antes de que tales estrategias de alimentación logren reemplazar por completo los alimentos vivos. Hasta la fecha no existen estudios que evalúen la posibilidad de utilizar alimentos formulados para el manejo de la primera alimentación de esta especie, información imprescindible para el desarrollo sustentable de la piscicultura. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>MATERIALES Y MÉTODOS</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El ensayo se realizó en el laboratorio de Nutrición Animal de la Estación Local Guanapito del INIA-Guárico, Venezuela; la cual esta ubicada aproximadamente a 9 Kilómetros de la población de Altagracia de Orituco, vía Parque Nacional Guatopo, a 422 m.s.n.m. y a 09°55’33” de Latitud Norte y 66°24’10” de Longitud Oeste. El clima del área es característico de la zona de transición montañosa con temperatura promedio de 27°C y precipitación anual de 1.100 mm. En el estudio se utilizaron 250 larvas de Coporo obtenidas por inducción con hormona de carpa, producto de un mismo desove. Dichas larvas se colocaron de manera uniforme y distribuidas al azar en seis tratamientos con dos repeticiones (<a href="#Cuadro_1">Cuadro 1</a>). </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Las larvas fueron colocadas en acuarios con dimensiones de 1 x 0,4 x 0,3 m, para un volumen de 250 L, con recambio del 50% diario de agua a través de un sifón, provisto de una fuente de luz artificial y con aireación permanente durante 15 días de cultivo. Las larvas fueron alimentadas con las dietas experimentales una vez que reabsorbieron el saco vitelino. Muestreo y toma de datos Semanalmente, se registró la ganancia de peso y longitud de las larvas de Coporo, a través de un muestreo aleatorio del 10% de la población por repetición eliminándose de las larvas el exceso de agua y pesándose individualmente en una balanza analítica con calibración interna modelo CPA64, marca Sartorius. </span></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Indicadores evaluados </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>S (%) = Número de larvas al final/Número de larvas al Inicio*100 </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>TC = Peso final promedio - Peso inicial promedio/ tiempo *100 (% de ganancia en peso/día). </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>(S): sobrevivencia. </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>(TC): Tasa de crecimiento instantáneo</span></p>      <p align=center><a name="Cuadro_1"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Cuadro 1</span></b></a><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>.</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> Tratamientos experimentales utilizados en la alimentación de postlarvas de P. mariae.</span></p>      <p align=center><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'> <img border=0 src="/img/fbpe/zt/v31n3/art06fig1.jpg" style='height:183px;width:531px'></span></p>      
<p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Parámetros físico químico</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Diariamente se hizo un recambio de agua del 50% en todas las unidades experimentales previas al recambio, se tomaron, para las mediciones de temperatura, oxígeno disuelto, alcalinidad, (kit de análisis de agua de MERCK) pH (medidor de pH, Pelkin Ermes), nitrito, nitrato y amonio (colorimetría). </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Manejo del experimento</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> </span></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Ensayo 1 </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Se procedió a instalar una prueba que consistió en colocar larvas producto de un mismo desove una vez que reabsorbieron el saco vitelino por duplicado, en 6 acuarios con dimensiones de 1 x 0,5 x 1,5 m, para un volumen de 250 l dichas larvas fueron alimentadas cada 4 horas ad libitum por un periodo de dos días, con los tratamiento T1, T2 y T3. El suministro de alimento balanceado, zooplancton y microcapsulado, posterior a las 48 horas de alimentación ad libitum, fue de un 20% de la biomasa, 6 presas por larvas y 15 ml de microcapsulado. Dicho resultado fue utilizado para determinar la efectividad de las estrategias de alimentación en coporo. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Ensayo 2. Estrategias de alimentación en coporo </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Todas las dietas experimentales, a excepción de los tratamientos combinados (T1, T2 y T3), fueron suministradas de acuerdo al resultado obtenido en el ensayo 1. En los tratamientos combinados (T4, T5 y T6) el alimento fue suministrado la mitad del alimento proporcionado a las larvas sometidas a los tratamiento no combinados (T1, T2 y T3), tal como se aprecia en el <a href="#Cuadro_2">Cuadro 2</a>. