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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Presencia de aedes aegypti en el cementerio jobo liso de Ciudad Bolívar, Estado Bolívar, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In February 2013 a cross-sectional study was conducted in the Jobo Liso cemetery of Ciudad Bolívar, Bolívar State, to determine the presence of Aedes aegypti and other culicids in containers used as vases. One hundred and twenty containers with water were examined in 77 graves. A total of seven vases (5.8%) and seven tombs were positive (9.1%). Regarding the type of container used as vases, the most common was plastic soda bottle cut in half. Five of them had immature stages (larvae and or pupae) of culicidi. Six of the seven positive containers had A. aegypti (container index: 5.0%). Of these six containers with Aedes, four were plastic, one glass and one granite vase. Two of the positive containers (plastic and granite) showed larvae of Culex sp. (28.6%). In the same container (granite vase) there were simultaneously A. aegypti and Culex sp. From the 145 collected specimens, 97 (66.9%) were larvae or pupae of A. aegypti and 48 (33.1%) were Culex sp. larvae. In conclusion, we found immature stages (larvae and pupae) of culicids A. aegypti and Culex sp. in vases from Jobo Liso cemetery in Ciudad Bolívar. The rate of infestation of containers by A. aegypti was low (5.0%).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center" style="text-align:center"><b> <span style="font-family:Verdana">Presencia de aedes aegypti en el cementerio  jobo liso de Ciudad Bolívar, Estado Bolívar, Venezuela</span></b></p>     <p align="center" style="text-align:center"><b> <span style="font-family:Verdana">Presence of aedes aegypti in jobo liso  cemetery from Ciudad </span><span style="font-family: Verdana">B</span><span style="font-family:Verdana">olívar, </span><span style="font-family: Verdana">B</span><span style="font-family:Verdana">olívar  State, Venezuela</span></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Rodolfo Devera, Zahory Devera,  Virma Velásquez</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Universidad de Oriente, Núcleo  de Bolívar, Escuela de Ciencias de la Salud, Departamento de Parasitología y  Microbiología, Ciudad Bolívar, Venezuela. E-mail: <a href="mailto:rodolfodevera@hotmail.com">rodolfodevera@hotmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En febrero de 2013 se realizó  un estudio trasversal en el cementerio Jobo Liso de Ciudad Bolívar, estado  Bolívar, para determinar la presencia de Aedes aegypti y otros culicidios en  recipientes empleados como floreros. Se revisaron 120 recipientes con agua en 77  tumbas. Un total de siete recipientes (5,8%) y siete tumbas resultaron positivos  (9,1%). Con relación al tipo de recipiente empleado como floreros el más común  fue el envase plástico de refrescos cortado a la mitad. Cinco de ellos tenían  estadios inmaduros (larvas y/o pupas) de culicidios. Seis de los siete  recipientes positivos tenían A. aegypti (índice de recipiente: 5,0%). De estos  seis recipientes con Aedes, cuatro eran de material plástico, uno de vidrio y  uno de granito. Dos de los recipientes (plástico y granito) positivos  presentaron larvas de Culex sp. (28,6%). En un mismo envase (florero de granito)  se encontraron simultáneamente A. aegypti y Culex sp. Se recolectaron 145  ejemplares, 97 (66,9%) eran larvas o pupas de A. aegypti y 48 (33,1%) larvas de  Culex sp. En conclusión, se encontraron estadios inmaduros (larvas y pupas) de  los culicidios A. aegypti y Culex sp. en floreros del cementerio Jobo Liso de  Ciudad Bolívar; el índice de infestación de los recipientes por A. aegypti fue  bajo (5,0%).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: Dengue,  cementerios, floreros, culicidios.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">ABSTRACT</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">In February 2013 a cross-sectional  study was conducted in the Jobo Liso cemetery of Ciudad Bolívar, Bolívar State,  to determine the presence of Aedes aegypti and other culicids in containers used  as vases. One hundred and twenty containers with water were examined in 77  graves. A total of seven vases (5.8%) and seven tombs were positive (9.1%).  