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<journal-title><![CDATA[Revista de la Sociedad Venezolana de Microbiología]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aislamiento de Candida spp. en ambiente y personal que labora en una unidad de cuidados intensivos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Nosocomial infection by Candida species are an important cause of morbidity and mortality, especially in seriously ill patients, and it is important to establish the infection source in hospital environments. The purpose of this study was to isolate and identify Candida species in medical equipments, furniture, and hands of staff working in intensive care units and evaluate their susceptibility to fluconazole and voriconazole. Samples were obtained with sterile swabs humidified with brain-heart broth supplemented with chloramphenicol. Identification was done through growth characteristics in chromogenic agar and by conventional methods; fluconazol and voriconazole susceptibility was evaluated by the disk diffusion method (CLSI M44-A). Twenty-six (68.4%) of the isolates were obtained from furniture and medical equipments and 12 (31.6%) from the hands of the staff. The most frequent species was C. parapsilosis (55.4%), followed by C. tropicalis, C. famata, C. glabrata and C. guilliermondii; other yeasts were also evaluated, Rhodotorula spp. and the Trichosporum Complex (23%). Regarding sensitivity, 65.8% of the isolates were sensitive to fluconazole and 81.6% to voriconazole. The environmental presence of Candida spp suggests that intra-hospital hygiene regulations should be improved in order to prevent their horizontal transmission.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center" style="text-autospace: none; vertical-align: middle"> <span style="color: black; font-weight: 700"><font face="Verdana">Aislamiento de <i>Candida</i> spp. en ambiente y personal que labora en una unidad de cuidados  intensivos</font></span></p>     <p align="center" style="text-autospace: none; vertical-align: middle"> <font face="Verdana"><span style="color: black; font-weight: 700"> <font size="2">&nbsp;</font><font size="2">Yotsabeth Saúl García*, Rosaura Hernández  Valles</font></span></font></p>     <p align="center" style="text-align: justify; text-autospace: none; vertical-align: middle"> <font face="Verdana"><span style="color: black"><font size="2">&nbsp;Laboratorio de  Micología, Centro de Investigaciones Biomédicas. Universidad Nacional  Experimental “Francisco de Miranda”, </font></span></font> <span style="color: black"><font size="2" face="Verdana">Coro, estado Falcón,  Venezuela.</font></span></p>     <p align="center" style="text-align: justify; text-autospace: none; vertical-align: middle"> <font face="Verdana"><span style="color: black"><font size="2">*  Correspondencia: </font></span><i><span style="color: black"><font size="2"> E-mail</font></span></i><span style="color: black"><font size="2">: <a href="mailto:yotsabeth@gmail.com">yotsabeth@gmail.com</a></font></span></font></p>     <p align="center" style="text-align: justify; text-autospace: none; vertical-align: middle"> <font face="Verdana"><b><span style="color: black"><font size="2">Resumen:</font></span></b><span style="color: black"><font size="2">  Las infecciones nosocomiales por especies de <i>Candida </i>son causa importante  de morbilidad y mortalidad, especialmente en pacientes críticos, siendo  relevante establecer la fuente potencial de infección en ambientes  hospitalarios. El objetivo de este estudio fue aislar e identificar especies de <i>Candida</i> en equipos médicos, mobiliarios y manos del personal que labora  en una unidad de cuidados intensivos y evaluar su susceptibilidad a fluconazol y  voriconazol.<sup> </sup>Se obtuvieron muestras mediante hisopo estéril,  humedecido en caldo cerebro corazón suplementado con cloranfenicol. La  identificación se realizó mediante las características de crecimiento en agar  cromogénico y por métodos convencionales; la susceptibilidad a fluconazol y  voriconazol fue evaluada mediante el método de difusión del disco (CLSI M44-A).  De mobiliario y equipos médicos se obtuvieron 26 (68,4%) aislados y de las manos  del personal 12 (31,6%). <i>C. parapsilosis</i> fue la especie más frecuente  (55,4%), seguida de <i>C. tropicalis</i>, <i>C. famata</i>, <i>C. glabrata</i> y <i>C. guilliermondii</i>; además, se aislaron otras levaduras, <i>Rhodotorula</i>  spp. y el Complejo <i>Trichosporon </i>(23%). El 65,8% de los aislados fue  sensible a fluconazol y el 81,6% a voriconazol. La presencia ambiental de  especies de <i>Candida</i> sugiere que deben mejorarse las normas de higiene  intrahospitalarias para prevenir su transmisión horizontal.