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Tratamiento 1</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La composición de la dieta ensayada en el tratamiento 1 se presenta en el <a href="#Cuadro_3">Cuadro 3</a>. Se elaboró una dieta isocalórica e isoproteíca con 40% de proteína y 2.500 kcal/kg, propuesta por Hernández et al. (2010). El alimento formulado se elaboró de la siguiente manera: primeramente se mezclaron los ingredientes secos hasta su completa homogenización, luego se adicionó el aceite y 100 ml de agua/kg de mezcla. La mezcla se pasó por un molino ultra centrifugo ZZM 200, para materiales blandos, de dureza media quebradizos y fibrosos, tamaño de alimentación 10mm, acabado 0,04mm marca RETSCH y los pellet fueron secados en una estufa con recirculación de aire forzado a 60ºC durante un tiempo de 6 horas aproximadamente. Posteriormente, el alimento fue pulverizado a 200 &#956;m y almacenado en bolsas plásticas a 10ºC. Los análisis de la composición proximal de la dieta se realizaron, utilizando los métodos descritos en el AOAC (1995). El alimento formulado fue ofrecido al 20% de la biomasa de las larvas, dos veces al día por 15 días de cultivo. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Tratamiento T2 </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Para el tratamiento T2, se procedió a la elaboración de un microcapsulado utilizando 3 huevos frescos enteros mezclados bruscamente con 500 ml de agua hirviendo, generando micro partículas de huevos cocidos que fueron suministradas a razón de 15 ml cada cuatro horas por 15 días de cultivo. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Tratamiento T3 </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Las postlarvas fueron alimentadas con alimento natural (zooplancton), producto del fertilizado del cuerpo de agua incorporando gallinaza (1 kg/10m2), cal agrícola (100 g/m2) y Triple fosfato 14 (10 g/m2), en tanques de 2.000 l (<a href="#Cuadro_4">Cuadro 4</a>). El zooplancton fue recolectado con una red planctonera, de ojo de malla de 30 mm, con arrastres horizontal. El zooplancton fue lavado con agua limpia y separado mediante tamizado, entre 125 y 160 &#956;m, y estuvo compuesto principalmente por rotíferos Brachionus sp1 y Brachionus sp2 (50,3 ± 10%) y por nauplios y copepoditos de copépodos Argyrodiaptomus sp., Thermocyclops decipiens y Mesocyclops sp (37 ± 12%), ofrecidas a razón de 6 presas/larvas, cada 4 horas durante 15 días de cultivo. </span></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Tratamientos combinados T4, T5 y T6 </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Para los tratamientos T4, T5 y T6 se procedió como se indica en el <a href="#Cuadro_2">Cuadro 2</a>.</span></p>      <p align=center><a name="Cuadro_2"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Cuadro 2</span></b></a><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>.</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> Estrategia empleada para determinar el suministro de alimento a postlarvas de coporo.</span></p>      <p class=MsoNormal align=center><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> <img border=0 src="/img/fbpe/zt/v31n3/art06fig2.jpg" style='height:164px;width:507px'></span></p>      
<p align=center><a name="Cuadro_3"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Cuadro 3</span></b></a><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>.</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> Composición de la dieta experimental (%) utilizada en el levantamiento larval de coporo (Prochilodus mariae).</span></p>      <p align=center><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'> <img border=0 src="/img/fbpe/zt/v31n3/art06fig3.jpg" style='height:495px;width:370px'></span></p>      
<p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Análisis estadístico </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Las bases de datos fueron creadas en hojas de cálculo, conformando un registro de múltiples entradas para el análisis de las variables utilizando un modelo estadístico completamente aleatorizado y los promedios separados mediante un análisis de varianza y la prueba a posteriori de Tukey (&#945;=0,05); con ayuda del programa estadístico InfoStat (2004). </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>RESULTADOS Y DISCUSIÓN </span></b></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Calidad de agua </span></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Los valores de los parámetros fisicoquímicos se mantuvieron constante y dentro de los valores de confort para la especie (temperatura 25°C ± 0,01, pH 6,38 ± 0,01, Oxígeno disuelto 6 mg/l ± 001, alcalinidad 20 mg/l ±0,01, amonio, nitratos y nitritos, cero para todos los tratamientos, como se observa en el <a href="#Cuadro_5">Cuadro 5</a>. