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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Resistencia a antimicrobianos y presencia de plásmidos en cepas de Escherichia coli aisladas de aguas residuales crudas y tratadas por lagunas de estabilización con fines de reuso en agricultura.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Abstract It was determined resistance to antibiotics and plasmids presence, in E. coli strains from raw and treated waters, of the stabilization pounds at the university city of The University of Zulia. The resistance determination of the following antibiotics: nalidixic acid (Na), ampicillin (A), amikacin (Ak), chloramphenicol (C), carbenicillin (Cb), trimethoprim (Tr), tobramycin (Tb), tetracycline (T), gentamicin (G) and kanamycin (K), was performed by Kirby-Bauer&acute;s method. The plasmids extraction was performed by Biboin and Doile&acute;s alkaline lisis method. 81,25% of the strain isolated from the untreated wastewater were resistant to A, 68,75% to T, 46,87% to Cb, 12,50% to Tr and 3,12% to C and T. 83,87% of the strains from the treated wastewater were resistant to A, 16,12% to Tr and T, 12,9% to Cb and 3,22% to Ak, C and Tb. 100% of the analyzed strains went sensitive to: Na, G and K. The resistance order determined in the untreated waswater was: A > T b > Tr > Cb > Ak = C = Tb and in the treated wastewater samples: A > T > Cb > Tr > C = Tb. 16.12% and 34.2% of the strains of the raw residual samples and treated respectively presented resistance at last for three antibiotics. The plasmids presence was detected in 87.10% of the selected strains of the raw samples and in 90,62% of the treated waters. The strains of E. coli isolated from treated wastewater presented plasmids and resistance at 7 out of 10 antibiotics, what suggests the genetic exchange between the strains and their potential as pathogens, by combining different properties that contribute to their survival.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Resistencia a antibióticos]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Escherichia coli]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT SIZE=4>    <P ALIGN="CENTER">Resistencia a antimicrobianos y presencia de pl&aacute;smidos en cepas de Escherichia coli aisladas de aguas residuales crudas y tratadas por lagunas de estabilizaci&oacute;n con fines de reuso en agricultura.</P>     <P ALIGN="CENTER"> Resistance to antimicrobial agents and plasmids presence in Escherichia coli strains from raw and treated waters of the stabilization pounds for reuse in agriculture.</P> </B></FONT>    <P ALIGN="CENTER">Zambrano, J. L.1; Botero, L.2; Cavazza, M. E.3 y Avila, M.4</P>     <P>1. Unidad de Investigaciones en Microbiolog&iacute;a Ambiental, Facultad Experimental de Ciencias, La Universidad del Zulia.&nbsp;</P>     <P>2. Centro de Investigaciones del Agua, Facultad de Ingenier&iacute;a, La Universidad del Zulia.</P>     <P>&nbsp;3. Laboratorio de Histoqu&iacute;mica, Instituto de Biomedicina, MSDS, UCV, Caracas, Venezuela.&nbsp;</P>     <P>4. Instituto de Oncolog&iacute;a y Hematolog&iacute;a, MSDS.</P> <B>    <P>Resumen</P> </B>    <P>Se determin&oacute; resistencia a antibi&oacute;ticos y presencia de pl&aacute;smidos en cepas de Escherichia coli recuperadas de aguas crudas y tratadas de un sistema de lagunas de estabilizaci&oacute;n. Se determin&oacute; la resistencia a los siguientes antibi&oacute;ticos: &aacute;cido nalid&iacute;xico (Na), ampicilina (A), amikacina (Ak), cloranfenicol (C), carbenicilina (Cb), trimetoprim (Tr), tobramicina (Tb), tetraciclina (T), gentamicina (G) y kanamicina (K). La extracci&oacute;n de pl&aacute;smidos se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de lisis alcalina. El 81,25% de las cepas de aguas crudas fueron resistentes a A, el 68,75% a T, el 46,87% a Cb, el 12,50% a Tr y el 3,12% a C y a Tb. En el 83,87% de las cepas de aguas tratadas, fueron resistentes a A, el 16,12% a Tr y a T, el 12,9% a Cb y el 3,22% a Ak, C y Tb. El 100% de las cepas fueron sensibles a Na, G y K. El orden de resistencia en las muestras crudas y tratadas fue: A &gt; Tb &gt;Tr &gt; Cb &gt; Ak = C = Tb y A &gt; T &gt; Cb &gt; Tr &gt; C = Tb, respectivamente. El 16,12% y el 34,2% de las cepas de aguas residuales crudas y tratadas, respectivamente, presentaron resistencia a m&aacute;s de tres antimicrobianos. La presencia de pl&aacute;smidos se detect&oacute; en el 87,10% de las cepas de aguas crudas y en el 90,62% de la cepas de aguas tratada. Las cepas de E. coli aisladas a la salida del sistema de tratamiento presentaron pl&aacute;smidos y resistencia a 7 de 10 antimicrobianos, lo que sugiere el intercambio gen&eacute;tico entre las cepas y su potencial como pat&oacute;genos, al combinar diferentes propiedades que contribuyan a su sobrevivencia.