</font></span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><b><span style="color: black"><font size="2">Palabras  clave:</font></span></b><span style="color: black"><font size="2"> <i>Candida</i>,  personal de salud, infección intrahospitalaria, UCI, antifúngicos.</font></span></font></p>     <p align="center" style="text-autospace: none; vertical-align: middle"> <span lang="EN-US" style="color: black; font-weight: 700"> <font size="2" face="Verdana">Isolation of <i>Candida</i> spp. in environment  and staff of an intensive care unit</font></span></p>     <p align="center" style="text-align: justify; text-autospace: none; vertical-align: middle"> <font face="Verdana"><span lang="EN-US" style="color: black"><font size="2">&nbsp;</font></span><b><span lang="EN-US" style="color: black"><font size="2">Abstract:</font></span></b><span lang="EN-US" style="color: black"><font size="2">  Nosocomial infection by <i>Candida </i>species are an important cause of  morbidity and mortality, especially in seriously ill patients, and it is  important to establish the infection source in hospital environments. The  purpose of this study was to isolate and identify <i>Candida </i>species in  medical equipments, furniture, and hands of staff working in intensive care  units and evaluate their susceptibility to fluconazole and voriconazole. Samples  were obtained with sterile swabs humidified with brain-heart broth supplemented  with chloramphenicol. Identification was done through growth characteristics in  chromogenic agar and by conventional methods; fluconazol and voriconazole  susceptibility was evaluated by the disk diffusion method (CLSI M44-A).  Twenty-six (68.4%) of the isolates were obtained from furniture and medical  equipments and 12 (31.6%) from the hands of the staff. The most frequent species  was <i>C. parapsilosis </i>(55.4%), followed by <i>C. tropicalis, C. famata, C.  glabrata </i>and <i>C. guilliermondii; </i>other yeasts were also evaluated, <i> Rhodotorula </i>spp. and the <i>Trichosporum </i>Complex (23%). Regarding  sensitivity, 65.8% of the isolates were sensitive to fluconazole and 81.6% to  voriconazole. The environmental presence of <i>Candida </i>spp suggests that  intra-hospital hygiene regulations should be improved in order to prevent their  horizontal transmission.</font></span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><b><span lang="EN-US" style="color: black"><font size="2"> Keywords:</font></span></b><span lang="EN-US" style="color: black"><font size="2"> <i>Candida</i>, health staff, intra-hospital infection, ICU, antifungals.</font></span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span style="color: black"><font size="2" face="Verdana">Recibido 1 de febrero  de 2014; aceptado 1 de abril de 2014</font></span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><b><span style="font-size: 10.0pt">Introducción</span></b></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><span style="font-size: 10.0pt">Las infecciones fúngicas  nosocomiales se han convertido en causa importante de morbilidad y mortalidad en  el ámbito hospitalario, especialmente en pacientes críticos [1,2]. La mayoría  son producidas por especies de <i>Candida, </i>siendo <i>C</i>. <i>albicans</i>  la especie más frecuente; sin embargo, en los últimos años se ha observado un  cambio en la frecuencia hacia especies no<i> albicans</i>, tales como <i>C.  parapsilosis, C. tropicalis, C. krusei </i>y <i>C. lusitaniae,</i> emergiendo  con ellas nuevos patrones de susceptibilidad a los antifúngicos [2].<sup> </sup> Estas infecciones ocurren principalmente a partir de un foco de colonización  endógeno, debido a que algunas especies son parte de la microbiota de piel y  mucosas; en otras ocasiones, el origen es exógeno, tras la colonización de  catéteres y dispositivos intravasculares o debido a transmisión cruzada a través  de las manos del personal de salud. Se ha reportado que <i>C. parapsilosis, </i> es un agente frecuente de brotes intrahospitalarios relacionados con el uso de  catéteres [2,3].</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">La transmisión de  levaduras a los pacientes y entre pacientes, con frecuencia comienza en el  ambiente y de las manos del personal de salud [3,4]. Se ha estimado que la  presencia de levaduras en las manos de personas sanas es baja (menos del 5%);  sin embargo, en trabajadores de la salud, la prevalencia puede variar entre el  20% para el personal médico y el 80% para el de enfermería; las especies que se  reportan con mayor frecuencia son <i>C. parapsilosis </i>y/o <i>Rhodotorula </i> spp. [3-7]. Si las manos pueden cumplir un papel importante en la transmisión  exógena de levaduras hacia el paciente y como cada vez se reportan con mayor  frecuencia infecciones fúngicas nosocomiales, se consideró relevante determinar  la frecuencia de aislados de levaduras a partir de las manos de trabajadores de  la salud y del ambiente en un servicio hospitalario, y evaluar su perfil de  susceptibilidad <i>in vitro </i>a </span><font face="Verdana"> <span style="font-size: 10.0pt">fluconazol y voriconazol, con la finalidad de  fundamentar en el futuro, la implementación de estrategias de prevención de  infecciones fúngicas nosocomiales y el uso profiláctico y terapéutico de  antifúngicos en los pacientes.