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Prueba de crecimiento </span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Los resultados de los bioensayos a los 15 días de cultivo demuestran que las mejores respuestas de crecimiento en peso de las larvas de P. mariae (peso ± EE) se observaron en el tratamiento concentrado T1 (2.023 mg ± 0,02), con diferencias significativas con relación a los demás tratamientos (P&#8804;0,05). Los tratamientos T5 (1.345,5 mg ± 0,01) T6 (1.341 mg ± 0,02) y T4 (1.091,5 mg ± 0,01) no mostraron diferencia significativa (P&#8804;0,05) mientras que las menores ganancias de peso se obtuvieron con los tratamientos T2 (736 mg ± 0,01c) y T3 (0,592 mg ± 0,01), ver en el <a href="#Cuadro_6">Cuadro 6</a>. Este resultado evidencia mejores respuestas productivas, en aquellas larvas que fueron alimentadas con alimento formulado, ya sea solo o combinado con zooplancton o microcapsulado; contrariamente a lo reportado por Lazo (2000), quien concluyó que cuando las larvas son alimentadas con dietas artificiales, se produce un atraso en el crecimiento y altas mortalidades durante la primera semana de vida.</span></p>      <p class=MsoNormal align=center><a name="Cuadro_4"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Cuadro 4</span></b></a><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>.</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> Programa de fertilización del cuerpo de agua </span></p>      <p class=MsoNormal align=center><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> <img border=0 src="/img/fbpe/zt/v31n3/art06fig4.jpg" style='height:108px;width:332px'></span></p>      
<p align=center><a name="Cuadro_5"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Cuadro 5</span></b></a><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>.</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> Parámetros de calidad de agua obtenidos durante el desarrollo larvario del coporo (Prochilodus mariae).</span></p>      <p align=center><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'> <img border=0 src="/img/fbpe/zt/v31n3/art06fig5.jpg" style='height:171px;width:574px'></span></p>      
<p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La <a href="#Figura">Figura 1</a> demuestra que durante los primeros siete días de vida de las postlarvas, se obtienen los mejores indicadores de crecimiento; tal como lo señalaron Atencio et al. (2003) para la especie Prochilodus magdalenae, al encontrar que en los diferentes periodos de manejo de la primera alimentación, entre los tres y siete días se obtienen las mejores ganancias de peso; sugiriendo tres días como periodo mínimo necesario para el manejo de la primera alimentación. </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Muchas investigaciones señalan las ventajas de la utilización de zooplancton en la alimentación de larvas de peces (Atencio et al., 2003a, Atencio et al., 2003b), aunque, en la presente investigación no se observaron tales beneficios tanto en ganancia de peso como en sobrevivencia (T1: 70,8%, T4:60% , T5: 40% T2: 30%, T3: 20%, y T6: 20%) mostrando los mejores resultados en los tratamientos T1 y T4 con diferencias signifi cativas (P&lt;0,05) entre los tratamientos T5, T2 y T6 (<a href="#Cuadro_6">Cuadro 6</a>); quizás debido al uso de una densidad de siembra mayor que la reportada por otros investigadores, en otras especies, lo cual afecta la disponibilidad de alimento cuando la producción se genera de una manera extensiva o semi-intensiva. </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La tasa de sobrevivencia en general fue relativamente baja, tal vez atribuida a la incorporación de organismos patógenos y predadores en el zooplancton (Muñoz et al., 2007; García, 2000) y al hecho de que las larvas en los primeros días de alimentación exógena capturan organismos de menor tamaño y de menor movilidad (Pedreira et al., 2008), los cuales, posiblemente, no aparecieron en el muestreo del zooplancton debido al uso de una malla de entre 125 y 160 &#956;m.</span></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal align=center><a name=Figura><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Figura</span></b></a><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> 1.</span></b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'> Efecto de diferentes estrategias de alimentación sobre la ganancia de peso en larvas de coporo (<i>Prochilodus mariae</i>). </span></p>      <p class=MsoNormal align=center><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>    <br> <img border=0 src="/img/fbpe/zt/v31n3/art06fig6.jpg" style='height:369px;width:525px'></span></p>      
<p align=center><a name="Cuadro_6"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Cuadro 6</span></b></a><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>. Valores promedios de la ganancia en peso (GP) y sobrevivencia fianl(S) en larvas de coporo (Prochilodus mariae)1,2.</span></p>      <p align=center><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'> <img border=0 src="/img/fbpe/zt/v31n3/art06fig7.jpg" style='height:150px;width:526px'></span></p>      