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Palabras-clave:</B> Resistencia a antibi&oacute;ticos, pl&aacute;smidos, agua residual, lagunas de estabilizaci&oacute;n, Escherichia coli.</P> <B>    <P>Abstract</P> </B>    <P>It was determined resistance to antibiotics and plasmids presence, in E. coli strains from raw and treated waters, of the stabilization pounds at the university city of The University of Zulia. The resistance determination of the following antibiotics: nalidixic acid (Na), ampicillin (A), amikacin (Ak), chloramphenicol (C), carbenicillin (Cb), trimethoprim (Tr), tobramycin (Tb), tetracycline (T), gentamicin (G) and kanamycin (K), was performed by Kirby-Bauer&amp;acute;s method. The plasmids extraction was performed by Biboin and Doile&amp;acute;s alkaline lisis method. 81,25% of the strain isolated from the untreated wastewater were resistant to A, 68,75% to T, 46,87% to Cb, 12,50% to Tr and 3,12% to C and T. 83,87% of the strains from the treated wastewater were resistant to A, 16,12% to Tr and T, 12,9% to Cb and 3,22% to Ak, C and Tb. 100% of the analyzed strains went sensitive to: Na, G and K. The resistance order determined in the untreated waswater was: A &gt; T b &gt; Tr &gt; Cb &gt; Ak = C = Tb and in the treated wastewater samples: A &gt; T &gt; Cb &gt; Tr &gt; C = Tb. 16.12% and 34.2% of the strains of the raw residual samples and treated respectively presented resistance at last for three antibiotics. The plasmids presence was detected in 87.10% of the selected strains of the raw samples and in 90,62% of the treated waters. The strains of E. coli isolated from treated wastewater presented plasmids and resistance at 7 out of 10 antibiotics, what suggests the genetic exchange between the strains and their potential as pathogens, by combining different properties that contribute to their survival.</P> <B>    <P>Introducci&oacute;n</P> </B>    <P>Los efluentes urbanos contienen altas concentraciones de bacterias, que pueden ser comensales del intestino humano y/o de animales de sangre caliente. Adem&aacute;s, pueden contener bacterias con caracter&iacute;sticas pat&oacute;genas, que pueden originar problemas de salud p&uacute;blica. Junto a las bacterias, los agentes antimicrobianos son tambi&eacute;n descargados en el ambiente en grandes cantidades, como resultado del uso indiscriminado de &eacute;stos, tanto en pr&aacute;cticas m&eacute;dicas como veterinarias y agr&iacute;colas. El contacto de las bacterias con diferentes antibi&oacute;ticos a concentraciones diversas originan una presi&oacute;n selectiva entre las poblaciones bacterianas, dando como resultado un incremento de bacterias con resistencia adquirida a drogas antimicrobianas (1, 2).</P>     <P>Debido a que los efluentes urbanos presentan altas concentraciones de pat&oacute;genos, es imperativo tratar las aguas residuales crudas, con el fin de removerlos. Una de las opciones m&aacute;s recomendadas para el tratamiento del agua que va a ser empleada con fines de riego de &aacute;reas agr&iacute;colas son las lagunas de estabilizaci&oacute;n (3). Sin embargo, estos sistemas pueden llegar a convertirse en dep&oacute;sitos de bacterias ent&eacute;ricas, que presentan genes de resistencia a antibi&oacute;ticos, as&iacute; como de aqu&eacute;llas que puedan servir de receptores a estos genes. Es por esto que a los sistemas de tratamiento se les ha atribuido una gran importancia ecol&oacute;gica en la transferencia horizontal de genes, a trav&eacute;s de los pl&aacute;smidos (4). Con el fin de aportar informaci&oacute;n acerca de la calidad de los efluentes con relaci&oacute;n a par&aacute;metros no convencionales, como bacterias resistentes a los antimicrobianos y la presencia de pl&aacute;smidos end&eacute;micos, se plante&oacute; el estudio en cepas de E. coli aisladas de las aguas residuales crudas y tratadas del sistema de lagunas de estabilizaci&oacute;n de La Universidad del Zulia, las cuales son utilizadas en el riego de &aacute;reas verdes y zonas de cultivo experimentales.