Regarding the type of container used as vases, the most common was plastic soda  bottle cut in half. Five of them had immature stages (larvae and or pupae) of  culicidi. Six of the seven positive containers had A. aegypti (container index:  5.0%). Of these six containers with Aedes, four were plastic, one glass and one  granite vase. Two of the positive containers (plastic and granite) showed larvae  of Culex sp. (28.6%). In the same container (granite vase) there were  simultaneously A. aegypti and Culex sp. From the 145 collected specimens, 97  (66.9%) were larvae or pupae of A. aegypti and 48 (33.1%) were Culex sp. larvae.  In conclusion, we found immature stages (larvae and pupae) of culicids A.  aegypti and Culex sp. in vases from Jobo Liso cemetery in Ciudad Bolívar. The  rate of infestation of containers by A. aegypti was low (5.0%).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Key words</b>: Dengue,  cemeteries, vases, culicids.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: abril 2013. Aprobado:  septiembre 2013. Versión final: octubre 2013.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El dengue es una enfermedad  viral transmitida por mosquitos del género Aedes, y es un problema de  importancia mundial en salud pública. Es considerada la principal virosis  transmitida por artrópodos cuyo agente etiológico pertenece al género Flavivirus  de la familia Flaviviridae y presenta 4 serotipos relacionados pero que son  antigénicamente distintos (Gubler 1998, WHO 2000, Montes 2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El principal vector del virus  dengue en las Américas es Aedes aegypti, un mosquito cuyos hábitos lo han  llevado a un comportamiento domiciliar. Sus estadios inmaduros son acuáticos y  se desarrollan en contenedores artificiales de poco volumen como los floreros,  botellas y latas (Chavarria y García 2000) donde se alimentan de la materia  orgánica allí presente; los adultos se alimentan de néctar dependiendo de la  disponibilidad pero las hembras necesitan ingerir sangre para realizar el  proceso de ovipostura (Consoli y Oliveira 1994).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El vector secundario de dengue  en el continente americano es A. albopictus, una especie originaria del sudeste  asiático que presenta una elevada plasticidad genética, fisiológica y ecológica.  Ambas especies pueden diferenciarse morfológicamente pero a diferencia de A.  aegypti el desarrollo de las fases inmaduras de A. albopictus ocurre  principalmente en recipientes naturales como huecos de árboles, aunque también  pueden adaptarse a hábitats artificiales tales como jarrones, macetas y  neumáticos. Además de asociarse a la transmisión de los cuatros serotipos de  dengue, esta especie también puede transmitir otros patógenos como los virus de  la fiebre amarilla y encefalitis equina venezolana (Zorrilla et al. 2011,  Álvarez et al. 2012). Fue reportado en el año 2009 por primera vez en Venezuela,  específicamente en Caracas (Navarro et al. 2009) y luego en el estado Aragua  (Álvarez et al. 2012), lo cual pudiera venir a influir en la epidemiología del  dengue en nuestro país.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Hasta agosto de 2013 se habían  registrado 30.489 casos probables de dengue en Venezuela, de los cuales 813  ocurrieron en el estado Bolívar. Los estados que informaron un mayor número de  casos fueron Aragua, Barinas y Zulia con más de 2.000 cada uno. En general 12  entidades federales permanecen en estado de epidemia ya que los casos superan el  promedio nacional esperado. Siguen circulando los cuatro serotipos virales en el  territorio venezolano con predominio del serotipo 2 (MPPPS 2013).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En Venezuela se han realizado  varios trabajos relacionados con estudios entomológicos en dengue (Barrera et  al. 1979, Barrera et al. 1995, Neus y Ochoa 2002, Abe et al. 2005, Navarro et  al. 2009). Pero en el estado Bolívar es poca la información disponible sobre la  vigilancia entomológica. En 1996 se realizó un estudio en 105 viviendas del  barrio Agua Salada de Ciudad Bolívar, determinando elevados índices aédicos,  además se verificó la presencia de estadios inmaduros en botellas (33,7%),  cauchos (29,3%) y barriles (19,5%) (González et al. 1996). Siete años después la  misma comunidad fue reevaluada encontrándose índices aédicos mayores, incluso  por encima