</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><b><span style="font-size: 10.0pt">Materiales y métodos</span></b></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><span style="font-size: 10.0pt">Se realizó una  investigación de tipo descriptivo y prospectivo con un diseño experimental, en  donde se recolectaron y cultivaron muestras de mobiliario, equipos médicos y  manos del personal (médicos, enfermeras y personal de limpieza) que labora en la  unidad de cuidados intensivos (UCI) del Hospital Universitario “Dr. Alfredo Van  Grieken”, Coro, estado Falcón, Venezuela. Esta investigación fue aprobada por el  Comité de Bioética del Área Ciencias de la Salud, Universidad Nacional  Experimental “Francisco de Miranda”.</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><i><span style="font-size: 10.0pt">Aislamiento e  identificación: </span></i><span style="font-size: 10.0pt">Las muestras fueron  recolectadas con hisopo estéril humedecido en caldo infusión cerebro corazón  suplementado con cloranfenicol, según técnicas descritas con algunas  modificaciones [5-7]. En mobiliario y equipos médicos se pasó el hisopo por toda  su superficie, en algunos casos se utilizaron varios hisopos para cubrir toda el  área de un mismo objeto. Las muestras de las manos del personal se tomaron  durante su turno de trabajo, mediante frotación con el hisopo en la palma,  dorso, pliegue interdigital y uñas. Todas las muestras se recolectaron una sola  vez. Posteriormente, cada hisopo fue colocado en tubos de ensayo con caldo  infusión cerebro corazón suplementado con cloranfenicol para su transporte al  laboratorio. A partir de los hisopos se realizó siembra en agar cromogénico para <i>Candida</i> (Oxoid brilliance™ <i>Candida</i> agar) y tanto este medio como  los caldos fueron incubados a 37 ºC, en aerobiosis, durante 48 horas. Los caldos  que no mostraron crecimiento en ese tiempo fueron dejados en incubación por 8  días, con evaluación visual diaria en busca de signos de positividad (turbidez  del medio, presencia de gas o formación de colonias); los caldos positivos y los  que permanecieron en incubación hasta los 8 días, se subcultivaron en agar  cromogénico e incubaron en las mismas condiciones anteriores. Los aislados se  identificaron mediante las características macroscópicas de crecimiento en agar  cromogénico y por métodos convencionales: hidrólisis de la urea, producción de  clamidoconidias y asimilación de carbohidratos [8-10].<sup> </sup></span></font> </p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><i><span style="font-size: 10.0pt">Estudio de  susceptibilidad a fluconazol y voriconazol</span></i><span style="font-size: 10.0pt">:<i> </i>Se utilizó el método de difusión del disco descrito por el Instituto de  Estándares Clínicos y de Laboratorio (Clinical and Laboratory Standard Institute,  CLSI) en su documento M44-A [11].<span style="color:#222222"> </span>Se  utilizaron placas de 90 mm de diámetro, que contenían agar Müeller-Hinton (BBL,  Cockeysville, EE.UU) suplementado con 2% de glucosa y 0,5 µg/mL de azul de  metileno, con una profundidad de 4,0 mm. El inóculo utilizado consistió en una  suspensión de la levadura a evaluar, ajustada a la turbidez del estándar 0,5  McFarland. Las placas con el agar Müeller-Hinton fueron inoculadas mediante  diseminación uniforme con hisopo estéril humedecido en la suspensión de  levaduras. Los discos de fluconazol (25 µg) y voriconazol (1 µg) (Bioanalyse ®)  se colocaron sobre la superficie de las placas inoculadas, las cuales fueron  incubadas en aerobiosis, a 37 °C; los resultados se evaluaron a las 18<b>-</b>24  horas y la lectura fue visual, midiendo el diámetro (mm) del área donde ocurrió  una reducción del 80% del crecimiento fúngico. Los aislados se clasificaron como  Sensible (S), Intermedio (I), Sensible Dosis Dependiente (SDD) o Resistentes  (R). Los puntos de corte de referencia, expresados en milímetros (mm) fueron:  fluconazol S &#8805;17, SDD entre 14<b>-</b>16, R &#8804;13 para <i>C. albicans, C.  parapsilosis, C. tropicalis</i> y SDD &#8805;15 y R &#8804;14 para <i>C. glabrata </i>[12].  En el caso del voriconazol, S &#8805;17, I entre 15<b>-</b>16, R &#8804;14 para <i>C.  albicans, C. parapsilosis, C. tropicalis</i> y S &#8805;15, I entre 13<b>-</b>14, R  &#8804;12 para <i>C. krusei</i> [13].