</P> <B>    <P>Materiales y M&eacute;todos</P>     <P>&Aacute;rea de estudio y colecci&oacute;n de las muestras:    <BR> </B>Las muestras fueron tomadas en las lagunas de estabilizaci&oacute;n de la Universidad del Zulia, las cuales se encuentran ubicadas en la Ciudad Universitaria, en el Centro de Investigaci&oacute;n del Agua. Consisten en nueve lagunas interconectadas, en una secuencia de tres facultativas y seis de maduraci&oacute;n, distribuidas en tres sistemas A, B y C <a href="#f1">(figura 1)</a>. Las aguas residuales que entran a este sistema, provienen del Colector C de Hidrolago, empresa que administra el agua de la ciudad. Este colector recoge las descargas de &aacute;reas residenciales del Norte de la ciudad y de la misma Ciudad Universitaria. El sistema tiene dos estaciones de bombeo: una que transfiere las aguas crudas a las lagunas y otra que hace pasar el efluente a trav&eacute;s de una serie de filtros hacia una zona de irrigaci&oacute;n de cultivos experimentales y hacia &aacute;reas verdes de la Ciudad Universitaria. Las muestras de 200 mL fueron recolectadas durante los meses de octubre a diciembre de 1999 y durante julio y agosto de 2000, en botellas est&eacute;riles, tanto en la entrada del sistema como en el efluente final, y fueron transportadas en refrigeraci&oacute;n al laboratorio para su procesamiento antes de 6 horas.</P>     <P ALIGN="CENTER"><a name="f1"></a><IMG SRC="/img/fbpe/rsvm/v22n1/art10img1.jpg" WIDTH=440 HEIGHT=336></P>     
]]></body>
<body><![CDATA[<P>Figura 1. Diagrama del sistema de lagunas de estabilizaci&oacute;n de la Universidad del Zulia.</P> <B>    <P>Determinaci&oacute;n de indicadores de calidad y aislamiento e identificaci&oacute;n de E. Coli.    <BR> </B>Los coliformes totales y termotolerantes fueron evaluados utilizando metodolog&iacute;a est&aacute;ndar (5). De los tubos que presentaban crecimiento y gas en el medio caldo EC utilizado en la determinaci&oacute;n de los coliformes termortolerantes, se tom&oacute; una asada, y se inocul&oacute; en los medios selectivos agar MacConkey (Mc) y agar Eosin-Methyl Blue (EMB). Estos medios se incubaron a 35,5&amp;ordm;C por 24 horas. Una vez transcurrido este tiempo, se seleccionaron colonias representativas de E. coli: rosadas a fucsia en el medio Mc y moradas con brillo met&aacute;lico verde en el EMB, y se identificaron presuntivamente en base a la tinci&oacute;n de Gram, oxidasa y la fermentaci&oacute;n de la lactosa en el agar triple az&uacute;car hierro. La identificaci&oacute;n bioqu&iacute;mica completa fue realizada con las pruebas de indol, rojo de metilo, Voges-Proskauer, citrato de Simmons, arginina, lisina, ornitina fenilalanina, malonato, urea y motilidad, de acuerdo con tablas de identificaci&oacute;n convencional (6).</P> <B>    <P>Serotipificaci&oacute;n:    <BR> </B>Para la identificaci&oacute;n de las cepas de E. coli enterotoxig&eacute;nica (ECET) se utilizaron los siguientes antisueros polivalentes (Fuvesin. Caracas, Venezuela): I: O:6, O:25, O:27, O:78, O:168; II: O:20, O:63, O:153, O:166, O:148 y III: O:8, O:15, O:115, O:159, y O:169.</P> <B>    <P>Prueba de susceptibilidad a agentes antimicrobianos:    <BR> </B>La susceptibilidad a agentes antimicrobianos se determin&oacute; por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en placa de Kirby-Ba&uuml;er, utilizando el agar Mueller-Hinton (7), empleando 10 antimicrobianos que corresponden a las drogas com&uacute;nmente utilizadas en el tratamiento de infecciones por enterobacterias en humanos, de acuerdo a las sugerencias del National Commitee for Clinical Laboratory Standards (8). Estos antimicrobianos fueron: ampicilina (A: 10 mg), amikacina (Ak: 30 mg), cloranfenicol (C: 30 mg), carbenicilina (Cb: 100 mg), trimetoprim (Tr: 5 mg), tobramicina (Tb: 10 mg), tetraciclina (T: 30 mg), gentamicina (G: 10 mg), kanamicina (K: 30 mg) y &aacute;cido nalid&iacute;xico (Na: 30 mg)). Despu&eacute;s de 24 horas de incubaci&oacute;n a 35,5&amp;ordm;C, las cepas fueron clasificadas como susceptibles, intermedias y resistentes, de acuerdo con los di&aacute;metros de inhibici&oacute;n indicados por el NCCLS.</P> <B>    <P>Determinaci&oacute;n del indice de resistencia m&uacute;ltiple a agentes antimicrobianos:    <BR> </B>El &iacute;ndice de resistencia m&uacute;ltiple a antimicrobianos (9), fue calculado empleando la ecuaci&oacute;n de Krumperman (a/bxc), donde a es el n&uacute;mero de cepas que presentaron resistencia a tres o m&aacute;s agentes antimicrobianos; b es el n&uacute;mero de antibi&oacute;ticos sujetos a evaluaci&oacute;n en el estudio; y c es el n&uacute;mero total de cepas de E. coli a las que se les realiz&oacute; los ensayos de susceptibilidad.</P>     <P>Las cepas provenientes de las aguas crudas y las tratadas fueron consideradas independientes para el c&aacute;lculo de este &iacute;ndice.