<p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Similar situación reportaron Atencio-García et al. (2003a), quienes evaluando varias dietas en P. magdalenae encontraron, al usar zooplancton silvestre tamizado (250-400 &#956;m), que estas especies presentan características de predación en razón del tamaño de la partícula ofrecida; permitiendo que presas de un mayor tamaño faciliten su captura y originen una mejor asimilación para su crecimiento y desarrollo. No obstante, al comparar la tasa de sobrevivencia estas larvas de P. magdalenae tuvieron las menores tasas; atribuidas, quizás, a la presencia de copépodos ciclopóides de comportamiento predadores de Amphiprion sebae: naúplios de Artemia sp, concentrado de 48% PC y zooplancton determinaron que las larvas aceptaron como primer alimento un concentrado de 48% PC, además crecieron y sobrevivieron igual que las larvas alimentadas con naúplios de Artemia sp; contrario a lo señalado para la cabrilla Arenera Paralabras maculatofasciatus (Civera et al., 2002), en cuanto a que la sobrevivencia y el crecimiento en las larvas iniciadas con dieta artificial fueron significativamente menor (P&#8804;0,05) que las larvas alimentadas con el alimento vivo. </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>López et al. (2007) señalaron que las larvas de coporo a las 36 horas post eclosión tienen la boca abierta y movimientos mandibulares rápidos, a una frecuencia aproximada de 2 por segundo. Además, dedujeron que estructuras como la boca y el intestino se desarrollan durante la vida larval aun antes de reabsorber por completo el vitelo, cuya reabsorción completa se observa a las 84 HPE (horas por eclosión); una situación que permite el inicio de la alimentación exógena y la utilización de la última reserva de vitelo como dispensador de nutrientes para la búsqueda del nuevo alimento. En base a estos resultados se podría señalar que las larvas de P. mariae pueden considerarse como larvas precociales (con abundante vitelo) que asimilan eficientemente el alimento artifi cial desde el inicio de la alimentación exógena; gracias a que presentan el tracto digestivo diferenciado y, por lo tanto, son menos dependientes del zooplancton para el proceso de digestión (Sipaúba et al., 2003). </span></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Pelli et al. (1997), evaluando el consumo de ración en Bodianus scrofa, encontraron una mayor tendencia a ingerir microcrustáceos como cladóceros y copépodos, entre el cuarto y onceavo días posteclosión; lo cual sugiere indicar que en la fase postlarval de especies de peces neotropicales, la incorporación de alimento vivo son fundamentales para garantizar el adecuado crecimiento y sobrevivencia. </span></p>      <p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>CONCLUSIÓN</span></b></p>      <p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Es factible la utilización de alimentos balanceados durante la etapa de levantamiento larval en P. mariae a un suministro de 20% de la biomasa, dando 0,2 mg cada 6 horas, lo cual se traduce en una disminución en los costos de producción de dicho cultivo por las altas tasa de sobrevivencia y ganancia de peso.</span></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>LITERATURA CITADA </span></b></p>      <!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>1.Atencio, V. 2001b. Producción de alevinos de especies nativas. MVZ-Córdoba 6: (1), 9-14. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691154&pid=S0798-7269201300030000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>2.Atencio, V., E. Kerguelén, L. Wadnipar y A. Narváez. 2003a. Manejo de la primera alimentación del bocachico (Prochilodus magdalenae). </span><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>MVZ-Córdoba. 8(1), 254-260. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691155&pid=S0798-7269201300030000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>3.AOAC. Association of Oficial Analytical Chemists. 1995. Oficial Methods Analysis. 15th.   Washington, D. C. pp. 1984-1018. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691156&pid=S0798-7269201300030000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>4.Carvalho, A, A. Oliva-Teles and P. Bergot. 2003. A preliminary study on the molecular weight profile of soluble protein nitrogen in live food organisms for fi sh larvae. Aquaculture; 225:445-449. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691157&pid=S0798-7269201300030000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span lang=EN-US style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>5.Civera, R., J. Ortiz, S. Dumas, H. Nolasco, A. Alvarez, B. Anguas, R. Peña, M. Rosales, V. Carrasco, R. García y E. Goytortúa. </span><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'>2002. Avances en la Nutrición de la Cabrilla Arenera (Paralabrax maculatofasciatus). Avances en Nutrición Acuícola VI. Memorias del VI Simposium Internacional de Nutrición Acuícola. 3 al 6 de Septiembre del 2002. Cancún, Quintana Roo, México. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691158&pid=S0798-7269201300030000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>6.García, A. 2000. Valor nutricional de los quistes de Artemia y su uso como fuente de proteína en dietas artifi ciales para larvas de peces. In: V Simposium Internacional de Nutrición Acuícola - CIAD., Mazatlán, México. Memorias Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo. pp. 289- 290. **</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691159&pid=S0798-7269201300030000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>6.García, A. 2000. Valor nutricional de los quistes de Artemia y su uso como fuente de proteína en dietas artificiales para larvas de peces. In: V Simposium Internacional de Nutrición Acuícola - CIAD., Mazatlán, México. Memorias Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo. pp. 289- 290. </span></p>      <!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>7.González, J. y B. Heredia, 1998. El Cultivo de la Cachama, Fondo Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Centro de Investigaciones del Estado Guárico, 2da. Ed. Maracay, 134 p. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691161&pid=S0798-7269201300030000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>8.Hernández, G., J. González, E. Alfonso, Y. Salmeron y P. Pizzani. 2010. Efectos de la relación energía/proteína sobre el desempeño productivo en larvas de Coporo (Prochidolus mariae). Zootecnia Trop., 28(2): 173-182. 2010. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691162&pid=S0798-7269201300030000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>9.InfoStat (2004). Manual del Usuario. Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba. Primera Edición, Editorial Brujas Argentina. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691163&pid=S0798-7269201300030000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>10.Lazo, J. 2000. Conocimiento actual y nuevas perspectivas en el desarrollo de dietas para larvas de peces marinos. Memorias del V Simposio Internacional de Nutrición Acuícola. 19-22 Noviembre, Mérida, Yucatán, México. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691164&pid=S0798-7269201300030000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>11.López, T. M., V. Medina, Y. Velasco y P. Cruz. 2007. Valores morfométricos en larvas de yamú brycon amazonicus (pisces: characidae) obtenidas con semen fresco y crioconservado. Actual Biol 29 (87): 209- 219. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691165&pid=S0798-7269201300030000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>12.Muñoz, F., J. Tobar y J. Arias. 2007. Respuesta a la primera alimentación en larvas de Barbilla Rhamdia sebae C.F. (Pisces: Siluriformes, Pimelodidae). </span><span lang=PT-BR style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Facultad de Ciencias Agropecuarias. 1 (5): 47-53. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691166&pid=S0798-7269201300030000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span lang=PT-BR style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>13.Pedreira, M., J. dos Santos, E. Sampaio, F. Ferreira e J. Silva. 2008. Efeito do tamanho da presa e do acréscimo da ração na larvicultura de pacamã. R Bras Zootec; 37:1144-1150. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691167&pid=S0798-7269201300030000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span lang=PT-BR style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>14.Pelli, A., R. N. Dumont, J. D. Silva, S. M. Ramos, D. Souza e N. D. Barbosa. 1997. Ingestão de ração por pacu (Piaractus mesopotamicus Holmberg, 1887), curimba (Prochilodus scrofa Steindachner, 1881) e piau (Leporinus friderici Bloch, 1794) em condições semi-intensivas. B. Inst. Pesca, São Paulo, 24 (único): 119-123. </span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691168&pid=S0798-7269201300030000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><span lang=PT-BR style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>15.Sipaúba, T. e L. Rocha. 2003. Produção de plâncton (Fitoplãncton e zooplãncton) para aliemntação deorganismos Aquáticos. </span><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'>Segunda edición. San Carlos, Brasil: Editora Rima.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2691169&pid=S0798-7269201300030000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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