del nivel de alarma sugerido por la OPS, esos hallazgos coincidieron  con un brote de la enfermedad registrado en Ciudad Bolívar (Arriechi y Luces  2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En el ambiente urbano donde A.  aegypti habita, los cementerios pudieran llenar los requerimientos como  criaderos principales debido a la presencia de numerosos tipos de contenedores  que sirven como floreros; además de la permanente fuente de sangre humana, así  como de otras fuentes de alimentación (néctares de flores) (Vezzani et al. 2001,  Vezzani 2007). Estudios realizados en Florida (O’Meara et al. 1992), Manila (Schultz  1989), Argentina (Vezzani et al. 2001, Vezzani y Schweigmann 2002, Vezzani et  al. 2004) y Venezuela (Barrera et al. 1979, Abe et al. 2005) muestran elevados  niveles de infestación de A. aegypti en cementerios.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Debido a ello y considerando la  escasez de estudios analizando este problema en Venezuela y el estado Bolívar,  se decidió realizar un estudio tendiente a determinar la presencia de A. aegypti  y otros culicidios en un cementerio de Ciudad Bolívar.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">METODOLOGÍA</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Tipo de estudio</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La investigación fue de campo y  consistió en un estudio transversal para la búsqueda y captura de estadios  inmaduros de culicidios en floreros presentes en las tumbas del cementerio Jobo  Liso de Ciudad Bolívar, en febrero de 2013.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Área de estudio</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">De los cuatro cementerios de  Ciudad Bolívar fue seleccionado para el estudio el de Jobo Liso por su fácil  acceso y amplitud. Se ubica al noroeste de la ciudad, en su periferia.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Universo</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Todos los floreros o  recipientes empleados con esa finalidad, existentes en las tumbas del cementerio  Jobo Liso de Ciudad Bolívar, estado Bolívar, realizando una visita por semana  durante el mes de febrero.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Muestra</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Estuvo formada por los floreros  o envases que cumplían esa función y que contenían agua al momento de la visita,  presentes en las tumbas del cementerio seleccionado, en el mes de febrero de  2013. Al final la muestra estuvo conformada por 77 tumbas y 120 recipientes que  contenían agua.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">Recolección, montaje e  identificación de estadios inmaduros</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La búsqueda y captura de formas  inmaduras (larvas y pupas) de culicidios se realizó en el mes febrero, el cual  corresponde a la época seca. Para ello, el cementerio se dividió en cuatro  cuadrantes, realizando la búsqueda de estadios inmaduros en cada uno de ellos,  previa selección de las tumbas. Para ello todas las tumbas fueron inspeccionadas  en busca de floreros con agua; siendo entonces examinados visualmente y con  ayuda de una pipeta para determinar la presencia de larvas y/o pupas. Las  capturas se realizaron entre las 8 am y 12 am. Todos los hallazgos fueron  anotados en una ficha de control diseñada para ese fin. Para realizar las  visitas y actividades de campo se solicitó el permiso y colaboración de las  personas encargadas de vigilar las instalaciones del cementerio.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El agua de los floreros con los  estadios inmaduros fue transferida a un beaker de 500 mL para realizar la  captura manual de cada ejemplar empleando un gotero o una pipeta. Los mismos  fueron colocados en viales de 15 mL conteniendo 50% de agua destilada y 50% de  agua del criadero. En aquellos casos donde existía gran cantidad de larvas, el  agua fue transferida a un envase adecuado y llevado al laboratorio para su  posterior separación e identificación.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los ejemplares muertos (larvas  y/o pupas) fueron colocados en viales con 10 mL de etanol al 70% v/v. En el  laboratorio, cada ejemplar fue montado individualmente entre lámina y laminilla  en agua destilada para su identificación genérica con ayuda del microscopio  estereoscópico y/o compuesto de acuerdo a claves taxonómicas (Consoli y Oliveira  1994, Brown y Scorza 1995).