</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><i><span style="font-size: 10.0pt">Control de calidad del  estudio de susceptibilidad</span></i><span style="font-size: 10.0pt">: Se  realizó utilizando las cepas <i>C. parapsilosis</i> ATCC 22019 y <i>C. krusei</i>  ATCC 6258, suministradas por el Departamento de Micología, del Instituto  Nacional de Higiene “Rafael Rangel”, Caracas, Venezuela. Para la interpretación  de los resultados se emplearon los puntos de corte descritos por Barry <i>et al</i>.  y por Krisher <i>et al.</i> [14,15].</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><i><span style="font-size: 10.0pt">Análisis estadístico</span></i><span style="font-size: 10.0pt">:<i> </i>Se calculó la frecuencia absoluta y porcentual de los aislados obtenidos por  especie de <i>Candida</i>, tipo de muestra y los porcentajes de susceptibilidad  a los antifúngicos, de forma global y por especie aislada.</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><b><span style="font-size: 10.0pt">Resultados y discusión</span></b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><span style="font-size: 10.0pt">Fueron procesadas 78  muestras, 46 de mobiliario y equipos médicos (59%) y 32 de manos del personal  (41%), obteniéndose 38 aislados: 26 (68,4%) de equipos médicos y mobiliario y 12  del personal (31,6%). En la <a href="#tab1">Tabla 1</a> se muestran las especies  de <i>Candida </i>según la muestra evaluada.</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="center"> <a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v34n1/art07tab1.gif" width="371" height="336"></a></p>     
<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">De los aislados obtenidos  de equipos médicos y mobiliario, 46,2% correspondió a <i>C. parapsilosis</i> (n=  12), 15,4% <i>C. famata</i> (n= 4), 7,7% <i>C. tropicalis</i> (n= 2) y 3,8%  tanto <i>C. glabrata</i> como <i>C. guilliermondii</i> (n= 1); otras levaduras  aisladas fueron <i>Rhodotorula</i> spp. y el Complejo <i>Trichosporon</i> (ambas  11,5%, n= 3). La mayor frecuencia de <i>C. parapsilosis, </i>coincide con lo  reportado por otros autores, quienes la han asociado con infección nosocomial de  transmisión exógena [16,17]. En un estudio realizado en Venezuela se reportó  aislamiento importante de <i>Candida </i>spp<i>.</i> en áreas hospitalarias de  emergencia y unidades de cuidados intensivos, utilizando la técnica de  sedimentación en placa para obtener microorganismos del aire [18]; la  metodología empleada en esa investigación y la no caracterización de las  especies aisladas, dificulta establecer comparaciones. Es importante destacar el  aislamiento de <i>C. famata, C. glabrata, Rhodotorula</i> spp. y el Complejo <i> Trichosporon,</i> ya que<i> </i>se consideran patógenos emergentes de  importancia clínica debido a la resistencia antifúngica reportada <i>in vitro</i>  [19,20]. Aunque no se han señalado con frecuencia como causantes de brotes de  infección nosocomial, su presencia en el ambiente podría considerarse un factor  de riesgo para </span><font face="Verdana"><span style="font-size: 10.0pt"> pacientes críticos. Las especies del Complejo <i>Trichosporon </i>se consideran  saprófitos ambientales que también pueden formar parte de la microbiota humana  al colonizar transitoriamente piel, vías respiratorias y vagina [21]. Aunque su  hallazgo en el ambiente hospitalario no es frecuente, existen algunos informes  que reportan su aislamiento de la porción distal del catéter colector de orina  [22]. <i>Rhodotorula</i> spp. está ampliamente distribuida en la naturaleza y  puede formar parte de la microbiota gastrointestinal, urinaria y cutánea del  hombre. Se ha descrito que tiene fuerte afinidad por el plástico y ha sido  aislada de equipos médicos tales como equipos de diálisis y broncoscopios de  fibra óptica [23]. Debido a su bajo poder patógeno, ocasionalmente se describe  como agente de infecciones graves en pacientes inmunocomprometidos, asociadas al  uso de catéter venoso central [24]. </span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><span style="font-size: 10.0pt">De los aislados obtenidos  de manos del personal, 75% correspondió a <i>C. parapsilosis</i> (n= 9), 16,6% <i>C. tropicalis</i> (n= 2) y 8,3 % <i>Rhodotorula</i> spp. (n= 1) (Tabla 1)<i>.</i>  A pesar de que se obtuvieron menos especies de levaduras, la mayor frecuencia de <i>C. parapsilosis</i> coincide con lo observado en muestras de equipos médicos,  mobiliario y con lo reportado en la literatura [3-7,16]. En los últimos años se  ha señalado que esta especie, a pesar de ser menos virulenta que <i>C. albicans</i>,  en muchas ocasiones produce candidemia de origen exógeno a partir de las manos  del personal de salud, originando brotes de infección hospitalaria [6,16,17].  