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Extracci&oacute;n y visualizaci&oacute;n de pl&aacute;smidos:    <BR> </B>Los pl&aacute;smidos de las cepas de E. coli aisladas fueron extra&iacute;dos utilizando el m&eacute;todo de lisis alcalina de Birboim y Doile (10) y analizados por electroforesis en gel de agarosa al 0,7% en buffer TBE y te&ntilde;idos con bromuro de ethidio (2 mg/L). Los tama&ntilde;os de las bandas de ADN plasm&iacute;dicos fueron evaluados por comparaci&oacute;n, utilizando como referencia tres marcadores de peso molecular: AmpliSize Molecular Ruler 50-2000 bp (Biorad, 170-8200), 500 bp Molecular Ruler (Biorad, 170-8203) y 2,5 Kb Molecular Ruler (Biorad, 170-8205).</P> <B>    <P>Resultados</P>     <P>Calidad de las aguas:    <BR> </B>Los resultados obtenidos tanto de los indicadores microbiol&oacute;gicos como de las determinaciones fisicoqu&iacute;micas se presentan resumidos en la <a href="#t1"">tabla I</a>. Para las muestras de agua cruda a la entrada del sistema, las medias geom&eacute;tricas de los CT y CTT fueron de 4,56 x 107 NMP/100 mL y de 1,51 x 107 NMP/100 mL. La temperatura, el pH y la turbidez de estas aguas presentaron valores de media geom&eacute;trica de 30,6&amp;ordm;C, 7,47 y 130,34 NTU, respectivamente. </P>     <P ALIGN="CENTER"><a name="t1"></a> <IMG SRC="/img/fbpe/rsvm/v22n1/art10img3.jpg" WIDTH=578 HEIGHT=102></P>     
<P>Tabla I. Medias geom&eacute;tricas y porcentaje de remoci&oacute;n de los indicadores de biol&oacute;gicos y fisicoqu&iacute;micos.</P>     <P>En el efluente final tratado, la media geom&eacute;trica de la temperatura fue de 29,2&amp;ordm;C, el pH 7,56 y la turbidez de 50,4 NTU. Los valores de la media geom&eacute;trica de los indicadores bacterianos fue de 2,24 x 104 y 8,6 x 103 NMP/100 mL para los CT y CTT, respectivamente.</P> <B>    <P>Selecci&oacute;n de cepas en muestras crudas y tratadas:    <BR> </B>Se seleccionaron un total de 69 cepas de E. coli de ambos tipos de muestras, de las cuales 31 se obtuvieron de las muestras de agua crudas y 38 de las tratada. Cinco de las cepas seleccionadas, tanto de las muestras residuales crudas como de las tratadas, fueron positivas a la serolog&iacute;a con los antisueros correspondientes para ECET.</P> <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Susceptibilidad a agentes antimicrobianos:    <BR> </B>En la <a href="#t2">tabla II</a> se presenta el n&uacute;mero y el porcentaje de cepas de E. coli que presentaron resistencia a los antimicrobianos evaluados. En las cepas aisladas de las muestras de aguas residuales crudas se observ&oacute; el siguiente orden de resistencia: A &gt; T = Tr &gt; Cb &gt; Ak = C = Tb. Veintis&eacute;is cepas (83,87%) fueron resistentes a A; cinco (16,12%) a T y a Tr; cuatro (12,90) a CB; y a AK, a C y a Tb s&oacute;lo se determin&oacute; una cepa (3,22%) resistente. No se observ&oacute; en las cepas de aguas crudas resistencia a G, K ni a Na. En las E. coli seleccionadas de las muestras tratadas el orden fue: A &gt; T &gt; Cb &gt; Tr &gt; C = Tb. Veintis&eacute;is cepas (83,87%) presentaron resistencia a A; 22 (68,75%) a T y 15 (46,87%) a Cb. S&oacute;lo en una cepa (3,12%) fue registrada resistencia a C y a Tb. No se obtuvieron cepas resistentes a Ak, G, K y Na.</P>     <P ALIGN="CENTER"><a name="t2"></a><IMG SRC="/img/fbpe/rsvm/v22n1/art10img4.jpg" WIDTH=400 HEIGHT=225></P>     
<P>Tabla II. E. Coli que presentaron resistencia a los antimicrobianos evaluados.</P>     <P>Los patrones de resistencia se muestran en la <a href="#t3">tabla III</a>. Diecinueve de las 31 cepas (61,90%) de E. coli seleccionadas de las muestras de aguas crudas fueron resistentes a s&oacute;lo un antimicrobiano. Cuatro cepas (12,90%) fueron resistentes a dos antimicrobianos, tres cepas (9,67%) lo fueron a tres, y dos cepas (6,45%) a cuatro de los antimicrobianos evaluados. En las cepas provenientes del efluente tratado, nueve de las 38 (23,68%) fueron resistentes a s&oacute;lo un antibi&oacute;tico, ocho (21,05%) fue tencia a A; 22 (68,75%) a T y 15 (46,87%) a Cb. S&oacute;lo en una cepa (3,12%) fue registrada resistencia a C y a Tb. No se obtuvieron cepas resistentes a Ak, G, K y Na.</P>     <P ALIGN="CENTER"><a name="t3"></a> <IMG SRC="/img/fbpe/rsvm/v22n1/art10img5.jpg" WIDTH=578 HEIGHT=304></P>     