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las larvas vivas fueron  sacrificadas colocándolas en alcohol isopropílico al 70% v/v, posteriormente  fueron montadas entre lámina y laminilla en solución salina como descrito arriba  e identificadas según claves. Todos los ejemplares identificados como Aedes  fueron clarificados en solución Nesbit y montados en solución de Berlesse para  su identificación específica empleando claves taxonómicas (Consoli y Oliveira  1994, Silva et al. 1998).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESULTADOS</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se revisaron 120 recipientes  que cumplían la función de floreros, siendo la media de recipientes por tumba de  1,56 ± 0,77. Esos recipientes estaban distribuidos en 77 tumbas examinadas. Un  total de siete recipientes resultaron positivos para un índice de recipientes de  5,8%. Se encontró un porcentaje de tumbas positivas (índice de tumbas) de 9,1%  (7/77). En cada una de las 7 tumbas positivas solo se encontró un recipiente  positivo en cada caso.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Con relación al tipo de  recipiente empleado como floreros se constató una amplia gama de materiales como  se observa en la <a href="#tab1">Tabla 1</a>. Es de resaltar que suelen  emplearse envases que no son floreros propiamente dichos pero que cumplen dicha  función. Aquí destacaron los envases de refrescos los cuales fueron los más  comúnmente empleados. En cuanto al tipo de material de los recipientes  positivos, hubo predominio de envases de plástico, con cinco positivos.</font></p>     <p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art03tab1.gif" width="359" height="397"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Seis de los siete recipientes  positivos tenían Aedes, para una frecuencia de recipientes positivos con Aedes  de 85,7%. Mientras que la prevalencia de recipientes positivos con Aedes (índice  de recipiente) fue de 5,0%. De los seis recipientes con Aedes, cuatro eran de  material plástico, uno de vidrio y uno de granito. Dos de los recipientes  (botella plástica y florero de granito) presentaron larvas de Culex (28,6%).  Cabe destacar que en un mismo envase (florero de granito) se encontraron  simultáneamente Aedes y Culex.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Con relación a los ejemplares  capturados, se obtuvo un total de 145, 97 (66,9%) pertenecieron al género Aedes  y 48 (33,1%) a Culex. De Aedes se recolectaron 83 larvas y 14 pupas mientras que  de Culex solo se obtuvieron 48 larvas (<a href="#tab2">Tabla 2</a>). Todos los  ejemplares de Aedes fueron identificados como pertenecientes a la especie A.  aegypti.</font></p>     <p align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n4/art03tab2.gif" width="543" height="219"></a></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Pocos estudios han evaluado la  presencia de estadios inmaduros de mosquitos, principalmente A. aegypti en  cementerios. En todos ellos el porcentaje de recipientes positivos encontrados  fue mayor al 5,8% aquí determinado (Barrera et al. 1979, Schulz 1989, O´Meara et  al. 1992, Vezzani et al. 2001, Abe et al. 2005, Barja-Simon et al. 2009). Varios  factores pudieran estar influenciando este resultado; el factor principal  posiblemente estaría relacionado con la época del año del estudio (periodo seco)  y en segundo lugar al esfuerzo de captura, ya que se evaluó apenas un mes del  año mientras que en otros estudios suelen evaluarse periodos mayores. Sin  embargo, este porcentaje no es despreciable y representa un riesgo para  transmisión del dengue en estos lugares. Los cementerios son sitios adecuados  para la reproducción de culicidios, especialmente A. aegypti porque hay  disponibilidad de contenedores llenos de agua (floreros), flores, pocos  edificios y abundante vegetación alrededor, además de la permanente fuente de  sangre humana debida a los visitantes (Vezzani et al. 2001). Es por ello que  deberían incluirse en los programas de control de dengue a ser desarrollados (Abe  et al. 2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En el caso particular de  Venezuela, además del trabajo pionero de Barrera et al. (1979), en la última  década