Las epidemias intrahospitalarias por <i>C. parapsilosis </i>se han relacionado  con el mal manejo de los catéteres centrales o periféricos y con la  contaminación de las soluciones de perfusión, que junto con su particular  afinidad por los materiales sintéticos, contribuye a explicar su asociación a  infección relacionada con catéteres [16,25]. En un estudio realizado en  pacientes ingresados en la UCI del hospital donde se llevó a cabo esta  investigación, se reportó que <i>C. parapsilosis </i>fue una de las especies  menos frecuente y se aisló solo en urocultivos [26]; sin embargo, su presencia  prevalente en el ambiente y manos del personal que allí labora, podría  constituir un factor de riesgo para la transmisión horizontal de infección  nosocomial. En la literatura revisada no se refiere a <i>C. tropicalis </i>entre  las especies aisladas del personal de salud, desconociéndose su asociación con  infección de transmisión horizontal intrahospitalaria. Se ha reportado que <i>C.  tropicalis</i> es capaz de colonizar dispositivos vasculares, tiene mayor  capacidad invasora que <i>C. albicans</i>,<i> </i>generalmente la infección en  los pacientes es de origen endógeno y entre el 50-60% de los colonizados  desarrollan candidiasis invasora (tasa de mortalidad del 16%) [27]. Esta especie  ha sido la más aislada en urocultivos de pacientes críticos ingresados en el  hospital donde se realizó la investigación [26]; sería interesante establecer  comparación genotípica, mediante técnicas moleculares, entre los aislados  provenientes de los pacientes y los obtenidos en el ambiente (equipos médicos,  mobiliario y manos del personal sanitario) a fin de determinar si existe  transmisión horizontal de clones produciendo infección nosocomial. Según algunos  autores, <i>Rhodotorula</i> spp. es una de las levaduras más frecuentemente  aislada de manos del personal de salud junto con <i>C. parapsilosis</i>, lo cual  difiere con los hallazgos de este estudio, donde solo se obtuvo un aislado [3<b>-</b>7,28].  El aislamiento de <i>Rhodotorula</i> spp. podría ser un indicador de la  colonización transitoria de otras levaduras con mayor importancia clínica en las  manos del personal que labora en instituciones sanitarias.</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">El  estudio de susceptibilidad a fluconazol mostró que de todos los aislados  evaluados, el 65,8% (n= 25) fue sensible, 7,9% (n= 3) SDD y 26,3% resistente (n=  10) (Tabla 2). El 71,4% de <i>C. parapsilosis</i> fue sensible a fluconazol (n=  15), observándose un 14,3% tanto SDD como resistente (n= 3). El 75% de <i>C.  tropicalis</i> y <i>C. famata</i> fue sensible al igual que todos los aislados  de <i>C. guilliermondii </i>y del Complejo <i>Trichosporon</i> pero <i>C.  glabrata</i> y <i>Rhodotorula</i> spp. resultaron resistentes.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">Para  el voriconazol, el patrón de susceptibilidad fue diferente: el 81,6% (n= 31) de  los aislados resultó sensible, 2,6% (n= 1) mostró sensibilidad intermedia,  mientras que 15,8% (n= 6) presentó resistencia al antimicótico (<a href="#tab2">Tabla  2</a>). Según la especie estudiada, el 85,7% de <i>C. parapsilosis </i>fue  sensible (n= 18), 4,8% mostró sensibilidad intermedia (n= 1) y 9,5% fue  resistente (n= 2); el resto de las especies de <i>Candida</i> y el Complejo <i> Trichosporon</i> resultaron sensibles, mientras que <i>Rhodotorula</i> spp. fue  resistente (n= 4).</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="center"> <a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rsvm/v34n1/art07tab2.gif" width="578" height="245"></a></p>     
<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">La  susceptibilidad antifúngica de especies de <i>Candida </i>obtenidas del ambiente  o del personal de salud no se señala con frecuencia en la literatura. En un  estudio realizado en Costa Rica se reportó que todas las especies de <i>Candida</i>  aisladas de las manos del personal sanitario, fueron sensibles a fluconazol,  superior a los resultados de esta investigación [7]. De igual forma, en otro  estudio se señala que más del 90% de los aislados de <i>C. parapsilosis</i>  provenientes de las manos del personal sanitario fueron sensibles a fluconazol  [5]. El patrón de susceptibilidad observado en <i>C</i>. <i>parapsilosis</i> y <i>C</i>. <i>tropicalis</i> contrasta con lo que se ha reportado en aislados  obtenidos de muestras clínicas. Según Pfaller <i>et al</i>. en un estudio  multicéntrico de evaluación de la susceptibilidad antifúngica por el método de  difusión del disco en especies de <i>Candida</i>, la resistencia a fluconazol no  es tan frecuente y variable en <i>C. parapsilosis </i>y<i> C. tropicalis</i>,  estimando una tasa de resistencia entre el 2</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">-</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">4,2%  