<P>Tabla III. Patrones de resistencia a los antimicrobianos en cepas de E. Coli aisladas de muestras de aguas residuales crudas y tratadas.</P>     <P>Los patrones de resistencia se muestran en la <a href="#t3">tabla III</a>. Diecinueve de las 31 cepas (61,90%) de E. coli seleccionadas de las muestras de aguas crudas fueron resistentes a s&oacute;lo un antimicrobiano. Cuatro cepas (12,90%) fueron resistentes a dos antimicrobianos, tres cepas (9,67%) lo fueron a tres, y dos cepas (6,45%) a cuatro de los antimicrobianos evaluados. En las cepas provenientes del efluente tratado, nueve de las 38 (23,68%) fueron resistentes a s&oacute;lo un antibi&oacute;tico, ocho (21,05%) fueron resistentes a dos agentes antimicrobiano, y 11 (28,94%) lo fueron a tres. Se observ&oacute; multirresistencia a cuatro y a cinco antibi&oacute;ticos en s&oacute;lo una cepa (2,63%).</P> <B>    <P>Extracci&oacute;n de pl&aacute;smidos:    <BR> </B>En la <a href="#t4">tabla IV</a> se presentan los resultados de la extracci&oacute;n de pl&aacute;smidos de las 69 cepas de E. coli en estudio. 26 cepas (83,87%) de las 31 aisladas de las muestras crudas y 35 (92,10%) de las 38 cepas provenientes de las muestras tratada conten&iacute;an pl&aacute;smidos. En las cepas de las muestras crudas se encontraron bandas de tama&ntilde;os que comprend&iacute;an desde &gt;35Kb a 2Kb, y en las cepas seleccionadas de las muestras residuales tratadas el rango de tama&ntilde;o observado fue de &gt;35 Kb a 1Kb.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER"><a name="t4"></a><IMG SRC="/img/fbpe/rsvm/v22n1/art10img6.jpg" WIDTH=522 HEIGHT=563></P>     
<P>Tabla IV. N&uacute;mero y tama&ntilde;o de pl&aacute;smidos en las cepas de E. Coli aisladas en aisladas en las muestras de aguas crudas y tratadas.</P> <B>    <P>Discusi&oacute;n</P> </B>    <P>Los efluentes urbanos contienen altas concentraciones de bacterias que pueden originar problemas de salud p&uacute;blica, por lo que se hace necesario tratar las aguas residuales. La OMS ha estipulado que para poder reutilizarse las aguas residuales tratadas en riegos de cultivos deben de tener una concentraci&oacute;n de NMP/100 mL de CTT &lt; 103 (3). Generalmente, estos niveles de CTT se logran cuando los sistemas alcanzan porcentajes de remoci&oacute;n elevados (&gt;99,9%). En este estudio, a pesar de haberse obtenido excelentes niveles de remoci&oacute;n de los indicadores bacterianos (99,95% CT y 99,94% CTT) s&oacute;lo el 23,5% (4/17) de las muestras residuales tratadas durante el per&iacute;odo de recolecci&oacute;n de muestras cumplieron con esta norma de la OMS. Trabajos anteriores realizados en el mismo sistema han obtenido valores similares de remoci&oacute;n (10).</P>     <P>En la <a href="#f2">figura 2</a> se observ&oacute; que el porcentaje de las cepas resistentes a ampicilina fue mayor que el encontrado en las cepas de E. coli aisladas tanto de las muestras crudas (83,87%) como de las tratadas (81,25 %). La resistencia a C y Tb se encontr&oacute; en iguales porcentajes (3,22%) en ambos tipos de muestras. S&oacute;lo en las muestras crudas se observ&oacute; resistencia a Ak (3,22%), mientras que fue mayor la resistencia a aTr (16,12%) en este tipo de agua, en contraste con un 12,16% en las muestras tratadas. A diferencia con las muestras crudas, se observ&oacute; un mayor n&uacute;mero de cepas de E. coli las aguas tratadas que fueron resistentes a T (68,75%) y a Cb (46,87%). En ning&uacute;n caso, antes o despu&eacute;s del tratamiento, se determin&oacute; resistencia a G, K y Na.</P>     <P ALIGN="CENTER"><a name="f2"></a> <IMG SRC="/img/fbpe/rsvm/v22n1/art10img2.jpg" WIDTH=578 HEIGHT=243></P>     
<P>Figura 2. Porcentaje de cepas de E. Coli resistentes a los antimicrobianos.</P>     <P>Andersen (1993) registr&oacute; la resistencia a ampicilina como la mayor encontrada en un sistema de tratamiento de efluentes urbanos en Copenhague, Dinamarca. Harwood, en el a&ntilde;o 2000, detect&oacute; un porcentaje significativo de cepas de coliformes de origen humano que fueron resistentes a los antibi&oacute;ticos de la familia de los betalact&aacute;micos, entre ellos la ampicilina, a diferencia de cepas de origen animal, las cuales presentaban resistencia a tetraciclina y sus derivados. Los patrones de resistencia se han propuesto como par&aacute;metros para el estudio de la calidad de las aguas, sobre todo en aquellos casos donde es necesario establecer si el origen de la contaminaci&oacute;n es humana o animal. La diferencia en la resistencia entre las cepas de origen humano es significativamente diferente de aqu&eacute;llas que provienen de animales de sangre caliente, ya que los antimicrobianos y las dosis utilizados en los tratamientos de infecciones bacterianas en humanos y en animales son diferentes; adem&aacute;s, en animales se emplean grandes cantidades de antibi&oacute;ticos, para su engorde (11, 12 ) .