se han desarrollado dos estudios en cementerios: uno en Caracas y otro en  Trujillo. En el Cementerio General del Sur en Caracas además de encontrase  varias especies de Aedes, también se encontraron Culex y Toxorhynchites (Navarro  et al. 2009). En un cementerio de Trujillo se halló un elevado porcentaje  (46,9%) de recipientes positivos con estadios de A. aegypti entre todos los  envases con agua que fueron examinados (Abe et al. 2005). En el presente  estudio, a pesar que el índice de recipientes positivos con estadios inmaduros  de Aedes fue bajo el riesgo de transmisión está presente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En esta investigación, como en  otros estudios, los recipientes positivos en su mayoría eran de plástico,  principalmente envases pequeños como mitades de botellas plásticas de refrescos.  Excluyendo a los neumáticos, los envases de plástico pequeños son reconocidos  como sitios preferenciales para que las hembras de Aedes depositen sus huevos  (Barrera et al. 1979, Bisset Lazcano et al. 1985, Kittayapong y Strickman 1993,  Focks y Chadee 1997, Arriechi y Luces 2001, Stein et al. 2002), incluso en  cementerios (Barja-Simon et al. 2009). Estos mismos recipientes también son  usados por Culex (Lopes et al. 1993, Lopes 1997, Stein et al. 2002). En el caso  de los cementerios estos resultados son coincidentes con los obtenidos por  Vezzani y Schweigmann (2002) que encontraron que los recipientes plásticos eran  los que presentaban mayor porcentaje de positivad con 77%. Borja-Simon et al.  (2009) también señalaron a los recipientes de plástico como los más frecuentes  (31,2% de floreros y el 20,5% de botellas). Cabe destacar que el plástico fue  tipo de material más común para los recipientes empleados como floreros en el  presente trabajo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En Venezuela en un cementerio  de Trujillo el recipiente que presento el mayor índice de positividad fue el  contenedor de cemento (Abe et al. 2005). La diferencia de porque en una región  el mosquito prefiere algún tipo particular de recipiente pudiera depender,  además de la época del año, de condiciones microambientales que afectan la  disponibilidad de cada tipo de contenedor para la oviposición de las adultas (Vezzani  y Schweigmann 2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Pareciera que en el caso de los  cementerios los recipientes clave que deberían ser eliminados para reducir la  formación de criaderos y consecuentemente disminuir la población de Aedes y de  Culex son los contenedores plásticos, lo cual parece difícil de hacer debido a  su bajo costo, tamaño y comodidad de uso por parte de los familiares de los  difuntos que visitan los cementerios.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Aedes fue el género más  abundante coincidiendo con otros estudios (Barrera et al. 1979, Arriechi y Luces  2001, Vezzani y Schweigmann 2002). Cuando se estudian cuidadosamente estos  ejemplares se puede afirmar que se trata de A. aegypti. Similar a otros estudios  además de Aedes se encontraron estadios inmaduros de Culex (Stein et al. 2002,  Abe et al. 2005, Barja-Simon et al. 2009, Navarro et al. 2009). Aunque  generalmente en los recipientes donde se cría Aedes no suele encontrase  simultáneamente Culex, esto puede ocurrir tal como sucedió en el presente  estudio. Esto permite sugerir que en el caso del cementerio evaluado, ambos  géneros pueden emplear los mismos criaderos. Generalmente Aedes prefiere agua  limpia mientras que Culex prefiere agua con abundante materia orgánica en  descomposición. Esto implica que ambas especies puedan co-existir en un mismo  criadero ya que las hembras de Aedes pueden depositar sus huevos en agua limpia  recién colocada y posteriormente cuando se deposita la materia orgánica producto  de las flores colocadas en el florero, ocurre la llegada del género Culex para  oviponer (Barrera et al. 1979, Vezzani et al. 2001, Vezzani et al. 2004, Abe et  al. 2005, Vezzani 2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En suma, éste como otros  cementerios, puede ser considerado un sitio crítico para el desarrollo de  mosquitos, debido a la existencia de gran cantidad de recipientes (floreros) que  acumulan o pueden acumular agua y eso los convierte en sitios potenciales para  la transmisión del dengue. Por ello es necesario considerar posibles medidas a  implementar para que ello no suceda. Además de la educación a la población  existen medidas puntuales tendientes a evitar la formación de criaderos. Éstas  pasan por la prohibición de uso de flores naturales o sustitución por  artificiales, empleo de recipientes especiales, uso de insecticidas contra los  estadios inmaduros o estrategias de control biológico, estas ultimas más  costosos (Vezzani et al. 2004, Nyamah et al. 2011). Sin embargo, todas ellas  requieren tanto de la participación de la comunidad como de las autoridades para  lograr que los cementerios de la ciudad no se conviertan en focos de transmisión  del dengue.