y 3</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">-</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">6,6%,  respectivamente [2]; esta tasa de resistencia fue mayor en los aislados de esta  investigación. Por otra parte, los mismos autores refieren variaciones  importantes y altas tasas de resistencia en aislados de <i>C</i>. <i>glabrata</i>  (14,3</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">-</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">22,8%), <i>C</i>. <i>guilliermondii</i> (6,3</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">-</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">26,1%)  y <i>C</i>. <i>famata</i> (9,8</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">-</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">47,4%)  [2]; similares a las variaciones observadas en este estudio. En cuanto al  voriconazol, la susceptibilidad se ha estimado entre el 97</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">-</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal">100%  para las diferentes especies de <i>Candida</i> excepto <i>C</i>. <i>glabrata</i>  y C. <i>krusei</i>, que muestran una mayor tasa de resistencia [2,13]. Se ha  reportado que las especies de <i>Candida</i> con susceptibilidad disminuida al  fluconazol pueden presentar resistencia cruzada con voriconazol [2]; es posible  que a esto se deba lo observado en los aislados de <i>C</i>. <i>parapsilosis,</i>  que fueron los que mostraron menor susceptibilidad y mayor resistencia a ambos  antifúngicos. A pesar de que el antifungigrama por la técnica de difusión del  disco es un método validado para el estudio de susceptibilidad a fluconazol y  voriconazol en <i>Candida</i> spp. se considera conveniente que los aislados SDD,  intermedios y resistentes sean reevaluados por un método estándar de dilución  como el de microdilución en caldo, a fin de determinar la concentración  inhibitoria mínima (CIM) y verificar la existencia de cepas ambientales  resistentes. Además, sería conveniente ampliar este tipo de investigación con la  finalidad de evaluar el patrón de susceptibilidad en un número mayor de  aislados.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">La sensibilidad del  Complejo <i>Trichosporon</i> a fluconazol y voriconazol coincide con lo  reportado por otros autores en aislados provenientes de pacientes [26,29]. Son  pocos los estudios publicados acerca de la susceptibilidad <i>in vitro</i> de <i> Rhodotorula</i> spp. a los </span> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: normal"> antifúngicos sistémicos; habitualmente es sensible a anfotericina B y 5-fluorocitosina,  pero resistente a los azoles [24], similar a lo observado en esta investigación  donde todos los aislados fueron resistentes.</span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; font-weight: 700"> Conclusiones y recomendaciones</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><span style="font-size: 10.0pt">Los resultados presentados  evidencian aislamiento importante de levaduras en el ambiente (equipos médicos y  mobiliario) y manos del personal de salud, en la unidad de cuidados intensivos  (UCI) del Hospital Universitario “Dr. Alfredo Van Grieken”, especialmente <i>C</i>. <i>parapsilosis</i>, agente asociado a infección nosocomial de transmisión  exógena. Esto sugiere que deben mejorarse las normas de higiene hospitalarias a  fin de contribuir con la prevención de brotes nosocomiales de infección fúngica  por transmisión horizontal. El patrón de susceptibilidad antifúngica observado  requiere ser verificado mediante la determinación de la CIM, con la finalidad de  confirmar la frecuencia de especies de <i>Candida</i> resistentes que pudieran  transmitirse a los pacientes ingresados en UCI, lo cual sería un factor de  riesgo importante debido a la condición clínica en que ellos se encuentran. Se  recomienda extender este estudio a otros centros de salud del país, abarcando  incluso la genotipificación de las especies aisladas, para compararlas con las  obtenidas en pacientes a fin de establecer si existen clones ocasionando brotes  de infección intrahospitalaria.</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><b><span style="font-size: 10.0pt">Agradecimientos</span></b></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><span style="font-size: 10.0pt">Los autores expresan su  agradecimiento al personal que labora en la Unidad de Cuidados Intensivos “Dr.  David Isea Trompiz” del Hospital Universitario “Dr. Alfredo Van Grieken”, por su  apoyo y cooperación en la recolección de las muestras evaluadas. Así como  también, a la Sra. Zaida Bracho y la Sra. Margot Colina, personal del  Laboratorio de Micología, CIB/UNEFM, por su incondicional ayuda en la ejecución  de esta investigación.