</P>     <P>Se ha determinado que m&aacute;s del 90% de las cepas de E. coli aisladas de aguas impactadas por descargas fecales de origen humano presentan resistencia al menos a uno o dos antibi&oacute;ticos. En este estudio, un 84,21% de las cepas aisladas del efluente presentaron resistencia al menos a un antimicrobiano. El 34,21% de &eacute;stas presentaron resistencia a m&aacute;s de tres antimicrobianos. La multirresistencia puede significar un riesgo para la salud p&uacute;blica si se encuentran bacterias con caracter&iacute;sticas de patogenicidad asociadas, presenten resistencia m&uacute;ltiples y se encuentren en aguas destinadas a riego.</P>     <P>El 16,12% (5/31) y el 13,15% (5/38) de las cepas de las muestras crudas y tratadas, respectivamente, fueron positivas a la serolog&iacute;a para ECET. Una de las cepas de las muestras crudas present&oacute; resistencia a dos antibi&oacute;ticos, otra a un solo antimicrobiano y el resto fueron sensibles a todos los antimicrobianos evaluados, a diferencia de las cepas positivas a ECET de las aguas tratadas, de las cuales tres fueron resistentes a tres antimicrobianos y dos cepas a uno solo. La presencia de cepas de E. coli positivas para la serolog&iacute;a de ECET multirresistentes en las muestras de aguas residuales tratadas muestra la importancia del tratamiento y el monitoreo de este tipo de aguas.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>La multirresistencia observada en este estudio fue variable, en funci&oacute;n del tipo de muestra, como se observa en la <a href="#t3">tabla III</a>. En las muestras tratadas s&oacute;lo se observ&oacute; el patr&oacute;n de multirresistencia A/Cb/T, el cual fue el registrado con mayor frecuencia. Adem&aacute;s, en este tipo de agua se observ&oacute; la multirresistencia a cinco de los diez antimicrobianos evaluados (A/C/Cb/Tr/T). En las muestras de entrada cruda s&oacute;lo fueron encontradas las cepas multirresistentes a A/Tr/T y A/Cb/Tr/T. La incidencia de resistencia de las cepas seleccionadas a tres o m&aacute;s antimicrobianos fue mayor en las muestras tratadas (34,20%), a diferencia de las muestras crudas, que fue de un 16,12%. La diferencia en los patrones de resistencia entre las cepas provenientes de muestras crudas y tratadas podr&iacute;a significar una resistencia adquirida en el ambiente (14). La resistencia adquirida a antibi&oacute;ticos como el &aacute;cido nalid&iacute;xico en cepas de enterobacterias y Aeromonas ha sido reportada, en un porcentaje mayor en esta &uacute;ltima, lo cual podr&iacute;a explicar la variabilidad de los patrones de resistencia en cepas de origen ambiental (2). En estudios realizados por otros investigadores se muestran resultados contradictorios. Se determin&oacute; que los patrones de resistencia dependen de la composici&oacute;n de las poblaciones examinadas y no del tratamiento que se les de a las aguas (15). Otros autores, sin embargo, afirman que durante el tratamiento de las aguas las poblaciones de bacterias multirresistentes pueden incrementarse o disminuir, debido a los distintos fen&oacute;menos de intercambio gen&eacute;tico promovido por pl&aacute;smidos transmisibles por conjugaci&oacute;n (4).</P>     <P>Distintos autores indican que la reducci&oacute;n de las bacterias multirresistentes provenientes de lagunas de oxidaci&oacute;n pueden variar, y se especula acerca de su resistencia al tratamiento, ya que pueden poseer una ventaja ecol&oacute;gica sobre aquellas bacterias sensibles en las lagunas de maduraci&oacute;n (15, 16). Bell et al. (17) concluyen que las bacterias multirresistentes fueron removidos m&aacute;s eficientemente que aque&eacute;llas sensibles a las drogas antimicrobianas.</P>     <P>Krumperman (18) estableci&oacute; un &iacute;ndice estad&iacute;stico de 0,200, el cual puede predecir un alto riesgo en la salud p&uacute;blica por contaminaci&oacute;n de alimentos cuando se encuentran presentes bacterias con resistencia m&uacute;ltiple si el &iacute;ndice obtenido es mayor al &iacute;ndice preestablecido por Krumperman. El &iacute;ndice obtenido en este estudio para las muestras crudas fue de 0,0161 y de 0,0419 en las muestras tratadas. Otros autores han establecidos valores inferiores (0,016) para las muestras tratadas que los obtenidos en el presente trabajo (20, 4). A pesar del bajo &iacute;ndice registrado en este estudio, se determin&oacute; un 260% de incremento en la multirresistencia al final del tratamiento.