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">CONCLUSIONES</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En el cementerio Jobo Liso de  Ciudad Bolívar, en el 5,8% de los floreros examinados se encontraron estadios  inmaduros de culicidios (Aedes y/o Culex), siendo más común el género Aedes con  un bajo índice de infestación de recipientes de 5%. Los tipos de envases en los  cuales se encontró mayor porcentaje de infestación fueron los recipientes de  plástico, especialmente las botellas plásticas de refrescos cortadas a la mitad. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Abe M, McCall PJ, Lenhart A,  Villegas E, Kroeger A. 2005. The Buen Pastor cemetery in Trujillo, Venezuela:  measuring dengue vector output from a public area. Trop. Med. Int. Health.  10(6):597- 603.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3239624&pid=S1315-0162201300040000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Álvarez R, Estrada Y, Guzman  H. 2012. Primer registro para el estado Aragua de Aedes (Stegomyia) albopictus  Skuse, 1894 (Diptera: Culicidae). Bol. Mal. Salud Amb. 52(2):307-309.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Arriechi Z, Luces YI. 2001.  Estudio epidemiológico retrospectivo de los casos de dengue y dengue hemorrágico  en Ciudad Bolívar. 1997-2001. II. Determinación de índices aédicos en la  localidad de Agua Salada, municipio Heres, Ciudad Bolívar. Julio 2001. Trabajo  de Grado, Dpto. Bioanálisis. Esc. Cs. Salud. UDO, Bolívar. pp. 66.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Barja-Simon Z, Le Goff G,  Callata R, Walter A, Bremond P. 2009. Infestación de los cementerios de Santa  Cruz de la Sierra por los mosquitos vectores del dengue. Rev. Enfer. Infec. Trop.  1(1):29-32.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Barrera R, Machado-Alison  CE, Bulla LA. 1979. Criaderos, densidad larval y segregación de nicho en tres  culicidae urbanos (Culex fatigans Wied., C. corniger Theo, y Aedes aegypti L.)  en cementerios de Caracas. Acta Cient. Venez. 30(4):418-424.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Barrera R, Navarro JC, Mora  Rodríguez JD, Domínguez D, González García JE. 1995. Deficiencias en servicios  públicos y cría de Aedes aegypti en Venezuela. Bol. Ofic. Sanit. Panam.  118(5):410- 422.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Bisset Lazcano J, Marquetti  M, Gonzales B, Mendizábal ME, Navarro A. 1985. La abundancia larval de mosquitos  urbanos durante la campaña de erradicación del Aedes aegypti (Linnaeus, 1762) y  del dengue en Cuba (1981-82). Rev. Cubana Med. Trop. 37(2):161-168.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Brown E, Scorza JV. 1995.  Faunula culicida en el área del estado Trujillo, Venezuela y su importancia  vectora. Bol. Dir. Malariol. San. Amb. 35(1-2):25-29.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Chavarría F, García JD.  2000. Aedes, Dengue y la posibilidad de un enfoque diferente de lucha. Rev.  Costarric. Salud Pub. 9(16):1409-1429. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Consoli RA, Oliveira RL.  1994. Principais mosquitos de importancia sanitária no Brasil. Edit. FIOCRUZ.  1ra. ed. Rio de Janeiro. pp. 226.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Focks DA, Chadee DD. 1997.  Pupal survey: an epidemiologically significant surveillance method for Aedes  aegypti: an example using data from Trinidad. Am. J. Trop. Med. Hyg.  56(2):159-67.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. González R, Devera R,  González H, Sánchez C, Bravo R, Gómez L. 1996. Índice aédico en el barrio Agua  Salada de Ciudad Bolívar. XII Jornadas Científicas, Tecnológicas y Educativas de  Guayana. 