</span></font></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana"><b><span style="font-size: 10.0pt">Referencias</span></b></font></p>     <!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">1.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><font face="Verdana"><font size="2">Galván  B, Mariscal F. Epidemiología de la candidemia en UCI. </font><span lang="EN-US"> <font size="2">Rev Iberoam Micol. 2006; 23:12<b>-</b>5.</font></span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023621&pid=S1315-2556201400010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">2.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><span lang="EN-US" style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Pfaller  M, Diekema D. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health  problem. Clin<i> </i>Microbiol<i> </i>Rev. 2007; 20:133<b>-</b>63.</font></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023622&pid=S1315-2556201400010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">3.&nbsp;<span lang="EN-US">Yildirim  M, Sahin I,&nbsp;Kucukbayrak A,&nbsp;Ozdemir D,&nbsp;Tevfik M. Hand carriage species and risk  factors in hospital personnel. </span>Mycoses 2007; 50:189-92. </font></p>     <!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">4.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><font face="Verdana"><font size="2">Silva  V, Zepeda G, Rybak M, Febré N. Portación de levaduras en manos de estudiantes de  Medicina. </font><span lang="EN-US"><font size="2">Rev Iberoam Micol. 2003;  20:41<b>-</b>5.</font></span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023624&pid=S1315-2556201400010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">5.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span><font face="Verdana"><span lang="EN-US"><font size="2">Bonassoli  L, Bertoli M, Svidzinski T.<b> </b>High frequency of <i>Candida parapsilosis</i>  on the hands of healthy hosts.</font><b><font size="2"> </font></b></span> <font size="2">J Hosp Infect. 2005; 59:159<b>-</b>62.</font></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023625&pid=S1315-2556201400010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">6.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span><span style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Orozco  P, Cortés J, Parra C.<b> </b>Colonización por levaduras en recién nacidos y  personal de salud en la unidad de cuidados intensivos neonatales de un hospital  universitario en Bogotá, Colombia.<b> </b>Rev Iberoam Micol.<i> </i>2009; 26:108<b>-</b>11.</font></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023626&pid=S1315-2556201400010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">7.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span><span style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Carrillo  P, Álvarez C, Salas I, Mora N<b>. </b>Aislamiento de <i>Candida </i>spp<i>.</i>  y otras levaduras en el personal que labora en áreas críticas del Hospital San  Juan de Dios. Acta Méd Costarric. [online] 2009; 51:165<b>-</b>71.</font></span></p>     <p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">8.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span><span style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Linares  M, Solís F. Identificación de levaduras. Pemán J, Martin E, Rubio M. Guía  Práctica de Identificación y Diagnóstico en Micología Clínica. Rev Iberoam Micol.  2001: 5<b>-</b>12.</font></span></p>     <!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">9.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><font face="Verdana"><font size="2">Godoy  P, Almeida L, Lopes A. Identificación de <i>Candida albicans </i>utilizando el  medio cromogénico Albicans ID. </font><span lang="EN-US"><font size="2">Rev  Iberoam Micol. 2001; 18:197<b>-</b>9.</font></span></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023629&pid=S1315-2556201400010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">10.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><span lang="EN-US" style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Pincus  D, Orenga S, Chatellier S. Yeast identification past, present and future  methods. Med Mycol. 2007; 45:97<b>-</b>121.</font></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023630&pid=S1315-2556201400010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">11.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><span lang="EN-US" style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">National  Committee for Clinical Laboratory Standards. Method for antifungal disk  diffusion susceptibility testing of yeast. Approved guideline M44-A. National  Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, Pa 1987-1998. 2004; 24:1<b>-</b>23.</font></span></p>     <!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">12.