</P>     <P>La presencia de pl&aacute;smidos puede ser un factor importante en los tratamientos de aguas. Algunos autores han determinado que mientras las poblaciones bacterianas son removidas por los sistemas de tratamientos, aquellos peque&ntilde;os grupos de bacterias que contengan y puedan transferir horizontalmente genes de resistencia (F+), utilizando como veh&iacute;culos los pl&aacute;smidos R, hacia poblaciones bacterianas receptora (F-) pueden replicarse eficientemente incrementando las densidades de estas bacterias (17, 20). Si bien en este estudio no se realizaron ensayos de conjugaci&oacute;n, la presencia de una gran variedad de pl&aacute;smidos de diferentes pesos moleculares en la poblaci&oacute;n estudiada y el incremento de bacterias multirresistentes al final del tratamiento de las aguas hace suponer que la transferencia de factores R puede realizarse en esta agua.</P>     <P>La presente investigaci&oacute;n mostr&oacute; que las descargas al colector C de la ciudad de Maracaibo y la Ciudad Universitaria de la Universidad del Zulia presentaban bacterias multirresistentes, que conten&iacute;an pl&aacute;smidos, y que &eacute;stas se incrementaban luego del tratamiento por lagunas de oxidaci&oacute;n. La sobrevivencia de cepas resistentes a m&aacute;s de tres antimicrobianos en el efluente final tratado lleva a la conclusi&oacute;n de que el concepto, as&iacute; como las normas de calidad de aguas, deben de ser reevaluados, y muestra la necesidad de establecer nuevos controles y par&aacute;metros para la determinaci&oacute;n de la calidad del agua, y no basarse &uacute;nicamente en los indicadores bacteriol&oacute;gicos tradicionales.</P> <B>    <P>Agradecimiento</P> </B>    <P>Este trabajo fue financiado por el Consejo de Desarrollo Cient&iacute;fico y Human&iacute;stico de La Universidad del Zulia (CONDES-LUZ) (Proyecto N&amp;ordm; 1648-00)</P> <B>    <P>Referencias:</P> </B>    <!-- ref --><P>1. Andersen, S. and Sandaa, R.: Distribution of Tetracycline Resistance Determinants among Gram-Negative Isolated from polluted and Unpolluted Marine Sediments. Appl. Environ. Microbiol. 60: 908-912, 1994&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972620&pid=S1315-2556200200010001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>2. Go&ntilde;i-Urriza, M.; Capdepuy, M.; Arpin, C. ; Raymond, N.; Caumette, P. and Quentin, C.: Impact of an Urban on Antibiotic Resistance of Riverine Enterobacteriaceae and Aeromonas spp. Appl. Environ. Microbiol. 66: 125-132, 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972621&pid=S1315-2556200200010001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>3. Castro, M.; Fl&oacute;rez, A.; Rojas, R.: Evaluaci&oacute;n de riesgos para la salud por el uso de las aguas residuales en agricultura. Resumen Ejecutivo, Volumen 1. CEPIS. Lima, Per&uacute;, 1990.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972622&pid=S1315-2556200200010001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>4. Andersen, R.: Effects of Waste Water Treatment on the Species Composition and Antibiotic Resistance of Coliform Bacteria. Current Microbiol. 26:97-103, 1993.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972623&pid=S1315-2556200200010001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>5. American Public Health Association (APHA). Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. APHA-AWWA-WAF. pp 552, 1995&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972624&pid=S1315-2556200200010001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>6. Farmer III, J.J.: Enterobacteriaceae: Introduction and Identification, Chapter 27 442-458, In. MURRAY, P. (Ed). Manual of Clinical Microbiology. 7th Edition. ASM-Press. Washington, USA. P. 1795, 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972625&pid=S1315-2556200200010001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>7 Bauer, A.; Kirby, M.; Sherris, J.; and Turck, M.: Antibiotic Susceptibility Testing by a Standardized Single Disk Method. Amer. J. Clin. Patho. 45:493-496, 1966.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972626&pid=S1315-2556200200010001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>8. National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Eight Informational Supplement. Ferraro MJ, Craig W, Eliopoulos G, Fung-Tomc J, Hansen S, Hecht D, Hindler J, Reller L, Sahm D, Swenson J, Tenover F, Testa R, Wikler M. NCCLS M100-S8, 1998.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972627&pid=S1315-2556200200010001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>9. Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) .Directrices Sanitarias sobre el Uso de Aguas Residuales en Agricultura y Acuicultura. Informe de Grupo Cient&iacute;fico. Serie de Informes T&eacute;cnicos, Ginebra, Suiza, 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972628&pid=S1315-2556200200010001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>10. Asubel, F.; Brente, R.; Kingston, R.; Moore, D.; Seidman, J.; Smith, J; and Struhl, K.: A Compendium of Methods From Current Protocols in Molecular Biology. John Wiley &amp; Sons, Inc. New York, USA. pp. 387, 1997&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972629&pid=S1315-2556200200010001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>11. Botero, L.; Montiel, M.; Estrada, P.; Villalobos, M.; and Herrera, L.: Microorganism Removal in Wastewater Stabilization Ponds in Maracaibo, Venezuela. Wat. Sci. Tech. 35:205-209, 1997.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972630&pid=S1315-2556200200010001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>12. Hagerdorn, C.; Robinson, S.; Filtz, J.; Grubbs, S.; Angier, T.; Reneau, R.: Determining Source of Fecal Pollution in a Rural Virginia Watershed with Antibiotic Resistance Patterns in Fecal Streptococci. Appl. Environ. Microbiol. 65: 5522-5531, 1999.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972631&pid=S1315-2556200200010001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>13. Harwood, V; Whitlock, J.; Withington, V.: Classification of Antibiotic Resistance Patterns of Indicator Bacteria by Discriminant Analysis: Use in Predicting the Source of Fecal Contamination in Subtropical Waters. Appl. Environ. Microbiol. 66: 3698-3704, 2000.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972632&pid=S1315-2556200200010001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>14. Niemi, M.; Sibakov, M.; Niemela, S.: Antibiotic Resistance among Different Species of Fecal Coliforms Isolated From Water Samples. Appl. Environ. Microbiol. 4:79-83, 1983.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972633&pid=S1315-2556200200010001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>15. Walter, M. and Vennes, J.: Occurrence of Multiple-Antibiotic-Resistant Enteric Bacteria in Domestic Sewage and Oxidation Lagoons. Appl. Environ. Microbiol. 50: 930-933, 1985.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972634&pid=S1315-2556200200010001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>16. Grabow, W.; Middendorff, I.; Prozwsjy, O.: Survival in Maduration Ponds of Coliform Bacteria with Transferable Drug Resistance. Wat. Res. 7:1589-1597, 1973.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972635&pid=S1315-2556200200010001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>17. Bell, J.; Macrae, W.; Elliot, G. R.: Factors in Coliform-Fecal Coliform Sewage Flora of the Prairies and Northwest Territories of Canada. Appl. Environ. Microbiol. 42: 204-210, 1981.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972636&pid=S1315-2556200200010001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P>18. Krumperman, P.: Multiple Antibiotic Resistance Indexing of Escherichia coli to Identify High-Risk Sources of Fecal Contamination of Foods. Appl. Environ. Microbiol. 46: 165-170, 1983.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972637&pid=S1315-2556200200010001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P>29. Kaspar, C.; Burgues, J.; Knight, I.; Colwell, R.: Antibiotic Resistance Indexing of Escherichia coli to Identify Source of Fecal Contamination. Can. J. Microbiol. 36: 891-894, 1999.</P>     <!-- ref --><P>20. Seltzer, W. and Ziegert, E.: Occurrence of Antibiotic-Resistant Coliforms in Wastewater of a Sewage Treatment Plant. Appl. Environ. Microbiol. 63: 415-423, 1981.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1972639&pid=S1315-2556200200010001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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<year>1994</year>
<volume>60</volume>
<page-range>908-912</page-range></nlm-citation>
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<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
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<source><![CDATA[Appl. Environ. Microbiol.]]></source>
<year>2000</year>
<volume>66</volume>
<page-range>125-132</page-range></nlm-citation>
</ref>
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<label>3</label><nlm-citation citation-type="book">
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<year>1990</year>
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