31 de octubre-2 de noviembre de 1996. Ciudad Bolívar. Resúmenes. p.  9-10.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Gubler D. 1998. Dengue and  Dengue Hemorrhagic Fever. Clin. Microbiol. Rev. 11(3):480-496.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Kittayapong P, Strickman D.  1993. Distribution of container-inhabiting Aedes larvae (Diptera: Culicidae) at  a dengue focus in Thailand. J. Med. Entomol. 30(3):601-606.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Lopes J. 1997. Ecologia de  mosquitos (Diptera: Culicidae) em criadouros naturais e artificiais de área  urbana do Norte do Estado do Paraná, Brasil. V. Colecta de larvas em recipientes  artificiais instalados em mata ciliar. Rev. Saúde Pública. 31(4):370-377.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Lopes J, Da Silva M,  Borsato AM, Oliveira V, Oliveira FJ. 1993. Aedes ( Stegomyia) aegypti L. e a  culicideo fauna associada em área urbana da região sul Brasil. Rev. Saúde  Pública. 27(5):326- 333.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Montes T. 2001.  Actualización en Dengue. Parte 1. Rev. Soc. Venezol. Microbiol. 21(1):26-33.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. MPPPS (Ministerio del Poder  Popular para la Salud). 2013. Boletín Epidemiológico No. 33. pp. 29.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Navarro JC,  Zorrilla A, Moncada N. 2009. Primer registro de Aedes albopictus (Skuse) en  Venezuela: Importancia como vector de dengue y acciones a desarrollar. Bol. Mal.  Salud Amb. 49(1):161-166.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. Neus MJ, Ochoa JE. 2002.  Aspectos entomológicos relacionados con el dengue en el municipio José Félix  Ribas, estado Aragua, Venezuela. Rev. Soc. Venezol. Microbiol. 22(1):64-67.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Nyamah MA, Sulaiman S, Omar  B. 2011. Field observation on the efficacy of Toxorhynchites splendens (Wiedemann)  as a biocontrol agent against Aedes albopictus (Skuse) larvae in a cemetery.  Trop. Biomed. 28(2):312-319.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">22. O’Meara G, Gettman A, Evans  LJ, Scheel F. 1992. Invasion of cemeteries in Florida by Aedes albopictus. J. Am.  Mosq. Control Assoc. 8(1):1- 10.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">23. Schultz G. 1989. Cemetery  vase breeding of dengue vectors in Manila, Republic of the Phillipines. J. Am.  Mosq. Control Assoc. 5(4):508-513. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">24. Silva HH, Silva IG, Lira K.  1998. Metodologia de criação, manutenção de adultos e estocagem de ovos de Aedes  aegypti (Linnaeus, 1762) em laboratorio. Rev. Patol. Trop. 27(1):53-63.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. Stein M, Oria GI, Almiron  WR. 2002. Principales criaderos para Aedes aegypti y culicidios asociados,  Argentina. Rev. Saude Publica. 36(5):345-349.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">26. Vezzani D. 2007. Review:  Artificial container-breeding mosquitoes and cemeteries: a perfect match. Trop.  Med. Inter. Health. 12(2):299-313. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">27. Vezzani D, Schweigman N.  2002. Suitability of containers from different sources as breeding sites of  Aedes aegypti (L.) in a cemetery of Buenos Aires City, Argentina. Mem. Inst.  Oswaldo Cruz. 97(2):789- 792.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">28. Vezzani D, Velázquez SM,  Soto S, Schweigman N. 2001. Environmental characteristics of the cemeteries of  Buenos Aires City (Argentina) and infestation levels of Aedes aegypti (Diptera:  Culicidae). Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 96(4):467-471.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">29. Vezzani D, Velazquez S,  Schweigmann N. 2004. Control of Aedes aegypti with temephos in a Buenos Aires  cemetery, Argentina. Rev. Saúde Pub. 38(5):738- 740.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">30. WHO (World Health  Organization). 2000. Meeting report: scientific working group on Dengue. Geneva.  pp. 84.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">31. Zorrilla A, Quintero L, Del  Ventura F, Muñoz M, Moncada N, Navarro JC. 2011. Aspectos ecológicos de Aedes  albopictus (Skuse, 1894) en Caracas, Venezuela. Bol. Mal. Salud Amb.  51(2):229-236.</font></p>       ]]></body>
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