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><span lang="EN-US" style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Pfaller  M, Andes D, Diekema D, Espinel-Ingroff A, Sheehan D. Wild-type MIC  distributions, epidemiological cutoff values and species-specific clinical  breakpoints for fluconazole and <i>Candida</i>: Time for harmonization of CLSI  and EUCAST broth microdilution methods. Drug Resist Updat. 2010; 13:180<b>-</b>95.</font></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023632&pid=S1315-2556201400010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">13.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><span lang="EN-US" style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Pfaller  M, Andes D, Maiken C, Arendrup M, Diekema D. Clinical breakpoints for  voriconazole and <i>Candida </i>spp.<i> </i>revisited: review of microbiologic,  molecular, pharmacodynamic, and clinical data as they pertain to the development  of species-specific interpretive criteria. Diagn Microbiol Infec Dis. 2011;  70:330<b>-</b>43.</font></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023633&pid=S1315-2556201400010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">14.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><span lang="EN-US" style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Barry  A, Pfaller M, Brown S, Espinel A, Ghannoum M, Knapp C <i>et al</i>. Quality  control limits for broth microdilution susceptibility test of ten antifungals. J  Clin Microbiol. 2000; 38:3457<b>-</b>9.</font></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023634&pid=S1315-2556201400010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">15.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><span lang="EN-US" style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Krisher  K, Brown S, Traczewski M. Quality control parameters for broth microdilution  test of anidulafungin. J Clin Microbiol. 2004; 42:420.</font></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023635&pid=S1315-2556201400010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">16.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span><font face="Verdana"><span lang="EN-US"><font size="2">Lupetti  A, Tavanti A, Davini P, Ghelardi E, Corsini V, Merusi I.<b> </b>Horizontal  transmition of <i>Candida parapsilosis </i>candidemia in a neonatal intensive  care unit.</font><b><font size="2"> </font></b></span><font size="2">J Clin  Microbiol. 2002; 40: 2363<b>-</b>9.</font></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023636&pid=S1315-2556201400010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">17.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span><span style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Durán  E, Ramírez I, Ventura P, Gil J, Rubio C. Candidemia: <i>Candida parapsilosis </i> en una unidad de neonatología. Rev Iberoam Micol. 2005; 22:1<b>-</b>15.</font></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023637&pid=S1315-2556201400010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">18.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span><span style="font-size: 9.0pt"><font face="Verdana" size="2">Perelli  A, Calzolaio V, González L, Kirchner E, Lamper D, Leonardo S<b>. </b>Presencia  de flora fúngica en áreas internas del Hospital “Dr. Adolfo Prince Lara”, Puerto  Cabello, estado Carabobo. Durante el período 2006-2007. VITAE (publicación  periódica en línea) 2009; 38. Disponible en URL: <a href="http://vitae.ucv.ve/index_pdf.php?module=articulo_pdf&n=2604&rv=71"> http://vitae.ucv.ve/index_pdf.php?module=articulo_pdf&amp;n=2604&amp;rv=71</a>.</font></span></p>     <!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <font face="Verdana" size="2">19.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span><font face="Verdana"><span lang="EN-US"><font size="2">Silva  V, Díaz C, Febré N and Chilean Invasive Fungal Infections Group. Invasive fungal  infections in Chile. A multicenter study of fungal prevalence and susceptibility  during 1-year period. </font></span><font size="2">Med Mycol. 2004; 42: 333<b>-</b>9.</font></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2023639&pid=S1315-2556201400010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p style="text-autospace: none; vertical-align: middle" align="justify"> <span lang="EN-US"><font face="Verdana" size="2">20.</font><span style="font-style: normal; font-variant: normal; font-weight: normal; font-family: Verdana"><font size="2">&nbsp;</font></span></span><font face="Verdana"><font size="2">Silva  V, Zepeda G, Alvarado D. Infección urinaria por <i>Trichosporon asahii</i>. </font><span lang="EN-US"><font size="2">Primeros dos casos en Chile. 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